Name: three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats
Uploaded: 2019-03-17T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats at JoVE.com

Nos gustaría agradecer a Alejandro Tapia, Florencia Mata, Miguel Burgos y María Elena Chávez por asistencia técnica. También queremos agradecer a Sarah Gordon Frances por sus útiles comentarios sobre un borrador anterior de este artículo y Vladimir Orduña para amablemente proporcionando datos de un artículo publicado. Gracias a Claudio Nallen para crear el diagrama en la figura 1. Agradecemos a la Dirección de Investigación de la Universidad Iberoamericana Ciudad de México para la financiación de servicios de corrección y edición y el video producen gastos.

Los tres protocolos que se describen en esta sección requieren el uso de ratas como sujetos. Mayoría de las cepas de ratas de laboratorio es conveniente; por ejemplo, Wistar, Long Evans, Sprague-Dawley, etcetera. El Comité de ética de la Universidad Iberoamericana, siguiendo la guía para el cuidado y uso de animales de laboratorio (Instituto de laboratorio de los recursos, Comisión de Ciencias de la vida, National Research Council, 1996), aprobó los protocolos de laboratorio ser descrito.
<p class="jove_title"...

El presente artículo proporciona una descripción de varios diversos protocolos para la detección de impulsividad en las ratas. Se argumenta que estos protocolos especialmente favorecidos por su facilidad de programación y análisis de datos y requieren dispositivos de funcionamiento y estímulo menos que otras alternativas disponibles. Hay varios pasos cruciales para la aplicación efectiva de estos protocolos, tales como (1) produciendo una pregunta de investigación, (2) seleccionar un diseño de estudio apropiado,...

Impulsividad puede ser conceptualizada como una dimensión conductual asociada desadaptativas resultados1. A pesar del uso generalizado de este término, no existe consenso universal sobre su definición precisa. De hecho, varios autores han definido la impulsividad dando ejemplos de comportamientos impulsivos o sus consecuencias, en vez de delinear los aspectos distintivos regulan el fenómeno. Por ejemplo, impulsividad se supone que implican una incapacidad para esperar, plan, inhibir comportamientos prepotente o una insensibilidad al retraso de los resultados2, y se ha considerado una vulnerabilidad de base a comportamiento adictivo3. Bari y Robbins4 han caracterizado la impulsividad como la co-ocurrencia de los impulsos fuertes, siendo provocada por variables disposicional y situacionales y procesos inhibitorios disfuncionales. Una definición diferente fue proporcionada por Dalley y Robbins, quien afirmó que la impulsividad podría considerarse como una predisposición a acciones rápidas y a menudo prematuras, sin discernimiento apropiado5. Sin embargo, otra definición de impulsividad, propuesta por Sosa y dos Santos6, es una tendencia de comportamiento que se desvía de un organismo de maximizar recompensas disponibles por el control adquirido ejercida sobre el organismo responde estímulos por cierto relacionadas con las recompensas.
Debido a los procesos conductuales relacionados con la impulsividad, su substrato neurofisiológico consiste en estructuras en común con los de comportamiento motivado, la toma de decisiones y la valoración de la recompensa. Esto es apoyada por estudios que demuestran que las estructuras de la vía cortico-estriatal (p. ej., Núcleo accumbens [NAc], corteza prefrontal [PFC], amígdala y caudado putamen [CPU]), así como el sistema de neurotransmisores monoaminérgicos ascendente, participar en la expresión de comportamiento impulsivo7. Sin embargo, es más complejo que el sustrato neural de la impulsividad. Aunque NAc y PFC están implicadas en la conducta impulsiva, estas estructuras forman parte de un sistema más complejo y también están formadas por subestructuras que tienen funciones diferentes (para una documentación más detallada, véase Dalley y Robbins5).
Independientemente de las controversias sobre su naturaleza y su sustrato biológico, esta dimensión conductual se sabe que varían entre individuos, en cuyo caso se puede considerar como un rasgo, y dentro de individuos, en cuyo caso puede considerarse como un estado8. Impulsividad ha sido reconocida como una característica de algunas enfermedades psiquiátricas como el trastorno por déficit de atención con hiperactividad (TDAH), abuso de sustancias y episodios maníacos9. Parece existir un alto consenso que la impulsividad está compuesta por múltiples factores disociables, incluyendo falta de voluntad para esperar (es decir, retrasar el descuento), incapacidad para abstenerse respuestas prepotente (es decir, déficit inhibitorio), dificultad para concentrarse en las información (es decir, falta de atención) y una tendencia a involucrarse en situaciones de riesgo (es decir, búsqueda de sensación)5,10,11. Cada uno de estos factores puede evaluarse a través de las tareas conductuales especiales, que generalmente se asignan a dos amplias categorías: inhibición de la respuesta y elección (estos pueden tener diferentes etiquetas entre cada uno taxonomías de los autores). Algunas características importantes de tales tareas conductuales son que podrían ser aplicados a través de varias especies de animales2 y que permiten estudiar la impulsividad en condiciones controladas de laboratorio.
Modelado en una dimensión conductual con animales no humanos de laboratorio tiene una serie de ventajas como la posibilidad de medición tendencias conductuales específicas, operativas, permitiendo a los investigadores reducir en gran medida variables de confusión (p. ej., contaminación por los últimos acontecimientos de vida4) y aplicar manipulaciones experimentales como administración farmacológica crónica, realizando lesiones neurotóxicas o manipulación genética. La mayoría de estos protocolos tienen versiones analógicas para los seres humanos, que hacen comparaciones fáciles5. Lo importante, es eficaz para diagnóstico de enfermedades psiquiátricas, como el TDAH (especialmente cuando más de un protocolo es aplicado12) utilizando análogos de estos protocolos de laboratorio en seres humanos.
Como cualquier otra medida psicológica, los protocolos de laboratorio para evaluar impulsividad deben cumplir con criterios particulares en orden a lograr el objetivo de proporcionar información sobre el fenómeno bajo estudio. Para ser considerado como un modelo adecuado de comportamiento impulsivo un laboratorio protocolo debe ser confiable y poseen (al menos en cierto grado) cara, constructo y validez predictiva13. Confiabilidad podría implicar que un efecto sobre la medición sería replicar si una manipulación se lleva a cabo dos o más veces, o que la medida es consistente con el tiempo o en diferentes situaciones14,15. La función anterior sería especialmente útil para estudios experimentales, mientras que el último sería así para los estudios correlaciónales14. Cara de validez se refiere al grado en que lo que se mide se asemeja al fenómeno que se supone para ser modelados, en cuanto a ser, por ejemplo, afectados por las mismas variables. Validez predictiva se refiere a la capacidad de una medida para pronosticar resultados futuros en los protocolos, que tienen como objetivo medir el mismo o un concepto relacionado. Finalmente, la validez de constructo se refiere a si el protocolo reproduce un comportamiento que es teóricamente sólido sobre el proceso o procesos que se supone que intervienen en el fenómeno bajo estudio. Sin embargo, aunque estos son características altamente deseables, uno debe ser cauteloso al afirmar que un protocolo es válido puramente basada en estos criterios16.
Hay varios protocolos para medir la impulsividad en el laboratorio. Sin embargo, el presente artículo presenta solamente tres tales métodos: Elección intertemporal, refuerzo diferencial de tasas bajas y discriminación negativa característica. Procedimientos intertemporales pretenden evaluar el retraso descuento (es decir, la dificultad de retraso resultados para controlar el comportamiento) componente de impulsividad. Las razones de este protocolo se enfrenta a sujetos con dos recompensas que difieren en magnitud y retraso de17. Una alternativa provee una pequeña recompensa inmediata (llamado antes más pequeñas, SS) y el otro una recompensa mayor pero retrasada (denominado mayor, LL). La proporción de respuestas a la alternativa de la SS puede utilizarse como un índice de impulsividad18. En el refuerzo diferencial de procedimientos de tarifas, el factor de impulsividad evaluarse es inhibición de respuesta (es decir, incapacidad para retener las respuestas prepotente) cuando existe una contingencia de castigo negativo a responder inadecuado. La justificación de este protocolo está introduciendo temas a una situación en la que la única forma de obtener recompensas es hacer una pausa su respuesta19. Finalmente, procedimiento de discriminación negativa característica evalúa la inhibición de respuesta cuando no hay ningún castigo explícito al responder inadecuado. La justificación de este protocolo (también conocido como pavloviano acondicionado inhibición o la A + / AX-procedimiento) es evaluar la capacidad de los sujetos a retener las respuestas innecesarias20.
Estos procedimientos destacan en comparación a otros como teniendo algunas características convenientes. Por ejemplo, los procedimientos aquí presentados son adecuados para está llevando a cabo en cámaras de acondicionamiento mínimamente equipada (también conocido como ' la caja de Skinner"). La figura 1 muestra un diagrama de una cámara de acondicionamiento típicos. Cámaras de acondicionamiento son instrumentos de investigación útiles debido a una serie de ventajas. Permiten colección automatizada de un volumen relativamente grande de datos, maximizando el número de sujetos evaluados por unidad de tiempo y el espacio21. Por otra parte, estudios de comportamiento realizados en cámaras de acondicionamiento requieren una intervención mínima del investigador, que reduce el tiempo y esfuerzo invertido por el personal de laboratorio, a diferencia de otros métodos disponibles (por ejemplo, no automatizada T-laberintos, cajas de cambio de sistema) 21. minimizando la intervención de los investigadores también ayudan a reducir el sesgo de los investigadores, disminución de efectos de curva de aprendizaje de los investigadores, y una reducción de la manipulación inducida tensión22. Cámaras de acondicionamiento típicos están bastante estandarizados para ser usado con roedores de tamaño medianos, como las ratas (r. norvegicus), pero pueden ser empleados para el estudio de otros taxa, como marsupiales de tamaño similar (por ejemplo, D. albiventris y L. crassicaudata 23). también hay comerciales acondicionado cámaras adaptadas para menores (por ejemplo, ratones [M. musculus]) y más grandes (por ejemplo, primates no humanos) especies. Creación y realización de los protocolos presentados en este artículo requieren habilidades de programación mínimo y exigen un número muy bajo de entrada alcanzable y dispositivos de salida, a diferencia de los métodos alternativos más sofisticados (e.g., 5-choice serial tiempo de reacción tarea [5- CSRTT]24 y seguimiento de señal25).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59070/59070fig1.jpg"> Figura 1: Diagrama de un condicionamiento prototipo cámara. Los componentes principales de la cámara de acondicionamiento incluyen: receptáculo (2) comida (equipado con diodos infrarrojos lateral para detectar entradas de cabeza), luz focalizada (3), palanca (1) izquierda, (4) altavoz para emisión de tono (vista trasera), luz (5) casa (vista trasera), alimentos (6) dispensador. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59070/59070fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:663px;" width="663">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">25 Pin Cables</td>
			<td style="width:161px;">Med Associates</td>
			<td style="width:119px;">SG-213F</td>
			<td style="width:167px;">Connect smart control cards to smart control panels</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">40 Pin Ribbon Cable</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700C</td>
			<td>Connects the computer with the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Computer</td>
			<td>Dell Computer Company</td>
			<td>T8P8T-7G8MR-4YPQV-96C2F-7THHB</td>
			<td>For controlling and monitoring protocols&#8217; processes</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Conductor Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-210CP-8</td>
			<td>Provide power to the smart control panels via the rack mount power supply</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Food dispenser with pedestal</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-203M-45 (12937)</td>
			<td>Silently provides 45 mg food pellets&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Head-Entry Detector</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-254-CB</td>
			<td>Uses an infrared photo-beam to detect head entries into the food receptacle</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">House Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-215M</td>
			<td>For providing&#160; diffuse illumination inside the chamber&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Interface Cabinet</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-6080D</td>
			<td>Pod that can hold up to eight smart control cards</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Med-PC IV Software</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SOF-735</td>
			<td>Translate codes into commands for operating outputs and recording/storing input information</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Multiple tone generator&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-223 (597)</td>
			<td>For controlling the frequency of the tones</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Panel fillers</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-007-FP</td>
			<td>For filling modular walls when devices are not used</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Pellet Receptacle</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-200R2M</td>
			<td>Receives and holds food pellets delivered by the dispenser</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Rack Mount Power Supply</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700F</td>
			<td>Provides power to the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Retractable Lever</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-112CM (10455)</td>
			<td>Detects lever-pressing responses; projects into the chamber or retracts as needed</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Cards</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-716</td>
			<td>Controls up to eight inputs and four outputs of a conditioning chamber&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Panels</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-716 (3341)</td>
			<td>Connect smart cards to the devices within the conditioning chambers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Speaker&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-224AM</td>
			<td>For providing tones inside the chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard Modular Chambers for Rat</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-008</td>
			<td>Made of aluminum channels designed to hold modular devices&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard sound-, light-, and temperature isolating shells</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-022MD</td>
			<td>Serve to harbor each conditioning chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Stimulus Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-221M</td>
			<td>For providing a round focalized light stimulus</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Three Pin Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-216A-2</td>
			<td>Connects smart control panel with each of the input and output devices in the conditioning chambers</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats

El presente artículo proporciona a una guía para la conducción y análisis de tres protocolos basados en acondicionado para evaluar impulsividad en ratas. Impulsividad es un concepto significativo porque se asocia con enfermedades psiquiátricas en los seres humanos y con comportamiento maladaptive en animales no humanos. Se cree que la impulsividad está compuesta de factores independientes. Hay protocolos de laboratorio para evaluar cada uno de estos factores utilizando equipo automatizado estandarizado. Descuento de retraso se asocia con la incapacidad de ser motivados por los resultados de retraso. Este factor se evalúa a través de protocolos de restricción presupuestaria, que consisten en que presenta al individuo con una situación de elección que implica una recompensa inmediata y una recompensa mayor pero retrasada. Déficit de inhibición de respuesta se asocia con la incapacidad para retener las respuestas prepotente. Refuerzo diferencial de tasas bajas (DLR) y protocolos de función negativa discriminación evaluar el factor de déficit de inhibición de la respuesta de la impulsividad. El primero impone una condición a una persona motivada en que la mayoría espera un periodo mínimo de tiempo para una respuesta a ser recompensados. Éste evalúa la capacidad de los individuos a abstenerse de alimentos buscando respuestas cuando se presenta una señal de la ausencia de alimentos. El propósito de estos protocolos es construir una medida cuantitativa objetiva de la impulsividad, que sirve para hacer comparaciones entre especies, permitiendo la posibilidad de la investigación traslacional. Las ventajas de estos protocolos particulares son su fácil instalación y uso, que surge de la relativamente pequeña cantidad de material necesario y a la naturaleza automatizada de estos protocolos.

Los tres protocolos descritos en este artículo pueden cada uno realizarse sola o en combinación con otros procedimientos; Esto dependerá de la pregunta de investigación, que a su vez determinará el diseño del estudio. Algunos ejemplos de diseños de estudio que son compatibles con estos protocolos son: estudios de series de tiempo (1), que tienen como objetivo describir los cambios longitudinales en su funcionamiento; (2) cuantificación de la variabilidad individual, que tiene como...

Watch this Scientific Journal Video about Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats at JoVE.com

Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats

Tres procedimientos de laboratorio para la evaluación de diversas manifestaciones de la impulsividad en las ratas

Presentamos tres protocolos que evalúan diferentes formas de la impulsividad en las ratas y otros pequeños mamíferos. Procedimientos de Elección intertemporal evaluación la tendencia a descontar el valor de los resultados de retraso. Refuerzo diferencial de tasas bajas y característica negativa discriminación evaluar capacidad de inhibición de la respuesta con y sin castigo por respuestas inadecuadas, respectivamente.

The present article provides a guide for the conduction and analysis of three conditioning-based protocols to evaluate impulsivity in rats. Impulsivity is ...

La realización de procedimientos conductuales para evaluar la impulsividad en ratas proporciona una visión de la base ambiental, neurofisiológica y neuroquímica de la impulsividad, es decir, sobre los factores que desencadenan y subyacen a esos comportamientos. Este protocolo permite el estudio de la impulsividad con un buen equilibrio de eficiencia y accesibilidad, e instrucción de datos adecuados para el análisis cuantitativo. El rendimiento en estos protocolos puede ser considerado como un análogo de impulsividad en los seres humanos.Por lo tanto, las versiones humanas de ellos sirven para el diagnóstico y tratamiento de trastornos psiquiátricos relacionados como el TDAH o el juego patológico. Demostrando el procedimiento con Patsy Moreno serán Gustavo Lago, un técnico, y Pablo Saavedra, un estudiante de pregrado de nuestro laboratorio. Después de iniciar el régimen de restricción de alimentos, añadir 60 pellets de alimentos al recipiente alimentario para habituar la neofobia alimentaria antes de introducir las ratas en las cámaras de acondicionamiento sin el inicio de ningún protocolo durante 30 minutos para habituar las respuestas de exploración.Después de la etapa de habituación, introducir las ratas en las cámaras de acondicionamiento para dos sesiones diarias adicionales de 30 minutos de entrega de un pellet de alimentos cada 45 segundos para ayudar a las ratas a identificar la fuente de los pellets. Para la elección intertemporal y el refuerzo diferencial de bajas tasas de respuesta, o protocolos DRL, coloque una o dos palancas en la cámara y entregue alimentos para cada prensa de nivel junto con una entrega gratuita de pellets de alimentos cada 45 segundos. Para un protocolo de elección intertemporal, seleccione los valores para el retraso y la magnitud de la recompensa.Por ejemplo, las opciones para la alternativa más grande-posterior, o LL, entregan cinco pellets de alimentos después de un retraso fijo de 20 segundos y las opciones para el pequeño-antes, o alternativa de SS, entregar un pellet de alimentos inmediatamente. Seleccione un criterio de acabado y finalice las sesiones automáticamente después de completar el criterio especificado, por ejemplo, después de 40 pruebas de opción o después de 50 minutos. Combine cada alternativa con una palanca dentro de la cámara de acondicionamiento, contrapesando la lateralidad de las alternativas entre los sujetos, y haga que las alternativas SS y LL estén disponibles en la realización de un cronograma de intervalo variable.En las pruebas de libre elección, cuando se presiona una de las palancas después de que haya transcurrido un cierto intervalo, se activará la alternativa asociada. Ambas palancas se retraerán, y se activará la consecuencia asociada con las alternativas SS o LL después de la realización de un cronograma de refuerzo de intervalo variable. Después de la entrega de la recompensa, realice una condición de tiempo de espera, ajustando la duración de esta condición para equiparar la duración media de los intervalos intertriales para ambas alternativas.La siguiente prueba de elección comienza después de la finalización del tiempo de espera. Si un sujeto selecciona una alternativa para dos pruebas consecutivas, el programa determinará que el siguiente ensayo será una prueba forzada de la alternativa restante, es decir, en el próximo ensayo, ambas palancas estarán disponibles, pero solo una funcionará para asegurarse de que el sujeto experimente los resultados asociados con ambas alternativas. Para la programación DRL, seleccione el valor del tiempo mínimo después del cual responder producirá una recompensa.Después del comienzo de una sesión o después de cualquier respuesta de pulsación de palanca, inicie un temporizador de cuenta atrás desde el valor de tiempo seleccionado a cero. Si el sujeto muestra una respuesta antes de que el temporizador alcance el valor de cero, el temporizador se restablecerá para que el sujeto debe esperar una nueva oportunidad para obtener una recompensa. Si el sujeto emite una respuesta después de que el temporizador alcance el valor de cero, entregue un pellet de comida.El temporizador se reiniciará después de dos segundos para permitir que el animal consuma el pellet. Para la discriminación negativa de características, seleccione primero las duraciones de los estímulos, las duraciones del intervalo intertrial y los criterios de finalización de las sesiones. Después de presentar un estímulo A en ensayos A-plus, entregar un pellet de alimentos.Después de presentar el mismo estímulo A acompañado de un estímulo adicional X en ensayos AX-menos, no entregue ningún alimento. Después de configurar los protocolos en el software informático, limpie las paredes interiores, el techo y el suelo de la parrilla de las cámaras de operación con una solución desinfectante adecuada para eliminar los olores de las sesiones anteriores o estudios anteriores. Utilice el ordenador para activar y supervisar manualmente las entradas y salidas cruciales para asegurarse de que funcionan y comprobar que el dispensador de alimentos contiene suficiente comida para ser entregado durante la sesión.Mueva las jaulas de la carcasa con las ratas dentro cerca de las cámaras de acondicionamiento, y abra la jaula de la carcasa. Coloque suavemente la rata en su cámara de acondicionamiento correspondiente antes de cerrar las cámaras de acondicionamiento en las conchas aislantes. Inicie el programa y espere hasta que finalice el programa.Si los datos no se guardan automáticamente, guarde los archivos de salida de la sesión en la unidad del equipo o en otro lugar. Cuando el programa haya terminado, devuelva suavemente a las ratas a sus jaulas de alojamiento correspondientes y dé alimentos complementarios a los animales de acuerdo con el régimen de restricción de alimentos seleccionado. En este procedimiento de elección intertemporal, la relación de registro de la tasa de respuesta de palanca asociada con la alternativa de las SS fue mayor en ratas espontáneamente hipertensas en comparación con ratas de tipo salvaje, lo que sugiere que las ratas modelo de TDAH prefieren una recompensa inmediata a expensas de una alternativa más rica pero retrasada.En este experimento representativo del protocolo DRL, los datos longitudinales de una sola rata con una restricción temporal de 10 segundos en la respuesta demuestran que con el tiempo, el animal adquirió experiencia en la tarea, finalmente aprendiendo a responder alrededor de 10 segundos. Este experimento farmacológico puso a prueba si el rendimiento impulsivo en un procedimiento de DRL con una restricción temporal de 10 segundos disminuyó con un tratamiento que consiste en niveles bajos de un fármaco antipsicótico. Las gráficas de densidad azul representan la distribución de las respuestas cuando se administra la solución salina, y las parcelas de salmón representan la distribución de dichas respuestas cuando se administró haloperidol.Las gráficas superiores incrustadas muestran tasas de respuesta, y las más bajas muestran tasas de recompensa para la solución salina y el haloperidol con el mismo código de color que las gráficas anteriores. Cabe señalar que la tasa de respuesta se redujo de tres a cinco sujetos, específicamente para aquellos sujetos con una alta proporción de respuestas de ráfaga en la condición salina. Típicamente, en el protocolo de discriminación característica negativa, responder durante el estímulo único más ensayos alimentarios y durante el estímulo compuesto sin ensayos alimentarios no difieren sustancialmente en las primeras sesiones.Sin embargo, después de unas pocas sesiones, las ratas responden diferencialmente en ambos tipos de ensayos, revelando que la adición de un segundo estímulo contrarresta la tendencia de respuesta controlada por el primero. Es importante destacar que los sujetos presentan diferencias individuales bastante sólidas en ambos tipos de ensayos. Tenga cuidado de que los protocolos apropiados se carguen en las cámaras de acondicionamiento correspondientes, que las ratas estén correctamente asignadas a cada cámara y que todas las cámaras estén cerradas.Una vez completado un procedimiento de referencia, se podrían administrar tratamientos conductuales, farmacológicos o quirúrgicos para probar su efecto en el rendimiento. Los resultados no siempre son concluyentes, por lo que los investigadores podrían querer considerar si los datos observados dependen de los parámetros seleccionados o son inducidos de hecho por factores de confusión. Asegúrese de manejar las ratas apropiadamente para evitar dañar a las ratas y evitar que las ratas le dañen.

Research

JoVE Journal

Behavior

A Procedure to Study the Effect of Prolonged Food Restriction on Heroin Seeking in Abstinent Rats

Un procedimiento para estudiar el efecto de la prolongada restricción de alimentos en heroína Buscando en ratas abstinentes

In human drug addicts, exposure to drug-associated cues or environments that were previously associated with drug taking can trigger relapse during ...

Investigación

Comportamiento

A Novel Procedure for Evaluating the Reinforcing Properties of Tastants in Laboratory Rats: Operant Intraoral Self-administration

Un nuevo procedimiento para la evaluación de las propiedades reforzantes de estimulantes del gusto en las ratas de laboratorio: operante intraoral autoadministración

This paper describes a novel method for studying the bio-behavioral basis of addiction to food. This method combines the surgical component of taste ...

A Procedure to Observe Context-induced Renewal of Pavlovian-conditioned Alcohol-seeking Behavior in Rats

Un procedimiento para observar inducida Contexto-Renovación-pavloviano acondicionado Alcohol comportamiento de búsqueda en ratas

Environmental contexts in which drugs of abuse are consumed can trigger craving, a subjective Pavlovian-conditioned response that can facilitate ...

Operant Procedures for Assessing Behavioral Flexibility in Rats

Procedimientos operantes para la evaluación de la flexibilidad conductual en ratas

Executive functions consist of multiple high-level cognitive processes that drive rule generation and behavioral selection. An emergent property of these ...

The Rodent Psychomotor Vigilance Test (rPVT): A Method for Assessing Neurobehavioral Performance in Rats and Mice

The Rodent Psychomotor Vigilance Test rPVT: A Method for Assessing Neurobehavioral Performance in Rats and Mice

La prueba de roedores psicomotor Vigilancia (rPVT): Un método para evaluar el rendimiento neuroconductual en ratas y ratones

The human Psychomotor Vigilance Test (PVT) is a widely used procedure for measuring changes in fatigue and sustained attention. The present article ...

The Knob Supination Task: A Semi-automated Method for Assessing Forelimb Function in Rats

La tarea de supinación de mando: Un método semiautomático para evaluar la función de Forelimb en ratas

Tasks that accurately measure dexterity in animal models are critical to understand hand function. Current rat behavioral tasks that measure dexterity ...

Systematic Assessment of Well-Being in Mice for Procedures Using General Anesthesia

Evaluación sistemática de bienestar en ratones para procedimientos con anestesia General

In keeping with the 3R Principle (Replacement, Reduction, Refinement) developed by Russel and Burch, scientific research should use alternatives to animal ...

Noninvasive, In-pen Approach Test for Laboratory-housed Pigs

Prueba de enfoque in-pen no invasiva para cerdos alojados en laboratorio

Traumatic brain injury (TBI) incidences have increased in both civilian and military populations, and many researchers are adopting a porcine model for ...

A Laboratory Method to Measure Contagious Yawning in Rats

Un método de laboratorio para medir el bostezo contagioso en ratas

Communication is an essential aspect of animal social life. Animals may influence one another and come together in schools, flocks, and herds. ...

Assessing the Autonomic and Behavioral Effects of Passive Motion in Rats using Elevator Vertical Motion and Ferris-Wheel Rotation

Evaluación de los efectos autónomos y conductuales del movimiento pasivo en ratas mediante el movimiento vertical del ascensor y la rotación de la noria

The overall goal of this study is to assess the autonomic and behavioral effects of passive motion in rodents using the elevator vertical motion and ...