Name: two-vessel occlusion mouse model of cerebral ischemia-reperfusion
Uploaded: 2019-03-01T13:30:00
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この作品は、省の科学と技術、台湾 (最も 106-2320-B-038-024, ほとんど 105-2221-E-038-007-MY3 と最も 104-2320-B-424-001) と台北医科大学附属病院 (107TMUH-SP-01) によって支えられました。この原稿は、ウォレス学術編集することによって編集されました。

制度上のアニマル ・ ケアおよび中央研究院、台北医科大学の使用委員会、実験動物の使用のためこのプロトコルを承認しました。
1. MCAO/再灌流モデル
<ol><li>手術までには、水と食事への無料アクセスとマウスを提供します。</li>
	<li>オートクレーブ手術ツールし、手術テーブルと 70% のエタノールを使用して機器を校正します。サージカル マスクと滅菌手袋を着用しま...

<ol>
	<li>Woodruff, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathophysiology,+treatment,+and+animal+and+cellular+models+of+human+ischemic+stroke.">Pathophysiology, treatment, and animal and cellular models of human ischemic stroke.</a> Molecular Neurodegeneration. 6 (1), 11 (2011).</li><li>Chamorro, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+immunology+of+acute+stroke.">The immunology of acute stroke.</a> Nature Reviews. Neurology. 8 (7), 401-410 (2012).</li><li>Engel, O., Kolodziej, S., Dirnagl, U., Prinz, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+stroke+in+mice+-+Middle+cerebral+artery+occlusion+with+the+filament+model.">Modeling stroke in mice - Middle cerebral artery occlusion with the filament model.</a> Journal of Visualized Experiments. (47), e2423 (2011).</li><li>Lee, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interleukin+15+blockade+protects+the+brain+from+cerebral+ischemia-reperfusion+injury.">Interleukin 15 blockade protects the brain from cerebral ischemia-reperfusion injury.</a> Brain, Behavior, and Immunity. 73, 562-570 (2018).</li><li>Barone, F. C., Knudsen, D. J., Nelson, A. H., Feuerstein, G. Z., Willette, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+strain+differences+in+susceptibility+to+cerebral+ischemia+are+related+to+cerebral+vascular+anatomy.">Mouse strain differences in susceptibility to cerebral ischemia are related to cerebral vascular anatomy.</a> Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 13 (4), 683-692 (1993).</li><li>Kitagawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cerebral+ischemia+after+bilateral+carotid+artery+occlusion+and+intraluminal+suture+occlusion+in+mice:+evaluation+of+the+patency+of+the+posterior+communicating+artery.">Cerebral ischemia after bilateral carotid artery occlusion and intraluminal suture occlusion in mice: evaluation of the patency of the posterior communicating artery.</a> Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 18 (5), 570-579 (1998).</li><li>Wellons, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+strain-related+susceptibility+in+two+murine+recovery+models+of+global+cerebral+ischemia.">A comparison of strain-related susceptibility in two murine recovery models of global cerebral ischemia.</a> Brain Research. 868 (1), 14-21 (2000).</li><li>Doyle, K. P., Fathali, N., Siddiqui, M. R., Buckwalter, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distal+hypoxic+stroke:+a+new+mouse+model+of+stroke+with+high+throughput,+low+variability+and+a+quantifiable+functional+deficit.">Distal hypoxic stroke: a new mouse model of stroke with high throughput, low variability and a quantifiable functional deficit.</a> Journal of Neuroscience Methods. 207 (1), 31-40 (2012).</li><li>Doyle, K. P., Buckwalter, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mouse+model+of+permanent+focal+ischemia:+Distal+middle+cerebral+artery+occlusion.">A mouse model of permanent focal ischemia: Distal middle cerebral artery occlusion.</a> Methods in Molecular Biology. , 103-110 (2014).</li><li>Wayman, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Performing+Permanent+Distal+Middle+Cerebral+with+Common+Carotid+Artery+Occlusion+in+Aged+Rats+to+Study+Cortical+Ischemia+with+Sustained+Disability.">Performing Permanent Distal Middle Cerebral with Common Carotid Artery Occlusion in Aged Rats to Study Cortical Ischemia with Sustained Disability.</a> Journal Of Visualized Experiments. (108), e53106 (2016).</li><li>Noor, R., Wang, C. X., Shuaib, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+hyperthermia+on+infarct+volume+in+focal+embolic+model+of+cerebral+ischemia+in+rats.">Effects of hyperthermia on infarct volume in focal embolic model of cerebral ischemia in rats.</a> Neuroscience Letters. 349 (2), 130-132 (2003).</li><li>Florian, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+hypothermia+reduces+infarct+volume+in+aged+rats+after+focal+ischemia.">Long-term hypothermia reduces infarct volume in aged rats after focal ischemia.</a> Neuroscience Letters. 438 (2), 180-185 (2008).</li><li>Carmichael, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+models+of+focal+stroke:+size,+mechanism,+and+purpose.">Rodent models of focal stroke: size, mechanism, and purpose.</a> NeuroRx: The Journal of the American Society for Experimental NeuroTherapeutics. 2 (3), 396-409 (2005).</li><li>Lin, T. N., Te, J., Huang, H. C., Chi, S. I., Hsu, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolongation+and+enhancement+of+postischemic+c-fos+expression+after+fasting.">Prolongation and enhancement of postischemic c-fos expression after fasting.</a> Stroke. 28 (2), 412-418 (1997).</li><li>Glazier, S. S., O'Rourke, D. M., Graham, D. I., Welsh, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+ischemic+tolerance+following+brief+focal+ischemia+in+rat+brain.">Induction of ischemic tolerance following brief focal ischemia in rat brain.</a> Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism: Official Journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 14 (4), 545-553 (1994).</li><li>Tachibana, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+Reperfusion+After+Brain+Ischemia+Has+Beneficial+Effects+Beyond+Rescuing+Neurons.">Early Reperfusion After Brain Ischemia Has Beneficial Effects Beyond Rescuing Neurons.</a> Stroke. 48 (8), 2222-2230 (2017).</li><li>Gan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ischemic+neurons+recruit+natural+killer+cells+that+accelerate+brain+infarction.">Ischemic neurons recruit natural killer cells that accelerate brain infarction.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (7), 2704-2709 (2014).</li><li>Li, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Astrocyte-derived+interleukin-15+exacerbates+ischemic+brain+injury+via+propagation+of+cellular+immunity.">Astrocyte-derived interleukin-15 exacerbates ischemic brain injury via propagation of cellular immunity.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (3), E396-E405 (2017).</li><li>Wang, S., Zhang, H., Dai, X., Sealock, R., Faber, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+architecture+underlying+variation+in+extent+and+remodeling+of+the+collateral+circulation.">Genetic architecture underlying variation in extent and remodeling of the collateral circulation.</a> Circulation Research. 107 (4), (2010).</li></ol>

MCAO 灌マウス モデル採用して人間の一過性虚血を模倣する動物モデルであります。この動物モデルは、脳卒中の病態を検討するトランスジェニック、ノックアウト マウス系統に適用できます。プロトコルのいくつかの手順は、特に重要です。(簡単に MCA から出血を引き起こす不適切な行動で、頭蓋骨に穴を作成するときは、1) ドリルを慎重に使用する必要があります。(2) の MCA が破損してい...

脳虚血・再灌流マウス モデルは、虚血性脳損傷1病態生理学を調査するための最も広く使用されている実験的アプローチの一つです。脳虚血・再灌流は、末梢の免疫系を活性化ため、末梢の免疫細胞は虚血性の脳に潜入し、引き起こす神経損傷2。したがって、脳虚血・再灌流を模したマウスの信頼性と再現性のあるモデルは、脳卒中の病態生理を理解する必要です。
C57bl/6 j (B6) マウスでは、遺伝的に操作する簡単にことができますストローク実験で最も一般的に使用されるひずみです。脳虚血再灌流の状態を模した MCAO/再灌流の 2 つの一般的なモデルがあります。最初のシリコン コーティング フィラメントを採用して巡って MCA; 血流を閉塞する近位の MCAO の腔内のフィラメント モデルです。遮蔽のフィラメントはその後血流3を復元する削除されます。閉塞期間が長い場合は、皮質と皮質下のエリアの梗塞を引き起こすに対し、短い閉塞期間は皮質領域の病変の結果します。2 番目のモデルは、管外結紮縫合と動脈瘤のクリップ4の取り外しによって後の血流が回復、MCA の血流を減らすために MCA と CCA を含む遠位 MCAO の結紮モデルです。このモデルで皮質野に、梗塞が生じるし、死亡率が低い。MCAO/再灌流モデルの結紮は頭遠位 MCA のサイトを公開する必要があるので、サイトを簡単に確認することができます、プロシージャ中遠位 MCA の血流が中断されるかどうかを調べることは簡単です。
B6 マウス展示; ウィリス動脈輪の解剖学にばらつき脳虚血・再灌流5,6、7の後梗塞ボリュームに影響を与える可能性があります。現在、遠位 MCA8の結紮によってこの問題を克服することができます。本研究では、MCA 血流を閉塞し、一定期間虚血後再灌流の方法を確立します。脳虚血-再灌流モデルの 2 血管閉塞は、虚血の一定の期間の後で復元の血流と右遠位 MCA と右の CCA の結紮による MCA 領域の一過性虚血を誘発します。この MCAO/再灌流モデルは、脳虚血-再灌流4後安定したサイズ、虚血性の脳と行動の赤字で脳浸潤の免疫細胞の一括の梗塞を誘発します。

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Bone rongeur</td>
			<td>Diener</td>
			<td></td>
			<td>Friedman</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cefazolin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>1097603</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloral hydrate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C8383</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissection microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ-745</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electric clippers</td>
			<td>Petpro</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% formalin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F5304</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Germinator dry bead sterilizer</td>
			<td>Braintree Scientific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Forceps</td>
			<td>Karl Klappenecker</td>
			<td></td>
			<td>10 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissors</td>
			<td>Diener</td>
			<td></td>
			<td>9 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissors STR</td>
			<td>Karl Klappenecker</td>
			<td></td>
			<td>11 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microdrill</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td>FOREEDOM K.1070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-scissors-Vannas</td>
			<td>HEISS</td>
			<td>H-4240</td>
			<td>blade 7mm, 8 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse brain matrix</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-invasive blood pressure system</td>
			<td>Muromachi</td>
			<td>MK-2000ST</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Operating Scissors STR</td>
			<td>Karl Klappenecker</td>
			<td></td>
			<td>14 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Physiological Monitoring System</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Razor blades</td>
			<td>Ever-Ready</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stoelting Rodent Warmers</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td>53810</td>
			<td>Heating pad</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture clip</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tweezers</td>
			<td>IDEALTEK</td>
			<td></td>
			<td>No.3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vetbond</td>
			<td>3M</td>
			<td>15672</td>
			<td>Surgical glue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10-0 suture</td>
			<td>UNIK</td>
			<td>NT0410</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T8877</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

two-vessel occlusion mouse model of cerebral ischemia-reperfusion

本研究では中大脳動脈 (MCA) 閉塞マウス モデルを用いて、脳虚血・再灌流を検討します。再現性と信頼性の高いマウス モデル、脳虚血・再灌流の病態を調査し、脳卒中患者の潜在的な治療戦略の決定に役立ちます。ウィリスの c57bl/6 マウスのサークルの解剖学の変化は、虚血性脳傷害後梗塞体積を影響します。研究は、その遠位部の MCA 閉塞 (MCAO) することができますこの問題を克服し、安定した梗塞サイズに示されています。本研究では、右 MCA への血流遮断による脳虚血・再灌流の 2 血管閉塞マウス モデルを確立します。我々 は遠位方向右 MCA と右総頚動脈 (CCA) を縛るし、虚血のある特定の期間後に血流を復元します。この虚血再灌流傷害は、安定したサイズと行動の赤字の梗塞を誘発します。末梢の免疫細胞は、24 h 浸透期間内虚血性脳を潜入します。また、皮質の領域で神経細胞の損失より長い再灌流時間の少ないです。したがって、この 2 血管閉塞モデルは脳虚血後再灌流期間中に免疫応答と神経回復の調査に適しています。

この MCAO/再灌流手順は、右 MCA 周辺皮質梗塞を生産し、行動の赤字の原因します。虚血性梗塞量 (図 1 a, B) と (図 1d) 神経細胞の損失の程度が異なるが結紮期間の増加を通じて右 MCA 領域の大脳皮質で作成されました。この MCAO/再灌流障害は、MCAO 灌 (図 2) 後 48 h で動物の自発運...

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Two-vessel Occlusion Mouse Model of Cerebral Ischemia-reperfusion

2 血管閉塞マウス脳虚血・再灌流モデル

脳虚血再灌流のマウス モデルを確立して、脳卒中の病態を調査します。我々 は遠位右中大脳動脈と右総頚動脈を結紮し、10 または 40 分間虚血後血流を復元します。

In this study, a middle cerebral artery (MCA) occlusion mouse model is employed to study cerebral ischemia-reperfusion. A reproducible and reliable mouse ...

この2血管閉塞マウス脳虚血再灌流モデルは、脳卒中の病態生理を調べることができる。このモデルは虚血性脳の免疫細胞に浸透する脳の大部分の安定な梗塞容積を誘導し、脳虚血再灌流後の行動障害を引き起こす。このモデルでは、皮質領域に梗塞が起き、死亡率が低い。ライゲーションMCAO再灌流モデルは遠位MCAのサイズを露出させるために頭蓋開頭術を必要とするため、サイズを容易に確認することができ、そして処置の間に遠位MCAOの血流が中断されるかどうかの試験は簡単である。手術まで、マウスに水と食べ物への無料アクセスを提供します。手術用具をオートクレーブし、手術台および装置を消毒するために70%エタノールを使用する。8〜12週齢のマウスを麻酔した後、しっかりとしたつまみを使用してテストしたときにペダル反射がないようにしてください。マウスが麻酔下にある間、眼の乾燥を防ぐために獣医軟膏を使用してください。血圧を監視するには、まず髪を取り除き、次に非侵襲的な血圧システムと生理学的モニタリングシステムを使用して直腸温度および動脈血性ガスを監視する。予防的抗生物質でマウスを皮下注射する。次に、マウスを加熱パッドの上のスパイン位置に置きます。皮膚を露出するには、電気バリカンを使用して腹側首領域と右目と右耳の間の領域で毛皮を剃ります。動物の体から毛皮を上皮クリームで取り除き、70%エタノールで手術部位を消毒する。その後、虹彩はさみを使用して首に1センチメートルの正中線切開をカットします。虹彩鉗子では、身体損傷を引き起こすことなく、迷走神経から離れた一般的な頸動脈を慎重に解剖し、5-0シルク縫合糸を使用して動脈を分離する。次に、虹彩はさみを使用して、右目と右耳の中間点で頭皮に0.3センチメートルの切開を行います。マイクロハサミを使用して、側頭筋を切断して、頬骨とスカモサル骨を露出させる。マウスをステレオ解剖顕微鏡の下に置き、マイクロドリルを使用して、右側の遠位中大脳動脈の上に直接2ミリリットルの穴を作成します。10-0 縫合糸を使用して右側遠位 MCA のトランクをリゲートし、非外傷性動脈瘤クリップを使用して右側の CCA を閉塞させます。虚血の所望の持続期間の後、MCAおよびCCAへの血流を回復させるために縫合および動脈瘤のクリップを取り除く。縫合クリップを使用して、頭の皮膚切開を密封し、頸部皮膚切開部を外科用接着剤で密封します。痛みの軽減のために皮下にブプレノルフィンを注入します。.加熱パッドの36.5プラスマイナス0.5度で動物の体温を維持し、麻酔から完全に回復するまで放置したり、他の動物の会社に戻したりしないでください。最後に、マウスをオートクレーブケージに入れ、完全に回復した後に水や食べ物に自由にアクセスできるようにします。虹彩はさみを使用して、麻酔と首を切られたマウスの頭部の皮膚を切開して頭蓋骨を露出させます。その後、手術用ハサミを使用して前頭骨の前部を切断し、虹彩はさみで矢状縫合に沿って頭蓋骨を切断します。骨の回転で、前頭骨と頭頂骨を脇に押し出し、脳を露出させます。脳を取り除き、マウスの脳マトリックスに入れる。カミソリの刃を使用して2ミリリットルのコロナスライスを得て、2%TTCの5ミリリットルで満たされた50ミリリットルのチューブに入れなさい。マウスの脳マトリックスを使用してコロナスライスを得る場合、切断サイズは異なる脳で同じでなければなりません。切断サイズは脳スライスのサイズにも影響を与え、梗塞サイズの計算にも影響を与えます。2%TTCと1X PBSで脳スライスを摂氏37度で10分間染色し、10%ホルマリンで2回洗いすます。24時間室温で10%ホルマリンで脳スライスを固定します。ティッシュペーパーの脳スライスを乾燥させて過剰なホルマリンを吸収した後、きれいなプラスチックスライドに配置し、滑り台から尾理に向け、別のきれいなプラスチックスライドで覆います。スキャナを使用してスライドをスキャンします。スライドを裏返し、裏面をスキャンします。ImageJソフトウェアを使用して、各セクションの梗塞領域を計算し、最初に画像ファイルを開き、画像のスケールを設定します。その後、フリーハンド選択を使用して梗塞領域を選択し、関心のある領域ROIマネージャーを使用して対象領域を測定します。最後に、各セクションの梗塞領域を合計し、その結果にセクションの厚さを掛けて梗塞の総量を推定し、原稿に記載されているように統計解析を完了します。このMCAO再灌流手順中の虚血期間の増加は、右MCA領域の大脳皮質における虚血誘発性梗塞容積および神経細胞喪失の異なる程度を生み出した。さらに、虚血はMCAO再灌流後48時間で動物の運動活動を減少させた。脳虚血再灌流後、末梢免疫細胞の大部分が虚血性脳の半球に浸透した。また、この2容器閉塞モデルをMCAOモデルと比較した場合、その梗塞容積は有意に異なっていなかった。マイクロドリルは、頭蓋骨に穴を開ける際に注意深く使用する必要があります。不適切な行為で、MCAからの出血を引き起こすのは簡単です。MCAは損傷を受けてはならないし、出血は結紮の処置の前後に避けなければならない。MCAの閉塞および再灌流の状態はレーザードップラーによって点検することができる。この方法はMCAの血流の状態を確認できる。

Research

JoVE Journal

Medicine

Mouse Model of Middle Cerebral Artery Occlusion

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正常体温心停止と心肺蘇生法：虚血再灌流障害のマウスモデル

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

Stem Cell Transplantation in an in vitro Simulated Ischemia/Reperfusion Model

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における幹細胞移植 in vitroで模擬虚血/再灌流モデル

Stem cell transplantation protocols are finding their way into clinical practice1,2,3. Getting better results, making the protocols more robust, and ...

Optimized System for Cerebral Perfusion Monitoring in the Rat Stroke Model of Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusion

腔内中大脳動脈閉塞のラット脳卒中モデルにおける脳血流モニタリングのための最適化されたシステム

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マウスにおける急性腎障害とポスト傷害線維の虚血再灌流モデル

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

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Background
Lower extremity paralysis continues to complicate aortic interventions. The lack of understanding of the underlying pathology has hindered ...

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