Name: simultaneous electrocardiography recording and invasive blood pressure measurement in rats
Uploaded: 2019-01-31T14:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats at JoVE.com

Cette étude a été financée par Taïwan ministère de la Science et technologie accorde plus 104-2314-B-037-080-MY3 et plus 107-2314-B-037-110 à HCL et Taiwan National instituts de recherche de santé accorde INRH-EX107-10724SC.

Toutes les expériences animales décrites ont été approuvées par l’animalier institutionnel et utilisation Comité de Kaohsiung Medical University.
1. animal Care
<ol><li>Pour éviter la canulation difficile en raison de l’exiguïté artérielle, utilisez rats avec le poids corporel au-dessus de 200 g.</li>
	<li>Retirez chow de la cage et les rats rapides du jour au lendemain.</li>
	<li>Offrir l’eau ad libitum sauf s’il existe une conception expérimentale spéciale.</li>
</ol><p...

<ol>
	<li>Shiou, Y. -. L., Huang, I. C., Lin, H. -. T., Lee, H. -. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+fat+diet+aggravates+atrial+and+ventricular+remodeling+of+hypertensive+heart+disease+in+aging+rats.">High fat diet aggravates atrial and ventricular remodeling of hypertensive heart disease in aging rats.</a> Journal of the Formosan Medical Association. , (2017).</li><li>Parasuraman, S., Raveendran, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+invasive+blood+pressure+in+rats.">Measurement of invasive blood pressure in rats.</a> Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 3 (2), 172-177 (2012).</li><li>Fink, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Does+Tail-Cuff+Plethysmography+Provide+a+Reliable+Estimate+of+Central+Blood+Pressure+in+Mice?.">Does Tail-Cuff Plethysmography Provide a Reliable Estimate of Central Blood Pressure in Mice?.</a> Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), e006554 (2017).</li><li>Wilde, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tail-Cuff+Technique+and+Its+Influence+on+Central+Blood+Pressure+in+the+Mouse.">Tail-Cuff Technique and Its Influence on Central Blood Pressure in the Mouse.</a> Journal of the American Heart Association: Cardiovascular and Cerebrovascular Disease. 6 (6), (2017).</li><li>Braga, V. A., Prabhakar, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Refinement+of+Telemetry+for+Measuring+Blood+Pressure+in+Conscious+Rats.">Refinement of Telemetry for Measuring Blood Pressure in Conscious Rats.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. 48 (3), 268-271 (2009).</li><li>Kaese, S., Verheule, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+electrophysiology+in+mice:+a+matter+of+size.">Cardiac electrophysiology in mice: a matter of size.</a> Frontiers in Physiology. 3 (345), (2012).</li><li>Okamoto, K., Aoki, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+strain+of+spontaneously+hypertensive+rats.">Development of a strain of spontaneously hypertensive rats.</a> Japanese Circulation Journal. 27, 282-293 (1963).</li><li>Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Antic, V., Schnyder-Candrian, S., Montani, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+and+indirect+methods+used+to+study+arterial+blood+pressure.">Direct and indirect methods used to study arterial blood pressure.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 44 (2), 361-373 (2000).</li><li>Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+Blood+Pressure+Measurement+in+Freely+Moving+Mice+Using+Telemetry.">Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry.</a> Journal of Visualized Experiments. (111), e53991 (2016).</li><li>Irvine, R. J., White, J., Chan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+influence+of+restraint+on+blood+pressure+in+the+rat.">The influence of restraint on blood pressure in the rat.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 38 (3), 157-162 (1997).</li><li>Nvd Vosse, F., Stergiopulos, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pulse+Wave+Propagation+in+the+Arterial+Tree.">Pulse Wave Propagation in the Arterial Tree.</a> Annual Review of Fluid Mechanics. 43 (1), 467-499 (2011).</li><li>Cosson, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aortic+stiffness+and+pulse+pressure+amplification+in+Wistar-Kyoto+and+spontaneously+hypertensive+rats.">Aortic stiffness and pulse pressure amplification in Wistar-Kyoto and spontaneously hypertensive rats.</a> The American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 292 (5), H2506-H2512 (2007).</li></ol>

Canulation artérielle invasive permet une mesure très précise de BP. Il peut être fait avec un tube PE sans nécessiter un cathéter coûteux. Mesure invasive de BP peut également être effectuée simultanément avec un enregistrement de l’ECG de surface.
La courbe d’apprentissage importante pour que cette méthode est la compétence expérimentale pour canule dans les petits vaisseaux sanguins. Dans des mains expérimentées, le taux de succès pour la canulation de l’artère fémo...

Électrocardiographie (ECG) et la pression artérielle (PA) sont des paramètres fondamentaux pour la médecine et de physiologie cardiovasculaire. Des modèles animaux expérimentaux ont été largement appliqués dans la recherche biomédicale sur les différentes maladies cardiovasculaires comme l’hypertension insuffisance cardiaque1 et procédures d’enregistrement de l’ECG et BP mesure peut être effectuée à rats expérimentaux.
Il existe trois méthodes pour la mesure de BP chez les rats : canulation intra-artérielle (envahissantes)2, queue brassard pléthysmographie (non invasif)3et radiotélémétrie (invasive). La fiabilité de la mesure de BP par pléthysmographie brassard queue peut être affectée par l’animal manutention lors de l’enregistrement. Par exemple, le brassard de queue sous-estime les changements de BP de noyau qui se produisent simultanément pendant les phases de retenue et mesure4. Radiotélémesure est considérée comme la meilleure technique de « gold standard » pour la surveillance BP et fréquence cardiaque en éveillé et se déplaçant librement les animaux5. Cependant, comme radio télémesure matériels et logiciels sont coûteuses, canulation intra-artérielle est aussi largement utilisée comme alternative économique.
Canulation intra-artérielle nécessite une grande dextérité de microchirurgie mais donne les formes d’onde réelles de la pression artérielle. BP peut être enregistrée au moyen d’une sonde remplis de solution saline, insérée dans le sens radial, fémoral, ou artère brachiale. Cette méthode de mesure directe de BP invasive nécessite la préparation pré-chirurgicale animaux, anesthésie, immobilisation des animaux de laboratoire, dextérité chirurgicale dans la dissection des tissus canulation artérielle et un étalonnage approprié avant d’acquérir la mesure .
Rongeur ECG de surface est similaire à l’ECG humaine. Un rat ECG a séquences d’ondes P, des complexes QRS, ondes T et QT intervalles6. Les ondes P, PR de l’électrocardiogramme, complexe QRS et T vagues reflètent la dépolarisation auriculaire, conduction d’impulsion de l’auriculaire au n ud AURICULOVENTRICULAIRE, dépolarisation ventriculaire et la repolarisation, respectivement. L’intervalle QT est définie comme la période du début de l’onde Q à la fin de l’onde T, où elle retourne à la ligne iso-électrique de base1.
L’ECG indique la systole cardiaque et les phases de la diastole ; par conséquent, l’enregistrement simultané de l’ECG de surface est en corrélation avec la mesure invasive de la BP. En utilisant une combinaison de méthodologies, il est possible d’élucider les changements pathophysiologiques dans un modèle de maladie ou les effets pharmacologiques d’un médicament ou un traitement en médecine cardiovasculaire.
Une souche de rat (SHR) spontanément hypertendus avait été obtenue par consanguinité de rats Wistar avec BP élevé au Japon. Le BP s’élève de 5 à 10 semaines d’âge et s’immobilise de 30 à 35 semaines d’âge7. Des rats Wistar-Kyoto (WKY) ont BP systolique environ 130 mmHg7 et sont couramment utilisés comme contrôle normo-tensive. Nous avons utilisé SHR et WKY pour démontrer le résultat de l’enregistrement de BP et ECG de canulation intra-artérielle.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1101px;" width="1102">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Polyethylene tube</td>
			<td style="width:212px;">BECTON DICKINSON</td>
			<td style="width:131px;">427401</td>
			<td style="width:544px;">internal diameter of 0.5 mm, outer diameter of 0.9 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">26G x 1/2&#34;&#34; needle</td>
			<td style="width:212px;">TERUMO</td>
			<td style="width:131px;">160426D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Adson Forceps</td>
			<td style="width:212px;">TOP Line</td>
			<td>12-540</td>
			<td style="width:544px;">12 cm (4.75&#34;) Long, Straight, 1 x 2 Teeth</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Bulldog vascular clamp</td>
			<td style="width:212px;">Teleflex</td>
			<td style="width:131px;">357581</td>
			<td>8 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Computer&#160;</td>
			<td style="width:212px;">AUSUS</td>
			<td style="width:131px;">X453M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:215px;">Exernal analog signal recording device</td>
			<td style="width:212px;">iWorx</td>
			<td style="width:131px;">T5141538</td>
			<td>This allows the recording of up to three channels of ECG, EMG or EEG as well as GSR (skin conductance) from a single iWire input on the recording Module.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Graefe Forceps</td>
			<td>AESCULAP Surgical Instruments</td>
			<td>BD312R</td>
			<td>MICRO DRESSING FORCEPS, CURVED, SERRATED, 105 mm, 4 1/8&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Mecury sphygmomanometer</td>
			<td style="width:212px;">Spirit</td>
			<td style="width:131px;">CK-101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Pressure transducer</td>
			<td style="width:212px;">iWorx</td>
			<td style="width:131px;">IworxBP100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Semken Forceps</td>
			<td>MEDE TECHNIK</td>
			<td>10-104</td>
			<td>100 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Software</td>
			<td style="width:212px;">LabScribe3</td>
			<td style="width:131px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Surgical scissors</td>
			<td>HEBU</td>
			<td style="width:131px;">1714</td>
			<td>14.5 cm long</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Syringe (1 mL)</td>
			<td style="width:212px;">TERUMO</td>
			<td style="width:131px;">160426D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Three-way stopcocks</td>
			<td style="width:212px;">Cole-Parmer</td>
			<td>EW-30600-23</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Tipped forceps</td>
			<td style="width:212px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:131px;">504506</td>
			<td>11 cm long, 0.1x0.06 mm Tips</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:215px;">Vannas Scissors</td>
			<td style="width:212px;">World Precision Instruments</td>
			<td>500086</td>
			<td>8.5 cm long, Straight, 0.025 x 0.015 mm Tips, 7mm super fine Blades</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

simultaneous electrocardiography recording and invasive blood pressure measurement in rats

Des études relies à la physiologie cardio-vasculaire ou physiopathologie, pression artérielle (PA) et électrocardiographie sont des paramètres de base d’observation. Recherche portant sur les modèles de maladies cardiovasculaires, de potentielles cibles thérapeutiques cardiovasculaires ou d’agents pharmaceutiques nécessite l’évaluation d’artérielle pression et coeur rythme des changements systémiques. Dans les situations où les systèmes de télémesure radio ne sont pas disponibles ou abordable, la technique de la canulation de l’artère fémorale est une autre façon d’obtenir des enregistrements de forme d’onde de pression intra-artérielle et les mesures de BP systémiques. Cette technique est économique et peut être réalisée avec un équipement standard dans les animaleries. Cependant, enregistrement de la pression artérielle invasive nécessite canulation de petites artères, ce qui peut être une dextérité chirurgicale difficile. Nous présentons ici des protocoles étape par étape pour l’artère fémorale procédures canulation. Procédures clés incluent l’étalonnage du système d’acquisition de données, canulation dissection et de l’artère fémorale de tissu et le programme d’installation du système pour l’enregistrement de la pression artérielle canulation. Procédure d’enregistrement de surface pour l’électrocardiographie est également inclus. Nous présentons également des exemples d’enregistrements de BP de rats normotendus et hypertendus. Ce protocole permet des enregistrements directs fiables de BP systémique avec l’électrocardiographie simultanée.

Nous avons acheté SHR et rats Wistar-Kyoto WKY normotendus du National Laboratory Animal Center (Taipei, Taïwan). Tous les animaux étaient logés dans un établissement de température contrôlée (20−22 ° C) avec un accès gratuit à l’eau et chow standard sur un cycle de lumière/obscurité de 12 h.
Nous avons utilisé six rats 47 semaines et ils ont été pesés avant la mesure de BP et un Électrocardiogramme. Les tr...

Watch this Scientific Journal Video about Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats at JoVE.com

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

Nous décrivons ici une configuration pour l’enregistrement simultané de l’électrocardiographie et intra-artérielle pression artérielle (PA) chez les rats expérimentaux, qui peuvent être faits avec un équipement standard dans les animaleries et peuvent être appliquées à physiologique ou pharmacologique études pour étudier les mécanismes pathogènes ou thérapeutiques en médecine cardiovasculaire.

Enregistrement simultané de l’électrocardiographie et envahissantes sang pression mesure chez les Rats

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...

Les études axées sur les modèles de maladies cardiovasculaires, les cibles thérapeutiques cardiovasculaires ou les agents pharmaceutiques nécessitent l’évaluation de la pression artérielle systémique et des changements du rythme cardiaque. La cannulation de l’artère fémorale est une méthode économique d’enregistrement des formes d’onde de pression intra-artérielle qui peuvent être exécutées avec l’équipement standard dans une installation animale. Hsin-Ting Lin, technicien de mon laboratoire, démontrera la procédure.Avant de commencer l’expérience, placez le rat anesthésié dans une position de supination sur un tableau chirurgical et confirmez l’absence de réponse au pincement des pieds. Fixez les jambes avec des élastiques pour immobiliser le corps, et installez les instruments de pression artérielle et d’électrocardiogramme pour l’enregistrement, y compris une unité d’entrée analogique pour acquérir les signaux, un transducteur de pression avec un moyeu compatible, trois fils bipolaires d’électrocardiogramme à pointe aiguille, et un ordinateur avec un logiciel approprié. Avant le début de l’enregistrement de la pression artérielle, retirez le brassard de pression d’un sphygmomanomètre standard et connectez le robinet d’arrêt à trois sur le tube d’inflation au transducteur de pression du système d’acquisition de données.Vissez la vanne de dégagement d’air dans le sens des aiguilles d’une montre, en gardant un œil sur la jauge tout en pompant l’ampoule d’inflation. Lorsque la jauge montre 100 millimètres de mercure, ouvrez le robinet d’arrêt à trois sens pour vous connecter au transducteur de pression. Le facteur de conversion pour le calcul de la pression artérielle sera déterminé automatiquement.Pour relâcher la pression, vissez la valve de dégagement d’air dans le sens inverse des aiguilles d’une montre jusqu’à ce que la pression du sphygmomanomètre soit revenue à zéro. Répétez l’étalonnage avec 200 millimètres de pression au mercure, puis détachez le transducteur de pression du sphygmomanomètre au mercure. Connectez le transducteur de pression au robinet d’arrêt à trois sens du cathéter PE et vérifiez les jonctions de raccordement du robinet d’arrêt à trois sens.Pour l’identification de repère de surface, localisez le pli inguinal à la jonction entre l’abdomen et la cuisse et soulevez la couche complète de peau au centre du pli. Utilisez des ciseaux pour couper la peau levée à une orientation approximativement parallèle à la cuisse ipsilateral. Le nerf fémoral et les vaisseaux sont situés sous le tissu sous-cutané exposé.À l’aide de forceps à pointe fine, disséquer le tissu couche par couche, arrêtant la dissection au niveau des vaisseaux fémoraux. Dégagez soigneusement le tissu mou le long du nerf fémoral et des vaisseaux pour obtenir une bonne vue du nerf fibreux. La veine est pourpre foncé et l’artère est pulsatile.Lorsque la dissection tissulaire atteint les vaisseaux fémoraux, changer et aller changer de forceps pour prévenir les vaisseaux endommagés. Utilisez ensuite des forceps avec des pointes inclinées pour prolonger la longueur exposée de l’artère fémorale et de la veine. Pour cannuler l’artère fémorale, utilisez les forceps pour séparer la veine fémorale de l’artère et appliquer une pince de bouledogue à l’artère fémorale aussi cranially que possible.Faites une cravate lâche des deux cordes de soie, l’une juste en dessous de la pince de bouledogue et l’autre au terminal caudal de l’artère fémorale exposée. Utilisez des microscisseurs pour faire un petit trou sur le côté ventral de l’artère fémorale et insérer la pointe d’un cathéter en polyéthylène ou PE à travers le petit trou. Avancez le cathéter cranially.Une bouffée de sang dans le cathéter après avoir enlevé la pince indique que la pointe du cathéter a atteint le lumen de l’artère fémorale. Serrer la soie supérieure pour fixer la position du cathéter et serrer la soie inférieure pour empêcher le saignement du côté caudal de l’artère fémorale. Pour confirmer le succès de la cannulation, utilisez une seringue d’un millilitre pour injecter de 0,1 à 0,2 millilitres de solution saline héparinée dans l’artère fémorale.Ensuite, vérifiez s’il suinte autour du site de cannulation et couvrez le site avec une boule de coton humide. Pour effectuer un enregistrement de la pression artérielle, fixez le cathéter PE et le robinet d’arrêt à trois voies au robinet d’arrêt transducteur de pression et assurez-vous qu’il n’y a pas de bulles d’air dans le système de cannulation. Vérifiez ensuite les jonctions de connexion du robinet d’arrêt à trois sens.Lorsque l’équipement est prêt, démarrer le système d’acquisition de données avec une fréquence d’échantillonnage de 1000 hertz. Des ondes artérielles de pression seront affichées. Laissez l’ensemble de la mise en place se stabiliser pendant au moins trois à cinq minutes, en vérifiant périodiquement le site de cannulation pour confirmer qu’il n’y a pas de saignement.Pour effectuer un électrocardiogramme de surface, vérifiez d’abord les trois pistes de l’ECG bipolaire pour vous assurer que les électrodes de platine positives, négatives et de référence sont intactes, et insérez les fils sous-cutanéement à l’avant-jambe gauche, à l’avant-jambe droite et à la jambe arrière droite. Attachez ensuite les concentrateurs d’électrodes à un amplificateur ECG sur mesure avec une fréquence d’échantillonnage de 1000 hertz et une fréquence de filtre de trois à 500 hertz. La tension artérielle simultanée et les enregistrements d’ECG dans six rats normotensifs et hypertensifs de 47 semaines ont indiqué une tension artérielle systolique et moyenne sensiblement plus élevée chez les animaux spontanément hypertensifs comparés aux rats normaux.L’onde P, les intervalles de relations publiques, la largeur QRS et les paramètres d’intervalle QT mesurés à partir des enregistrements ECG n’ont démontré aucune différence entre les deux groupes. Vous pouvez effectuer l’étalonnage du système de pression et configurer le transducteur de pression et le système d’acquisition de données avant d’anesthésier les animaux. Les données acquises sur la forme d’onde artérielle brute et l’électrocardiogramme peuvent être analysées sur le logiciel.La radiotélémétrie est considérée comme une technique d’étalon-or pour la surveillance de BP et de la fréquence cardiaque, mais la technique est coûteuse. La cannulation intraartérale avec ECG simultané est une alternative économique. L’anesthésie par inhalation d’isoflurane est facile à effectuer, mais peut être dangereuse en cas de fuite importante.Par conséquent, vérifiez toujours l’équipement et le tube avant utilisation.

Research

JoVE Journal

Medicine

Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

Péridurale Mesure de la pression intracrânienne chez le rat en utilisant un transducteur de pression à fibre optique

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and ...

Recherche

Médecine

Non-invasive Optical Measurement of Cerebral Metabolism and Hemodynamics in Infants

Non-invasive de mesure optique du métabolisme cérébral et hémodynamique chez les nourrissons

Perinatal brain injury remains a significant cause of infant mortality  and morbidity, but there is not yet an effective bedside tool that can  accurately ...

Automated Measurement of Microcirculatory Blood Flow Velocity in Pulmonary Metastases of Rats

Mesure automatisée du flux sanguin Microcirculatory vitesse dans métastases pulmonaire des rats

Because the lung is a major target organ of metastatic disease, animal models to study the physiology of pulmonary metastases are of great importance. ...

Measurement of the Pressure-volume Curve in Mouse Lungs

La mesure de la courbe pression-volume dans les poumons de souris

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential ...

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

Mesure la pression artérielle à long terme chez la souris Librement mobile à l&#39;aide de télémesure

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Novel Approach for Simultaneous Recording of Renal Sympathetic Nerve Activity and Blood Pressure with Intravenous Infusion in Conscious, Unrestrained Mice.

Nouvelle approche pour l’enregistrement simultané de l’activité nerveuse sympathique rénale et de la pression artérielle avec une perfusion intraveineuse, conscients, souris sans retenue.

Renal sympathetic nerves contribute significantly to both physiological and pathophysiological phenomena. Evaluating renal sympathetic nerve activity ...

Cavernous Nerve Stimulation and Recording of Intracavernous Pressure in a Rat

Stimulation du nerf caverneux et enregistrement de la pression intracaverneuse chez un Rat

The stimulation of the cavernous nerve (CN) and measurement of intracavernous pressure (ICP) have been used extensively to test and evaluate therapies for ...

Invasive Hemodynamic Characterization of the Portal-hypertensive Syndrome in Cirrhotic Rats

Envahissante hémodynamique caractérisation du Syndrome chez les Rats cirrhotiques portail-hypertendus

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. ...

Absorbent Microbiopsy Sampling and RNA Extraction for Minimally Invasive, Simultaneous Blood and Skin Analysis

Microbiopsy absorbant d’échantillonnage et d’Extraction de l’ARN pour mini-Invasive, simultané de sang et analyse de la peau

Conventional skin biopsy limits the clinical research that involves cosmetically sensitive areas or pediatric applications due to its invasiveness. Here, ...

Simultaneous Flow Cytometric Characterization of Multiple Cell Types Retrieved from Mouse Brain/Spinal Cord Through Different Homogenization Methods

Caractérisation cytométrique simultanée des types de cellules multiples récupérées du cerveau de la souris / moelle épinière grâce à différentes méthodes d'homogénéisation

Recent advances in viral vector and nanomaterial sciences have opened the way for new cutting-edge approaches to investigate or manipulate the central ...