Name: measuring global cellular matrix metalloproteinase and metabolic activity in 3d hydrogels
Uploaded: 2019-01-22T15:00:00
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Os autores gostaria de reconhecer Ohio Cancer Research (OCR), OH, EUA para financiamento deste trabalho, bem como rei Saud University (KSU), Riade, KSA para patrocinar o primeiro autor. Peso molecular do sensor fluorescente peptídeo foi medido usando matriz assistida, dessorção do laser-ionização, espectrometria de massa de tempo-de-voo (MALDI-TOF) com assistência do Campus química instrumento centro de espectrometria de massas e proteômica Instalação da Ohio State University.

1. preparação de componentes hidrogel
<ol><li>Sintetiza os fluorescentes péptidos protease-degradáveis como descrito em outro lugar8, utilizando fluoresceína como a molécula fluorescente e dabcyl como o quencher. Dissolva o peptídeo em DMSO a uma concentração de 10 mM e armazenar em um freezer-80 ° C em pequenas alíquotas (~ 30 µ l) para evitar ciclos repetidos de congelamento-descongelamento. Nota: Estes peptídeos também podem ser adquiridos comercialmente. Este protocolo reque...

<ol>
	<li>Baker, B. M., Chen, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deconstructing+the+third+dimension+-+how+3D+culture+microenvironments+alter+cellular+cues.">Deconstructing the third dimension - how 3D culture microenvironments alter cellular cues.</a> Journal of Cell Science. 125 (13), 3015-3024 (2012).</li><li>Duval, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+Physiological+Events+in+2D+vs.+3D+Cell+Culture.">Modeling Physiological Events in 2D vs. 3D Cell Culture.</a> Physiology. 32 (4), 266-277 (2017).</li><li>Hoarau-V&#233;chot, J., Rafii, A., Touboul, C., Pasquier, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Halfway+between+2D+and+Animal+Models:+Are+3D+Cultures+the+Ideal+Tool+to+Study+Cancer-Microenvironment+Interactions.">Halfway between 2D and Animal Models: Are 3D Cultures the Ideal Tool to Study Cancer-Microenvironment Interactions.</a> International Journal of Molecular Sciences. 19 (1), (2018).</li><li>Lee, S. -. 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M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Matrix+metalloproteinases+in+cancer:+Prognostic+markers+and+therapeutic+targets.">Matrix metalloproteinases in cancer: Prognostic markers and therapeutic targets.</a> International Journal of Cancer. 99 (2), 157-166 (2002).</li><li>Yodkeeree, S., Garbisa, S., Limtrakul, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tetrahydrocurcumin+inhibits+HT1080+cell+migration+and+invasion+via.+downregulation+of+MMPs+and+uPA1.">Tetrahydrocurcumin inhibits HT1080 cell migration and invasion via. downregulation of MMPs and uPA1.</a> APHS Acta Pharmacologica Sinica. 29 (7), 853-860 (2008).</li><li>Yodkeeree, S., Chaiwangyen, W., Garbisa, S., Limtrakul, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Curcumin,+demethoxycurcumin+and+bisdemethoxycurcumin+differentially+inhibit+cancer+cell+invasion+through+the+down-regulation+of+MMPs+and+uPA.">Curcumin, demethoxycurcumin and bisdemethoxycurcumin differentially inhibit cancer cell invasion through the down-regulation of MMPs and uPA.</a> The Journal of Nutritional Biochemistry. 20 (2), 87-95 (2009).</li><li>Mabry, K. 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S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photoinitiated+polymerization+of+PEG-diacrylate+with+lithium+phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate:+polymerization+rate+and+cytocompatibility.">Photoinitiated polymerization of PEG-diacrylate with lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate: polymerization rate and cytocompatibility.</a> Biomaterials. 30 (35), 6702-6707 (2009).</li><li>Mucha, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Membrane+Type-1+Matrix+Metalloprotease+and+Stromelysin-3+Cleave+More+Efficiently+Synthetic+Substrates+Containing+Unusual+Amino+Acids+in+Their+P1'+Positions.">Membrane Type-1 Matrix Metalloprotease and Stromelysin-3 Cleave More Efficiently Synthetic Substrates Containing Unusual Amino Acids in Their P1' Positions.</a> Journal of Biological Chemistry. 273 (5), 2763-2768 (1998).</li><li>Chai, S. C., Goktug, A. N., Chen, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assay+Validation+in+High+Throughput+Screening+-+from+Concept+to+Application.">Assay Validation in High Throughput Screening - from Concept to Application.</a> Drug Discovery and Development. , (2015).</li><li>Iversen, P. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HTS+Assay+Validation.">HTS Assay Validation.</a> Assay Guidance Manual. , (2004).</li><li>Leight, J. L., Tokuda, E. Y., Jones, C. E., Lin, A. J., Anseth, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multifunctional+bioscaffolds+for+3D+culture+of+melanoma+cells+reveal+increased+MMP+activity+and+migration+with+BRAF+kinase+inhibition.">Multifunctional bioscaffolds for 3D culture of melanoma cells reveal increased MMP activity and migration with BRAF kinase inhibition.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (17), 5366-5371 (2015).</li><li>Patterson, J., Hubbell, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhanced+proteolytic+degradation+of+molecularly+engineered+PEG+hydrogels+in+response+to+MMP-1+and+MMP-2.">Enhanced proteolytic degradation of molecularly engineered PEG hydrogels in response to MMP-1 and MMP-2.</a> Biomaterials. 31 (30), 7836-7845 (2010).</li></ol>

Cultura de células in vitro 3D recapitula a muitos aspectos importantes do ambiente em que vivo. No entanto, cultura 3D também faz avaliação função celular e sinalização desafiador, como muitos ensaios biológicos requerem recuperação celular e um grande número de células. Portanto, o desenvolvimento de um sistema de cultura 3D simples que permite uma medição da função celular sem amostra adicional processamento aumentaria grandemente a utilidade dos sistemas de cultura 3D. O sistema 3D descrito aqui pode...

Tridimensional (3D) cultura sistemas frequentemente mais estreitamente recapitular na vivo respostas celulares do que os sistemas tradicionais bidimensional (2D) cultura, consulte vários excelentes publicações1,2,3 . No entanto, utilizando sistemas de cultura 3D para medir a função celular tem sido um desafio devido à dificuldade de recuperação celular e processamento da amostra ainda mais. Essa dificuldade limita a medição de muitas funções celulares nos sistemas de cultura 3D. Para superar esta dificuldade, novas técnicas são necessárias que permitem fácil medição da função da célula dentro de ambientes 3D. Uma maneira de atender a essa necessidade é o desenvolvimento de materiais que não só apoiar a cultura de células 3D, mas também incorporam sensores para medir a função celular. Por exemplo, vários sistemas de hidrogel incorporaram partes cleavable de fluorogenic protease para habilitar a visualização de atividade de protease em ambientes 3D4,5,6,7. Enquanto estes sistemas foram originalmente utilizados para a geração de imagens microscópica, estes sistemas podem também ser adaptados para uso em um ensaio da atividade global matriz metaloproteinase (MMP) usando um leitor de placa padrão, permitindo fácil medição de uma função de célula em um 3D ambiente8.
MMPs, uma superfamília de proteases de zinco, desempenham um papel fundamental na homeostase do tecido normal e em muitas doenças. MMPs degradam e remodelam a matriz extracelular (ECM), cleave citocinas e receptores de superfície celular e ativar outros MMPs9,10. MMPs desempenham um papel crítico em processos fisiológicos como a cicatrização de feridas e em doenças como artrite, arteriosclerose, Alzheimer e câncer (veja comentários em 9,10,11). Em câncer, altos níveis de expressão de MMP estão fortemente correlacionados com metástase do cancro e de mau prognóstico12. Além disso, MMPs contribuam para progressão do tumor, promovendo a invasão de células de câncer e migração, processos celulares que são fenômenos inerentemente 3D13,14. Portanto, há muito interesse na capacidade de medir a atividade da MMP na cultura 3D em muitos contextos, incluindo estudos biológicos fundamentais e ensaios de despistagem de drogas.
Hidrogel PEG é amplamente utilizados para cultura de células 3D devido ao seu alto teor de água, resistência à adsorção de proteínas e a natureza ajustável. Hidrogel PEG ter sido acrescida com um número de partes para função direta da célula, tais como com peptídeos miméticas de ECM como RGD, RLD e IKVAV para facilitar a aderência de célula, ou direcionar o tethering de fatores de crescimento tais como transformar o fator de crescimento-β (TGF-β) 15,16. Mais recentemente, PEG hidrogel tem sido acrescida com peptídeos de sensor que permitem a mensuração da função celular, bem5,8. Especificamente, o uso de um sistema de hidrogel PEG acrescida com um fluorogenic medição de peptídeo habilitado MMP-degradáveis da atividade celular de MMP em culturas 3D com um leitor de placa padrão e não exigido nenhum processamento adicional. Estes sistemas também são compatíveis com outras medições da função celular, incluindo a atividade metabólica. Aqui, um protocolo é descrito para a medição da atividade da MMP de células cultivadas em um hidrogel de PEG 3D acrescida com um peptídeo de MMP-degradáveis fluorogenic e resultados apresentados demonstrando as experiências de otimização inicial necessárias para o uso do presente do ensaio. Células de melanoma humano (A375) foram encapsuladas no hidrogel fluorogenic sobre uma escala de densidades para determinar as densidades de semeadura adequadas que estão dentro da faixa de trabalho do ensaio de semeadura. Após 24h de encapsulamento, MMP e atividade metabólica foram medidos utilizando um leitor de microplacas padrão. Em seguida, MMP atividade foi normalizada a atividade metabólica para determinar as densidades de semeadura dentro da escala linear do ensaio. Finalmente, o coeficiente intraplaca das percentagens de variação (% CV) foram calculados entre triplica para refletir a reprodutibilidade dos resultados obtidos. Esse método permite que a cultura de células 3D simples e rápido e fácil medição de atividade de protease com processamento de amostra mínima.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:723px;" width="723">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">1X Phosphate Buffered Saline</td>
			<td style="width:268px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">10-010-049</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Activated charcoal&#160;</td>
			<td style="width:268px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">C3345</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Black round bottom 96-well plate</td>
			<td style="width:268px;">Brand-Tech</td>
			<td style="width:119px;">89093-600</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Cell adhesion peptide (CRGDS)</td>
			<td style="width:268px;">GenScript USA Inc.</td>
			<td style="width:119px;">custom made</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Collagenase enzyme type I&#160;</td>
			<td style="width:268px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:119px;">17100-017</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Dextran</td>
			<td style="width:268px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">D4876</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">DMEM High Glucose Media</td>
			<td style="width:268px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">11965118</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Fetal bovine serum (FBS)&#160;</td>
			<td style="width:268px;">Seradigm</td>
			<td style="width:119px;">1500-500</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Fluorescence microplate reader&#160;</td>
			<td style="width:268px;">BioTek</td>
			<td style="width:119px;">Cytation 3</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Hemocytometer</td>
			<td style="width:268px;">Hausser Scientific Co.</td>
			<td style="width:119px;">3200</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">L-glutamine</td>
			<td style="width:268px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:119px;">25030-081</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:272px;">MMP-degradable peptide crosslinker (KCGPQG&#8595;IWGQCK)</td>
			<td style="width:268px;">GenScript USA Inc.</td>
			<td style="width:119px;">custom made</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">NaOH</td>
			<td style="width:268px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">S318500</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Penicillin /streptomycin</td>
			<td style="width:268px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:119px;">15140-122</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:272px;">Resazurin (Alamar Blue)</td>
			<td style="width:268px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:119px;">DAL1100</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:272px;">UV light&#160;</td>
			<td style="width:268px;">UVP</td>
			<td style="width:119px;">95-0006-02</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

measuring global cellular matrix metalloproteinase and metabolic activity in 3d hydrogels

Sistemas de cultura tridimensional (3D) célula frequentemente mais estreitamente recapitular respostas celulares na vivo e funções que os sistemas tradicionais bidimensional (2D) cultura. No entanto, medição da função de células em cultura 3D é muitas vezes mais desafiador. Muitos ensaios biológicos requerem recuperação de material celular que pode ser difícil em culturas 3D. Uma maneira de responder a este desafio é desenvolver novos materiais que permitem a medição da função da célula dentro do material. Aqui, um método é apresentado para avaliação da actividade de metaloproteinase (MMP) matriz celular em hidrogel 3D em um formato de 96 poços. Neste sistema, um hidrogel de poly(ethylene glycol) (PEG) é acrescido com um sensor de cleavable fluorogenic MMP. Atividade celular MMP é proporcional à intensidade da fluorescência e pode ser medida com um leitor de microplacas padrão. Miniaturização deste ensaio para um formato de 96 poços reduziu o tempo necessário para experimental, instituído pelo uso de 50% e do reagente em 80% por condição em comparação com a versão anterior de 24-poço do ensaio. Este ensaio também é compatível com outras medições da função celular. Por exemplo, um ensaio de atividade metabólica é demonstrado aqui, que pode ser realizada simultaneamente com medições de atividade MMP dentro a mesma hidrogel. O ensaio é demonstrado com células de melanoma humano encapsuladas em toda uma gama de célula semeadura densidades para determinar a densidade de encapsulamento apropriado para a escala de trabalho do ensaio. Após 24h de encapsulamento de célula, MMP e atividade metabólica leituras foram proporcionais à densidade de semeadura de célula. Enquanto o ensaio é demonstrado aqui com uma carcaça de fluorogenic degradável, o ensaio e a metodologia podem ser adaptadas para uma grande variedade de sistemas de hidrogel e outros sensores fluorescentes. Tais fornece uma plataforma cultivo 3D prática, eficiente e facilmente acessível para uma grande variedade de aplicações.

O ensaio atual foi adaptado de um sistema de cultura de hidrogel 3D anteriormente desenvolvidos e caracterizados acrescido com um fluorogenic MMP cleavable sensor8. O sensor MMP fluorogenic usado aqui consiste em uma sequência do peptide, GPLAC (pMeOBzl) ↓WARKDDK (geize) C (↓ indica o local de clivagem) que anteriormente foi otimizado para a segmentação por MMP-14 e MMP-1119. O peptídeo é rotulado com uma molécula fluorescente (flu...

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Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels

Aqui, um protocolo é apresentado para encapsular e cultivo de células em hidrogel de poly(ethylene glycol) (PEG) acrescida com um fluorogenic matriz metaloproteinase (MMP)-peptídeo degradável. Celular MMP e atividade metabólica são medidos diretamente a partir das culturas de hidrogel usando um leitor de microplacas padrão.

Medição de metaloproteinase matriz celular Global e atividade metabólica em hidrogel 3D

Three-dimensional (3D) cell culture systems often more closely recapitulate in vivo cellular responses and functions than traditional two-dimensional (2D) ...

A cultura 3D torna mais difícil medir a função celular, usando ensaios biológicos padrão. Este protocolo permite a medição da atividade celular e somática sem maior processamento de amostras, utilizando um sensor fluorescente e um leitor de microplacão padrão. Este protocolo permite uma série de novas aplicações, incluindo a triagem de medicamentos de alto rendimento.Além disso, o sensor fluorescente pode ser trocado com um sensor diferente para medir outras proteases ou funções celulares. É importante planejar cuidadosamente o experimento com antecedência, completar todos os cálculos para a preparação do hidrogel e configurar todos os equipamentos e reagentes para minimizar o tempo que as células estão em suspensão. Para começar, prepare a mídia de ensaio com 1%de carvão descascado soro bovino fetal, dois mM L-glutamina, 10 unidades por mL de penicilina e 10 microgramas por mL de estreptomicina.Não use mídia vermelha fenol, que tem mais interferência de fluorescência. Para fazer controles positivos, adicione a enzima de colagem bacteriana tipo um à mídia de ensaio nas concentrações de 10 e 1000 microgramas por mL. Em seguida, prepare a solução precursora do hidrogel adicionando os reagentes a um tubo de 1,5 mL.Certifique-se de vórtice após a adição de cada componente. Em seguida, divida a solução em vários tubos de 1,5 mL para diferentes condições. Para encapsular células em hidrogéis, primeiro prepare uma única suspensão celular lavando um prato de 10 cm de células de melanoma A375 com 10 mL de PBS.Em seguida, adicione 0,05% de trippsina ao prato, para experimentar células. Incubar o prato a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono, por três minutos. Após a incubação, conte as células com um hemótmetro.Em seguida, centrifugar a solução celular a 314 vezes G por três minutos. Aspire a mídia cultural e resuspend células em buffer PBS em aproximadamente três vezes a densidade encapsulada final. Conte as células novamente para garantir uma concentração celular precisa.Em seguida, adicione células suspensas em PBS a cada tubo da solução precursora do hidrogel de acordo com a densidade de semeadura necessária, e misture por tubulação para cima e para baixo. Para condições controladas, adicione apenas PBS e vórtice. Em seguida, pipeta 10 microliters da solução precursora de hidrogel no meio de cada poço de uma placa de poço estéril, preta e de fundo redondo 96.Inspecione visualmente a colocação dos hidrogéis dentro dos poços. Hidrogéis não centrados podem ser reposicionados usando uma ponta de pipeta antes da polimerização. Para polimerizar a solução precursora do hidrogel, exponha a placa à luz UV a 4 milímetros por centímetro quadrado, por três minutos.Em seguida, adicione 150 microliters da mídia de ensaio a todos os poços contendo células encapsuladas, e 150 microliters da solução de enzima colagenase aos poços de controles positivos. Adicione 150 microliters de tampão PBS aos poços externos da placa para reduzir a evaporação durante a incubação. Use um leitor de microplacão para medir a intensidade fluorescente da placa a zero hora, imediatamente após o encapsulamento.Selecione o protocolo opaco de placa de 96 poços com excitação de 494 nanômetros e 521 comprimentos de onda de emissão de nanômetros. Em seguida, incubar a placa a 37 graus Celsius em 5% de dióxido de carbono, por 18 horas. Em seguida, adicione reagentes de atividade metabólica a uma relação de 1 a 10 volumes por poço para todas as condições e controles.Incubar a placa em 37 graus Celsius, 5% de dióxido de carbono, por seis horas. Por fim, meça a intensidade fluorescente da placa em 24 horas, pós encapsulamento. Selecione o protocolo opaco de placa de 96 poços, com excitação de 494 nanômetros, e 521 comprimentos de onda de emissão de nanômetros, para atividade MMP.Para medir a atividade metabólica, selecione 560 nanômetros de excitação e 590 comprimentos de onda de emissão de nanômetros. Neste estudo, após a exposição do sensor fluorogênico à protease apropriada, o saciador e fluorohore são separados, e a fluorescência aumenta. As medidas de fluorescência dos hidrogéis incubados com enzima de colagem bacteriana tipo um, mostram que o menor sinal detectado foi produzido por controles negativos, sem colagemnase.Enquanto o sinal mais alto detectado foi produzido por 1000 microgramas por mL de colagenase ou superior, quando o sinal começa a planar. A faixa de trabalho calculada foi de aproximadamente 0,16 a 474 microgramas por mL de colagenase. As leituras de fluorescência para a linha celular de melanoma A375, encapsuladas em uma série de densidades logo após o encapsulamento, foram baixas em densidades de semeadura, e semelhantes aos géis de controle sem células como esperado.24 horas após o encapsulamento, a atividade de MMP foi diretamente proporcional à densidade de semeadura, e as densidades de semeadura em ou superiores a 1 milhão de células por mL, estão dentro dos limites da faixa de trabalho. As medidas de atividade metabólica da linha celular A375 também foram diretamente proporcionais à densidade de semeadura celular. Ao normalizar a atividade de MMP para a atividade metabólica, não houve diferença significativa na atividade de MMP por célula em densidades de semeadura superiores a 2 milhões de células por mL.Técnicas adequadas de pipetação são importantes. Isso inclui dicas de pré-molhar para obter volumes precisos de soluções viscosas. Além disso, centralizar a solução precursora do hidrogel dentro do poço, é fundamental para obter medições precisas pelo leitor de placas.Para identificar MMPs específicos que contribuem para a atividade de MMP medido aqui, ensaios de expressão como mancha ocidental ou PCR poderiam ser usados. O uso de células vivas requer procedimento de biossegurança adequado, técnica asséptica e um armário de segurança biológica. A luz UV é perigosa, use um escudo para proteger o usuário e não olhe diretamente para a luz.

Research

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Bioengenharia

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