Name: use of single chain mhc technology to investigate co-agonism in human cd8+ t cell activation
Uploaded: 2019-02-28T15:00:00
Duration: 12 min 9 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Use of Single Chain MHC Technology to Investigate Co-agonism in Human CD8+ T Cell Activation at JoVE.com

Bu araştırma Singapur Sağlık Bakanlığı'nın Ulusal Tıbbi Araştırma Konseyi altında oluştur altında R571-002-012-592 için Pam., Ulusal Araştırma Vakfı Investigatorship R571-000-272-281 Pam için tarafından N.R.J.G. için onun CBRG/0064/2014 tarafından desteklenmiştir . ve AB için bir Singapur translasyonel araştırma (STaR) Araştırmacı Ödülü (NMRC/STaR/013/2012) tarafından Uzman hücre sıralamak için NUS İmmünoloji program akışı çekirdek tesisten Dr Paul Hutchinson ve Bay Teo Guo Hui için minnettarız. Elijah Chen için el yazması eleştirel okuma için minnettarız.

Not: Tüm adımları içeren canlı, sabit olmayan hücreleri kullanımı-meli var olmak kılınmak Biyogüvenlik kukuIeta ve herhangi bir biyolojik atık yerel sağlık ve güvenlik yönetmeliklerine göre iptal edilecek.
1. CHO hücre Transfection ve istikrarlı CHO hücre hatları nesil
<ol><li>
CHO hücre transfection Not: CHO hücre transfection polyethylenimine (PEI) kullanarak bu bölümde açıklanmaktadır. CHO hücreleri piyasada bulunan lipid transfection reaktifler kullanarak transfect nispeten kolay olarak ancak, alternatif yöntemler kullanılabilir.<ol>
<li>Kültür CHO hücreleri içinde tam F12 (cF12, tetrasiklin önleyici ifade korumak için %5 FBS, 100 U/mL penisilin, 100 μg/mL streptomisin ve 10 µg/mL blasticidin ile desteklenmiş F12). Hücreleri her 3-4 günde bir 1:10 geçiş oranı.</li>
		<li>Bir gün önce transfection, CHO hücre süspansiyon hazırlamak. PBS (5 mL PBS T25 şişesi için bir T75 şişesi için PBS için 10 mL) kullanarak şişeye yıka CHO hücrelerde. % 0.05 eklemek Trypsin/0.02% EDTA içinde PBS şişeye (bir T75 şişesi, bir T25 şişesi için 1 mL için 2 mL) ve 5-10dk oda sıcaklığında (RT) için kuluçkaya. Hafif bir mikroskop kullanarak, hücreleri bağlantısız ve trypsinization cF12 (bir T75 şişesi, bir T25 şişesi için 4 mL için 8 mL) flask ekleyerek durdurmak emin olun.</li>
		<li>CF12 (için bir T75 şişesi, bir T25 şişesi için 5 mL 10 mL) yeniden askıya ve bir hemasitometre kullanarak saymak 15 mL tüp ve 4 ° C veya RT. Kaldır süpernatant 5 min için 300-400 x g , santrifüj CHO hücre süspansiyon transfer.</li>
		<li>Hücre konsantrasyonu 60.000-100,000 CHO hücre/ml ayarlayın. CHO hücre süspansiyon (300.000 500.000 CHO hücreleri) 5 mL 6 iyi plaka bir kuyu başına ekleyin. Gecede 37 ° C, % 5 CO2kuluçkaya.</li>
		<li>Transfection günü, 1,5 mL tüp 400 μL F12 medya serum ücretsiz veya düşük serum ortam ekleyin. Plazmid 3 μg medya 400 μL için ekleyin. Pipetting tarafından mix. 6 μg PEI eklemek (1 mg/mL PEI çözüm 6 μL) medya/DNA mix ve hemen 10 için girdap s.</li>
		<li>RT at medya/DNA/PEI mix 10-15 dk için kuluçkaya. Bu kuluçka sırasında CHO hücre ortamı 6 iyi plaka 5 mL taze cF12 medya ile değiştirin.</li>
		<li>Medya/DNA/PEI çözüm CHO hücrelere ekleme. Çözüm dropwise ve eşit iyi ekleyin. Gecede 37 ° C, % 5 CO2kuluçkaya.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
İstikrarlı CHO hücre hatları nesil
	<ol>
<li>Bir gün transfection sonra medya kuyulardan kaldırın ve her şey için uygun seçim antibiyotik içeren 5 mL cF12 de ekleyin. 0.3 mg/mL hygromycin pcDNA5TO tabanlı plazmit ve 1 mg/mL geneticin pcDNA3 tabanlı plazmid için kullanın.</li>
		<li>Hücreleri ulaşmak daha fazla % 90 confluency 24 h transfection deftere naklederseniz, hücreleri trypsinize.</li>
		<li>Wells PBS 1 mL de başı ile yıkayın, 1 mL %0,05 trypsin/0.02% EDTA PBS içinde ekleyin ve RT. kullanma vasıl 5-10 dk hafif mikroskop kuluçkaya, hücreleri bağlantısız ve trypsinization cF12 de başına 3-4 mL ekleyerek durdurmak kontrol.</li>
		<li>CF12 10 mL yeniden askıya alma ve bir 15 mL tüp ve 4 ° C veya RT. Kaldır süpernatant 5 min için 300-400 x g , santrifüj CHO hücre süspansiyon transfer. Hücre süspansiyon iyi başına 5 mL 6 iyi plaka ekleyin. İki kuyu transfected hücreleri verimi en üst düzeye çıkarmak için kullanın.</li>
		<li>37 ° c, % 5 CO26 iyi plakaları kuluçkaya. Hücre ölümü ve büyüme dayanıklı kolonileri hafif bir mikroskop kullanarak izleyin. Medyayı çıkarın ve 4-5 gün sonra veya önemli hücre ölümü gözlenen uygun antibiyotik içeren taze medya ile değiştirin.</li>
		<li>Sonra hücreleri % 70 izdiham, daha dayanıklı hücreleri ulaşmak trypsinize açıklandığı gibi 1.2.2. adımda ve T25 şişesi genişleme için transfer. Antibiyotik seçimi 1-2 hafta sürer.</li>
		<li>T25 şişeye antibiyotik dirençli CHO hücrelerde % 70-80 izdiham ulaştığınızda, ilgi yapıları, hücre yüzey ifade doğrulamak için antikor boyama gerçekleştirmek. 1.2.2. adımda açıklandığı gibi hücreleri antikor boyama önce bir gün trypsinize ve 200.000 hücre/ml hücre toplama ayarlamak ve hücre süspansiyon 1 mL 12 iyi plakasına ekleyin. Tetrasiklin-indüklenebilir yapıları sınama, 50-60 ng/mL tetrasiklin ekleyin. Gecede 37 ° C, % 5 CO2kuluçkaya.</li>
		<li>Hücre kazıyıcı kuyunun hücrelerden CHO ayırmak için kullanın. Epitope hasar nedeniyle proteolitik bölünme riskini azaltır gibi bu yöntem trypsinization için tercih edilir.</li>
		<li>1 mL tüp bir FACS CHO hücrelere içeren medya aktarın. Spin aşağı vasıl 300-400 x g, 4 ° C'de 5 dakika süreyle yeniden askıya alma 100 μL içinde FWB içinde seyreltilmiş anti-HLA antikor. Buz üzerinde 4 ° C'de 30 dk kuluçkaya. Bu toplam A2 hücre yüzey ifade düzeyleri tespit etmek için anti-A2 antikor ve TCR benzeri antikor ile A2 için agonist pMHC tespit etmek için E183 peptid ile kompleks içinde belirli boyama gerçekleştirmek-yüzey ifade seviyeleri hücre.</li>
		<li>Sonra MHC ifade, FACS-sıralama pozitif hücrelerinin doğrulama ve medya transgene kaybını azaltmak için antibiyotik ile sıralanmış hücreleri korumak. Agonist pMHC ifade CHO hücreleri tek hücre sıralama, karşılaştırılabilir agonist pMHC ifade ve supertransfection ile ortak agonist pMHC olmadan sağlamak için önerilir. 2-3 hafta tek hücre sıralama takip CHO hücre büyümesi için gereklidir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. HBV özgü CTL kültür
<ol><li>
PBMCs HBV özgü insan CTL yeniden uyarılması için hazırlık olarak besleyiciler Not: A2 E183 özel CTL clone için yeniden stimülasyon çözdürülen PBMCs, yerine taze izole PBMCs ile en iyi sonucu verir. Uyarı: Tüm gerekli etik onayları için kan bağış Gönüllüleri işe önce edinin. Bu eser amacıyla PBMC sağlıklı gönüllülerden NUS IRB tarafından onaylanmış Protokolü altında toplanan. Aydınlatılmış onam tüm bağış elde edildi. Gerekli tüm önlemleri ile insan kan hastalıkları kaynaklı kan iletimini riskini azaltmak için çalışırken izleyin.<ol>
<li>Ve başlamadan önce 19-20 ° C'de santrifüj sıcaklığı ayarlamak RT. yoğunluğu degradeye (örneğin, Ficoll) önceden ısıtmak</li>
		<li>Oda sıcaklık yoğunluk değişimi 15 mL 50 mL tüp için ekleyin. 19-20 ° C'de 5 min için 400 x g , santrifüj Hiçbir yoğunluk gradient tüp tarafında olduğundan emin olmak için bu.</li>
		<li>20 mL kan iz ile sağlıklı bir gönüllü bağış toplamak. PBS 15 mL 50 mL tüp kan 20 mL ekleyin. Yukarı ve aşağı pipetting tarafından karıştırın.</li>
		<li>Yavaş yavaş, kan yoğunluk gradient adım 2.1.2 15 mL üstüne PBS içinde seyreltilmiş 35 mL ekleyin. Kan ve yoğunluk gradient değil karışık emin olun. 19 ° c, 1200 x g frenler ile 20 dk için tüpler santrifüj kapasitesi kapalı.</li>
		<li>Plazma katmanın yaklaşık % 70'i kaldırın. Dikkatle PBMC (açık yoğunluğu degrade katman üzerinde bulutlu Katmanı) içeren katmanı Aspire bir Pasteur kullanarak pipet ve yeni bir 50 mL tüp içinde yerleştirin.</li>
		<li>PBS 50 mL toplam hacmi elde etmek için PBMCs ekleyin. Tüp 4 ° c, 300-400 x g santrifüj kapasitesi 10 dk. dikkatli bir şekilde çıkarın için vakum Aspiratörü ve steril cam Pasteur pipet kullanarak süpernatant veya decanting tarafından.</li>
		<li>PBS 50 mL hücrelerde yeniden askıya alma. Tüp 4 ° c, 300 x g santrifüj kapasitesi 10 dk. dikkatli bir şekilde çıkarın için vakum Aspiratörü ve steril cam Pasteur pipet kullanarak süpernatant veya decanting tarafından.</li>
		<li>Tam insan T hücre medya (serum boş ortam % 2 insan serumu ile desteklenmiş) 2 mL hücrelerde yeniden askıya alma. Hemasitometre kullanarak hücreleri saymak. Bu iletişim kuralı ortalama 1-2 x 106 PBMCs kullanılan kan 1 mL başına verir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
CTL yeniden stimülasyon PBMCs besleyici hücreler kullanma
	<ol>
<li>PBMCs, nükleer silahların yayılmasına karşı yanıt olarak sonraki stimülasyon etkisizleştirmek için 30 Gy ışınlatayım. Dikkat: yeterli eğitim ve laboratuvar ile uyum irradiator kullanırken Güvenlik gerekliliklerini sağlamak.</li>
		<li>Radyoaktif PBMCs 2 x 106 hücre/mL, tam insan T hücre medyada yeniden askıya alma. Sitokinler ve lektin Phaseolus vulgaris (PHA) CTL yeniden uyarımı 2 x konsantrasyon PBMC süspansiyon içine de ekleyin. Son sitokin ve PHA konsantrasyonları şunlardır: 20 U/mL rekombinant insan IL-2, 10 ng/mL rekombinant 7, Il-10 ng/mL rekombinant insan IL-15 ve 1.5 mg/mL PHA.</li>
		<li>37 ° C su banyosu donmuş CTL şişede çözülme. Çözdürülen hücreleri 10 mL tam insan T hücre medya ile 15 mL tüp içine aktarın. 300-400 x g 4 ° c de 5 dk. dikkatli bir şekilde çıkarın için vakum Aspiratörü ve steril cam Pasteur pipet kullanarak süpernatant veya decanting tarafından spin aşağı.</li>
		<li>CTL'ler 2 mL tam insan T hücre medya yeniden askıya alma. Hemasitometre kullanarak hücreleri saymak. 106 hücre/mL konsantrasyonu hücre elde etmek için tam insan T hücre medya ekleyin.</li>
		<li>Bir 24 iyi tabak içinde ışınlanmış PBMCs 0.5 mL ekleyin (106 hücreleri) 2 x cytokines ve PHA (Adım 2.2.2) ve CTL (0.5 x 106 hücreler) 0.5 mL iyi ücret ile. Kuyu yapımı used CTL'ler veya PBMCs mevcut toplam sayısına bağlıdır. 37 ° C, % 5 CO2kuluçkaya.</li>
		<li>4-5 gün, ne zaman CTL patlamaların görülebilir ve medya sarıya dönüşür, sonra kültürler 6 iyi kalıplara aktarmak ve ilk 1 mL Cilt 4 mL 20 U/mL IL-2, 10 ng/mL 7 Il ve 10 ng/mL IL-15 (PHA) ile tam insan T hücre medya ile ek.</li>
		<li>2-3 gün sonra kültürler T75 şişesi aktarmak, sitokinler (Adım 2.2.2, hiçbir PHA) ile tam insan T hücre medya 40 mL ekleyin ve dik bir pozisyonda kültür.</li>
		<li>CTL'ler bir konsantrasyon 1-2 x 106 hücre/mL, sitokinler (Adım 2.2.2, hiçbir PHA) ile takıma taze medya ekleyerek bir ses seviyesinde olan kültür birimi eşit her geçen gün korumak. CTL'ler 7-14 gün sonra yeniden stimülasyon deneyler için kullanılabilir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. T hücre harekete geçirmek deneyler
Not: Tipik bir deney birçok farklı T-RExCHO satır gerektirir: untransfected T-REx CHO hücreleri (negatif kontrol), T-REx CHO hücreleri ifade uyarıcı pMHC sadece (scA2-GAG; negatif kontrol), T-REx CHO hücreleri düşük miktarda ifade agonist pMHC-ben () scA2-ENV tetrasiklin, deneysel örnek olmadan), T-REx CHO agonist pMHC düşük miktarda ve uyarıcı co agonist pMHC (scA2-ENV ve scA2-GAG, tetrasiklin, deneysel örnek olmadan), yüksek miktarda ifade hücreleri ve T-REx CHO hücreleri agonist pMHC yüksek miktarda ifade-ı scA2-ENV tetrasiklin, pozitif kontrol ile), şekil 1 cDgösterildiği gibi.
<ol><li>
CHO hücreler antijen sunan hücreler olarak kaplama
	<ol>
<li>1.1.1. adımda açıklandığı gibi T75 şişesi, kültür CHO hücreleri. Hücreleri % 70-90 izdiham en iyi sonuçlar için kullanın. Bir gün önce T hücre aktivasyonu deneme, hücreleri 1.1.2 bölümünde anlatıldığı gibi trypsinize. Trypsinization sonra bir 15 mL tüp, 5 min 4 ° C veya RT için 400 x g , santrifüj içine hücre süspansiyon transfer, pipetting veya decanting süpernatant kaldırmak.</li>
		<li>Hücre Pelet 5 mL cF12 yeniden askıya alma. Bir hemasitometre kullanarak CHO hücreleri saymak.</li>
		<li>Hücre konsantrasyonu için 2 x 105/mL cF12 kullanarak ayarlayın. 50-60 ng/mL tetrasiklin agonist için sadece örnekleri agonist pMHC yüksek miktarda ikna etmek için eklemek-ben ifade olarak olumlu denetim (şekil 1 c). CHO hücreleri 15 mL tüplerde yerleşeceğiz... yani pipetting veya vortexing kaplama önce mix onları emin olun.</li>
		<li>T hücre etkinleştirme yöntemi, CHO hücre süspansiyon iyi başına 100 μL U-alt 96 iyi plakasına eklemek ve triplicates CHO hücre satır başına kullanın. CHO anti-MHC hücre boyama, hücre süspansiyon 1 mL 12 iyi plakasına eklemek ve triplicates hücre satır başına kullanın. Gecede 37 ° C, % 5 CO2kuluçkaya.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
T hücre harekete geçirmek tahlil Not: T hücre degranulation (CD107a boyama, T hücre sitotoksisite ölçüsü) ve sitokin üretim eşzamanlı miktar bu T hücre harekete geçirmek tahlil sağlar.<ol>
<li>Deneme, önceki gün 400 x g 5 min için 4 ° C'de CTL'ler hücreleri santrifüj kapasitesi, hemasitometre kullanarak saymak ve hücreler sitokinler veya PHA olmadan tam insan T hücre medyada 106 hücre/mL, yeniden askıya alma. 37 ° C, % 5 CO2kuluçkaya. Biz en fazla harekete geçirmek içinde yanıt-e doğru bu adım olmadan antijen düşük miktarda gözlemledim gibi bu geri kalan adımın amacı CTL duyarlılık, azaltmaktır.</li>
		<li>Denemenin, santrifüj T hücreleri 400 x g 4 ° c 5 min için de gün süpernatant decanting veya pipetting kaldırmak ve 2 mL tam serum-Ücretsiz medya (sitokinler ve PHA) olmaksızın hücrelerde yeniden askıya alma. Bir hemasitometre kullanarak canlı T hücreleri saymak ve T hücre konsantrasyonu 106 canlı hücreler/tam insan T hücre medya (olmadan sitokinler veya PHA) kullanarak ml ayarlayın.</li>
		<li>1: 100 seyreltme (son konsantrasyon 2.5 μg/mL) Anti-insan CD107a antikor ekleyin, 1: 1000 seyreltme (son konsantrasyonu 1 μg/ml) brefeldin A ekleyin.</li>
		<li>Medya 96 iyi plaka CHO hücrelerden cam Pasteur pipet ile alıyorum plaka flicking kaldırmak veya. İyi, T hücre süspansiyon (0.2 x 106 hücreler) içeren anti-CD107a ve brefeldin A. ortak kültür T hücrelerinin 3-4 h için CHO hücreler 200 μL ekleyin.</li>
		<li>Ortak kültür sonunda, T hücre yüzey antijeni boyama gerçekleştirmek. Spin aşağı 96 300-400 x giyi plaka, 4 ° C'de 5 min ve süpernatant alıyorum veya flicking kaldırın. CD3 2.5 μL ve CD8 antikorların 2.5 μL % 0.5 BSA PBS (akış yıkama arabellek, FWB) içinde 50 μL iyi hücre yüzey antijeni boyama için ücret ekleyin. Örnekleri 30 dk içinde belgili tanımlık karanlık için buz üzerinde kuluçkaya.</li>
		<li>Örnekleri FWB 150 μL iyi başına ekleyerek yıkayın. Spin aşağı 96 300-400 x giyi plaka, 4 ° C'de 5 min ve süpernatant alıyorum veya flicking kaldırın.</li>
		<li>Bir fiksasyon/permeabilization kit kullanarak fiksasyon/permeabilization adımları gerçekleştirin. Pipetting tarafından mix, fiksasyon/permeabilization çözüm (fiksasyon/permeabilization kitinden) iyi başına 100 µL ekleyin. 20 dk için buz üzerinde kuluçkaya.</li>
		<li>300-400 x g ve 4 ° C'de 5 dakika santrifüj kapasitesi ve süpernatant alıyorum veya flicking kaldırın. 1 perma/yıkama arabellek x 200 μL ekleyin (10 x perma/yıkama seti kullanmadan önce hisse senedi arabelleğinden seyreltik) iyi başına. Bu adımı yineleyin.</li>
		<li>Hücre Pelet 50 μL 0.3 μg/mL adlı anti-IFN-γ antikor içeren 1 x perma/yıkama arabelleği yeniden askıya. 30 dk içinde karanlık için buz üzerinde kuluçkaya.</li>
		<li>1 x perma/yıkama arabelleği 150 μL ekleyin. 300-400 x g için 5 min için 4 ° C'de, santrifüj kapasitesi ve süpernatant alıyorum veya flicking kaldırın. 1 perma/yıkama arabellek, x 200 μL 300-400 x g için 5 min için 4 ° C'de santrifüj kapasitesi ve süpernatant kaldırmak alıyorum veya flicking ekleyin.</li>
		<li>Her örnek yeniden FWB 200 μL içinde askıya alma. Akış sitometrik analizi ile devam edin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
CHO hücre MHC sınıf ı boyama Not: scMHC doğrulamak için önemlidir-hücre hatları transgene ifade kaybetmek gibi her deney üzerinde kullanılan hücre yüzey düzeyde hücre. 96 iyi plaka T hücre uyarılması için hazırlanırken, CHO hücre boyama için 12 iyi plaka 3.1.4 bölümünde belirtildiği gibi ayarlayın.<ol>
<li>Bir hücre kazıyıcı kuyunun hücrelerden CHO ayırmak için kullanın. Epitope hasar nedeniyle proteolitik bölünme riskini azaltır gibi bu yöntem trypsinization için tercih edilir.</li>
		<li>1 mL FACS tüp CHO hücrelere içeren medya aktarın. Spin aşağı 300-400 x g 5 dakika süreyle yeniden askıya alma 100 μL içinde FWB içinde seyreltilmiş anti-HLA antikor, 4 ° C'de de. Buz üzerinde 4 ° C'de 30 dk için kuluçkaya.<ol>
<li>Bu toplam A2 hücre yüzey ifade düzeyleri tespit etmek için anti-A2 antikor ve TCR benzeri antikor ile A2 için karmaşık ile E183 peptid32 agonist pMHC algılamak için özel boyama gerçekleştirmek-yüzey ifade seviyeleri hücre.</li>
		</ol>
</li>
		<li>FWB 1 mL CHO örnekleri ekleyin, 300-400 x g' de, 4 ° C, 5 dk, spin aşağı ve sonra örnek yeniden 0.3 mL FWB askıya alma. Akış Sitometresi Analizi ile devam edin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

Yazarlar hiçbir rakip ilgi bildirin.

Sunulan Protokolü moleküler etkileşimleri soruşturma sırasında insan CD8 + T hücre aktivasyonu için güçlü bir araç sağlar. Co-agonism soruşturma sırasında insan T hücre aktivasyonu için önemli bir adım agonist pMHC sunu veya eş agonist pMHC ifade olmadan ZPT üzerinde eşit agonist sağlamak için hücre yüzey ifade pMHC üzerinde kontrol var. Deneysel sistemimizde bu bir tek hücre klon agonist pMHC supertransfection tarafından TCR benzeri antikor10, kullanarak bir ortak agonist pMHC yapý ve agonist pMHC miktar ile takip, düşük miktarda ifade kullanarak elde edilir 32. agonist sc pMHC ifade zamanla değişebilir, o agonist pMHC yüzey ifade TCR benzeri antikorları kullanarak her deneyde kullanılan ZPT üzerinde ölçmek için önemlidir. Hiçbir spesifik TCR benzeri antikor kullanılabilirse, agonist scMHC-floresan protein füzyon olarak ifade edilebilir ve hücre yüzey ifadesini sonra toplam iç yansıma Floresans mikroskobu gibi bir hassas mikroskopi yöntemi kullanarak sayısal 35 , 36. Ayrıca, ortak agonist pMHC hücre yüzey ifade metilasyonu bağlı ve - bağımsız CMV organizatörü37, susturmak nedeniyle, zaman içinde azalır ve ile antikor boyama ve Akış Sitometresi Analizi, kullanarak takip edilmelidir tekrarlanan FACS-gerektiğinde sıralama. Biz 5 hafta sc pMHC ifade nispeten sınırlı kaybı için CHO hücreler kültürlü. Biz çok kısa bir süre sonra seçimi/hücre bilinen sc MHC ifade ile güvenilir bir hisse senedi sağlamak için sıralama CHO hücreleri dondurma öneririz.
Ekipman durumu bağlı olarak veya özel araştırma amaçları bağlı olarak sunulan iletişim kurallarının birkaç adım değiştirilebilir. Örneğin, PBMC nükleer silahların yayılmasına karşı potansiyel olmak Inhibe (Adım 3.2.1) kullanarak bir gama (X-) değil istemek ya da alternatif yöntemler irradiator, mitomycin C38ile tedavi gibi. 3.3.1. adımda kazıma hücre yerine metal şelatörlerin39 içeren bir enzimatik olmayan hücre ayrılma arabellekleri kullanılabilir. Ayrıca, sistem sunulması antijen için insan CTL klonlar ifade farklı TCRs. CHO hücreleri hızlı hamster MHC sınıf ı molekülleri ve burada okudu CTL satırı için alakasız olmakla birlikte bunlar daha uygun yapmak için değiştirilebilir (şekil 2A ve Şekil 3A, biz gözlenen untransfected CHO hücreler hiçbir T hücre yanıt), diğer insan TCRs bazı xenoreactivity gösterebilir bir olasılık. Buna durumda, hamster MHC ifade sınıf hamster B2-microglubulin knocking tarafından azaltılabilir veya CRISPR/Cas9 kullanarak DOKUNUN; veya CRISPR/Cas9-aracılı B2-microglubulin veya DOKUNUN nakavt sonra insan bir APC satırı kullanılabilir.
Burada sunulan deneysel sistem önceden tanımlanmış peptidler sunumu MHC molekülleri ile TCR ve CD8 etkileşimlerin hassas kontrol sağlar. Örneğin, biz daha önce CD8 bağlama40 coagonist pMHC kaldırılması mutasyonlar fare ve insan CD8 + T hücreleri9,10, coagonist-aracılı harekete geçirmek donanım ortadan TCR abrogating ise göstermiştir Co agonist pMHC ile etkileşimi harekete geçirmek coagonist-aracılı geliştirme10üzerinde bir etkisi vardı. Ancak, tek zincir MHC yapıları kullanımı bazı sınırlamaları vardır. Örneğin, bu zaman ve bu birden fazla plazmid sc MHC farklı peptidler ve sonraki transfections ve hücre sıralama ile kodlama nesil içerir gibi birden çok eş agonist peptid sınamak için emek tüketen bu deneysel sistem kullanarak dizileri. Daha önce biz fare DOKUNUN-eksik hücre kültürünü RMA-S birden çok eş agonist peptidler fare T hücre harekete geçirmek8,9sınamak için kullanılan, ancak bu yaklaşım DOKUNUN-eksik insan T2 hücre satırı10ile büyük olasılıkla başarısız oldu DOKUNUN bağımsız peptidler41tanıtımı nedeniyle. Başka bir kısıtlamadır deneysel sistemimizin bu ortak agonist pMHC T hücre aktivasyonu tetiklemek için gerekli kritik miktarı belirlenmesi amacıyla ortak agonist pMHC molekülleri miktarını değiştirme için hızlı bir yöntem sağlamaz. Değişen tetrasiklin konsantrasyon HLA-A2 pozitif hücrelerinin oranını değiştirir gibi Ayrıca, kullanılan tetrasiklin-indüklenebilir sistemi titrasyon agonist pMHC miktar tek hücre düzeyinde tetrasiklin konsantrasyon değiştirerek izin vermez, Hücre başına olarak HLA-A2 düzeyleri yerine. Şu anda araştırıyoruz alternatif bir yaklaşım co-agonism fare CD4 + T hücre harekete geçirmek4 sırasında araştırmak için daha önce kullanılan desteklenen lipid bilayers42, kullanmak veya sunan sabit tutar olan agonist pMHC boncuk Co agonist pMHC değişen miktarlarda varlığı. UV yarilabilir peptid teknoloji4,43ile birlikte kullanıldığında, bu alternatif deneysel sistemleri hızlı birden çok eş agonist peptid dizileri yanı sıra eş agonist pMHC farklı miktarda test izin vermelidir .
Tek zincir MHC sınıf II moleküller sunulması peptidler başarıyla memeli hücre yüzeyleri44ifade edilmiştir önceden belirlendiği gibi sc MHC teknoloji aynı zamanda co-agonism CD4 T hücrelerinde, insan veya fare incelenmesi için geçerli olabilir. Ayrıca, sc MHC teknoloji kullanımı gibi HLA-E. klasik olmayan MHC molekülleri incelenmesi için Genişletilebilir SC HLA-E daha önce açıklanan ve onun ifade insan T hücre harekete geçirmek45inhibe olduğu gösterilmiştir. Başka bir klasik olmayan MHC ilgi lipidler peptidler46yerine sunar CD1 moleküldür. Sc yapıları CD1 ağır zincir ve B2-Mikroglobulin oluşan hücre yüzeyinde ifade edilecek ve ilgili lipid ligandlar47bağlamak için gösterilmiştir. Tek zincir MHC teknoloji moleküler etkileşimleri T ve NK hücre aktivasyonu sırasında araştıran bir araştırma aracı olarak büyük bir potansiyele sahiptir.

MHC sınıf ı (MHC-ben) molekülleri kısa (8-10 amino asitler) peptidler her hücre tarafından sentezlenen protein elde mevcut. MHC-ben molekülleri sağlıklı hücreleri üzerinde mevcut öz peptidler endojen proteinler türetilmiş. Viral enfeksiyon yol olmayan kendine virüs kaynaklı peptidler sunuya üzerinde MHC- ama bile enfekte hücreleri mevcut olmayan kendine peptidler kendini peptid-MHC (pMHC) büyük miktarda huzurunda. MHC-T hücre reseptör (TCR) ve CD8 co reseptör T hücreleri tarafından tanınır. CD8 bağlama peptid bağımsız ise TCR bağlama benzeşme peptid pMHC için sunulan peptidler, dizi son derece bağlıdır. Olmayan kendine agonist pMHC karmaşık TCR bağlama T hücre aktivasyonu ve efektör fonksiyonları için yol açar. Sigara uyarıcı kendini pMHC kompleksleri T hücre aktivasyonu ve efektör fonksiyonları teşvik değil ama agonist pMHC, co-agonism1,2,3olarak adlandırılan bir süreç için T hücre yanıt geliştirebilirsiniz. Co-agonism fare CD4 + T hücreleri4,5,6 yanı sıra fare ve insan CD8 + T hücreleri7,8,9,10, gözlenen 11 , 12 , 13. fizyolojik koşullar altında T hücreleri üzerinde uyarıcı pMHC kompleksleri, o co-agonism katkıda bulunduğu için en uygun T düşündüren yüksek düzeyde işbirliği sunan hücreler (ZPT) sunulması antijen agonist pMHC sınırlı miktarlarda tanımak gerekir hücre yanıt içinde vivo. Toplam hücre yüzey MHC sınıf ı düzeyleri sık sık viral enfeksiyonlar14 sırasında ve tümör15downregulated bulunmaktadır. Bu bağışıklık kaçırma strateji agonist pMHC sunu azaltır, ancak aynı zamanda co agonist pMHC miktarını azaltır ben T hücre harekete geçirmek geliştirme için kullanılabilir. Ayrıca, yüksek hücre yüzey ifade düzeyleri MHC sınıf ı molekül HLA-C ilişkilendirmek için toplam MHC sınıf için kritik bir rol öne geliştirilmiş HIV kontrolü ile16, ben T hücre aktivasyonu ifadede gösterilmiştir. Co-agonism fizyolojik öneme rağmen onun moleküler mekanizma hala eksik olarak anlaşılmaktadır. Bu deneysel agonist pMHC sabit tutarken sunulan co agonist pMHC denetlenmesini büyük ölçüde teknik zorlukları kaynaklanmaktadır.
Bir deneysel geliştirdiğimiz sistem insan MHC ifade ederek insan CD8 + T hücre aktivasyonu sırasında co-agonism araştırmak için sınıf ı molekülleri tek polipeptid olarak önceden belirlenmiş peptid sunulması (tek zincir MHC-ben şekil 1A) xenogeneic hücrede 9,10satır. Tek zincir (sc) agonist pMHC hamster kaynaklı T-REx CHO hücre satırında tetrasiklin önleyici ifade tetrasiklin-indüklenebilir organizatörü kontrolü altında ifade edildi; Bu yokluğunda tetrasiklin ve yüksek sc agonist pMHC ifade sonra tetrasiklin (şekil 1BC) eklenmesi, sc agonist pMHC çok düşük "sızan" ifade sağlar. Sc agonist pMHC ifade T-REx CHO hücreleri sonra sigara-uyarıcı, co agonist sc pMHC ile supertransfected vardı-ben bir yapısal etkin organizatörü (şekil 1BC) kontrolü altında. Bu deneysel sistemini uyarıcı pMHC yüksek düzeyde ve CD8 + T hücre yanıt-e doğru agonist pMHC karşılaştırmak izin verdi. Eleştirel, beri peptid ve MHC-ben ağır zincir kovalent bağlı scMHC-ben format, bu önceden belirlenmiş peptidler sunumu MHC molekülleri içine mutasyonların tanıtımları sağlar. ScMHC kullanımı-Ben teknoloji böylece bize özellikle agonist veya eş agonist pMHC TCR ve CD8-bağlama özelliklerini modüle izin.
Co-agonism CD8 + T hücre aktivasyonu içinde gözlenen arıtılmış MHC kullanarak-ben agonist ve co agonist peptidler heterodimers11,şeklinde sunulması kompleksleri17 veya üzerinde sunulan kuantum nokta12,13. Co-agonism CD8 + T hücre aktivasyonu agonist pMHC tanıma APC Tarih içinde belgili tanımlık bağlam içinde erken çalışma TAP2-eksik hücre hatları ZPT kullanılır. DOKUNUN peptid taşıyıcısından sitoplazma endoplazmik retikulum için gereklidir ve DOKUNUN-eksikliği ciddi kullanılabilir MHC sınıf ı-bağlama peptidler havuzu azaltır. Peptidler yokluğunda, doğmakta olan tesisin MHC sınıf ı ağır zincir ve β2- Mikroglobulin kararsız, çok düşük MHC sonuçlanan-yüzey ifade hücre. Başlangıçta, karşılaştırma DOKUNUN yeterli ve - eksik fare RMA ve RMA-S hücre hatları, antijen ile uyarılan T hücrelerinin anılan sıraya göre ZPT, co-agonism için herhangi bir delil sırasında fare T hücre harekete geçirmek18olmadığını göstermiştir. Ancak, bu deneysel sistemini uyarıcı öz pMHC bağımsız olarak sunulan agonist pMHC miktarı üzerinde tam denetim izin vermedi. Ayrıca, bu iki hücre satırları ayrıca ligandlar T hücre co-stimulatory veya inhibitör reseptörleri gibi T hücre aktivasyonu modüle diğer molekülleri veya adezyon molekülleri ifade farklı olabilir.
Daha sonra biz sabit bir miktar olan agonist pMHC sunumu uyarıcı pMHC içinde izin vermek için eksojen peptidler hücrelerle TAP2-eksik RMA-S yükleme için bir iletişim kuralı geliştirilmiştir. Bu aracılığıyla aşağıdaki sağlanır: kuluçka TAP2-eksik RMA-s hücreleri boş MHC dengelemek için daha düşük sıcaklıklarda (28 ° C, yerine her zamanki 37 ° C) sınıf ı ağır zinciri/β2 Mikroglobulin kompleksleri19; Kuluçka eksojen agonist peptid ile 28 ° c; Kuluçka eksojen uyarıcı peptid olup içinde 28 ° c; ve kuluçka 37 ° C'de boş MHC hücre yüzey ifade azaltmak için sınıf ı kompleksleri8,9. Bu deneysel kurulum kullanımı olmayan uyarıcı pMHC varlığı fare timositleri, saf periferik CD8 + T hücreleri ve CTL8harekete geçirmek gelişmiş saptandı. Mechanistically, uyarıcı pMHC varlığı yokluğunda bile T hücre: APC bağışıklık synapse için CD8 alımı agonist pMHC tetikleyebilir ve uyarıcı pMHC TCR etkileşim CD8 coreceptor7,8ile geliştirebilirsiniz. Ancak, bu deneysel sistem harekete geçirmek geliştirme MHC sınıf ı-cekti TCR veya CD8 bağlama değiştiren herhangi bir değişiklik olarak arabuluculuk agonist ve co agonist pMHC TCR ve CD8 coreceptor bağlamaya göreli katkılarıyla test izin vermez sunulan peptid ne olursa olsun tüm MHC molekülleri etkiler. Biz bu nedenle bu sorunun üstesinden gelmek için zinciri teknoloji tek MHC sınıf kullanılır.
Ben format tek zincir (sc) MHC sınıf daha önce antijenik pMHC tanıtımı için tedavi stratejileri geliştirmek ve TCR ve NK hücre reseptör etkinleştirme mekanizmaları temel sorulara cevap ve20,21 işlev kullanılmış . scMHC-peptit, β2- Mikroglobulin ve MHC oluşur-ben ağır zincir, iki esnek serin/glisin-zengin vurgulamaktadır (şekil 1A) tarafından katıldı birkaç farklı Bağlayıcı sıraları edilmiştir geliştirilmiş ve test22. scMHC-ben kat karmaşık DOKUNUN bağımsız olarak ve refakat geleneksel pMHC karmaşık derleme20için gerekli proteinler. scMHC-doğru22 boyama conformation özgü antikor kullanılarak belirlenen ve x-ışını kristalografisi23yapısıyla sc çözme tarafından katlayın göstermiştir. Temel scMHC-ben tasarım bağlama düşük benzeşme peptidler24,25artırmak için modifiye edilmiştir.
Bu iletişim kuralı insan scMHC açıklar-ben co-agonism sırasında insan CTL araştırmak için klon harekete geçirmek. Protokol insan CTL klon Hepatit B virüsü (HBV) bir epitope için belirli için optimize edilmiştir. HBV ve kronik HBV enfeksiyonu ile enfekte 350 milyon kişi Hepatosellüler karsinom (HCC) gelişmesine neden olabilir olarak orada HBV bir ciddi sağlık dünya çapında, yüktür. HBV enfeksiyonu sonucu HCC hücreleri genellikle HBV kaynaklı epitopları sunabilir ve belirli insan T hücreleri tarafından kabul edilebilir. HBV ve HCC izni insan T hücre yanıt-e doğru26tarihinde dayanır ama HCC hastalar genellikle T hücre bitkinlik ve azaltılmış T hücre yanıt-e doğru27muzdarip. HBV özgü TCR giriş HBV T hücrelerinin içine kronik HBV enfeksiyonu28ortadan kaldırmak için bir potansiyel immünoterapi strateji olarak çalıştı. Ancak, o bilinmeyen ise bu yöntem yüzey MHC düşük düzeyde bir klinik ortamda etkili olacak-ben insan tetkikine29. Bu nedenle, coagonism mekanizması anlama alternatif bakış açıları HBV, immünoterapi için muhtemelen T hücre co-agonism-aracılı yanıt-e doğru uyarmak için endojen pMHC sunumunu güçlendirerek sağlayabilir. Araştırma için tüm gerekli adımları insan co-agonism tarihinde protokol kapsar: transfection T-REx CHO hücre agonist ve co agonist sc pMHC, istikrarlı T-REx CHO hücre hatları üretimi, kültür HBV özgü insan CTL CD8 + T hücre kültürünü ve CTL etkinleştirme sitokin üretim ve degranulation yanıt olarak T-REx CHO hücrelerin miktarının deneyler. Her ne kadar biz sc MHC kullanarak odak sınıf ı co-agonism HBV T hücre aktivasyonu sırasında araştırmak için teknoloji, sunulan yöntemleri kolayca insan T hücre sistemleri ile bilinen pMHC T hücre aktivasyonu diğer yönleri üzerinde araştırma için adapte edilebilir olduğunu belirtmek gerekir-Ben özgüllüğü.
Bu iletişim kuralı bir insan CD8 + CTL satırı özel HBV kaynaklı peptid E183-91 için kullanır (FLLTRILTI: "E183") HLA-A2 üzerinde sunulan30 . sc HLA molekülleri, insan B2-Mikroglobulin sinyal serisinden oluşan HLA-A2 bağlama peptid ilgi, glisin/serin bağlayıcı, bir insan B2-Mikroglobulin, glisin/serin bağlayıcı ve ağır zincir ticari olabilir bir A2 (şekil 1A sentezledim. ). ScA2 yapıları agonist E183 peptid veya coagonist HIV GAG (SLYNTVATL)31 peptidler kodlama plazmid yazarlardan istek üzerine mevcuttur. Peptid sıra yönetmen sitesi-mutagenesis kullanılarak değiştirilebilir. Tetrasiklin-indüklenebilir vektör pcDNA5/kime E183 peptid (sc E183-HLA-A2) ile agonist tek zincir HLA-A2 ifade etmek için kullanılmıştır. Tetrasiklin önleyici, pcDNA5 huzurunda/plazmid için sadece çok düşük, "sızan" ifade ilgi protein sağlar; yüksek ifade tetrasiklin (şekil 1BC) eklenmesi tarafından indüklenen. Tetrasiklin-indüklenebilir ifade sistemini hücre yüzey agonist pMHC ifade miktarı üzerinde kontrol sağlar. Bir bünye ifade plazmid pcDNA3.1 coagonist scA2 GAG peptid (sc GAG-HLA-A2) ile ifade etmek için kullanılmıştır. Tetrasiklin düzenlenir ifade (T-REx) CHO hücre satırı (hamster hücre satırı, endojen hiçbir insan MHC) agonist ve co agonist sc-HLA-A2 yapıları ifade etmek için kullanılmıştır. Bu deneysel sistem pMHC sunum (şekil 1 c) üzerinde tam denetim sağlar: yok pMHC Tanıtım (untransfected T-REx), ortak agonist pMHC sunum (kurucu sc GAG-HLA-A2 ifade) yüksek miktarda, agonist pMHC düşük miktarda Tanıtım (sc E183-HLA-A2 yokluğunda tetrasiklin,), agonist pMHC sunum (sc E183-HLA-A2 tetrasiklin varlığında) yüksek miktarda, agonist pMHC tanıtımı ve yüksek ifade ortak agonist pMHC düşük miktarda (sc E183-HLA-A2 Devamsızlık tetrasiklin ve kurucu sc GAG-HLA-A2 ifade). Bu deneysel sistem kullanımı agonist ve coagonist pMHC hücre yüzey miktarda hassas kontrol sağlar.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Aim-V (serum free media)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12055091</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>blasticidin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>R21001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cytofix/Cytoperm (fixation/permealibisation kit)</td>
			<td>BD</td>
			<td>554714</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>F12</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10565-018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>HyClone</td>
			<td>SH3007103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>geneticin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10131035</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GolgiPlug (Brefeldin A)</td>
			<td>BD</td>
			<td>555029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human serum</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H4522</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hygromycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10687010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lectin from Phaseolus vulgaris (PHA)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L4144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Opti-MEM (low serum media)</td>
			<td>Bibco</td>
			<td>31985070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 X PBS</td>
			<td>Vivantis</td>
			<td>PB0344 &#8211; 1L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/Streptomycin</td>
			<td>HyClone</td>
			<td>SV30010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>polyethylenimine (PEI)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>408727</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>recombinant human IL2</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>202-IL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>recombinant human IL7</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>207-IL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>recombinant human IL15</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>247-ILB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tetracycline</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T7660</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T-REx CHO cell line</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>R71807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 x Trypsin/EDTA</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15400054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antibodies</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD3</td>
			<td>BD</td>
			<td>347347</td>
			<td>Clone SK7, RRID:AB_400287</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD8&#945;</td>
			<td>BD</td>
			<td>563795</td>
			<td>Clone RPA-T8, RRID:AB_2722501</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CD107a</td>
			<td>BD</td>
			<td>566261</td>
			<td>Clone H4A3, RRID:AB_2739639</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HLA-A2</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>17-9876-41</td>
			<td>Clone BB7.2, RRID:AB_11151522</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IFN-&#947;</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>12-7319-41</td>
			<td>Clone 4S.B3, RRID:AB_1311250</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

use of single chain mhc technology to investigate co-agonism in human cd8+ t cell activation

Sigara uyarıcı kendini peptid MHC (pMHC) kompleksleri T hücre aktivasyonu ve efektör fonksiyonları teşvik değil ama agonist pMHC, co-agonism olarak adlandırılan bir süreç için T hücre yanıt geliştirebilirsiniz. Bu iletişim kuralı bir deneysel açıklar insan MHC ifade ederek insan CD8 + T hücre aktivasyonu sırasında co-agonism araştırmak için sistem sınıf ı molekülleri önceden belirlenmiş peptidler olarak sunan tek polipeptitler (tek zincir MHC) bir xenogeneic hücre satırı. Tek zincir MHCs nerede agonist tek zincir p-MHC kompleksi seviyesinin düşük ve yüksek düzeyde uyarıcı olmayan tek zincir p-MHC kompleksi ifade edildi koşullar altında dile getirdi. Bu deneysel sistemini uyarıcı pMHC içinde CD8 + T hücre yanıt-e doğru agonist pMHC karşılaştırmak izin verdi. Hücre satırı transfection protokolünü açıklar tek zincir MHC yapıları, nesil istikrarlı hücre hatları, kültür Hepatit B virüs özgü insan CD8 + T hücreleri ve T hücre aktivasyonu deneyler aynı anda sayısal sitokin üretim ve degranulation. Sunulan yöntemleri CD8 + T hücre aktivasyonu, farklı özellikleriyle ilgili araştırma insan T hücre sistemlerinde bilinen peptid MHC özgüllük ile kullanılabilir.

MHC sınıf ı burada kullanılan teknoloji sc MHC sınıf hücre yüzey ifade hassas kontrol sağlar ben T hücre aktivasyonu ikna etmek için bilinen, kovalent bağlı peptidler ile. Co agonist pMHC (şekil 1 d, E) içinde agonist pMHC seviyesinin düşük sunumunu sağlayan bir mühendislik xenogeneic APC sistemi (şekil 1A, B, C) oluşturmuş. Eleştirel, bu sunum E183-HLA-A2 co agonist sc GAG-HLA-A2 (şekil 1E) ortak ifade tarafından değiştirilmez agonist SC göstermek için için HLA-A2 sunan E183 peptid TCR benzeri antikor belirli bir kullandık. Ancak, bu E183-HLA-A2 belirli TCR benzeri antikor HLA-A2 sunan GAG peptid (şekil 1E) için bazı bağlama gösterir belirtmek gerekir. Hücre sistemleri sunan benzer mühendislik antijen farklı özelliklerine ile insan T hücrelerinde TCR ve/veya coreceptor etkileşimleri için moleküler gereksinimlerini araştırmak için farklı peptidler ya da MHC molekülleri kullanarak oluşturulabilir.
Bu mühendislik ZPT bir E183 HLA-A2 özel insan CD8 + T hücre klon uyarmak için kullanılır. Üç negatif denetim kullanılmıştır: T hücreleri tek, untransfected T-REx CHO hücreleri ve T-REx CHO hücreleri (untransfected T-REx CHO ifade herhangi bir moleküller tarafından co agonist sc için potansiyel T test etmek için GAG-HLA-A2 yüksek miktarda ifade T-REx CHO hücreleri hücre harekete geçirmek hücreler yalnızca T hücre ile karşılaştırıldığında) ve T hücre aktivasyonu sc-GAG-HLA-A2 (sc-GAG-HLA-A2 untransfected T-REx CHO hücreleri ile karşılaştırıldığında yüksek düzeyde ifade T-REx CHO hücreleri) tarafından için. Untransfected T-REx CHO hücreleri veya sc-GAG-HLA-A2 ifade T-REx CHO hücreleri harekete geçirmek E183 HLA-A2 özel CD8 + CTL klonu, IFN γ üretimi ve degranulation işaret CD107a ifadesi T hücre bir ölçüsü olarak miktarının tarafından belirlenen neden değil sitotoksisite (şekil 2AB). Agonist sc E183-HLA-pozitif kontrolü, indüklenen çok verimli IFN γ üretimi ve degranulation (şekil 2AB), kullanılan sc HLA-A2 yapı tarafından belirli bir TCR etkinleştirmek için tanınabilir gösteren A2, yüksek düzeyde ifade T hücre efektör fonksiyonları. Sc E183-HLA-A2 düzeyi düşük ifade düzeyi düşük IFN γ üretimi ve degranulation indüklenen ve bu ortak agonist sc GAG-HLA-A2 (şekil 2AB) varlığı ile geliştirilmiş oldu. CD107a + T hücreleri çok yüksek oranlarda bile antijenik pMHC (şekil 2B), önceki raporlar miktarı için agonist pMHC T hücre indüksiyon için nispeten düşük gereksinimleri ile tutarlı seviyesinin düşük yanıt olarak gözlendi edilmelidir sitotoksisite33. Bir tek hücre olarak degranulation miktarını gösteren CD107a MFI daha iyi bir Dinamik Aralık (şekil 2B) sağlar. Kullanılan T hücre harekete geçirmek tahlil eşzamanlı miktar iki büyük efektör fonksiyonları sağlar: sitokin üretim ve sitotoksisite ve çok hassas okuma iyi dinamik ile hizmet sunmaktadır.
Tek zinciri teknoloji TCR bağlama co agonist pMHC için ortak agonist pMHC bağımlı harekete geçirmek geliştirme için gerekli olup olmadığını sınamak için kullanılan. Bu mutasyon TCR bağlama için HLA-A234kaldırılması için rapor olarak biz glutamik asit V152E mutant, oluşturmak için Valin HLA-A2 peptid bağlama groove (şekil 3B) konumunu 152 kenarında, mutasyona uğramış. Eğer V152E mutasyon TCR bağlama Bu mutasyon agonist sc E183-HLA-A2 içine tanıtımı ve T-REx CHO hücrelerde mutant agonist sc yapı ifade tarafından kullanılan E183-HLA-A2 CTL klon için kaldırılması sonra test ettik. Vahşi türü ancak değil V152E, sc E183-HLA-A2 kullanılan E183 HLA-A2 özel CTL klonu (şekil 3A) Etkinleştirme indüklenen. Herhangi bir TCR-bağlama mutasyon MHC sınıf üzerinde ayrı ayrı, mutasyon etkisini TCR ve pMHC karmaşık hassas moleküler Hofstede bağlı olacaktır ve bunlar arasında değişir gibi kullanılan her bireysel TCR/T hücre klon için test edilecek ihtiyacı belirtmek gerekir farklı TCRs. Örneğin, sekiz mutasyon test ettik, ya daha önce TCR-bağlama mutasyonlar veya peptid bağlama HLA-A2 içine abrogating olmadan TCR bağlama bozmaya tahmin mutasyonlar bildirdi. Bunlar V152E10E183 özgü T hücre klon aktivasyonu kaldırıldı tek mutasyon kullanılan oldu. Daha sonra V152E mutasyon co agonist sc GAG-HLA-A2 içine tanıtıldı ve WT veya V152E sc GAG-HLA-A2 agonist sc E183-HLA-A2 düzeyi düşük ile ortak dile getirdi. WT ve V152E sc TCR bağlama co agonist pMHC için ortak agonist pMHC bağımlı CD8 + T hücre harekete geçirmek geliştirme için gerekli değildir ima IFN γ üretimi ve degranulation (şekil 3 cD), GAG-HLA-A2 gelişmiş. Tek zincir MHC sınıf ı teknoloji, burada sunulan, TCR ve/veya bağlama MHC sınıf ı ile bilinen peptid coreceptor T hücre Antijen tanıma ve harekete geçirmek için moleküler gereksinimlerini araştırmak için değiştirmek için kullanılabilir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59126/59126fig1.jpg"> Şekil 1: tek insan CD8 + T hücre aktivasyonu co agonist araştırmak için kullanılan HLA-A2 oluşturur zinciri. Erimiş insan Beta2 Mikroglobulin, seçim, esnek glisin-serin bağlayıcı (GGGGSGGGGS GGGGS), insan Beta2 Mikroglobulin, esnek peptid kovalent sinyal serisinden oluşan bir scHLA-A2 yapısı(a)şematik diyagramı Glisin-serin bağlayıcı ve HLA-A2 ağır zincir. (B) co-agonism insan CD8 + T hücre aktivasyonu içinde araştırmak için hücreleri sunulması mühendislik antijen üretmek için kullanılan plazmid şematik Diyagramı: tetrasiklin önleyici, agonist sc E183-HLA-A2 tetrasiklin-indüklenebilir organizatörü, kontrol altında uyarıcı co agonist sc GAG-HLA-A2 yapısal etkin organizatörü kontrolü altında. (C) co-agonism araştırmak için kullanılan hücre sunan işlenmiş antijen şematik Diyagramı: T-REx CHO hücreleri (insan yok MHC ifade), T-REx CHO hücreler yapısal yüksek düzeyde sc GAG-HLA-A2 (uyarıcı co agonist pMHC), ifade T-REx CHO hücreleri "sızan" seviyesinin düşük: sc E183-HLA-A2 yokluğunda tetrasiklin (düşük düzeyde agonist peptid), ifade, sc E183-HLA-A2 tetrasiklin (agonist peptid yüksek düzeyde), huzurunda yüksek düzeyde ifade T-REx CHO hücreler T-REx CHO hücreleri. sc E183-HLA-A2 düzeyi düşük ve sc GAG-HLA-A2 (düşük düzeyde agonist peptid) ve co agonist peptid yüksek seviyede yüksek düzeyde ifade ediyorum. (D) hücre yüzey anti-HLA-A2 antikor kullanarak hücre satırları sunulması mühendislik antijen boyama. Gösterilen numaraların MHC leke canlı hücre kapısında MFI değerlerini gösterir. Veri 5 bağımsız deneyler (E) hücre yüzey karşı HLA-A2 sunan E183 peptid TCR benzeri antikor özel kullanarak hücre satırları sunan işlenmiş antijen boyama temsilcisi. Gösterilen numaraların MHC leke canlı hücre kapısında MFI değerlerini gösterir. Veri 5 bağımsız deney temsilcisi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59126/59126fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59126/59126fig2v3.jpg"> Şekil 2: ortak agonist pMHC varlığı gelişmiş sitokin üretim ve degranulation E183 HLA-A2 özel insan CD8 + CTL klonu. Hücre içi IFN γ-(a)HLA A2 özel insan CD8 + CTL klonu 3 h stimülasyon ile belirtilen sonra boyama mühendislik antijen sunan hücreler. Gösterilen numaraların IFN γ boyama için yüzde pozitif göstermek. Veri 3 bağımsız deney temsilcisi, her teknik triplicates ile gerçekleştirilen. (B) hücre yüzey 3 h stimülasyon ile belirtilen hücreleri sunulması antijen mühendislik sonra CD107a HLA A2 özel insan CD8 + CTL klonu boyama. Gösterilen numaralarının yüzde CD107a boyama için olumlu veya CD107a MFI CD8 + T hücre nüfus için göstermek. Veri 3 bağımsız deney temsilcisi, her teknik triplicates ile gerçekleştirilen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59126/59126fig2v3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59126/59126fig3.jpg"> Şekil 3: co agonist-aracılı T hücre harekete geçirmek geliştirme eş agonist pMHC karmaşık TCR bağlama gerektirmez. (A)V152E mutasyon SC E183-HLA-A2 onuntemsilcilerini E183 HLA-A2 özel insan CD8 + CTL klon aktivasyonu. T-REx CHO hücreleri yüksek düzeyde (tetrasiklin indüksiyon) WT veya V152E mutant sc E183-HLA-A2 ifade E183 HLA-A2 özel insan CD8 + CTL klonu 3 h için uyarmak için kullanılmıştır. T hücre aktivasyonu hücre içi IFN γ boyama kullanarak sayısal. Gösterilen numaraların IFN γ boyama için yüzde pozitif göstermek. Veri 3 bağımsız deney temsilcisi, her teknik triplicates ile gerçekleştirilen. HLA-A2 peptid bağlama oluk içinde V152E mutasyon (B) konumu. (C) V152E mutasyon sc GAG-HLA-A2 co agonist pMHC karmaşık agonist-bağımlı harekete geçirmek geliştirme kaldırılması değil. Hücre içi IFN γ HLA A2 özel insan CD8 + CTL clone-in 4 h stimülasyon ile belirtilen sonra boyama antijen sunan hücreler mühendislik. Gösterilen numaraların IFN γ boyama için yüzde pozitif göstermek. Veri 3 bağımsız deney temsilcisi, her teknik triplicates ile gerçekleştirilen. (D) V152E mutasyon sc GAG-HLA-A2 co agonist pMHC karmaşık agonist-bağımlı harekete geçirmek geliştirme kaldırılması değil. 3 h stimülasyon ile belirtilen hücreleri sunulması antijen mühendislik sonra yüzey CD107a HLA A2 özel insan CD8 + CTL klonu boyama hücre. Gösterilen numaralarının yüzde CD107a boyama için olumlu veya CD107a MFI CD8 + T hücre nüfus için göstermek. Veri 3 bağımsız deney temsilcisi, her teknik triplicates ile gerçekleştirilen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59126/59126fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Use of Single Chain MHC Technology to Investigate Co-agonism in Human CD8+ T Cell Activation at JoVE.com

Use of Single Chain MHC Technology to Investigate Co-agonism in Human CD8+ T Cell Activation

Tek zincir MHC Co-agonism insan CD8 + T hücre aktivasyonu içinde araştırmak için teknoloji kullanımı

Bu iletişim kuralı açıklar tek zinciri MHC sınıf ı insan CD8 + T hücre aktivasyonu moleküler etkileşimlerde araştırmaya kompleksleri: mühendislik antijen sunan tek zincir ifade hücreleri nesil oluşturur, kültür insan CD8 + T hücre klonu ve T hücre aktivasyonu deneyler.

Non-stimulatory self peptide MHC (pMHC) complexes do not induce T cell activation and effector functions, but can enhance T cell responses to agonist ...

Nonstimulatory peptid MHC kompleksleri T hücrelerini aktive etmez ancak agonist peptid MHC T hücre yanıtlarını artırabilir. Bu protokol, insan CD8 T hücre aktivasyonu sırasında ko-agonizm araştırmak için deneysel bir sistem açıklar. MHC moleküllerini kovalent bağlı ağır zincir, beta-2-mikroglobulin ve peptid ile tek zincirli kompleksler olarak ifade ediyoruz.Bu, önceden belirlenmiş peptidler sunan MHC moleküllerine mutasyonların girmesini sağlar. Bu protokol, hepatit B virüsü nün bir epitopu için özel olan insan CTN klonunu kullanır. Hepatite karşı T hücre yanıtları sırasında ko-agonizm mekanizmasının anlaşılması bu viral enfeksiyona karşı immünotropiklerin gelişmesine katkıda bulunabilir.Sunulan yöntemler, bilinen peptid MHC özgüllüğü ile insan T hücre sistemlerinde T hücre aktivasyonunun araştırılmasında ve diğer temel yönlerinde kullanılabilir. Bu protokol, sinyal dizisi, ilgi peptidi, bağlayıcı, insan beta-2-mikroglobulin bağlayıcısı ve MHC ağır zincirden oluşan tek zincirli insan MHC sınıf I moleküllerini kullanır. Hepatit B'den gelen E1A3 peptid agonist peptid olarak kullanılır.HIV gag nonstimulatory peptid olarak kullanılır. Tek zincirli insan MHC molekülleri tetrasiklin represörü içeren bir hamster hücre hattı ile ifade edilir. Agonist tek zincirli MHC tetrasiklin indüklenebilir plazmid kullanılarak ifade edilir, tetrasiklin yokluğunda çok düşük ekspresyon düzeyleri ile sonuçlanan, ve tetrasiklin varlığında yüksek ifade düzeyleri.Agonist peptit MHC düşük düzeyde ifade CHO hücreleri kurucu olarak nonstimulatif peptid MHC ifade ile transfected. Bu deneysel sistemin kullanımı, t hücre yanıtlarının nonstimulator peptid MHC varlığında veya yokluğunda agonist peptid MHC ile karşılaştırılmasına olanak sağlar. Bu yordamı başlatmak için, metin protokolünde belirtildiği gibi, bir T-75 şişesinde CHO hücreleri yetiştirmek.T hücre aktivasyon deneyinden bir gün önce, şişedeki hücreleri PBS ile yıkayın. PBS'de %05 tripsin ve %2 EDTA içeren bir çözelti ekleyin ve oda sıcaklığında beş ila on dakika kuluçkaya yatırın. Bir ışık mikroskobu kullanarak, hücreler müstakil olduğundan emin olmak için gözlemleyin.Sonra trypsinization durdurmak için şişeye tam F12 ekleyin. Hücre süspansiyonuna 15 mililitrelik bir tüp aktarın. Beş dakika boyunca 400G'de santrifüj edin ve supernatant'ı pipetleme veya dekantasyon ile çıkarın.Hücre peletini tam f12'nin beş mililitresinde yeniden askıya alın. Hücreleri saymak için bir hemositometre kullanın ve CF12'de hücre konsantrasyonu mililitre başına 200.000 hücreye ayarlayın. Agonist sadece örneklere mililitre başına 50 ila 60 nanogram ekleyün ve yüksek miktarda agonist pMHC sınıf I ifadesini pozitif kontrol olarak ikna edin.Bundan sonra, vortexing veya pipetleme ya DA CHO hücreleri karıştırın. U-alt 96-iyi plaka her kuyuya hücre süspansiyon 100 mikrolitre ekleyin. Bir gecede %5 karbondioksitle 37 derecede kuluçkaya yat.Deneyden bir gün önce, CTLS hücrelerini 400 kez G'de ve dört santigrat derecede beş dakika santrifüj edin. Hücreleri saymak için bir hemositometre kullanın ve sitokinveya PHA olmadan tam insan T hücre medyasında mililitre başına bir milyon hücre yoğunluğunda yeniden askıya. CTL'leri bir gecede %5 karbondioksitle 37 santigrat derecede kuluçkaya yatırın.Ertesi gün, T hücrelerini 400 kez G'de ve dört santigrat derecede beş dakika santrifüj edin. Supernatant atın ve tam serum içermeyen medya 2 mililitre hücreleri yeniden askıya. T hücrelerini saymak için bir hemositometre kullanın ve tam insan T hücre medyasında mililitre başına bir milyon canlı hücreye yoğunluklarını ayarlayın.Bir ila 100 seyreltme anti-insan CD107a antikor ekleyin ve Brefeldin A bir ila 1000 seyreltme. Ardından, CHO hücrelerini içeren 96 kuyulu plakayı alın. Bir cam Pasteur pipet kullanarak, CHO hücrelerinden medya aspire.Her kuyuya 200 mikrolitre T hücresi süspansiyonu ekleyin. 37 santigrat derecede CHO hücreleri ile T hücreleri ile co-kültür üç ila dört saat boyunca% 5 karbondioksit ile. Ortak kültürün sonunda, 96 kuyulu plakayı 400 kez G ve dört santigrat dereceyi beş dakika santrifüj edin.Supernatant'ı azarlayarak veya hareket ettirerek çıkarın. Daha sonra her kuyuya, hücre yüzeyi antijen boyamaiçin, 50 mikrolitre DE 50 mikrolitre CD3 antikorları ve 2,5 mikrolitre CD3 antikorları ve 2,5 mikrolitre CD8 antikorları ekleyin ve pipetleme ile karıştırın. Örnekleri karanlıkta ve buzda 30 dakika kuluçkaya yatırın.Bundan sonra, örnekleri yıkamak için her kuyuya 150 mikrolitre yıkama tamponu ekleyin. Örnekleri 400 kez G'de ve dört santigrat derecede beş dakika santrifüj edin. Supernatant'ı azarlayarak veya hareket ettirerek çıkarın.Bir fiksasyon/permeabilizasyon kiti ayarlayın ve her kuyuya 100 mikrolitre fiksasyon/permeabilizasyon çözeltisi ekleyin ve karıştırmak için pipet ekleyin. 20 dakika boyunca buzda kuluçkaya yat. Sonra, plakayı 400 kez G'de dört santigrat derecede beş dakika santrifüj edin.Supernatant atın ve her kuyuya 1X perma/yıkama tampon200 mikrolitre ekleyin. Perma/yıkama tamponunu bir kez ekleyerek bu işlemi santrifüjden tekrarlayın. Bundan sonra, mililitre başına 3 mikrogram konsantrasyonda anti-interferon-gama içeren perm/yıkama tamponunun 50 mikrolitresi hücreleri yeniden askıya alın.Karanlıkta 30 dakika boyunca buzda kuluçkaya yat. Daha sonra, 150 mikrolitre 1X perma/yıkama tamponu ekleyin. 400G'de santrifüj, dört santigrat derece, beş dakika lığına.Supernatant çıkarın ve 1X perma / yıkama tampon 200 mikrolitre ekleyin. Plakayı tekrar 400 kez G, dört santigrat derece, beş dakika boyunca santrifüj edin ve aspirating veya flicking tarafından supernatant çıkarın. 200 mikrolitre yıkama tamponu yla numuneyi yeniden askıya alın ve sitometrik analize devam edin.Deneyden bir gün önce, CHO hücrelerini girdap veya pipetleme ile karıştırın. Sonraki 12 kuyuplaka her kuyuya hücre süspansiyon bir mililitre ekleyin. Bir gecede %5 karbondioksitle 37 derecede kuluçkaya yat.Deneme günü, her kuyunun altından CHO hücrelerini ayırmak için bir hücre kazıyıcı kullanın. Her kuyudan hücreleri içeren bir mililitre ortamı FACS tüplerine aktarın. Santrifüj 400 kez G ve dört santigrat derecede beş dakika.Yıkama tamponunda seyreltilmiş 100 mikrolitre anti-HLA antikorda yeniden askıya alın. 30 dakika boyunca buzda kuluçkaya yat. Sonra her CHO örneğine bir mililitre yıkama tamponu ekleyin.Santrifüj 400 kez G ve dört santigrat derecede beş dakika, ve supernatant atın. Her numuneyi 3 mililitre yıkama tamponunda yeniden askıya alın ve sitometri analizine devam edin. Bu çalışmada, insan CD8 pozitif T hücre aktivasyonu sırasında moleküler etkileşimin araştırılması için sağlam bir araç sunulmuştur.Co-agonist pMHC varlığında veya yokluğunda düşük agonist pMHC düzeyleri sunan bir mühendislik ksizjenik sistem oluşturulur. Bu mühendislik ADC'ler daha sonra bir E183-özel insan CD8 pozitif T hücre klon uyarmak için kullanılır. Transfekslenmemiş CHO hücreleri ve imtimülatör olmayan tek zincirli Gag-MHC kompleksini ifade eden CHO hücreleri aktivasyonu tetiklemez.Pozitif kontrol olan agonist tek zincirli E183-MHC kompleksinin yüksek seviyelerinin ekspresyonu, çok verimli interferon-gama üretimini ve degranülasyonu tetikleyerek, tek zincirli E183 yapısının T hücre efektör fonksiyonlarını etkinleştirmek için belirli bir TCR tarafından tanınabileceğini gösterir. Tek zincirli E183-MHC kompleksinin düşük seviyelerinin ekspresyonu, imtial olmayan bir Gag-MHC kompleksinin varlığıyla geliştirilmiş olan interferon-gama üretimi ve degranülasyonunun daha düşük seviyelerini tetikler. CD107a+T hücrelerinin çok yüksek yüzdelerinin, önceki çalışmalarla tutarlı olan düşük antijenik pMHC düzeylerine yanıt olarak bile gözlendiğini unutmayın.Ancak, nonstimulatory Gag-MHC kompleksinin varlığı CD107a MFI artar. Bu işlem sırasında, nonstimulatan peptid ile veya olmadan eşit agonist sunum sağlamak için agonist peptit MHC ekspresyonunu kontrol etmek önemlidir. Her deneyde TCR benzeri antikorlar kullanılarak agonist peptit MHC ekspresyonunun ölçülmesi çok önemlidir.Alternatif bir yaklaşım, antilüm dışı peptid MHC varlığında agonist peptit MHC sabit miktarda sunan desteklenen lipid bilayers veya boncuklar kullanmaktır. Bu deneysel sistem co-agonizm için birden fazla nonstimulatory peptid dizilerinin test izin vermelidir. Tek zincirli MHC teknolojisi, CD4 T hücre aktivasyonundaki moleküler etkileşimleri araştırmak ve klasik olmayan MHC moleküllerini araştırmak için kullanılabilir.Bu protokolde insan kanı ve insan hücreleri kullanıyor. Kanyoluyla bulaşan hastalıkların bulaşma riskini azaltmak için insan kanı ile çalışırken gerekli tüm önlemleri alın.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Retroviral Transduction of T-cell Receptors in Mouse T-cells

Fare T-hücrelerinin, T-hücre reseptörleri retroviral İletimi

T-cell receptors (TCRs) play a central role in the immune system. TCRs on T-cell surfaces can specifically recognize peptide antigens presented by antigen ...

Use of Interferon-&gamma; Enzyme-linked Immunospot Assay to Characterize Novel T-cell Epitopes of Human Papillomavirus

Use of Interferon-ÃƒÅ½Ã‚Â³ Enzyme-linked Immunospot Assay to Characterize Novel T-cell Epitopes of Human Papillomavirus

Human Papillomavirüs Roman T hücre epitopları Karakterizasyonu için interferon-γ Enzim bağlı immünospot Assay Kullanımı

A protocol has been developed to overcome the difficulties of isolating and characterizing rare T cells specific for pathogens, such as human ...

Induction of Graft-versus-host Disease and In Vivo T Cell Monitoring Using an MHC-matched Murine Model

Induction of Graft-versus-host Disease and In Vivo T Cell Monitoring Using an MHC-matched Murine Model

Graft-versus-host hastalığı indüksiyonu ve<em&gt; In Vivo</emBir MHC-eşlemeli murin Model Kullanma&gt; T Hücre İzleme

Graft-versus-host disease (GVHD) is the limiting barrier to the broad use of bone marrow transplant as a curative therapy for a variety of hematological ...

piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells

piggyBac Transposon System Modification of Primary Human T Cells

Primer insan T hücrelerinin piggyBac Transposon Sistem Modifikasyon

The piggyBac transposon system is naturally active, originally derived from the cabbage looper moth1,2. This non-viral system is plasmid based, most ...

The Use of Fluorescent Target Arrays for Assessment of T Cell Responses In vivo

The Use of Fluorescent Target Arrays for Assessment of T Cell Responses In vivo

T hücre yanıtlarının Değerlendirme Floresan hedef Dizilerin Kullanımı<em&gt; In vivo</em

The ability to monitor T cell responses in vivo is important for the development of our understanding of the immune response and the design of ...

Flow Cytometric Analysis of Natural Killer Cell Lytic Activity in Human Whole Blood

İnsan Tüm Kan Natural Killer Hücre Parçalayıcı Faaliyet Akışı Sitometrik Analizi

NK cell cytotoxicity is a widely used measure to determine the effect of outside intervention on NK cell function. However, the accuracy and ...

Analysis of Simian Immunodeficiency Virus-specific CD8+ T-cells in Rhesus Macaques by Peptide-MHC-I Tetramer Staining

Analysis of Simian Immunodeficiency Virus-specific CD8+ T-cells in Rhesus Macaques by Peptide-MHC-I Tetramer Staining

Maymun bağışıklık eksikliği virüsüne özgü CD8 analizi<sup&gt; +</sup&gt; Peptid MHC-I tetramer boyama ile Rhesus macaque maymunlarının T-hücrelerinin

Peptide-major histocompatibility complex class I (pMHC-I) tetramers have been an invaluable tool to study CD8+ T-cell responses. Because these reagents ...

Highly Multiplexed, Super-resolution Imaging of T Cells Using madSTORM

Madstorm kullanarak T hücrelerinin çok yönlü, süper çözünürlüklü görüntüsü

Imaging heterogeneous cellular structures using single molecule localization microscopy has been hindered by inadequate localization precision and ...

In Situ MHC-tetramer Staining and Quantitative Analysis to Determine the Location, Abundance, and Phenotype of Antigen-specific CD8 T Cells in Tissues

In Situ MHC-tetramer Staining and Quantitative Analysis to Determine the Location, Abundance, and Phenotype of Antigen-specific CD8 T Cells in Tissues

Situ MHC-tetramer boyama ve kantitatif fenotip antijen spesifik CD8 T hücre dokularında, bereket ve konumunu belirlemek için analiz

T cells are critical to many immunological processes, including detecting and eliminating virus-infected cells, preventing autoimmunity, assisting in ...