Name: evaluation of keratinocyte proliferation on two- and three-dimensional type i collagen substrates
Uploaded: 2019-04-22T15:00:00
Duration: 8 min 19 s
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Wir sind dankbar, dass Dr. K. Sekiguchi (Institut für Proteinforschung, Osaka University), Dr. M. Yamada (Institut für Proteinforschung, Osaka University), Dr. T. Ikejima (China und Japan Research Institute of Medical and Pharmaceutical Sciences, Wuya College of Innovation, Shenyang pharmazeutische Universität) und T. Hayashi (China und Japan Research Institute of Medical and Pharmaceutical Sciences, Wuya College of Innovation, Shenyang pharmazeutische Universität) für die hilfreichen Kommentare.

1. Vorbereitung der Keratinozyten Kulturmedium
Hinweis: Führen Sie alle Verfahren unter aseptischen Bedingungen.
<ol><li>Fügen Sie 5 mL von Penicillin-Streptomycin und 10 mL additive Ergänzung k-1 500 mL K110 Typ-II-Medium (K110) mit einer Pipette.</li>
</ol>2. Vorbereitung der Fibrille Form des Typ-I-Kollagen
Hinweis: Führen Sie Verfahren erst Schritt 2.6 unter aseptischen Bedingungen.
<ol><li>Halten Sie 10 x Phosphat-gepufferte Kochsalzlösung (PBS (-)), deionisiertes Wasser, Kollagen, eine Kultur der 96-Well-Platte und einem 2-mL-Leerrohr auf Eis. Hinweis: Verwenden Sie nicht die gleiche Platte die Fibrille und nicht faserigen Formen vorbereiten.</li>
	<li>Eine leere 2-mL-Tube mit einer Pipette fügen Sie 1,12 mL entionisiertem Wasser hinzu. Deionisiertes Wasser in der 2 mL-Tube mit einer Pipette fügen Sie 200 µL 10 X PBS (- hinzu). Schütteln Sie das Röhrchen mehrmals.</li>
	<li>Der 2-mL-Tube mit einer Pipette fügen Sie 0,66 mL Kollagen hinzu. Schütteln Sie schonend und schnell das Röhrchen mehrmals. Hinweis: Vermeiden Sie die Blasenbildung in der Lösung so weit wie möglich. Bereiten Sie Kollagen Lösung unmittelbar vor dem Gebrauch.</li>
	<li>Gießen Sie 100 µL der Kollagen-Lösung von Schritt 2.3 in jede Vertiefung der Kultur der 96-Well-Platte. Schütteln Sie die Kultur-Platte in einer von links nach rechts Bewegung. Hinweis: Bedecken Sie die gesamte Oberfläche der Brunnen mit der Kollagen-Lösung. Wenn die Lösung nicht die gesamte Fläche abdeckt, verbreiten Sie die Lösung mit einer Pipettenspitze. Vermeiden Sie Blasenbildung in der Lösung so weit wie möglich.</li>
	<li>Die Kultur Platte in eine CO2 Inkubator und Inkubation bei 37 ° C für 1 h Check die Gelierung des Kollagens und die Kultur-Platte in einer sauberen Werkbank verschieben. Hinweis: Bestätigen Sie Gelierung durch Kippen der Kultur-Platte.</li>
	<li>Gießen Sie sanft auf die Gele mit einer Pipette entlang der Wand Brunnen, Ort die Kultur in einem CO2 Inkubator Platte und Inkubation bei 37 ° C für 1 h Umzug der Kultur-Platte in einer sauberen Werkbank 150 µL K110. Vor der Zellkultur, sanft verwerfen die K110 mit einer Pipette. Hinweis: Um die Gele zu schützen, sollte die Spitze der Pipette die Wand des Brunnens berühren.</li>
</ol>3. Vorbereitung des nicht-faserigen Form von Typ I-Kollagen
Hinweis: Führen Sie alle Verfahren unter aseptischen Bedingungen.
<ol><li>1,2 mL Salzsäure (HCl) in einer 1,5 mL Tube 1 mM 4 µL des Kollagens hinzufügen und mit einer Pipette vorsichtig mischen. Hinweis: Bereiten Sie Kollagen unmittelbar vor dem Gebrauch. Halten Sie Kollagen und HCl gekühlt bis zum Zeitpunkt der Nutzung.</li>
	<li>Gießen Sie 100 µL des Kollagens in jede Vertiefung einer 96-Well-Kultur-Platte mit einer Pipette. Schütteln der Kultur-Platte in einer von links nach rechts Bewegung und Inkubation bei Raumtemperatur für 1 h. Hinweis: Stellen Sie sicher, dass die gesamte Oberfläche der Brunnen mit Lösung bedeckt ist.</li>
	<li>Verwerfen Sie nach der Inkubation die Kollagen-Lösung zu und waschen Sie die Brunnen mit PBS (-) zweimal mit einer Pipette.</li>
	<li>150 µL 1 % bovine Serum Albumin/PBS (-) (1 % BSA) zu einem Brunnen der Kultur der 96-Well-Platte gießen und Inkubation bei Raumtemperatur für 1 h vor der Zellkultur, die 1 % BSA entsorgen. Hinweis: Stellen Sie sicher, dass die gesamte Oberfläche der Brunnen mit Lösung bedeckt ist.</li>
</ol>(4) Kultur der FEPE1L-8 Zellen
Hinweis: Führen Sie alle Verfahren unter aseptischen Bedingungen.
<ol><li>Pflegen Sie FEPE1L-8 Zellen in K110 in einem 100 mm Schale in eine CO2 Inkubator Kultur und bei 37 ° C und 5 % CO2, semi-confluency inkubiert.</li>
	<li>Bereiten Sie K110, Trypsin und Trypsin-Inhibitor in einem Wasserbad bei 37 ° C.</li>
	<li>Sorgfältig entfernen Sie das Medium aus der Kulturschale, fügen Sie 0,05 % Trypsin mit einer Pipette 3 mL hinzu, legen Sie die Schale in eine CO2 Inkubator und bei 37 ° C für 5 min inkubieren. Überprüfen Sie nach der Inkubation Zelle Loslösung von der Oberfläche von der Kulturschale mit Phasenkontrast-Mikroskopie bei 10-facher Vergrößerung. Hinweis: Die Morphologie der freistehenden Zellen wird rund. Wenn die Zellen verteilt, um einen weiteren Zeitraum von 5 min inkubieren.</li>
	<li>Fügen Sie 3 mL Trypsin-Inhibitor und sammeln Sie die freistehenden Zellen in einem 15 mL Zentrifugenröhrchen mit einer Pipette. Zentrifugieren Sie die Zellen in einem Zentrifugenröhrchen 15 mL 200 X g für 5 min.</li>
	<li>Verwerfen Sie den Überstand und erneut aussetzen Sie das Pellet in 10 mL K110 mit einer Pipette. Zählen der Zellen mittels Phasenkontrast-Mikroskopie bei 10facher Vergrößerung und Zellkonzentration auf 5.0 x 104 Zellen/mL durch entsprechende Verdünnung mit K110 vorbereiten.</li>
	<li>Samen Sie sanft 0,1 mL K110 mit Zellen in jede Vertiefung der Kultur-Platte mit einer Pipette entlang der Wand des Brunnens. Die Kultur Platte in eine CO2 Inkubator und die angegebene Zeit (2 h, 1 Tag, 3 Tage) bei 37 ° C inkubieren. Hinweis: Um die Gele zu schützen, sollte die Spitze der Pipette die Wand des Brunnens berühren.</li>
</ol>(5) Schätzung der Anzahl der lebensfähigen Zellen
<ol><li>Inkubieren Sie K110 in einem Wasserbad bei 37 ° c Mix-130 µL Tetrazoliumsalz Salz, 2-(2-methoxy-4-nitrophenyl)-3-(4-nitrophenyl)-5-(2,4-disulfophenyl)-2H Tetrazoliumsalz, Mononatrium-Salz (WST-8) und 1,3 mL K110 in der 2-mL-Tube mit einer Pipette.</li>
	<li>Verschieben die Kultur-Platte in einer sauberen Werkbank und sanft verwerfen die K110 mit einer Pipette. Waschen Sie vorsichtig entfernt nicht anhaftende Zellen mit K110 mithilfe einer pipette</li>
	<li>Fügen Sie WST-8 110 µL K110 beigemischt, in jeder gut mit einer Pipette, die Kultur Platte in eine CO2 Inkubator und Inkubation bei 37 ° C für 2 h.</li>
	<li>Verschieben der Kultur-Platte in einer sauberen Werkbank, 100 µL des konditionierten Mediums aus jedem Brunnen sammeln und verschieben Sie es in einen Brunnen von einer anderen Kultur 96-Well-Platte. Messung der Absorption bei einer Wellenlänge von 450 nm (OD450) mit einer Mikrotestplatte Leser und Schätzung der Anzahl der lebensfähigen Zellen.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Kanta, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Collagen+as+a+tool+in+studying+fibroblastic+cell+behavior.">Collagen as a tool in studying fibroblastic cell behavior.</a> Cell Adhesion &amp; Migration. 9 (4), 308-316 (2015).</li><li>Kleinman, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibroblast+adhesion+to+collagen+substrates.">Fibroblast adhesion to collagen substrates.</a> Methods of Enzymology. 82, 503-508 (1982).</li><li>Kleinman, H. K., Haralsonand, M. A., Hassell, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+extracellular+matrix+and+its+components+in+culture.">Use of extracellular matrix and its components in culture.</a> Extracellular Matrix: A Practical Approach, 1st ed. , 289-301 (1995).</li><li>Yamato, M., Hayashi, T., Ninomiya, Y., Olsen, B. R., Ooyama, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Topological+distribution+of+collagen+binding+sites+on+fibroblasts+cultured+within+collagen+gels.">Topological distribution of collagen binding sites on fibroblasts cultured within collagen gels.</a> Extracellular Matrix-Cell Interaction. , 123-140 (1998).</li><li>Suzuki, Y., Someki, I., Adachi, E., Irie, S., Hattori, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interaction+of+collagen+molecules+from+the+aspect+of+fibril+formation:+Acid-soluble,+alkali-treated+and+MMP1-digested+fragments+of+type+I+collagen.">Interaction of collagen molecules from the aspect of fibril formation: Acid-soluble, alkali-treated and MMP1-digested fragments of type I collagen.</a> Journal of Biochemistry. 126, 54-67 (1999).</li><li>Fujisaki, H., Hattori, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Keratinocyte+apoptosis+on+type+I+collagen+gel+caused+by+lack+of+laminin+5/10/11+deposition+and+Akt+signaling.">Keratinocyte apoptosis on type I collagen gel caused by lack of laminin 5/10/11 deposition and Akt signaling.</a> Experimental Cell Research. 280, 255-269 (2002).</li><li>Sasaki, J., Fujisaki, H., Adachi, E., Irie, S., Hattori, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delay+of+cell+cycle+progression+and+induction+of+death+of+cancer+cells+on+type+I+collagen+fibrils.">Delay of cell cycle progression and induction of death of cancer cells on type I collagen fibrils.</a> Connective Tissue Research. 52 (3), 167-177 (2011).</li><li>Wang, Z., Li, R., Zhong, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+matrix+promotes+proliferation,+migration+and+airway+smooth+muscle+cells+in+a+rat+model+of+chronic+obstructive+pulmonary+disease+via+upregulation+of+the+PI3K/AKT+signaling+pathway.">Extracellular matrix promotes proliferation, migration and airway smooth muscle cells in a rat model of chronic obstructive pulmonary disease via upregulation of the PI3K/AKT signaling pathway.</a> Molecular Medicine Reports. 18, 3143-3152 (2018).</li><li>Shih, Y. -. R., Tseng, K. F., Lai, H. -. Y., Lin, C. -. H., Lee, O. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Matrix+stiffness+regulation+of+integrin&#8208;mediated+mechanotransduction+during+osteogenic+differentiation+of+human+mesenchymal+stem+cells.">Matrix stiffness regulation of integrin&#8208;mediated mechanotransduction during osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells.</a> Journal of Bone and Mineral Research. 26, 730-738 (2011).</li><li>Breitkreutz, D., Koxholt, I., Thiemann, K., Nischt, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Skin+basement+membrane:+The+foundation+of+epidermal+integrity-+BM+functions+and+diverse+roles+of+binding+molecules+nidogen+and+perlecan.">Skin basement membrane: The foundation of epidermal integrity- BM functions and diverse roles of binding molecules nidogen and perlecan.</a> BioMed Resesrch International. , 179784 (2013).</li><li>Fujisaki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Respective+optimal+calcium+concentrations+for+proliferation+on+type+I+collagen+fibrils+in+two+keratinocyte+line+cells,+HaCaT+and+FEPE1L-8.">Respective optimal calcium concentrations for proliferation on type I collagen fibrils in two keratinocyte line cells, HaCaT and FEPE1L-8.</a> Regenerative Therapy. 8, 73-79 (2018).</li><li>Kaur, P., McDougall, J. K., Cone, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immortalization+of+primary+human+epithelial+cells+by+cloned+cervical+carcinoma+DNA+containing+human+papillomavirus+type+16+E6/E7+open+reading+frames.">Immortalization of primary human epithelial cells by cloned cervical carcinoma DNA containing human papillomavirus type 16 E6/E7 open reading frames.</a> Journal of General Virology. 70, 1261-1266 (1989).</li><li>Kaur, P., Carter, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrin+expression+and+differentiation+in+transformed+human+epidermal+cells+is+regulated+by+fibroblasts.">Integrin expression and differentiation in transformed human epidermal cells is regulated by fibroblasts.</a> Journal of Cell Science. 103, 755-763 (1992).</li><li>Fujisaki, H., Adachi, E., Hattori, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Keratinocyte+differentiation+and+proliferation+are+regulated+by+adhesion+to+the+three-dimensional+meshwork+structure+of+type+IV+collagen.">Keratinocyte differentiation and proliferation are regulated by adhesion to the three-dimensional meshwork structure of type IV collagen.</a> Connective Tissue Research. 49 (6), 426-436 (2008).</li><li>Hirose, M., Kosugi, H., Nakazato, K., Hayashi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Restoration+to+a+quiescent+and+contractile+phenotype+from+a+proliferative+phenotype+of+myofibroblast-like+human+aortic+smooth+muscle+cells+by+culture+on+type+IV+collagen+gels.">Restoration to a quiescent and contractile phenotype from a proliferative phenotype of myofibroblast-like human aortic smooth muscle cells by culture on type IV collagen gels.</a> Journal of Biochemistry. 125, 991-1000 (1999).</li><li>Yonemura, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+Sensitivity+of+Epithelial+Cells+to+Extracellular+Matrix+in+Polarity+Establishment.">Differential Sensitivity of Epithelial Cells to Extracellular Matrix in Polarity Establishment.</a> Plos One. 9, 112922 (2014).</li><li>Sato, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Possible+Involvement+of+Aminotelopeptide+in+Self-assembly+and+Thermal+Stability+of+Collagen+I+as+Revealed+by+Its+Removal+with+Proteases.">Possible Involvement of Aminotelopeptide in Self-assembly and Thermal Stability of Collagen I as Revealed by Its Removal with Proteases.</a> Journal of Biological Chemistry. 275 (33), 25870-25875 (2000).</li><li>Nakazato, K., Muraoka, M., Adachi, E., Hayashi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gelation+of+lens+capsule+type+IV+collagen+solution+at+a+neutral+pH.">Gelation of lens capsule type IV collagen solution at a neutral pH.</a> Journal of Biochemistry. 120, 889-894 (1996).</li><li>Hattori, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Type+I+-Type+IV+collagen+hybrid+gel.">Type I -Type IV collagen hybrid gel.</a> European patent. , (2015).</li><li>Henriet, P., Zhong, Z. D., Brooks, P. C., Weinberg, K. I., DeClerck, Y. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contact+with+fibrillar+collagen+inhibits+melanoma+cell+proliferation+by+up-regulating+p27KIP1.">Contact with fibrillar collagen inhibits melanoma cell proliferation by up-regulating p27KIP1.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (18), 10026-10031 (2000).</li><li>Liu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+levels+of+reactive+oxygen+species+in+murine+preadipocyte+3T3-L1+cells+cultured+on+type+I+collagen+molecule-coated+and+gel-covered+dishes+exert+opposite+effects+on+NF-&#954;B-mediated+proliferation+and+migration.">Differential levels of reactive oxygen species in murine preadipocyte 3T3-L1 cells cultured on type I collagen molecule-coated and gel-covered dishes exert opposite effects on NF-&#954;B-mediated proliferation and migration.</a> Free Radical Research. 28, 1-16 (2018).</li></ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikte.

Einige ECM-Komponenten, einschließlich Typ I Kollagen, Form dreidimensionaler Strukturen in-vivo-1. Kultivierung auf eine dreidimensionale, Gel-Substrat bietet mehr physiologischen Bedingungen in Vitro als auf eine zweidimensionale, Kunststoff Oberfläche1,2,3,4. Zahlreiche Protokolle über die Gel-Kultur-Methode berichtet, wie die Verwendung von Typ I Kollagen1,2,3,4,6,7, 11, Typ IV Kollagen14,15und Matrigel16. Typ I-Kollagen ist eine klar definierte und am weitesten verbreiteten Material wegen seiner Fülle und einfache Handhabung. Die Merkmale des gereinigten Typ ich Kollagen hängen von der tierischen Art, Alter und Reinigung Methoden5,17. Typ I-Kollagen kann mit Essigsäure und/oder Proteasen, wie Pepsin, Papain und Proctase5,17gereinigt werden. Säure-lösliches Kollagen behauptet, amino-Telopeptides und Protease-lösliches Kollagen sind gespalten amino-Telopeptides5,17. Die reservierten Länge des amino-Telopeptides hängt von der Art der Proteasen, und das Vorhandensein von Telopeptides betrifft Fibrille Morphologie und gel Stärke5,17. Die Viskosität der Säure-lösliches Kollagen-Fibrillen ist größer als die der Protease behandelt kollagene17. In dieser Studie verwendeten wir Säure löslich Rinder Typ I Kollagen. Pepsin solubilisiert Kollagen kann auch in diesem Gel-Kultur-Protokoll verwendet werden; Allerdings ist die Gelstärke schwächer17. Diese Unterschiede in den Materialien können Zelle Verhaltensunterschiede verursachen, aber sie sind derzeit nicht bekannt.
Das Gel-Kultur-Protokoll in dieser Studie beschriebenen ist sehr einfach. Viele Modifikationen dieser Methode sind berichtet worden. Eine mögliche Änderung für die Kultur der Keratinozyten soll der Basalmembran imitieren. Typ IV Kollagen Gele möglicherweise besser, eine Basalmembran-wie Substrat-Struktur in vitro-15,18zu halten. Eine lange Inkubationszeit ist jedoch erforderlich für die Zubereitung von Typ IV Kollagen Gel14,15,18. Stattdessen mischen Typ IV Kollagen mit Typ I Kollagen Gele können neuartige Kultursubstrate produzieren (Typ I / Typ IV Kollagen Hybrid Gele)19. Diese Hybrid-Gele sind leicht zu handhaben, erfordern eine kurze Zeit für die Gelierung und Ertrag mehr Basalmembran-ähnlichen Bedingungen für Keratinozyten. Auf Typ I / Typ IV Kollagen Hybrid Gele, Keratinozyten überleben, bilden Kolonien und terminal Differenzierung19zu induzieren. Diese Hybrid-Methode verfügt über vielseitige Einsatzmöglichkeiten.
Kultur auf Gel mit Typ I Kollagen wirkt sich Krebszellen. Die Fibrille Form des Typ-I-Kollagen, Akt Aktivierung und Wachstum von Caco-2 Zellen (ein Doppelpunkt Krebs Zell-Linie) sind unterdrückte7. Darüber hinaus wird das Wachstum der menschlichen Melanomzellen (M24met) auf die Fibrille Form bei der G1/S-Checkpoint-20verhaftet. Darüber hinaus werden deutlich erhöhte Spiegel von reaktiven Sauerstoffspezies in murinen 3 t 3-L1 Präadipozyten kultiviert die Fibrille Form beobachtet. Darüber hinaus Zell-Proliferation und Migration werden in entgegengesetzte Richtungen stimuliert, durch die nicht-faserigen und Fibrille Formen des Typ-I-Kollagen21.

Interstitielle Bindegewebe bilden ein dreidimensionales Protein Geflecht aus heterogenen Zusammensetzung, hauptsächlich bestehend aus Typ ich Kollagen-Fibrillen-1. Kollagen-Fibrillen spielen eine wichtige Rolle als Gerüst für Zellen1,2,3 und interagieren mit anderen extrazellulären Matrix (ECM) Proteine3. In-vitro-, verschiedene Formen von Typ I-Kollagen eignet sich als Substrate für die Zellkultur abhängig von den Umgang mit Methode1,2,3,4. Unter sauren Bedingungen, Typ I Kollagen unterhält nicht faserigen Form5. Beschichten der Oberfläche der Kultur Gerichte mit nicht-faserigen Form fördert Zelle Adhäsion und Verbreitung6,7. Bei physiologischen pH-Wert und Temperatur, Typ I Kollagenmoleküle wieder zusammenbauen in Fibrillen, die bilden Gele besitzen eine dreidimensionale Struktur1,2,3,4, 5,6,7,8. Es gibt einige wichtige Unterschiede zwischen der Fibrille und nicht faserigen Formen vom Typ ich Kollagen, einschließlich Matrix Steifigkeit und Effizienz des Wiederaufbaus des ECM-Komponenten durch die Zellen in der Kultur-1. Matrix-Steifigkeit ist eines der am besten untersuchten regulatorische Faktoren der Zelle Kultur1, 9. Allerdings müssen die komplexen Wechselwirkungen zwischen Substraten und Zellen noch geklärt werden. Um die komplexen Wechselwirkungen zwischen Zellen und Umweltfaktoren zu untersuchen, ist ein einfaches System nützlich. Vergleich des zellulären Verhaltens auf die zwei verschiedenen Formen von Kollagen kann helfen, um die Wirkung von Umweltfaktoren zu vereinfachen. Je nach dem Zweck ihrer Verwendung, verschiedene Formen des Typs ich kann Kollagen selektiv verwendet werden. Normalerweise Keratinozyten stehen in Kontakt mit der Basalmembran, aber nicht mit Typ I Kollagen. Jedoch bei der Wundheilung, Keratinozyten verschieben das dermale Bindegewebe, vermehren sich und heilt die Wunde10.
Vor kurzem, wir gezeigt, dass die Konzentration des extrazellulären Calcium wichtig für die Proliferation von Keratinozyten ist Linie Zellen durch Verwendung von Kultur über die Fibrille Form des Typ-I-Kollagen imitiert die dermale Bindegewebe11. Wenn die Keratinozyten-Zell-Linie, die FEPE1L-8 die Fibrille Form kultiviert wurde Typ I Kollagen, die Form der Zellen war rund und ihre Proliferationen an eine extrazelluläre Calcium-Konzentration von 30 μM11gestoppt wurden. Wenn die Calcium-Konzentration bis 1,8 mM erhöht wurde, war Zellwachstum wiederhergestellten11. Die Zellen wuchsen unter beiden Kalzium-Konzentrationen (30 μM und 1,8 mM) als auf die nicht-faserigen Form11, kultiviert, während sie empfindlicher auf die exogene Calcium-Konzentration, wenn auf dem Formular Fibrille kultiviert wurden. FEPE1L-8 wurde generiert durch Transfektion mit dem Papillomavirus Typ 16 verwandelnde Genen E6 und E7 von menschlichen zervikalen Karzinom, tumorigenic, hemmen unbegrenzte Verbreitung mit begrenzten Differenzierungspotenzial wie normale Keratinozyten 12,13. FEPE1L-8 Zellen können gepflegt werden, mit einigen Arten von Keratinozyten spezifisches Medium, einschließlich K110 Typ-II mit Additiven Ergänzung k-1 (K110)6. Hier beschreiben wir das Kultur-Protokoll von der menschlichen Keratinozyten-Zell-Linie auf die nicht-faserigen und Fibrille Formen des Typ-I-Kollagen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1096px;" width="1094">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Albumin, from bovine serum (BSA)</td>
			<td style="width:253px;">Merck KGaA</td>
			<td style="width:127px;">A4503</td>
			<td style="width:315px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">1 % BSA&#160;</td>
			<td style="width:253px;">Merck KGaA</td>
			<td style="width:127px;">A4503</td>
			<td>Dissolve 1 g of BSA powder in 100 mL of PBS (-) and filtrate&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cell Counting Kit-8</td>
			<td>Dojindo Molecular Technologies, Inc.</td>
			<td>347-07621</td>
			<td>tetrazolium salt, 2-(2-methoxy-4-nitrophenyl)-3-(4-nitrophenyl)-5-(2,4-disulfophenyl)-2H&#160;tetrazolium, monosodium salt (WST-8)&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Collagen type I (Acid soluble collgen)</td>
			<td>Nippi Inc.</td>
			<td>ASC-1-100-20</td>
			<td>from bovine (any other species available, concentration is 3.0 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">disposable membrane filter unit DISMIC cellulose acetate</td>
			<td>ADVANTEC Co., LTD.</td>
			<td>25CS020AS</td>
			<td>0.2 &#181;m pore size</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">human keratinocyte line cell&#160; FEPE1L-8</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#160;Donated Dr.W.G. Carter (Fred Hutchinson Cancer Research Center, Seattle, WA)&#160;&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">K-1</td>
			<td style="width:253px;">Kyokuto Seiyaku Inc.</td>
			<td style="width:127px;">28204</td>
			<td>additive supplement with 500 mg of BSA, 500 mg of bovine pituitarybody extracts, 2.5 mg of insulin, 0.05 &#181;g of h-EGF and 5 mg of heparin</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">K110 Type-II medium</td>
			<td>Kyokuto Seiyaku Inc.</td>
			<td>28204</td>
			<td>keratinocyte basal culture medium&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:401px;">K110 Type-II medium with K-1 and Penicillin-Streptomycin (K110)</td>
			<td style="width:253px;">Kyokuto Seiyaku Inc.</td>
			<td style="width:127px;">28204</td>
			<td>Add 5 mL of Penicillin-Streptomycin and 10 mL of additive supplement (K-1) in 500 mL of K110 type-II keratinocyte basal culture medium&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">PBS (-)&#160;</td>
			<td style="width:253px;">Merck KGaA</td>
			<td style="width:127px;">P-5368</td>
			<td>Dissolve 1 pouch of PBS (-) powder in 1000 mL of deionized water and filtrate&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">10x PBS (-)</td>
			<td style="width:253px;">Merck KGaA</td>
			<td style="width:127px;">P-5368</td>
			<td>Dissolve 1 pouch of PBS (-) powder in 100 mL of deionized water and filtrate&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>MP Biomedicals, LLC</td>
			<td>1670049</td>
			<td>10000 units/mL of penisillin G and 10,000&#956;g/mL of streptmycin sulfate in physiological saline</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:401px;">Phosphate bufferred saline BioPerformance CertiCertified, pH 7.4</td>
			<td style="width:253px;">Merck KGaA</td>
			<td style="width:127px;">P-5368-10 pack</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Trypsin from porcine pancreas</td>
			<td>Merck KGaA</td>
			<td>T4799</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">0.05 % trypsin&#160;</td>
			<td style="width:253px;">Merck KGaA</td>
			<td style="width:127px;">T4799</td>
			<td>Dissolve 0.25 g of&#160; trypsin and&#160; 0.186 g of EDTA.2Na in 500 mL of PBS (-)&#160; and filtrate&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Trypsin inhibitor from soybean</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical corporation</td>
			<td>202-20123</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Trypsin inhibitor&#160;</td>
			<td>FUJIFILM Wako Pure Chemical corporation</td>
			<td>202-20123</td>
			<td>Dissolve 50 mg of trypsin inhibitor and 500 mg of BSA in 500 mL of PBS (-) and filtrate&#160;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

evaluation of keratinocyte proliferation on two- and three-dimensional type i collagen substrates

Typ I-Kollagen, nützlich als Substrat für die Zellkultur, existiert in zwei Formen: die zweidimensionale, nicht faserigen Form und Fibrille Dreidimensionalität. Beide Formen zubereitet werden, mit dem gleichen Typ I Kollagen. In der Regel fördert nicht faserigen Form Zelladhäsion und Verbreitung. Die Fibrille Form (Gele) bietet mehr physiologischen Bedingungen in vielen Arten von Zellen; Daher eignet sich Gel Kultur für physiologische Verhalten von Zellen, wie die Wirksamkeit von Medikamenten zu prüfen.
Forscher können das entsprechende Formular nach dem Zweck ihrer Verwendung auswählen. Im Falle von Keratinozyten, hat zum Beispiel auf Gel Kultur als ein Modell der Wundheilung eingesetzt. FEPE1L-8, eine Keratinozyten-Zelllinie kultiviert auf nicht-faserigen Form des Typs ich Kollagen, Zelladhäsion fördern. Insbesondere ist die Keratinozyten Verbreitung langsamer auf die Fibrille Form als nicht-faserigen Form. Protokolle für die Zubereitung von Typ I Kollagen für Zellkultur sind einfach und haben breite Anwendungen abhängig von den experimentellen Anforderungen.

Eine schematische Darstellung der Behandlung der Oberflächen von Kultur Gerichte mit Typ I Kollagen ist in Abbildung 1dargestellt. Zelle Morphologien auf die nicht-faserigen und Fibrille Formen beobachtet werden jeweils in den linken und rechten Seite von Abbildung 2, vorgestellt. FEPE1L-8 Zellen wurden für 2 h (oberen Platten) und 3 Tage (untere Platten) kultiviert. In den ersten 2 h der Kultivierung der Zellen eingehalten und auf beide Formen von Kollagen (Abbildung 2, oberen Platten) verteilen. Drei Tage nach der Aussaat, Zellen auf nicht-faserigen Form weiterhin verbreiten und Handy-Nummern erhöht (Abbildung 2, unten links). Im Gegensatz dazu zeigten die Zellen auf die Fibrille Form begrenzten Verbreitung (Abbildung 2, unteren rechten Bereich). FEPE1L-8 Zellen weiterhin vermehren sich auf nicht-faserigen Form des Typs ich Kollagen (Abbildung 3, durchgezogene schwarze Linie geschlossen schwarze Kreise) und auf die unbehandelte Schale Oberflächen (Abbildung 3, gepunktete graue Linie, geschlossene graue Kreise). Im Gegensatz dazu Zellen nicht auf die Fibrille Form (Abbildung 3, gepunktete Linie, offenen Kreise) vermehren. Abbildung 2 und Abbildung 3 wurden von Fujisaki Et Al11geändert.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59339/59339fig1v2.jpg"> Abbildung 1 : Schematische Darstellungen der Kultur Gericht Oberflächen behandelt mit Kollagen. Unter sauren Bedingungen Typ I Kollagen, die Moleküle adsorbiert werden auf der Oberfläche eines Gerichtes in nicht-faserigen Form (linken). Unter neutralen Bedingungen bei 37 ° C Typ I Kollagen Moleküle sind in Fibrillen zusammengesetzt und adsorbiert an der Oberfläche der Gerichte in Gelform (rechte Abbildung). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59339/59339fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59339/59339fig2.jpg"> Abbildung 2 : Morphologie der Zellen der FEPE1L 8. FEPE1L-8 Zellen in K110 wurden kultiviert, mit dem nicht-faserigen Formular (10 µg/mL; linke Paneele) oder Fibrille Form (1 mg/mL; richtigen Platten) von Typ I-Kollagen für 2 h (oberen Platten) oder 3 Tage (untere Platten). Weiße Balken 100 µm. Abbildung 2 wurde geändert von Fujisaki Et Al. in Abbildung 1-E-H-11. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59339/59339fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59339/59339fig3v3.jpg"> Abbildung 3 : Proliferation der Zelle FEPE1L-8. Die Anzahl der lebensfähigen Zellen wurden geschätzt, auf die nicht-faserigen Form (durchgezogene schwarze Linie, schwarz gefüllte Kreise) oder auf die Fibrille Form (gepunktete Linie, offener Kreis) von Typ I Kollagen oder unbehandelte Schale Oberflächen (graue gepunktete Linie, Grau gefüllte Kreise) für 2 Stunden, 1 Tag und 3 Tage. Experimente wurden durchgeführt, in Triplicates und Werte als Mittel + SD dargestellt Diese Zahl wurde von Fujisaki Et Al. in Abbildung 1J11geändert. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59339/59339fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>

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Evaluation of Keratinocyte Proliferation on Two- and Three-dimensional Type I Collagen Substrates

Hier präsentieren wir ein Protokoll für die Zubereitung von zwei verschiedenen Formen der Kultursubstrate nutzen Typ I Kollagen. Je nach mit Kollagen Umgang Kollagenmoleküle entweder zweidimensionale, nicht faserigen Form beibehalten oder wieder zusammenbauen in Fibrille Dreidimensionalität. Zellproliferation auf Typ I Kollagen ist drastisch Fibrille Bildung betroffen.

Bewertung der Keratinozyten Verbreitung auf zwei- und dreidimensionale Typ I Kollagen Substrate

Type I collagen, useful as a substrate for cell culture, exists in two forms: the two-dimensional, non-fibrous form and three-dimensional, fibril form. ...

Dieses Video zeigt, wie zwei verschiedene Arten von Zellkultursubstraten mithilfe von Kollagen typ I und einer zweidimensionalen und dreidimensionalen Kulturmethode vorbereitet werden. Die dreidimensionale Kulturmethode wird als biologische Umgebung betrachtet, was zeigt, wie man leicht ein dreidimensionales Kultursubstrat vorbereitet, ist für Studien nützlich. In zahlreichen Zelltypen variiert das Zellverhalten trotz der Verwendung des gleichen Kollagens erheblich zwischen zwei- und dreidimensionalen Substraten.Mit Hilfe des dreidimensionalen Kultursubstrats könnte das Zellverhalten, das dem von lebenden Organismen ähnlicher ist, leicht untersucht werden. Diese Methode ist sehr einfach und erfordert minimale spezielle Reagenz. Visuelle Demonstration ist wichtig, denn während wir zeigen wollen, dass diese Methode leicht versucht werden kann, ist das dreidimensionale Gel zerbrechlich, und die richtige Handhabung ist sehr wichtig.Zu Beginn bereiten Sie das entsprechende Kulturmedium vor. Um mit der Vorbereitung des Kollagens zu beginnen, legen Sie 10x PBS, entionisiertes Wasser, Kollagen, eine 96-Well-Kulturplatte und eine leere Zwei-Milliliter-Röhre auf Eis. Mit einer Pipette 1,12 Milliliter entionisiertes Wasser in das leere Zwei-Milliliter-Rohr geben.Fügen Sie dem entionisierten Wasser 200 Mikroliter 10x PBS hinzu und schütteln Sie das Rohr mehrmals vorsichtig. Unmittelbar vor der Anwendung 0,66 Milliliter Kollagen in die Zwei-Milliliter-Röhre geben. Schütteln Sie die Röhre vorsichtig und schnell mehrmals.Gießen Sie 100 Mikroliter dieser Kollagenlösung in jeden Brunnen der 96-Well-Kulturplatte und decken Sie die gesamte Oberfläche der Brunnen ab. Schütteln Sie die Platte vorsichtig mit einer Bewegung von links nach rechts. Inkubieren Sie die Kulturplatte in einem Kohlendioxid-Inkubator bei 37 Grad Celsius für eine Stunde.Dann kippen Sie die Platte, um die Gelation des Kollagens zu bestätigen, und bewegen Sie die Kulturplatte auf eine saubere Bank. Gießen Sie 150 Mikroliter K110 vorsichtig auf die Gele, indem Sie entlang der Wand des Brunnens pfeifen. In einem Kohlendioxid-Inkubator bei 37 Grad Celsius für eine Stunde inkubieren.Danach bewegen Sie die Kulturplatte auf eine saubere Bank. Unmittelbar vor der Zellkultur verwenden Sie eine Pipette, um den K110 vorsichtig zu entsorgen. Verwenden Sie zunächst eine Pipette, um vier Mikroliter Kollagen zu 1,2 Milliliter einer Millimolaren Salzsäure in einem 1,5-Milliliter-Rohr hinzuzufügen, und mischen Sie es vorsichtig.Gießen Sie 100 Mikroliter dieser Kollagenmischung in jeden Brunnen einer neuen 96-Well-Kulturplatte. Schütteln Sie die Platte vorsichtig in einer Bewegung von links nach rechts und bebrüten Sie bei Raumtemperatur eine Stunde lang. Danach entsorgen Sie die Kollagenlösung.Mit einer Pipette, waschen Sie jeden gut mit PBS. Fügen Sie 150 Mikroliter 1%BSA und PBS zu jedem Brunnen der Kulturplatte hinzu und brüten Sie bei Raumtemperatur für eine Stunde. Verwerfen Sie vor der Zellkultur die 1%BSA-Lösung.Bereiten Sie zunächst die FEPE1L-8-Zellen und die K110-, Trypsin- und Trypsin-Inhibitoren wie im Textprotokoll beschrieben vor. Entfernen Sie vorsichtig das Medium aus der Kulturschale, und verwenden Sie eine Pipette, um drei Milliliter 0,05%Trypsin hinzuzufügen. Legen Sie die Schale wieder in den Kohlendioxid-Inkubator und brüten Sie bei 37 Grad Celsius für fünf Minuten.Verwenden Sie dann die Phasenkontrastmikroskopie bei 10-facher Vergrößerung, um die Zellablösung von der Oberfläche der Kulturschale zu überprüfen. Fügen Sie drei Milliliter Trypsin-Inhibitor hinzu, und verwenden Sie eine Pipette, um die abgetrennten Zellen in einem 15-Milliliter-Zentrifugenrohr zu sammeln. Zentrifuge bei 200 mal g für fünf Minuten.Danach den Überstand entsorgen und das Pellet in 10 Milliliter K110 wieder aufhängen. Verwenden Sie die Phasenkontrastmikroskopie bei 10-facher Vergrößerung, um die Zellen zu zählen, und verdünnen Sie die Zellen mit K110 auf eine Zelldichte von 50 000 Zellen pro Milliliter. Saugen 0,1 Milliliter der Zellsuspension in jeden Brunnen der Kulturplatte, indem sie entlang der Wand des Brunnens pfeifen.In kubieren Inkubation in einem Kohlendioxid-Inkubator bei 37 Grad Celsius für die entsprechende Dauer. Mischen Sie zunächst 130 Mikroliter Tetrazoliumsalz und WST-8 mit 1,3 Millilitervorgeheiztem K110 in einem Zwei-Milliliter-Rohr. Bewegen Sie die Kulturplatte auf eine saubere Bank und verwenden Sie eine Pipette, um die K110 vorsichtig aus den Brunnen zu entsorgen.Mit K110 sanft wegwaschen und nicht haftende Zellen. Dann fügen Sie 110 Mikroliter K110 gemischt mit WST-8 zu jedem Brunnen. In einem Kohlendioxid-Inkubator bei 37 Grad Celsius für zwei Stunden inkubieren.Danach bewegen Sie die Kulturplatte auf eine saubere Bank. Sammeln Sie 100 Mikroliter des konditionierten Mediums aus jedem Brunnen und bewegen Sie es in die Brunnen einer neuen 96-Well-Kulturplatte. Messen Sie mit einem Mikroplattenleser die Absorption von 450 Nanometern und schätzen Sie die Anzahl lebensfähiger Zellen.Die Zellmorphologie wird auf den nichtfaserigen und fibrillen Formen beobachtet. In den ersten zwei Stunden der Kultivierung haften und verbreiten sich die Zellen auf beiden Formen von Kollagen. Drei Tage nach der Aussaat breiten sich die Zellen auf der nichtfaserigen Form weiter aus, und die Zellzahlen nehmen zu, während die Zellen auf der fibrilen Form eine begrenzte Ausbreitung aufweisen.FEPE1L-8-Zellen vermehren sich weiterhin auf der nichtfaserigen Form von Kollagen Typ I und auf den unbehandelten Schalenoberflächen. Im Gegensatz dazu vermehren sich die Zellen nicht auf der fibrilen Form. Beim Versuch dieses Verfahrens ist es wichtig, sich daran zu erinnern, dass das dreidimensionale Gel sehr zerbrechlich ist.Man muss aufpassen, dass die Lösung oder die Spitzen nicht direkt mit den Gelen in Berührung kommen. Diese Methode kann auf vielfältige Weise geändert werden. Um beispielsweise die Membrankomponenten der Probe zu mischen, kann man ein Zellkultursubstrat herstellen, das eine Kellermembran imitiert.In zahlreichen Fällen sind die Funktionen der extrazellulären Matrix in lebenden Körpern unbekannt. Um Zellen in der dreidimensionalen Kultur zu kulturieren, kann man die Funktion der extrazellulären Matrixkomponente untersuchen, die dem lebenden Körper ähnlicher ist. Durch die Anwendung dreidimensionaler Gelkulturtechniken kann man effektiv die Konzentration von Medikamenten in Zellen testen.Dieses Aufderatrat könnte verwendet werden, um komplexe dreidimensionale Kultursubstrate zu entwickeln, indem andere EGM-Komponenten oder Wachstumsfaktoren während der Gelationen gemischt werden.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Three-dimensional Optical-resolution Photoacoustic Microscopy

Dreidimensionale Optische Auflösung photoakustische Mikroskopie

Optical microscopy, providing valuable insights at the cellular and organelle levels, has been widely recognized as an enabling biomedical technology. As ...

Forschung

Biotechnik

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Alginat Hydrogele für Three-Dimensional Organ Culture der Eierstöcke und Eileitern

Ovarian cancer is the fifth leading cause of cancer deaths in women and has a 63% mortality rate in the United States1. The cell type of origin for ...

Creating Two-Dimensional Patterned Substrates for Protein and Cell Confinement

Erstellen Zweidimensionale Patterned Substrate für Protein-und Zell-Confinement

Microcontact printing provides a rapid, highly reproducible method for the creation of well-defined patterned substrates.1  While microcontact printing ...

Planar and Three-Dimensional Printing of Conductive Inks

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Printed electronics rely on low-cost, large-area fabrication routes to create flexible or multidimensional electronic, optoelectronic, and biomedical ...

Three-dimensional Cell Culture Model for Measuring the Effects of Interstitial Fluid Flow on Tumor Cell Invasion

Dreidimensionale Zellkultur-Modell zur Messung der Auswirkungen der interstitiellen Flüssigkeit Flow auf Tumorzellinvasion

The growth and progression of most solid tumors depend on the initial transformation of the cancer cells and their response to stroma-associated signaling ...

Cell Patterning on Photolithographically Defined 
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Cell Patterning on Photolithographically Defined 
Parylene-C: SiO2 Substrates

Musterbildung auf Photolithographische Definierte Parylene-C: SiO<sub&gt; 2</sub&gt; Substrate

Cell patterning platforms support broad research goals, such as construction of predefined in vitro neuronal networks and the exploration of certain ...

An Improved Method for the Preparation of Type I Collagen From Skin

Ein verbessertes Verfahren zur Herstellung von Typ I-Kollagen aus der Haut

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Dreidimensionale Biomimetic Technologie: Neuartige Biorubber Erzeugt definierte Mikro- und Makro-Skala Architekturen in Collagen Hydrogele

Tissue scaffolds play a crucial role in the tissue regeneration process. The ideal scaffold must fulfill several requirements such as having proper ...