Name: an orthotopic endometrial cancer model with retroperitoneal lymphadenopathy made from in vivo propagated and cultured vx2 cells
Uploaded: 2019-09-12T12:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about An Orthotopic Endometrial Cancer Model with Retroperitoneal Lymphadenopathy Made From In Vivo Propagated and Cultured VX2 Cells at JoVE.com

Deze studie werd gefinancierd door het Terry Fox Research Institute (PPG # 1075), het Canadian Institute of Health Research (Foundation Grant #154326), het Canadian Cancer Society Research Institute (704718), natuurwetenschappen en ingenieurs Onderzoekraad van Canada, Stichting сanada voor innovatie en Prinses Margaret Cancer Foundation.
Ik wil Dr. Marguerite Akens bedanken voor het leveren van de initiële VX2 cellen voor de oprichting van het oorspronkelijke VX2 model en de bevroren VX2 tumor blokken. Ik wil Marco DiGrappa bedanken voor het helpen bij het uitvoeren van initiële VX2 Cell Culture experimenten en Lili ding voor het helpen met VX2 celcultuur.

Diepe buikwand sluiting: Identificeer de Apex van de peritoneale incisie en pak het peritoneum, rectus spier en fascia met weefsel Tang. Alle dierproeven zijn uitgevoerd in een Animal Resource Center (ARC) goedgekeurde faciliteiten van het universitair gezondheidsnetwerk en in overeenstemming met de goedgekeurde protocollen voor dieren gebruik en zorg (AUP #3994/#4299). VX2 cellijn werd verkregen uit het lab van Dr. Aken in het universitair gezondheidsnetwerk.
1. creatie van in vitro VX2 cellijn...

Hierin hebben we een gestandaardiseerde chirurgische methode voor de oprichting van een VX2 endometriumkanker model gerapporteerd en gerapporteerd over het eerste gebruik van gekweekte VX2 cellen om dit model te maken. De tumor nemen tarief van 75% is lager dan de 100% percentage eerder gerapporteerd in de literatuur35,37,53,56; echter, thw 90% snelheid van pathologisch bevestigde lymfeklier me...

Endometriumkanker, of kanker van de bekleding van de baarmoeder, is de tweede meest voorkomende gynecologic maligniteit wereldwijd en de meest voorkomende maligniteit in ontwikkelde landen1. De incidentie van endometriumkanker is gestaag toegenomen en stijgt met 2,3% per jaar tussen 2005-2013 en een overeenkomstige toename van 2,2% in sterfte1,2,3. De diagnose van lymfeklier metastasen is van het grootste belang omdat de aanwezigheid van positieve lymfeklieren een sterke negatieve voorspeller is van overleving4,5,6,7 en kan leiden tot de toediening van adjuvante therapie8,9,10,11,12,13. Lymfeklier metastasen worden momenteel gediagnosticeerd door chirurgisch verwijderen van het lymfeweefsel boven de grote bloedvaten in het bekken en de buik. Deze procedure, bekend als een lymfadenectomie, is controversieel als gevolg van conflicterende overlevings gegevens van twee grote proeven14,15,16,17,18 en de bekende risico van intra-operatieve15,19,20 en postoperatieve morbiditeit21,22,23. Aangezien de huidige niet-invasieve beeldvormings modaliteiten niet de vereiste gevoeligheid en specificiteit hebben om lymfeklier dissectie24te vervangen, is er een duw geweest om nieuwe diagnostische beeldvormingstechnieken te ontwikkelen. Om deze nieuwe technieken te testen in een pre-klinische setting, is een betrouwbaar model van endometriumkanker met retroperitoneale lymfeklier metastasen vereist.
Het konijn VX2 tumor model is een gevestigde model dat uitgebreid is gebruikt voor het bestuderen van meerdere menselijke solide orgel tumoren25 met inbegrip van Long26, hoofd ennek 27,28, lever29, nier30, bot31,32, hersenen33, alvleesklier34 en baarmoeder35,36,37. Het VX2 model werd oorspronkelijk ontwikkeld in 1940 door Kidd en Rous38 door het succesvol verplanten van een Cottontail konijn papillomavirus virus ontdekt door shope in 193339. Sinds die tijd is het VX2-model in vivo gehandhaafd, waarbij seriële passage in de quadriceps spier van witte Nieuw-Zeelandse konijnen40nodig is. Meer recent echter, meerdere groepen hebben succesvol gegroeid VX2 cellen in vitro40,41,42 en toonde de behouden tumorigenecity van de gekweekte cellijn lijn31, 42,43. VX2 tumoren zijn histologisch gedefinieerd als anaplastisch plaveiselcel carcinomen44 en bevatten klierweefsel kenmerken die lijken op adenocarcinoom26. Tumoren worden gekenmerkt door het gemak van implantatie, snelle groei en Hyper-vasculariteit44,45 en betrouwbaar metastasize, meestal op regionale en verre lymfeklieren45. Overeenkomsten in de baarmoeder vasculaire en lymfatische anatomie46 evenals de orthotopic groeiplaats zorgen ervoor dat het metastatische patroon van konijn VX2 carcinoom dat van humaan endometriumkanker nabootst, waardoor het VX2 model een betrouwbaar model is voor het bestuderen van menselijke gemetastaseerde ziekte. Bovendien suggereren histologische kenmerken zoals abnormale microvasculaire proliferatie47 , evenals immunologische48 en genetische gelijkenissen49,50 tussen mensen en konijnen dat de tumor micro-omgeving kan weerspiegelen die van humaan endometriumkanker.
Meerdere groepen hebben gerapporteerd over het gebruik van VX2 te maken van een model van endometriumkanker met retroperitoneale metastasen met een hoge gerapporteerde succespercentage36,51,52; Er bestaat echter een aanzienlijke variatie in de huidige literatuur met respect voor de methode van model creatie. Cel schorsing doses zo laag als 4 x 105 cellen/baarmoeder hoorn51 en zo hoog als 5 x 109 cellen/baarmoeder hoorn37,53 zijn gemeld met geen standaard consensus over de vereiste VX2 cellulaire dosis. Ook is er een verscheidenheid aan inoculatie methoden gemeld, waaronder micro-chirurgische implantatie van tumor in de baarmoeder myometrium36, injectie van VX2 celsuspensie37,44,52 , 53 en in sommige gevallen, de toevoeging van baarmoeder hoorn voorafgaand aan de en52. Ten slotte hebben geen groepen het gebruik van gekweekte VX2 cellen gemeld om dit model te maken. Het doel van deze studie is dus om een succesvolle gestandaardiseerde methode van VX2 model creatie te demonstreren en het eerste gebruik van gekweekte VX2 cellen te rapporteren om een model van endometriumkanker met retroperitoneale metastasen in een konijn te creëren.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>11-blade scalpel, Sterile, Disposible</td>
			<td>Aspen Surgical (VWR)</td>
			<td>80094-086</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22-gague ear vein catheter</td>
			<td>CDMV</td>
			<td>14332</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 absorbable poly-filament suture (Polysorb)</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>356718</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 braided absorbable suture (Polysorb)</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>356718</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>70uM cell strainer, Individually wrapped, Nylon</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>352350</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acepromazine (Atravet)</td>
			<td>CDMV</td>
			<td>1047</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine soap (Poviodone iodine 7.5%)</td>
			<td>CDMV</td>
			<td>4363</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine solution (Poviodone iodine 10%)</td>
			<td>UHN Stores</td>
			<td>457955</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>McGill University</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cefazolin</td>
			<td>UHN in-patient pharmacy</td>
			<td>No Cat # Needed</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidine solution</td>
			<td>CDMV</td>
			<td>119872</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning BioCoatCellware, Collagen Type I, 100mm dishes</td>
			<td>Corning</td>
			<td>354450</td>
			<td>brand not important</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning BioCoatCellware, Collagen Type I, 24-well plates</td>
			<td>Corning</td>
			<td>354408</td>
			<td>brand not important</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning BioCoatCellware, Collagen Type I, 6-well plates</td>
			<td>Corning</td>
			<td>354400</td>
			<td>brand not important</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning Matrigel Basement Membrane Matrix, *LDEV-free, 10 mL</td>
			<td>Corning</td>
			<td>354234</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM/HAM F12 1:1</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>11320</td>
			<td>brand not important</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMSO</td>
			<td>Caledon Lab Chem</td>
			<td>1/10/4100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrofloxacin (Baytril injectable)</td>
			<td>CDMV</td>
			<td>11242</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon Tube</td>
			<td>Corning Centri-Star</td>
			<td>430828</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum, Qualified, Canadian Origin, 500ml</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>12483020</td>
			<td>brand/source not important</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>UHN in-patient pharmacy</td>
			<td>No Cat # Needed</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isohexol contrast</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>407141210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Meloxicam (Metacam 0.5%)</td>
			<td>CDMV</td>
			<td>104674</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Normal Saline</td>
			<td>House Brand (UofT Medstore)</td>
			<td>1011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Multicell or Sigma</td>
			<td>331-010-CL or D8537-500mL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/Streptomycin (100mL; 10000U Penicillin, 10000ug Streptomycin)</td>
			<td>Corning-Cellgro</td>
			<td>CA45000-652</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Hanks Balanced Salt Solution (-Ca++, -Mg++, -Phenol Red)</td>
			<td>T.C.M.F (Dr Bristow)</td>
			<td>28-Jan-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Glue (Tissue Adhesive)</td>
			<td>3M Vetbond</td>
			<td>14695B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin (0.25%), Proteomics Grade</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T-6567-5X20UG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA, 0.05%, 100ml</td>
			<td>Wisent Inc</td>
			<td>325-542-EL</td>
			<td>brand not important</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

an orthotopic endometrial cancer model with retroperitoneal lymphadenopathy made from in vivo propagated and cultured vx2 cells

Endometriumkanker is de meest voorkomende gynecologic maligniteit in Noord-Amerika en de incidentie stijgt wereldwijd. De behandeling bestaat uit chirurgie met of zonder adjuvante therapie, afhankelijk van de lymfeklier-betrokkenheid zoals bepaald door lymfadenectomie. Lymfadenectomie is een morbide procedure, waarvan niet is aangetoond dat het een therapeutisch voordeel heeft bij veel patiënten, en daarom is een nieuwe methode vereist om lymfeklier metastasen te diagnosticeren. Om nieuwe beeldvormings middelen te testen, is een betrouwbaar model van endometriumkanker met retroperitoneale lymfeklier metastasen nodig. Het VX2 endometriumkanker model is vaak beschreven in de literatuur; Er bestaat echter een aanzienlijke variatie met betrekking tot de methode van model inrichting. Bovendien, geen studies hebben gemeld over het gebruik van gekweekte VX2 cellen om dit model te maken als alleen cellen die zijn gekweekt in vivo eerder zijn gebruikt. Hierin presenteren we een gestandaardiseerde chirurgische methode en post-operatieve bewakingsmethode voor de oprichting van het VX2 endometriumkanker model en rapporteren over het eerste gebruik van gekweekte VX2 cellen om dit model te maken.

Achtentwintig konijnen werden gebruikt voor de creatie van het endometriumkanker model. Konijnen hadden een gemiddeld gewicht van 2,83 kg (2.71-3.58 kg) op het moment van het experiment. Baarmoeder tumoren succesvol gegroeid in 21 konijnen voor een algemeen model succespercentage van 75%. Voordat de baarmoeder in het protocol werd opgenomen, bedroeg het slagingspercentage 57% in vergelijking met 81% na toevoeging van baarmoeder-hechten. Baarmoeder hechten werd toegevoegd aan het protocol ...

Watch this Scientific Journal Video about An Orthotopic Endometrial Cancer Model with Retroperitoneal Lymphadenopathy Made From In Vivo Propagated and Cultured VX2 Cells at JoVE.com

An Orthotopic Endometrial Cancer Model with Retroperitoneal Lymphadenopathy Made From In Vivo Propagated and Cultured VX2 Cells

Dit protocol presenteert een gestandaardiseerde methode om te groeien VX2 cellen in de cultuur en om een orthotopic VX2 model van endometriumkanker met retroperitoneale lymfeklier metastasen bij konijnen te creëren. Orthotopic endometriumkanker modellen zijn belangrijk voor de pre-klinische studie van nieuwe beeldvormings modaliteiten voor de diagnose van lymfeklier metastasen.

Een Orthothematisch endometriumkanker model met Retroperitoneale lymfadenopathie gemaakt van in vivo gepropageerd en gekweekte VX2 cellen

Endometrial cancer is the most common gynecologic malignancy in North America and the incidence is rising worldwide. Treatment consists of surgery with or ...

Dit VX2 endometrium kankermodel met retroperitoneale lymfekliermetastase kan worden gebruikt om technologie te bestuderen voor beeldgeleide chirurgie. De belangrijkste voordelen van deze techniek zijn dat het betrouwbaar, eenvoudig is, en dat het consistente uitgezaaide verspreiding creëert, die het patroon van menselijke endometriumkanker nabootst. Over het algemeen is dit een eenvoudige techniek.Echter, het beoefenen van de hechting voorafgaand aan een poging om het model te maken zal helpen om het proces gemakkelijker te maken. Visuele demonstratie van deze techniek is belangrijk, omdat het helpt om de chirurgische stappen die betrokken zijn bij modelinrichting aan te tonen. Het aantonen van de procedure met Harley Chan en ik zal Lili Ding zijn, een technicus van ons laboratorium.Om in vitro-gepropageerde VX2-cellen voor te bereiden op injectie, begin met het opwarmen van bevroren flacons van VX2-cellen in een 37 graden Celsius-kraal of waterbad gedurende een minuut. Wanneer de cellen ontdooid zijn, trek de cel suspensies in een 15-milliliter buis met 10 milliliter cultuurmedium. Sediment de cellen door centrifugatie.Resuspend de pellet in negen milliliter van medium. Breng de cellen over naar een grote kweekkolf voor incubatie bij 37 graden Celsius zonder te schudden, waardoor de cellen dagelijks worden gecontroleerd op samenvloeiing door lichtmicroscopie. Wanneer de cellen 80% samenvloeiing hebben bereikt, voeg drie milliliter van 0,2% trypsine toe aan de kolf en breng de cellen gedurende vijf minuten terug naar de celkweek incubator.Wanneer de cellen zijn losgemaakt, breng de celsuspensie naar een conische buis om de cellen te verzamelen door middel van centrifugatie. Was de celpellet drie keer met negen milliliter verse PBS per wasbeurt. Na de laatste wasbeurt, resuspend de cellen in verse PBS voor het tellen alvorens te verdunnen tot een vier keer 10 tot de zeven VX2 cellen per milliliter van PBS concentratie in een nieuwe conische buis op ijs.Om in vivo-gepropageerde VX2 cellen voor injectie voor te bereiden, ontdooi bevroren één voor één-centimeter VX2 tumorblokken en gebruik een scalpel om de weefselsteekproeven in een cultuurplaat te hakken. Breng de weefselfragmenten over naar een filter van 70 micrometer en voeg kleine aliquots toe van maximaal een milliliter van Hanks gebalanceerde zoutoplossing, of HBSS, om ervoor te zorgen dat alle cellen door de zeef worden doorgegeven. Tel vervolgens de cellen voordat u de celsuspensie verdunt tot één keer 10 tot de zeven VX2-cellen per milliliter HBSS-concentratie in een steriele buis op ijs.Na het bevestigen van een gebrek aan reactie op stimulus, plaats het verdoofde vrouwelijke witte konijn van Nieuw Zeeland in de dorsale positie op de werkende lijst. Clip het haar over het bekken en de buik, en gebruik een drie stappen chirurgische huid prep om de blootgestelde huid schoon te maken. Het dragen van een chirurgische pet en gezichtsmasker, schrobben de handen met ontsmettingsmiddel voor het aantrekken van een steriele jurk en steriele chirurgische handschoenen.Landmark de bovenkant van de schaambeen en draperen het chirurgische veld met laparotomie gordijnen, waardoor een vijf bij vijf centimeter gebied van de onderbuik blootgesteld. Gebruik vervolgens een nummer 11 scalpelblad om een incisie van 2,5 centimeter een centimeter craniaal te maken naar de symphysis-pubis door middel van huid en onderhuids weefsel. Snij de rectus fascia en ontleden de rectusspieren lateraal om het onderliggende buikvlies bloot te leggen.Bevestig dat de onderoppervlak vrij is van darm- of andere buikorganen. Voer scherp het buikvlies in om de urineblaas te identificeren en veeg een gehandschoende vinger superieur, posteriorly, en lateraal over de top van de blaas om de baarmoederhoorns te lokaliseren. Haal de baarmoederhoorns door de buikincisie om op de buikwand te rusten.Gebruik een 3-0 gevlochten absorbeerbare hechting om een enkele hechting ligatie van elke baarmoeder hoorn uit te voeren, ongeveer 1,5 tot twee centimeter distaal aan de cervices en gewoon mediaal aan de baarmoeder slagaders. Bind vervolgens de hechtingen stevig vast om de distale baarmoederhoorns op te nemen. Om het myometrium in te enten met de eerder voorbereide VX2-celoping, laadt u een spuit van één milliliter uitgerust met een naald van 27 meter met één milliliter cellen.Injecteer langzaam 0,5 milliliter van de celsuspensie gedurende een minuut in elke baarmoederhoorn proximale naar de hechtplaats tussen de hechting en de baarmoederhals. Breng vervolgens gedurende 30 seconden druk uit op de myometrial injectieplaats om cellekkage te minimaliseren. Inspecteer de injectie- en hechtingsplaatsen op hemostase voordat u de baarmoederhoorns terug in de buik plaatst.Voor diepe buikwandsluiting, identificeer de top van de buikvliesincisie en gebruik een chirurgische klem om de buikvlies rectusspier en fascia te grijpen. Veranker de hechting door het plaatsen van een 3-0 opneembare polyfilament hechting, oppervlakkig tot diep op de ene top van de incisie, en diep te oppervlakkig op de andere. Met behulp van de bijgevoegde hechting, maak lopende steken loodrecht op de incisie door de lagen van de buikwand, werken stap-wijs langs de incisie van links naar rechts voor het binden van de hechting en het snijden van de losse eindjes.Voor oppervlakkige buikwandsluiting, gebruik maken van een begraven lopen subcuticulaire 3-0 opneembare polyfilament hechting te hechten diep tot oppervlakkig aan de ene kant van de incisie en oppervlakkig te diep op de andere. Na het knopen van de hechtingen, gebruik maken van de verankerde hechtingen om lopende steken in de huidlaag parallel aan de incisie te maken, werken stap-wijs langs de incisie van links naar rechts. Bind de hechtingen en verwijder de losse eindjes.Breng chirurgische lijm aan op de gesloten incisie om de huidranden te besmlijmen. Plaats het dier vervolgens op een warme deken met zuurstof en monitoring, totdat het dier alert is en zelfstandig kan zitten. Bij de vaststelling van dit model was een dosis van twee keer 10 tot de zeven cellen per baarmoederhoorn succesvol bij vier konijnen, in een gemiddelde tijd van 45 dagen van inenting tot experiment en werd dus bepaald als de optimale injectiedosis voor het gekweekte VX2-model.Voor het in vivo gepropageerde VX2-model, dat met succes werd gemaakt bij 16 konijnen met een gemiddelde tijd van inenting tot experiment van 29 dagen, werd vijf keer 10 tot de zes cellen per baarmoederhoorn bepaald als de optimale injectiedosis. Alle modellen resulteerden in een succesvolle gemetastasieke transformatie van de retroperitoneale lymfeklieren. Verder, tumoren en gemetastaseerde lymfeklieren uit gekweekte VX2 cellen leek vergelijkbaar met tumoren uit in vivo-gepropageerde VX2 cellen door histologische analyse, met densymetoxolin-gekleurde cellen waargenomen in de binnenvallende spier en het vormen van klierachtige structuren met vele pathologische mytotische figuren.Plaats uw hechting mediaal aan de baarmoederslagader om te voorkomen dat bloeden uit een vat punctie en zorg ervoor dat de cellen te infiltreren in het myometrium en niet de endometriumholte. Zorg ervoor dat u tijdens de modelcreatie de juiste steriele techniek gebruikt om postoperatieve infectie te voorkomen en uzelf tijdens de operatie te beschermen met het bariummateriaal.

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Fluorescent Orthotopic Mouse Model of Pancreatic Cancer

Fluorescerende orthotope Muis Model van pancreaskanker

Pancreatic cancer remains one of the cancers for which survival has not improved substantially in the last few decades. Only 7% of diagnosed patients will ...

Murine Experimental Model of Original Tumor Development and Peritoneal Metastasis via Orthotopic Inoculation with Ovarian Carcinoma Cells

Murine Experimental Model of Original Tumor Development and Peritoneal Metastasis via Orthotopic Inoculation with Ovarian Carcinoma Cells

Murine Experimental Model van de oorspronkelijke tumor Ontwikkeling en peritoneale metastase<em&gt; via</em&gt; Orthotope Inenting met ovariumcarcinoom Cells

Epithelial ovarian carcinoma (EOC) is associated with a poor prognosis because it shows peritoneal dissemination. To improve the prognosis, it is ...

Isolation of Circulating Tumor Cells in an Orthotopic Mouse Model of Colorectal Cancer

Isolatie van circulerende tumorcellen in een orthotopische muismodel van colorectale kanker

Despite the advantages of easy applicability and cost-effectiveness, subcutaneous mouse models have severe limitations and do not accurately simulate ...

Development of a Human Preclinical Model of Osteoclastogenesis from Peripheral Blood Monocytes Co-cultured with Breast Cancer Cell Lines

Ontwikkeling van een menselijke preklinische Model van Osteoclastogenesis uit perifeer bloed monocyten mede gekweekt met borst kanker cellijnen

The crosstalk between tumor cells and bone cells in the bone microenvironment is crucial to understanding the mechanism of bone metastasis formation. We ...

An In Vivo Murine Sciatic Nerve Model of Perineural Invasion

An In Vivo Murine Sciatic Nerve Model of Perineural Invasion

Een In Vivo lymfkliertest Ischiaszenuw Model van Perineural invasie

Cancer cells invade nerves through a process termed perineural invasion (PNI), in which cancer cells proliferate and migrate in the nerve ...

Immunophenotyping of Orthotopic Homograft (Syngeneic) of Murine Primary KPC Pancreatic Ductal Adenocarcinoma by Flow Cytometry

Immunophenotyping of Orthotopic Homograft Syngeneic of Murine Primary KPC Pancreatic Ductal Adenocarcinoma by Flow Cytometry

Immunophenotyping van Orthotopic Homograft (Syngeneic) van de alvleesklier ductaal adenocarcinoom lymfkliertest primaire KPC door Stroom Cytometry

Homograft (syngeneic) tumors are the workhorse of today&#39;s immuno-oncology (I/O) preclinical research. The tumor microenvironment (TME), particularly ...

Development and Angiographic Use of the Rabbit VX2 Model for Liver Cancer

Ontwikkeling en het gebruik van de Angiographic van het konijn VX2 Model voor leverkanker

The rabbit VX2 tumor is an animal model commonly utilized for translational research regarding hepatocellular carcinoma (HCC) in the field of ...

Spatial and Temporal Control of Murine Melanoma Initiation from Mutant Melanocyte Stem Cells

Ruimtelijke en temporele controle van muizen melanoom initiatie van mutant melanocyt stamcellen

Cutaneous melanoma is well known as the most aggressive skin cancer. Although the risk factors and major genetic alterations continue to be documented ...

Studying Triple Negative Breast Cancer Using Orthotopic Breast Cancer Model

Studeren Triple Negatieve Borstkanker met behulp van Orthotopische Borstkanker Model

Triple-negative breast cancer (TNBC) is an aggressive breast cancer subtype with limited therapeutic options. When compared to patients with less ...

An Orthotopic Resectional Mouse Model of Pancreatic Cancer

Een orthotopisch resectiemuismodel van alvleesklierkanker

There is a lack of satisfactory animal models to study adjuvant and/or neoadjuvant therapy in patients being considered for surgery of pancreatic cancer ...