Name: automated 3d optical coherence tomography to elucidate biofilm morphogenesis over large spatial scales
Uploaded: 2019-08-21T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Automated 3D Optical Coherence Tomography to Elucidate Biofilm Morphogenesis Over Large Spatial Scales at JoVE.com

Nous remercions Mauricio Aguirre Morales pour sa contribution au développement de ce système.  Le soutien financier est venu de la Fondation nationale suisse pour la science à T.J.B.

1. Configuration de l'appareil de positionnement
<ol><li>Câblez le dispositif de positionnement à un tableau de microcontrôleur, suivant l'instruction en https://github.com/grbl/grbl/wiki/Connecting-Grbl.</li>
	<li>Connectez le microcontrôleur à un ordinateur à une seule carte avec connexion Internet via un câble USB et installez le serveur GRBL tel que décrit dans https://gitlab.com/FlumeAutomation/GRBL_Server.git. Maintenant, le dispositif de positionnement doit être navigable à partir d'une page Web héber...

<ol>
	<li>Flemming, H. C., Wingender, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+biofilm+matrix.">The biofilm matrix.</a> Nature reviews. Microbiology. 8, 623-633 (2010).</li><li>Flemming, H. -. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biofilms:+an+emergent+form+of+bacterial+life.">Biofilms: an emergent form of bacterial life.</a> Nature reviews. Microbiology. 14, 563 (2016).</li><li>Stoodley, P., Lewandowski, Z., Boyle, J. D., Lappin-Scott, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oscillation+characteristics+of+biofilm+streamers+in+turbulent+flowing+water+as+related+to+drag+and+pressure+drop.">Oscillation characteristics of biofilm streamers in turbulent flowing water as related to drag and pressure drop.</a> Biotechnology and Bioengineering. 57, 536-544 (1998).</li><li>Stoodley, P., Lewandowski, Z., Boyle, J. D., Lappin-Scott, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+formation+of+migratory+ripples+in+a+mixed+species+bacterial+biofilm+growing+in+turbulent+flow.">The formation of migratory ripples in a mixed species bacterial biofilm growing in turbulent flow.</a> Environmental microbiology. 1, 447-455 (1999).</li><li>Banin, E., Vasil, M. L., Greenberg, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Iron+and+Pseudomonas+aeruginosa+biofilm+formation.">Iron and Pseudomonas aeruginosa biofilm formation.</a> Proceedings of the Natural Academy of Sciences U.S.A. 102, 11076-11081 (2005).</li><li>Battin, T. J., Besemer, K., Bengtsson, M. M., Romani, A. M., Packmann, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ecology+and+biogeochemistry+of+stream+biofilms.">The ecology and biogeochemistry of stream biofilms.</a> Microbiology. 14, 251-263 (2016).</li><li>Battin, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microbial+landscapes:+new+paths+to+biofilm+research.">Microbial landscapes: new paths to biofilm research.</a> Nature Reviews. Microbiology. 5, 76-81 (2007).</li><li>Neu, T. R., Lawrence, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Innovative+techniques,+sensors,+and+approaches+for+imaging+biofilms+at+different+scales.">Innovative techniques, sensors, and approaches for imaging biofilms at different scales.</a> Trends in Microbiology. 23, 233-242 (2015).</li><li>Meleppat, R. K., Shearwood, C., Seah, L. K., Matham, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+optical+coherence+microscopy+for+the+in+situ+investigation+of+the+biofilm.">Quantitative optical coherence microscopy for the in situ investigation of the biofilm.</a> J. of Biomedical Optics. 21 (12), 127002 (2016).</li><li>Wagner, M., Horn, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+coherence+tomography+in+biofilm+research:+A+comprehensive+review.">Optical coherence tomography in biofilm research: A comprehensive review.</a> Biotechnology and Bioengineering. 114, 1386-1402 (2017).</li><li>Huang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+coherence+tomography.">Optical coherence tomography.</a> Science. 254, 1178-1181 (1991).</li><li>Haisch, C., Niessner, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualisation+of+transient+processes+in+biofilms+by+optical+coherence+tomography.">Visualisation of transient processes in biofilms by optical coherence tomography.</a> Water Resources. 41, 2467-2472 (2007).</li><li>Drexler, W., Fujimoto, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Optical Coherence Tomography: Technology and Applications. , (2008).</li><li>Fercher, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+coherence+tomography+&#8211;+development,+principles,+applications.">Optical coherence tomography &#8211; development, principles, applications.</a> Zeitschrift f&#252;r Medizinische Physik. 20, 251-276 (2010).</li><li>Lee, H. -. C., Liu, J. J., Sheikine, Y., Aguirre, A. D., Connolly, J. L., Fujimoto, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrahigh+speed+spectral-domain+optical+coherence+microscopy.">Ultrahigh speed spectral-domain optical coherence microscopy.</a> Biomedical Optics Express. , 41236-41254 (2013).</li><li>Fortunato, L., Leiknes, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In-situ+biofouling+assessment+in+spacer+filled+channels+using+optical+coherence+tomography+(OCT):+3D+biofilm+thickness+mapping.">In-situ biofouling assessment in spacer filled channels using optical coherence tomography (OCT): 3D biofilm thickness mapping.</a> Bioresource Technology. 229, 231-235 (2017).</li><li>Niederdorfer, R., Peter, H., Battin, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Attached+biofilms+and+suspended+aggregates+are+distinct+microbial+lifestyles+emanating+from+differing+hydraulics.">Attached biofilms and suspended aggregates are distinct microbial lifestyles emanating from differing hydraulics.</a> Nature Microbiology. 1, 16178 (2016).</li><li>Roche, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Benthic+biofilm+controls+on+fine+particle+dynamics+in+streams.">Benthic biofilm controls on fine particle dynamics in streams.</a> Water Resources. 53, 222-236 (2016).</li><li>Fortunato, L., Jeong, S., Wang, Y., Behzad, A. R., Leiknes, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+approach+to+characterize+fouling+on+a+flat+sheet+membrane+gravity+driven+submerged+membrane+bioreactor.">Integrated approach to characterize fouling on a flat sheet membrane gravity driven submerged membrane bioreactor.</a> Bioresource Technology. 222, 335-343 (2016).</li><li>Morgenroth, E., Milferstedt, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biofilm+engineering:+linking+biofilm+development+at+different+length+and+time+scales.">Biofilm engineering: linking biofilm development at different length and time scales.</a> Reviews in Environmental Science and Bio/Technology. 8, 203-208 (2009).</li></ol>

L'imagerie OCT est bien adaptée pour résoudre les structures de la gamme micrométrique avec un FOV de plusieurs millimètres carrés. C'est donc un outil puissant pour la recherche biofilm10,18. Cependant, l'OCT est actuellement limité à une surface d'analyse maximale de 100 à 256 mm2,tandis que les modèles structurels du biofilm dépassent souvent cette échelle spatiale19, surtout lorsque la différenciation morphologiq...

Les biofilms sont une adaptation microbienne très réussie du mode de vie et ces communautés de micro-organismes associées à l'interphase et fermées par matrice dominent la vie microbienne dans les milieux naturels et industriels1,2. Là, les biofilms forment des architectures complexes, telles que les banderoles allongées3, ondulations4 ou les bouchons en forme de champignon5 avec des conséquences importantes pour la croissance des biofilms, la stabilité structurelle et la résistance au stress6. Bien que beaucoup de choses sur la différenciation structurelle des biofilms aient été tirées des travaux sur les cultures mono-espèces cultivées dans des chambres à débit miniatures, la plupart des biofilms sont des communautés très complexes, y compris souvent des membres de tous les domaines de la vie6. Apprécier ces biofilms complexes comme des paysages microbiens7 et comprendre comment la structure et la fonction des biofilms interagissent dans des communautés complexes est donc à l'avant-garde de la recherche sur les biofilms.
Une compréhension mécaniste de la morphogénèse de biofilms complexes en réponse à des indices environnementaux nécessite des expériences soigneusement conçues en conjonction avec des observations spatialement et temporellement résolues de la structure physique du biofilm à travers les échelles8. Cependant, l'observation non destructive de la croissance des biofilms dans les systèmes expérimentaux a été sévèrement limitée par des contraintes logistiques telles que la nécessité de déplacer des échantillons (par exemple, au microscope) endommageant souvent la structure délicate du biofilm.
Le protocole présenté ici introduit un système entièrement automatisé basé sur la tomographie de cohérence optique (OCT), qui permet la surveillance in situ et non invasive de la morphogénèse du biofilm à l'échelle méso-métrique (portée mm). OCT est une technique d'imagerie émergente dans la recherche sur les biofilms avec des applications dans le traitement de l'eau et la recherche sur le biofouling, la médecine9 et l'écologie des cours d'eau10. Dans OCT, une source lumineuse à faible cohérence est divisée en un échantillon et un bras de référence; l'interférence de la lumière réfléchie et dispersée par le biofilm (bras d'échantillon) et la lumière du bras de référence est analysée. Une série de profils d'intensité axiale (A-scans) qui contient des informations structurelles résolues en profondeur est acquise et fusionnée en une analyse B (une section transversale). Une série de B-scans adjacents compose le dernier balayage de volume 3D10. OCT fournit une résolution optique latérale de l'ordre d'environ 10 m et est donc bien adapté pour étudier la différenciation structurale mésoscopique des biofilms10,12. Pour une description plus détaillée de l'OCT, consultez Drexler et Fujimoto13et Fercher et ses collègues14. Bien que le champ de vision d'un seul tCO xy-scan atteigne jusqu'à des centaines de micromètres carrés, les modèles à plus grande échelle ne peuvent pas être quantifiés au moyen de l'OCT dans un seul balayage. En ce qui concerne les biofilms dans les habitats naturels tels que les cours d'eau et les rivières, cela limite actuellement notre capacité d'évaluer la morphogénèse du biofilm à des échelles correspondant au modèle physique et hydraulique de l'habitat.
Afin de dépasser ces limites spatiales et d'acquérir automatiquement des scans OCT, une sonde d'imagerie OCT de domaine spectral a été montée sur un système de positionnement à 3 axes. L'installation permet l'acquisition de plusieurs scans OCT dans un motif de mosaïque qui se chevauche (analyse de tuiles), réalisant efficacement l'imagerie tomographique des surfaces jusqu'à 100 cm2. En outre, la haute précision de positionnement de ce système permet de surveiller de manière fiable la croissance et le développement des caractéristiques des biofilms dans des sites spécifiques au cours d'expériences à long terme. Le système est modulaire et les composants individuels (c.-à-d., dispositif de positionnement et OCT) de l'installation peuvent être utilisés comme solutions autonomes ou combinés avec souplesse. La figure 1 donne un aperçu des composants durs et logiciels de l'installation.
Le système a été testé avec un dispositif de positionnement CNC contrôlé par GRBL (Tableaudes matériaux). Les distances de fonctionnement de cette plate-forme de positionnement spécifique sont de 600 à 840 x 140 mm, avec une précision indiquée par le fabricant de 0,05 mm et une résolution programmable de 0,005 mm. GRBL est un open-source (licence GPLv3), un contrôle de mouvement haute performance pour CNC Dispositifs. Par conséquent, chaque appareil de positionnement basé sur GRBL (version '1.1) doit être compatible avec les lignes directrices et les progiciels présentés ici. En outre, le logiciel pourrait être adapté à d'autres contrôleurs stepmotor avec le type d'entrée STEP-DIR avec peu de modifications.
Le dispositif OCT utilisé pour évaluer les performances du système (Tableau des matériaux) dispose d'une source lumineuse à faible cohérence avec une longueur d'onde centrale de 930 nm (bande passante de 160 nm) et une longueur et une intensité de référence réglables. Dans l'exemple présenté ici, un adaptateur d'immersion pour plonger la sonde OCT dans l'eau qui coule a également été utilisé (Tableau des matériaux). Le logiciel développé ici pour l'acquisition automatisée de balayage OCT dépend de façon critique de la SDK fourni avec le système OCT spécifique, cependant, les systèmes OCT du même fabricant avec différentes lentilles d'analyse et longueurs d'onde centrales devraient être facilement compatibles.
L'appareil GRBL est contrôlé par un serveur web installé sur un ordinateur à seule carte (Figure 1). Cela permet de contrôler à distance l'appareil à partir de n'importe quel ordinateur avec un réseau local ou un accès à Internet. L'appareil OCT est contrôlé par un ordinateur séparé, permettant le fonctionnement du système OCT en dehors de la configuration expérimentale automatisée. Enfin, les progiciels comprennent des bibliothèques pour synchroniser le positionnement de la sonde OCT et l'acquisition d'un scan OCT (c.-à-d. pour acquérir automatiquement des ensembles de données d'imagerie 3D dans un modèle de mosaïque ou dans un ensemble de positions définies). Définir la position de la sonde OCT en 3D permet d'ajuster efficacement le plan focal spécifiquement pour les scans (régionaux). Plus précisément, sur des surfaces inégales, différents plans focaux (c.-à-d. différentes positions dans la direction z) peuvent être spécifiés pour chaque analyse OCT.
Un ensemble de progiciels a été développé pour traiter les scans D'OCT bruts (tableau1). La navigation du dispositif de positionnement, l'acquisition d'analyse OCT et le traitement des ensembles de données sont effectués avec des ordinateurs portables Jupyter codés python, ce qui permet une flexibilité remarquable dans le développement et l'optimisation du logiciel. Deux exemples travaillés et annotés de ces ordinateurs portables (pour l'acquisition et le traitement d'images, respectivement) sont disponibles à partir de https://gitlab.com/FlumeAutomation/automated-oct-scans-acquisition.git Ils sont destinés comme points de départ pour la personnalisation de la méthode. Un ordinateur portable Jupyter est une application basée sur le navigateur Web qui contient des cellules avec du code Python annoté. Chaque étape est contenue dans une cellule du carnet, qui peut être exécutée séparément. En raison de la longueur différente du chemin de lumière à travers la lentille de balayage (aberration sphérique)15, les scans BRUTs OCT semblent déformés (Figure 2A). Nous avons développé un algorithme pour corriger automatiquement cette distorsion dans les scans OCT acquis (contenu dans ImageProcessing.ipynb, Dossier supplémentaire 1). En outre, la morphologie des biofilms peut être visualisée comme une carte d'élévation 2D, comme cela a été utilisé précédemment dans les systèmes membranaires16, et nous illustrons comment les cartes d'altitude obtenues à partir de scans effectués dans un tableau de carrelage peuvent être cousues.
Enfin, la fonctionnalité de l'installation de laboratoire décrite est illustrée à l'aide d'une expérience de flume dans laquelle le biofilm de flux phototrophique est exposé à un gradient de vitesse d'écoulement.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:631px;" width="631">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">OCT Probe</td>
			<td style="width:129px;">Thorlabs</td>
			<td style="width:119px;">GAN210C1</td>
			<td style="width:167px;">OCT imaging device</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">OCT scan lens</td>
			<td style="width:129px;">Thorlabs&#160;</td>
			<td style="width:119px;">OCT-LK3-BB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Immersion adapter</td>
			<td style="width:129px;">Thorlabs&#160;</td>
			<td style="width:119px;">OCT-IMM3-SP1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Stepcraft 840 CK</td>
			<td style="width:129px;">STEPCRAFT</td>
			<td style="width:119px;">NA</td>
			<td>positioning device</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">microcontroller</td>
			<td style="width:129px;">Arduino Uno R3</td>
			<td style="width:119px;">NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Single-board computer</td>
			<td style="width:129px;">Raspberry PI</td>
			<td style="width:119px;">NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">camera</td>
			<td style="width:129px;">Canon EOS 7D Mark II</td>
			<td style="width:119px;">NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">camera lens</td>
			<td style="width:129px;">Canon MACRO EFS 35 mm</td>
			<td style="width:119px;">NA</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

automated 3d optical coherence tomography to elucidate biofilm morphogenesis over large spatial scales

Les biofilms sont un mode de vie microbien très réussi et prévalent dans une multitude de milieux environnementaux et d'ingénierie. Comprendre la morphogénèse du biofilm, c'est-à-dire la diversification structurelle des biofilms lors de l'assemblage communautaire, représente un défi remarquable à travers les échelles spatiales et temporelles. Ici, nous présentons un système automatisé d'imagerie biofilm basé sur la tomographie de cohérence optique (OCT). OCT est une technique d'imagerie émergente dans la recherche sur les biofilms. Cependant, la quantité de données qui peuvent actuellement être acquises et traitées entrave l'inférence statistique des modèles à grande échelle dans la morphologie des biofilms. Le système automatisé d'imagerie OCT permet de couvrir de grandes échelles spatiales et temporelles étendues de la croissance des biofilms. Il combine un système OCT disponible dans le commerce avec une plate-forme de positionnement robotique et une suite de solutions logicielles pour contrôler le positionnement de la sonde de balayage OCT, ainsi que l'acquisition et le traitement de jeux de données d'imagerie biofilm 3D. Cette configuration permet la surveillance automatisée in situ et non invasive du développement de biofilms et peut être développée pour coupler l'imagerie OCT avec la macrophotographie et le profilage des microcapteurs.

Nous démontrons la fonctionnalité du système automatisé d'imagerie OCT à l'aide d'une expérience de flume conçue pour étudier la morphogenèse spatio-temporelle des biofilms de flux phototrophiques. Une géométrie de rétrécissement progressif des flumes induits gradients de vitesse d'écoulement le long du centre de la canalisation (voir la référence17).  Le développement temporel et la différenciation structurelle du biofilm ont été surveillés pendant 18 jours dans le but de mieu...

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Automated 3D Optical Coherence Tomography to Elucidate Biofilm Morphogenesis Over Large Spatial Scales

Tomographie automatisée de cohérence optique 3D pour élucider la morphogénèse du biofilm sur de grandes échelles spatiales

Les biofilms microbiens forment des architectures complexes en interphases et se développent en modèles spatiaux très dépendants de l'échelle. Ici, nous introduisons un système expérimental (dur et logiciel) pour l'acquisition automatisée de jeux de données de tomographie de cohérence optique 3D (OCT). Cet ensemble d'outils permet la caractérisation non invasive et multi-échelle de la morphogénèse du biofilm dans l'espace et le temps.

Biofilms are a most successful microbial lifestyle and prevail in a multitude of environmental and engineered settings. Understanding biofilm ...

Nous présentons ici un système automatisé basé sur la tomographie par cohérence optique ou oct. Cela nous permet de surveiller la structure des biofilms sur de grandes échelles spatiales ou de longues périodes de temps. L’imagerie OCT est bien adaptée pour résoudre les structures de la gamme des micromètres, mais elle est actuellement limitée à une superficie maximale d’environ 250 millimètres carrés.Les biofilms dépassent souvent cette échelle, surtout lorsque la différenciation est entraînée par des gradients environnementaux à grande échelle. La configuration expérimentale nous permet de surveiller la morphogenèse tridimensionnelle des biofilms sur de grandes échelles spatiales et de longues périodes de temps. Le système est rapide, précis, et il fonctionne de façon autonome.Nous avons étudié la morphogenèse des biofilms dans les cours d’eau où ils conduisent d’importants processus écosystémiques. Cependant, le système peut être utilisé pour étudier les biofilms dans d’autres systèmes naturels ou environnements d’ingénierie. Le logiciel de positionnement, d’acquisition d’images et d’analyse est écrit dans Python.Ils sont disponibles via Jupyter Notebooks. Ce sont des solutions conviviales, disponibles gratuitement et flexibles. Nous croyons que la représentation visuelle de la configuration aide d’autres utilisateurs à reproduire l’installation et à mieux comprendre le logiciel.Nous espérons que cela inspirera d’autres chercheurs à adopter des approches similaires. Voici un aperçu de l’installation. Le système est composé d’un dispositif de positionnement de précision, la sonde OCT, et il est assemblé autour d’un flume en plexiglas.Commencez par câblage du dispositif de positionnement en suivant avec les instructions affichées sur GitHub. Une fois connecté, installez le serveur GRBL tel que décrit dans une page GitLab séparée. Système de positionnement peut maintenant être contrôlé à travers cette page Web;alternativement, il peut être contrôlé par un script Python comme indiqué dans l’exemple travaillé.Placez l’ordinateur et l’unité de base oct sur un banc à côté de la configuration expérimentale contenant des dispositifs microfluidiques, des chambres d’écoulement, des flumes ou des systèmes de filtration. S’il n’est pas déjà installé, installez le système OCT avec le logiciel disponible tel que décrit par le fabricant. Ensuite, installez les logiciels pour l’acquisition automatisée d’oct scan tel que décrit dans les documents GitLab liés à ici.Pour commencer l’acquisition d’images, montez la sonde de tomographie de cohérence optique sur le dispositif de positionnement à l’aide d’un support compatible en queue d’aronde. Si nécessaire, installez un adaptateur d’immersion sur l’objectif, puis ez de l’énergie sur le système OCT et le dispositif de positionnement. Ouvrez le logiciel oct commercial, localisez un site d’intérêt, concentrez-vous sur l’échantillon et ajustez le bras de référence et l’intensité de la source lumineuse pour une qualité d’image optimale.Notez les coordonnées et répétez cette procédure pour un certain nombre de positions tout en conservant la même longueur de bras de référence et l’intensité. Ouvrez l’Acquisition d’image. fichier ipynb trouvé dans le fichier supplémentaire 2 de cet article dans Jupyter Notebook.Chaque cellule contient du code pour effectuer des tâches spécifiques et peut être exécuté séparément via la cellule de pressage, puis exécuter ou contrôler et entrer ou déplacer et entrer. Suivez l’exemple travaillé pour définir le chemin vers les bibliothèques requises pour connecter le dispositif de positionnement pour calibrer le dispositif de positionnement pour paralyser le scanner OCT. Ajustez ensuite les paramètres d’acquisition, y compris l’indice réfractif, la taille du champ de vision et le nombre d’analyses A par analyse B.En outre, définissez les limites de signal de l’analyse OCT en fonction des histogrammes d’intensité des analyses préliminaires et du dossier de destination pour les données et métadonnées acquises. Selon le champ de vision et de résolution, la taille du fichier peut atteindre jusqu’à 1,5 gigaoctet par analyse OCT. Ces deux paramètres déterminent la taille des voxels dans l’ensemble de données final et la taille du fichier de sortie.Ils doivent correspondre à la résolution optique de la sonde OCT. Comme il est souligné dans l’exemple travaillé, vous pouvez acquérir une seule analyse OCT avec des paramètres par défaut ou acquérir un seul scan spécifier un ensemble différent de paramètres. Vous pouvez également fournir des coordonnées spécifiques pour déplacer l’appareil de positionnement et acquérir un seul scan OCT.Cette fonctionnalité vous permet de revenir à plusieurs reprises à la même position exacte dans l’expérience avec une grande précision spatiale. Les données sont enregistrées en 8bit. format brut pour économiser de l’espace de stockage.Les métadonnées, y compris les paramètres et coordonnées oct, sont enregistrées dans le même dossier dans un fichier json avec la même convention de nommage. Veuillez également spécifier une liste de positions d’intérêt et acquérir automatiquement les analyses OCT respectives. Afin de caractériser les structures morphologiques des biofilms à travers de grands gradients environnementaux, acquérir des scans dans un modèle de mosaïque.Pour cela, spécifiez le nombre de tuiles voisines avec un chevauchement par défaut de 30%Les scans oct bruts semblent déformés. Cela est dû à des différences dans la longueur du chemin à travers le système optique. Nous avons développé un algorithme qui corrige cette distorsion comme le montrent les exemples travaillés.Pour commencer la correction d’image, ouvrez l’ordinateur portable Jupyter ImageProcessing.ipynb. À la suite de cet exemple, prélifèrez d’abord les analyses oct afin d’exclure les signaux fallacieux et de réorienter l’ensemble de données de sorte que le biofilm apparaisse au-dessus du substrat. Prochain correct pour aberration sphérique.Pour ce faire, l’algorithme localise une surface plane hautement réfléchissante dans l’analyse OCT et l’utilise comme référence pour aplatir les scans. Sur une grille de 20 sur 20, l’algorithme identifie ensuite les maxima locaux dans l’intensité du signal pour localiser la surface de référence. Ensuite, une surface polynomiale de deuxième ordre est installée à travers ces points et utilisée pour déplacer chaque pixel de l’analyse OCT dans la direction Z.Les paramètres de cet algorithme doivent être ajustés aux caractéristiques de l’analyse OCT. Cette correction permet une surface de référence homogène sur plusieurs images et facilite ainsi la couture d’images à grande échelle. Une fois l’image aplatie, les images sont corrigées pour le bruit de fond en identifiant une zone vide de l’image au-dessus du biofilm et en soustrayant l’intensité moyenne du fond.Calculez ensuite une carte d’élévation à partir de l’ensemble de données OCT 3D. Pour ce faire, définissez une surface de référence telle que le substrat et choisissez un seuil d’intensité approprié. Ensuite, une carte d’élévation est rendue avec la hauteur du biofilm signalé comme valeur à échelle grise.Si les images ont été acquises dans un motif de mosaïque, coudre les cartes d’élévation respectives en appliquant l’algorithme de couture. À l’aide de la formation image automatisée d’OCT, la morphogenèse spatiotemporal des biofilms phototrophiques de flux a été examinée utilisant des expériences flume. Les flumes sont faits de plexiglas et s’élargissent progressivement de l’entrée à l’écoulement.Il en résulte un gradient de vitesse d’écoulement. Voici une carte d’élévation d’un biofilm qui pousse le long de tout le gradient de vitesse d’écoulement. Fait important, le système automatisé d’imagerie oct permet une mesure continue des paramètres structurels tels que l’épaisseur du biofilm, la rugosité et le biovolume dans des conditions d’écoulement différentes allant de la vitesse de faible débit aux conditions de vitesse à débit élevé.Avec des changements morphologiques, le biovolume moyen a diminué de manière significative en fonction de la distance de l’entrée dans le flume. La qualité des analyses OCT dépend de façon critique de la longueur du bras de référence et de la distance de mise au point. Vous devrez peut-être réajuster ce paramètre pendant les expériences.Pour assurer la précision du dispositif de positionnement, n’oubliez pas d’effectuer régulièrement des opérations d’homing. Ce dispositif d’imagerie automatisé peut être facilement couplé avec le profilage des microcapteurs pour une caractérisation fonctionnelle des biofilms. Oct est une technique d’imagerie émergente et nous prévoyons que le système présenté ici stimule la recherche sur la structure du biofilm.Cela peut être pertinent pour des technologies telles que le traitement de l’eau potable ou le biotraitement.

Research

JoVE Journal

Environment

Automated Gel Size Selection to Improve the Quality of Next-generation Sequencing Libraries Prepared from Environmental Water Samples

Sélection de la taille Gel automatisé pour améliorer la qualité des bibliothèques de séquençage de prochaine génération Préparé à partir d&#39;échantillons d&#39;eau de l&#39;environnement

Next-generation sequencing of environmental samples can be challenging because of the variable DNA quantity and quality in these samples. High quality DNA ...

Recherche

Environnement

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L&#39;utilisation d&#39;un système (fourrage vert) automatisé pour surveiller entérique méthane et de dioxyde de carbone Les émissions provenant de ruminants Animaux

Ruminant animals (domesticated or wild) emit methane (CH4) through enteric fermentation in their digestive tract and from decomposition of manure during ...

Using Pharmacological Manipulation and High-precision Radio Telemetry to Study the Spatial Cognition in Free-ranging Animals

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An animal&#39;s ability to perceive and learn about its environment plays a key role in many behavioral processes, including navigation, migration, ...

Biofilm Removal Using Carbon Dioxide Aerosols without Nitrogen Purge

Biofilm Enlèvement des Aérosols de dioxyde de carbone sans purge d&#39;azote

Biofilms can cause serious concerns in many applications. Not only can they cause economic losses, but they can also present a public health hazard. ...

Data Processing Methods for 3D Seismic Imaging of Subsurface Volcanoes: Applications to the Tarim Flood Basalt

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Tracking Infiltration Front Depth Using Time-lapse Multi-offset Gathers Collected with Array Antenna Ground Penetrating Radar

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