Name: enhanced rabies surveillance using a direct rapid immunohistochemical test
Uploaded: 2019-04-30T13:30:00
Duration: 8 min 58 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Enhanced Rabies Surveillance Using a Direct Rapid Immunohistochemical Test at JoVE.com

Biz şu anda veya daha önce geliştirilmiş kuduz gözetim örnekleri toplanan tüm USDA Wildlife Services personeli kabul ve kuduz tanı için DRIT gerçekleştirdi. Aynı şekilde, gelişmiş kuduz gözetim koleksiyonu ile bize yardımcı olan birçok koişletmecileri kabul ediyoruz. Ayrıca, DRıT yürütmek ve eğitim fırsatları sağlamak için gerekli kritik reaktiflere erişim için hastalık kontrol ve Önleme Merkezleri ve Wistar Enstitüsü 'ne teşekkür ederiz. Buna ek olarak, hastalık kontrol ve Önleme Merkezleri tarafından ve New York Devlet Sağlık Bakanlığı ile Wadsworth Center tarafından sağlanan teyit edilen teşhis ve teknik yardımları takdir ediyoruz. Herhangi bir ticari ürünün kullanımı sadece karşılaştırma amaçlıdır ve onay teşkil etmez.

Kuduz teşhis testi yapan her kişi, standart bir ön pozlama kuduz aşılama serisi almak ve gerektiğinde güçlendirici immünizasyon ile düzenli serolojik antikor değerlendirme geçmesi gerekir. Unimmünized bireyler laboratuvarları veya bu tür iş gerçekleştirildiği alanlara girmemelidir. Dokuların ve slaytların tüm manipülasyon sıvılar aerosolize veya havadan parçacıklar üretmek değil yapılmalıdır. Duman davlumbazları gerekli değildir, ancak uygulanabilir olduğunda kokular, ektoparasitler ve kemik parçalarından ekstra koruma sağlayabilir. Eldiven ve göz koruması da dahil olmak üzere minimum kişisel koruyucu ekipman, numune toplama ve test sırasında her zaman giyilmelidir.
1. beyin sapı koleksiyonu
<ol><li>İskelet koleksiyonlarının hemen üzerine beyin sapı örneklerini toplayın ya da daha sonra test edene kadar karcanların depolama için dondurucular yerleştirilmesini sağlayın. Hayvan karkas dondurulduysa, toplama kolaylığı için beyin sapı koleksiyonundan önce ortam sıcaklığında çözüler. Bazı durumlarda, örnekler doğrudan dondurulmuş bir hayvandan toplanır.</li>
	<li>
Taze toplanan ya da ortam sıcaklığına çözülür hayvanlar için, servikal omurga biraz muayene doğru döndürülmüş ile düz bir yüzey üzerinde hayvan sırtüstü konumlandırın. Servikal omurganın lateral yönü üzerinde atlanto-oksipital eklem tanımlamak için palp.
	<ol>
<li>Hala tamamen dondurulmuş olan karkas için, Eğer pratik, yukarıda açıklandığı gibi hayvan sırtüstü konumlandırın. Gövdenin kafasını tamamen ayırmak için testereler, bıçaklar, kemik makasları veya benzer ekipmanlar kullanın. Not: Tek seferlik kullanım olmayan tüm ekipmanlar örnekler arasında iyice temizlenmelidir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bir neşter Blade kullanarak, ventral açıdan atlanto-oksipital eklem seviyesinde bir kesi yapmak, kas ve yumuşak doku tüm katmanları ile kesme, trakea ve özofagus dahil. Servikal omurga vertebra anterior yönü yaklaşıncaya kadar devam edin. Dondurulmuş doku için, foramen magnum ortaya çıkarmak için kas ve yumuşak doku kalan tüm katmanları kaldırmak için bir neşter Blade kullanın.</li>
	<li>Beyin sapı görünür olana kadar hayvanın kafasını son Aralık uzantısına taşıyın. Örnekleme için tüm görünür beyin sapı/santral sinir sistemi (CNS) dokusunu kaldırmak için bir neşter bıçağı kullanın. Dondurulmuş bir örnek için, kafatası içinde mümkün olduğunca dondurulmuş beyin sapı/CNS dokusu kadar kaldırmak için bir neşter Blade kullanın.</li>
	<li>Beyin sapı örneklerini kırılmaz bir kapsayıcıya (örn. metal merhem kalay, Cryo-Vial vb.) yerleştirin ve buna göre etiketleyin.</li>
	<li>Test işleminden önce 24 saate kadar soğutucu (4 °C), veya dondurulmuş (-20 °C) test işleminden sonra 24 h 'den daha fazla yer alırsa, beyin sapı numunelerinin DRıTT testi ile toplama işleminden hemen sonra test edildiğinden emin olun.</li>
</ol>2. DRIT için malzemelerin hazırlanması
<ol><li>
10 slayt boyama yemekleri kurma (Şekil 1) Not: Boyama yemekleri slayt tam daldırma için izin vermek için yeterince derin (çapı 96 mm, yükseklik 72 mm, derinlik 42 mm, hacim 250 mL). 6<ol>
<li>Dolgu çanak 1 ile 10% fosfat tamponlu formalin. 2 test çalışır veya haftalık sonra formalin değiştirin.</li>
		<li>1% Tween-80 (TPBS) ile fosfat tamponlu tuzlu yemek 2, 4 ve 5 doldurun. Her testten önce taze TPBS ile değiştirin.</li>
		<li>3% hidrojen peroksit ile çanak 3 doldurun. Her testten önce hidrojen peroksit değiştirin.</li>
		<li>Damıtılmış veya deiyonize su ile 6, 8, 9 ve 10 çeşitleri doldurun. Her testten önce suyu değiştirin.</li>
		<li>Dolgu çanak 7 solungaçlar hematoksinlin formülasyonu ile #2 distile su içinde 1:1 oranında seyreltilmiş6. 2 test çalışır veya haftalık sonra hematoksilen değiştirin. Not: CDC12tarafından geliştirilen orijinal drit protokolüne göre, karşı boyama çok karanlık ise, bir 1:2, solungaçlar hematoksilen suya kullanılabilir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Amino-ethylcarbazole (AEC) stok çözeltisi hazırlanması
	<ol>
<li>Bir cam pipet kullanarak, bir cam kabında 5 mL N, N-dimethylformamid yerleştirin.</li>
		<li>Eklemek 1 20 mg tablet 3-amino-9-etylcarbazole ve Shake tamamen çözünmüş kadar. "AEC hisse senedi" ve stok yapıldı Tarih ile kavanoz etiket. Not: AEC stok çözeltisi soğutma (4 °C) altında saklanabilir ve 1-2 ay boyunca kullanılabilir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
AEC çalışma seyreltme hazırlığı
	<ol>
<li>15 mL santrifüjli tüpe 7 mL asetat tampon ekleyin.</li>
		<li>Cam Pipet kullanarak, santrifüj tüpüne AEC stok çözeltisi 0,5 mL ekleyin.</li>
		<li>Tüp% 3 hidrojen peroksit 0,075 mL ekleyin.</li>
		<li>0,45 μm şırınga filtresi kullanarak solüsyonu 10 mL şırıngayla filtreleyin. Not: Sadece 2-3 h için kararlı olduğu için AEC çalışma seyreltme her DRIT test hemen önce oluşturulmalıdır.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. doğrudan hızlı Immünhistokimya testi
<ol><li>
Etiket cam mikroskop slaytlar her numune için benzersiz bir sayı ile bir smear-Proof, su geçirmez, kalıcı mürekkep marker kullanarak.
	<ol>
<li>Bir neşter Blade kullanarak, kap ve yer kağıt havlu üzerinde beyin kaldırmak. Nazikçe sıvı, kan, ya da sadece beyin dokusu13ortaya çıkarmak için ikinci bir kağıt havlu ile kürk herhangi bir aşırı uzağa leke. Gerekirse, bir kesit ortaya çıkarmak için beyin sapı doku bölümü.</li>
		<li>Mikroskop kaydırağı çok nazikçe beyin sapı dokusunun çapraz kısmına dokunun. Birden fazla beyin sapı alanlarının slayt13' e aktarılmasına izin vermek için, lateral hareket olmadan çeşitli noktalarda beyin sapı slaytı dokunun. Sadece 1 veya 2 katman hücrelerin beyin dokusundan slayt için nazik bir dokunuş ile transfer olduğundan emin olun. Beyin sapı dokusunu slaytlara yapıştırmaları için montaj ajanı gerekmez. Her DRIT çalışmasına hem pozitif hem de negatif bir denetim ekleyin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Slaytlar oda sıcaklığında yaklaşık 5 dakika boyunca hava-kuru edelim.</li>
	<li>10 dakika (çanak 1) için% 10 tampon formalin içinde slaytlar batırın.</li>
	<li>Slaytları formalin 'den çıkarın ve TPBS çözümünde daldırma-durulayın (çanak 2).</li>
	<li>Slaytları 10 dakika (çanak 3) için% 3 hidrojen peroksit olarak batırın.</li>
	<li>Yeni TPBS (yemek 4) içinde hidrojen peroksit ve daldırma-durulama slaytlar çıkarın. Aşırı hidrojen peroksit kaldırdıktan sonra, yeni TPBS (çanak 5) slaytlar yerleştirin ve diğer slaytlar TPBS batırılmış kalırken bir defada bir slayt ile çalışır.</li>
	<li>Tpbs (yemek 5) bir defada bir slaytlar alın, kapalı ve leke aşırı tampon sallayın ve bir ' nem Odası ' temeli olarak, laboratuvar tezgah üzerinde bir nemlendirilmiş kağıt havlu üzerine yerleştirin. Bir pipet kullanarak, CNS dokusunu kapsayacak şekilde her slayda yeterli primer Anti-kuduz virüsü antikor bırakın. (Şekil 2) Oda sıcaklığında (yani, nemli kağıt havlu üzerinde döşenirken iyi plakaları veya diğer basit kapak ile kaydırarak kaplama) nem odasında 10 dakika boyunca slaytları inküye.</li>
	<li>Nem odasından slaytları çıkarın, aşırı Konjugat kapalı sallamak ve leke, ve daldırma-tpbs içinde slaytlar durulayın (yemek 5 aynı tpbs yeniden).</li>
	<li>Bir defada bir slayt ile çalışan, diğerleri TPBS batırılmış kalmak — CNS doku kapsayacak kadar streptavidin-peroksidan kompleks düşürmek için bir pipet kullanın. Oda sıcaklığında 10 dakika nem odasında inkübe.</li>
	<li>Nem odasından slaytları çıkarın, aşırı karmaşık kapalı sallamak ve leke, ve daldırma-tpbs (yemek 5) içinde slaytlar durulayın.</li>
	<li>Bir defada bir slayt ile çalışma, sallayın ve aşırı tampon leke, diğerleri tpbs batırılmış kalmak — yeterli AEC düşürmek için bir pipet kullanın (hazırlık yukarıda açıklanmıştır ve hemen önce kullanılması gereken) CNS doku kapsayacak şekilde. Oda sıcaklığında 10 dakika nem odasında inkübe.</li>
	<li>Daldırma-damıtılmış suda (çanak 6) slaytlar durulayın.</li>
	<li>Slaytları, 2 dakika (çanak 7) için (distile su ile seyreltilmiş 1:1) Gills hematoxylin karşı leke yerleştirin.</li>
	<li>Tüm slaytları damıtılmış suda hemen daldırma-durulayın (yemek 8). Her seferinde taze su ile iki kez tekrarlayın (yemekler 9 ve 10).</li>
	<li>Bir defada bir slayt ile çalışma, diğerleri damıtılmış su (yemek 10) batırılmış kalırken-sallamak ve aşırı su kapalı leke ve bir kapak kayma yapıştırmak için su çözünür montaj ortamı kullanın.</li>
	<li>Daha yakından teftiş gerekiyorsa slaytları ve 40X amacı görüntülemek için 20 x objektif bir ışık mikroskop kullanın.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Dean, D. J., Abelseth, M. K., Atanasiu, P., Meslin, F. X., Kaplan, M. M., Koprowski, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Laboratory techniques in rabies. 23, (1996).</li><li>Durr, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabies+diagnosis+for+developing+countries.">Rabies diagnosis for developing countries.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 2 (3), e206 (2008).</li><li>Rupprecht, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Progress in the development of a direct rapid immunohistochemical test for diagnosing rabies. , (2014).</li><li>Rupprecht, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Additional+Progress+in+the+Development+and+Application+of+a+Direct,+Rapid+Immunohistochemical+Test+for+Rabies+Diagnosis.">Additional Progress in the Development and Application of a Direct, Rapid Immunohistochemical Test for Rabies Diagnosis.</a> Journal of Veterinary Science. 5 (2), (2018).</li><li>Coleman, P. G., Fevre, E. M., Cleaveland, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimating+the+public+health+impact+of+rabies.">Estimating the public health impact of rabies.</a> Emerging Infectious Diseases. 10 (1), 140-142 (2004).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Standard Operating Procedure for the Direct Rapid Immunohistochemistry Test (DRIT) for the detection of rabies virus antigens. , (2016).</li><li>Lembo, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+a+direct,+rapid+immunohistochemical+test+for+rabies+diagnosis.">Evaluation of a direct, rapid immunohistochemical test for rabies diagnosis.</a> Emerging Infectious Diseases. 12 (2), 310-313 (2006).</li><li>Middel, K., Fehlner-Gardiner, C., Pulham, N., Buchanan, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Incorporating+Direct+Rapid+Immunohistochemical+Testing+into+Large-Scale+Wildlife+Rabies+Surveillance.">Incorporating Direct Rapid Immunohistochemical Testing into Large-Scale Wildlife Rabies Surveillance.</a> Tropical Medicine and Infectious Disease. 2 (3), 21 (2017).</li><li>Coetzer, A., Sabeta, C. T., Markotter, W., Rupprecht, C. E., Nel, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+biotinylated+monoclonal+and+polyclonal+antibodies+in+an+evaluation+of+a+direct+rapid+immunohistochemical+test+for+the+routine+diagnosis+of+rabies+in+southern+Africa.">Comparison of biotinylated monoclonal and polyclonal antibodies in an evaluation of a direct rapid immunohistochemical test for the routine diagnosis of rabies in southern Africa.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 8 (9), e3189 (2014).</li><li>Kirby, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhanced+Rabies+Surveillance+to+Support+Effective+Oral+Rabies+Vaccination+of+Raccoons+in+the+Eastern+United+States.">Enhanced Rabies Surveillance to Support Effective Oral Rabies Vaccination of Raccoons in the Eastern United States.</a> Tropical Medicine and Infectious Disease. 2 (3), 34 (2017).</li><li>Slate, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oral+rabies+vaccination+in+north+america:+opportunities,+complexities,+and+challenges.">Oral rabies vaccination in north america: opportunities, complexities, and challenges.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 3 (12), e549 (2009).</li><li>. Direct Rapid Immunohistochemistry Test (DRIT) protocols Available from: <a target="_blank" href="https://rabiessurveillanceblueprint.org/Direct-Rapid-Immunohistochemistry?lang=fr">https://rabiessurveillanceblueprint.org/Direct-Rapid-Immunohistochemistry?lang=fr</a> (2019)</li><li>Khalid, A., Haque, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Touch Impression Cytology Versus Frozen Section as Intraoperative Consultation Diagnosis. 2, (2004).</li></ol>

Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey yok.

DRIT, merkezi olmayan laboratuar alanlarında kullanılabilecek kuduz virüsü varlığını tespit etmek için alan tabanlı gözetim için uygun esnek bir yöntemdir. Bir kamyonun Bagaj Kapısı gibi alan tabanlı bir ortamda tüm testi yapmak mümkün olsa da, kimyasal, ekipman ve tedarik depolama sorunları nedeniyle DRIT için adanmış küçük, kapalı bir alan olması idealdir. Ayrıca, yürürlükteki tüm federal, eyalet ve yerel yasalara ve kimyasal kullanım ve bertaraf yönetmeliklerine bağlılık dikkate alınmalıdır. Şu anda, USDA WS 17 devletten örnekleri test etmek için 15 DRIT tesisleri vardır. USDA WS DRIT tesisleri, üniversite ve devlet kamu sağlığı laboratuvarları ile birlikte, daha büyük tesisler içinde belirlenmiş odalarda ve retrodonatılmış ve mobil test birimleri olarak hizmet etmek için dönüştürülmüş kapalı römork ile kurulmuş Acil bir salgın tepkisi durumunda, hızlı dönüş süresi ile gelişmiş kuduz gözetim testleri önemlidir (Şekil 5).
Test, değişken kalitedeki beyin sapı malzemesi kullanılarak başarılı olurken, doku debileşemesiyle taze beyin sapı dokusu optimum seviyede. Ayrışma, kurutma veya sıvılaşma ortaya çıktığında, numune kalitesi azalır ve test sonuçları karıştırabilecek daha spesifik olmayan lekeyi algılayabilir. Bu gözlem DFA ve DRIT2arasında benzer. Beyin sapı/CNS en kısa sürede toplanmalı ve daha sonra test edene kadar dondurulmuş (-20 °C) depolanmalıdır.
Genellikle, bir pozitif kontrol ve DFA ile teyit edilmiş bir negatif kontrol dahil olmak üzere bir DRIT oturumu sırasında bir kerede 12-24 slaytlar çoğu USDA WS tesisleri işlemi. Pozitif ve negatif denetimler, testin başarılı olduğundan emin olmak için her DRIT çalışması için bir referans noktası sağlar ve test slaytlarında yorumlayıcı sorular ortaya çıkarsa onaylamak için. Bir örnek net bir pozitif veya negatif sonuca sahip olduğu belirlenmişse, bir belirsiz olarak etiketlenmiş ve ikinci kez DRIT tarafından test. Bu örnek iki DRIT testinden sonra net bir pozitif veya negatif değilse, DFA veya ilgili testler için bir başvuru laboratuvarına gönderilir.
Herhangi bir tanılama testinde olduğu gibi, ' sorun giderme ' beklenmeyen bulgularla yararlıdır. Örneğin, bir DRIT çalışması başarısız olursa (yani, pozitif kontrol + 3 veya + 4 boyama yoğunluğu ve antijen dağılımı göstermez), tüm kimyasalların ve reaktiflerin süresi dolmadığından emin olun. Biz haftada bir kez en az bir hidrojen peroksit yeni açılan şişe kullanarak bulduk beyin dokusunun oksidasyonu ile spesifik olmayan boyama önlemeye yardımcı olmak için yararlıdır. Ayrıca, etiketlenmiş son kullanma tarihi ne olursa olsun, asetat tamponunu her yıl en az bir kez değiştirmenizi öneririz.
Düşük maliyetler de dahil olmak üzere DFA üzerinden DRıT avantajları bir dizi vardır, merkezi bir laboratuar dışında test yapmak için yeteneği, bir floresan mikroskop yerine sadece ışık mikroskopisi için ihtiyaç, ve nispeten basit eğitim süreci insanlar test2,3,4yönetmek ve okuma. Bu avantajlar, DFA2,7,8,9 ile karşılaştırılabilir olan drit duyarlılık ve özgüllüğü ile birleştiğinde zaten test geniş ölçekte önemli bir araç olarak hizmet olduğunu kanıtlamıştır Gelişmiş kuduz gözetim programları8,10 Kuzey Amerika 'da. Ayrıca, DRıTT artan gözetim ve daha fazla istem testleri geliştirme ülkeleri veya sınırlı kaynaklara sahip diğer alanlarda, özellikle son OIS/WHO rehberlik önerilen bir test olarak sonra izin olasılığı vardır.

DFA rutin kuduz tanı1için en yaygın olarak kullanılan test iken, satın alma ve floresan mikroskop Bakımı maliyeti gelişmekte olan Milletler2,3,4 ve geniş için sınırlandırılabilir, büyük ölçekli gelişmiş kuduz gözetim programları3,4. Buna ek olarak, DFA sabitleme sırasında numunelerin soğutulmasını ve antikor-antijen reaksiyonları sırasında ortam sıcaklığının üstündeki numunelerin inkübasyon yapılmasını gerektirir, bu da uygun altyapı olmaksızın ülkelerde önemli bir engel olabilir. Modern DFA testi ile ilişkili sınırlamalar kısmen nedeniyle, kuduz küresel etkisi uzun5hafife edilmiştir.
Bu bağlamda, özellikle gelişmekte olan ülkelerde, küresel kuduz gözetimi geliştirmek için ek tanı teknikleri doğrulamak için bir ihtiyaç vardır. Burada sunulan DRıT protokolü, ışık mikroskobu kullanan DFA 'ya bir laboratuar veya alan bazlı test alternatifi sunar ve test6' da soğutma veya laboratuar kuluçarı gerektirmez. DRIT ve DFA her iki teknikleri potansiyel kuduz hayvanların toplanan beyin örnekleri dokunmatik Gösterim kullanmak benzer. Ancak, DRıT ilk adımı örnekleri için tarihsel bir fiktatif olarak formalin kullanır, hangi kuduz virüsü inaktive. Bu DFA protokolünde örnekleri düzeltmek için kullanılan aseton üzerinde önemli bir Biyogüvenlik iyileştirme sağlar3, hangi sadece Laboratuar ama belki de daha çok alan tabanlı veya merkezi olmayan laboratuar ortamlarında önemlidir. Bugüne kadar, drit hassasiyet ve özgüllüğü DFA2,7,8,9eşit gösterir.
2005 yılından bu yana, USDA WS programı kapsamlı bir yaban hayatı kuduz yönetim programı10bir parçası olarak drıt kullanarak Kuzey Amerika 'da büyük ölçekli gelişmiş kuduz gözetim çabaları gerçekleştirdi. Gelişmiş kuduz gözetim pozlama tabanlı kamu sağlığı gözetim ve testler öncelikle yaban hayatı meso-etobur türler, rakunlar (Procyon rakun), çizgili skunks (kokarca kokarca), gri tilki (dahil olmak üzere tamamlayıcı olarak kullanılır Urocyon cinereoargenteus), kırmızı tilki (Vulpes vulpes), ve (Canis Latrans) Bu bir insan veya yerli hayvan maruz yer olmamıştır. Test kullanılan hayvan karkas gelişmiş kuduz gözetim çabaları ve oluşan kuduz vektör türleri ile USDA WS gönderildi: hasta veya garip oyunculuk; ölü, yol öldürüldü, ya da bir sıkıntı bulundu; ve bir insan veya yerli hayvan maruz kalma ile ilişkili değildir. DRıT kuduz gözetimi geliştirmek ve kamu sağlığı tanı laboratuvarlarının10mali yükü ve iş yükünü azaltmak için az veya hiç laboratuar deneyimi ile eğitimli alan biyologlar tarafından istihdam edilebilir bir kuduz teşhis testi sağlar. USDA WS alan çalışanları için temel DRıTT eğitim genellikle 1,5 alır 2 gün, yaklaşık içerir 4 biyalik temel ilkelerini kapsayan sınıf öğretim h, örnek toplama ve DRIT süreçleri için yöntemler yanı sıra > 8 h testi yürüten laboratuar süresi. Eğitim fırsatları USDA WS ve program kooperatörler için hastalık kontrol ve önleme (CDC), LYSSA LLC ve Wistar Enstitüsü merkezleri aracılığıyla kullanılabilir olmuştur.
Stratejik yönetim alanlarında, USDA WS üzerinde test edilmiştir 94.000 yaban hayatı örnekleri DRıTT kullanarak ve büyük olasılıkla sadece pozlama dayalı kamu sağlığı test şüpheli hayvanların dayanarak tespit edilmemiş gitti 1.850 kuduz örnekleri tespit etti. DRıT sonuçları tarafından sağlanan gelişmiş kuduz gözetim verileri ABD 'de yaban hayatı için oral kuduz aşılama programlarının destek peyzaj üzerinde kuduz daha tam temporal ve uzamsal temsili sağlamak için önemlidir10, 11' den itibaren. Benzer şekilde, Kanada 'da Il yaban hayatı kurumları başarı ile kendi kamu sağlığı programları ile tandem büyük ölçekli yaban hayatı kuduz gözetim çabaları içine DRIT dahil var8. Hem USDA WS ve Kanada DRIT gözetim programları DFA tarafından kuduz onaylamak ve uygun8olarak viral varyant yazarak gerçekleştirmek için Ulusal referans laboratuvarları kullandık. Dahası, USDA WS alan biyologlar, DFA onayı için negatif numunelerin% 10 ' unun referans laboratuvarlara göndermesi ve 2008 yılından bu yana, Wisconsin Devlet hijyen Laboratuvarı tarafından sağlanan yıllık DRIT yeterlilik testine, standart bir parçası olarak katıldı kalite güvencesi önlemleri.
Bu yöntemin amacı, merkezi olmayan laboratuvarlarda yapılabilir kuduz teşhis testi için alternatif bir yaklaşım sunacaktır, alanda, veya elektron mikroskobu rutin erişim olmaksızın alanlarda.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-Amino-9-Ethylcarbazole (AEC tablets; 50 count)</td>
			<td>Sigma Aldrich (https://www.sigmaaldrich.com/)</td>
			<td>A6926</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetate Buffer, 0.1M, 5.2 pH, 32oz</td>
			<td>Poly Scientific R&#38;D Corp. (https://www.polyrnd.com/)</td>
			<td>s140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ag Tek MiniScalpel, PN110, Non-sterile #10, 40 per package</td>
			<td>Patterson Veterinary (https://www.pattersonvet.com/)</td>
			<td>PN110</td>
			<td>Supplemental equipment for sample touch impressions; Also available through Clipper Distributing (http://www.clipperdist.net/)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Luer-Lok Disposable Syringe without needle, 10cc</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>14-823-2A</td>
			<td>BD Manufacturer Number 309604</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Binocular Light Microscope with Seidentopf Head or equivalent</td>
			<td>Multiple Vendors</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blue Rectangular UN-rated Disposal Container, 5G</td>
			<td>Berlin Packaging (https://www.berlinpackaging.com/)</td>
			<td>1147T01BLU</td>
			<td>Supplemental equipment for chemical waste storage/disposal (Gill hematoxylin and AEC solution)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning Square and Rectangular Cover Glass, 24x60</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>12-553-465</td>
			<td>Corning Manufacturer Number 2975246</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning Universal Fit Pipet Tips: Racked, Nonsterile (1-200ul)</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>07-200-300</td>
			<td>Corning Manufacturer Number 4863</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon 15mL Conical Centrifuge Tubes, polypropylene</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>14-959-70C</td>
			<td>Corning Manufacturer Number 352097</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon 96-Well Assay Plates (Tissue culture plate lids)</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>08-772-5</td>
			<td>Corning Manufacturer Number 353910</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisher Brand 25mm Syringe Filter, Nylon, 0.45um, Sterile</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>09-719D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisher Chemical Gill Method Hematoxylin Stain (Gill-2), 4L</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>CS401-1D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand Sharps-A-Gator Point-of-Use Sharps Containers, 5qt</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>14-827-122</td>
			<td>Supplemental equipment for proper BSL-2 Laboratory Set-Up</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluoro-Gel with Tris Buffer (Gel/Mount Media), 20mL</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>102092-122</td>
			<td>Fluoro-Gel Substitute for BioMeda&#8482; Gel-Mount, Electron Microscopy Sciences</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formalin, Buffered, 10%, 4L</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>SF100-4</td>
			<td>Available each or in case of 4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gilson Pipetman P200 Pipet, 50-200uL</td>
			<td>Daigger Scientific (https://www.daigger.com)</td>
			<td>EF9930E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hy-Clone Phosphate Buffered Saline, 1X Solution, 1L (PBS)</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>SH30256LS</td>
			<td>Alternative dry powder product can be used</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrogen Peroxide, 3%</td>
			<td>Multiple Vendors</td>
			<td></td>
			<td>Any commercially available source, such as pharmacy or store brands, etc.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lens Microscope Objective 20X and 40X</td>
			<td>Multiple Vendors</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lysol IC Quarternary Disinfecting Cleaner, 1G</td>
			<td>Daigger Scientific (https://www.daigger.com)</td>
			<td>EF8481</td>
			<td>Supplemental materials for proper BSL-2 Laboratory disinfection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Miltex brand Disposable Scalpel Size 22 (alternative size to MiniScalpel)</td>
			<td>AMD Next (www.amdnext.com)</td>
			<td>999112314</td>
			<td>Supplemental equipment for sample touch impressions; Alternative size to Ag Tek MiniScalpel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N,N-Dimethylformamide, Amber Glass Packaging, 500mL</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>D119-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peroxidase Labeled Streptavidin, 50mL</td>
			<td>SeraCare (https://www.seracare.com/)</td>
			<td>5550-0001</td>
			<td>KPL Immunoassay and Kits Reference Number 71-00-38</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline Powder (alternative to Fisher liquid PBS)</td>
			<td>Sigma Aldrich (https://www.sigmaaldrich.com/)</td>
			<td>P3813</td>
			<td>Must be prepared in 1L distilled water; Available in quantities of 1, 10 and 50 packs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primary antibody: Polyclonal anti-nucleoprotein or cocktail of anti-lyssavirus biotinylated antibodies</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Store at 4 degrees C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PYREX Disposable Serological Pipets, Glass, Sterile, Plugged, Corning, 1.0mL</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>7078D-1</td>
			<td>VWR Manufacturer Number 89091-220</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PYREX Disposable Serological Pipets, Glass, Sterile, Plugged, Corning, 10.0mL</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>7078D-10</td>
			<td>VWR Manufacturer Number 89091-106</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PYREX Disposable Serological Pipets, Glass, Sterile, Plugged, Corning, 5.0mL</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>7078D-5</td>
			<td>VWR Manufacturer Number 89091-484</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Richard-Allan Scientific Gills Hematoxylin Stain No. 2, 1PT (alternative to above)</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>22-050-201</td>
			<td>Thermo Scientific Manufacturer Number 72504</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slide Holders, 24-place</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>25608-868</td>
			<td>Sakura&#174;Finetek Supplier Number 4465; Available through multiple vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Specimen Tin Boxes, 1/2oz</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>101412-452</td>
			<td>Supplemental equipment for storage of brain tissue samples</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Taylor 2-Event Digital Timer/Clock</td>
			<td>Multiple Vendors</td>
			<td></td>
			<td>Supplemental equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue-Tek Slide Staining Kit</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>25608-902</td>
			<td>Sakura&#174;Finetek Supplier Number 4551; Available through multiple vendors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TWEEN 80, Polyethylene glycol, 500mL</td>
			<td>Sigma Aldrich (https://www.sigmaaldrich.com/)</td>
			<td>P1754</td>
			<td>Also available in 25mL, 1L and 1G volumes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VWR FLIP Pipette Filler (0.05-100mL)</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>53497-055</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VWR Soft Nitrile Examination Gloves, L (100 per box)</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>89038-272</td>
			<td>Supplemental equipment for proper PPE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water, Deionized (20L)</td>
			<td>VWR, part of Avantor (https://vwr.com)</td>
			<td>10806-022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wheaton Clear Glass Sample Vials, 8mL</td>
			<td>Fisher Scientific (part of Thermo Fisher Scientific https://www.fishersci.com/us/en/home.html)</td>
			<td>06-408C</td>
			<td>DWK Life Sciences Manufacturer Number 224884</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>White Coated, Double Well Pattern Microscope Slides, 14mm</td>
			<td>Tekdon Incorporated (https://www.tekdon.com/coated-microscope-slides.html)</td>
			<td>2-140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>White Rectangular UN-rate Disposal Container, 5G</td>
			<td>Berlin Packaging (https://www.berlinpackaging.com/)</td>
			<td>1147T01WHT</td>
			<td>Supplemental equipment for chemical waste storage/disposal (Formalin)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

enhanced rabies surveillance using a direct rapid immunohistochemical test

Laboratuvar bazlı gözetim, kuduz önleme, kontrol ve yönetim çabalarının ayrılmaz bir parçasıdır. DFA kuduz tanısı için altın standart iken, özellikle gelişmekte olan ülkelerde, kuduz gözetimi geliştirmek için ek tanı teknikleri doğrulamak için bir ihtiyaç vardır. Burada, DFA 'ya kıyasla ışık mikroskobu kullanan alternatif, laboratuvar veya alan tabanlı test seçeneği olarak DRIT için standart bir protokol sunuyoruz. Şüpheli hayvanlardan toplanan beyin dokusunun dokunmatik gösterimleri% 10 tamponlu formalin içinde sabitlenir. Drit kuduz virüs özgü monoklonal veya poliklonal antikorlar kullanır (biotin için konjuyum), bir streptavidin-peroksidaz enzim, ve bir Kromojen muhabiri (Asetil 3-amino-9-etilcarbazol gibi) enfekte doku içinde viral kapanımlar tespit etmek. Yaklaşık 1 saat içinde, bir beyin dokusu örneği test edilebilir ve DRIT tarafından yorumlanır. Kuzey Amerika, Asya, Afrika ve Avrupa 'daki türlerin çeşitli test şüpheli hayvan beyni değerlendirilmesi DFA kıyasla sonuçları ile% 100 yaklaşıyor DRIT tarafından yüksek hassasiyet ve özgüllük resimli var. 2005 yılından bu yana, ABD Tarım Bölümü yaban hayatı Hizmetleri (USDA WS) programı, stratejik kuduz yönetim alanlarında yaban hayatı toplanan > 94000 örnekleri test etmek için DRIT kullanarak büyük ölçekli gelişmiş kuduz gözetim çabaları gerçekleştirdi . DRıT, laboratuvarlar ve alan biyologlar tarafından mevcut kuduz gözetimi, önleme ve kontrol programlarını küresel olarak iyileştirmek için kullanılabilecek kuduz tanısı için güçlü ve ekonomik bir araç sağlar.

DRıTT 'den olumlu sonuçlar, mavimsi hücre gövdelerini sitoplazmasında şekil ve boyutta (Şekil 3) değişebilir kırmızı intrakytoplasmik viral inlüzyonlar gösterir. Bu kapanımlar çok parlak marjları ve daha az yoğun lekeli merkezi alanı ile pürüzsüz görünür. Yoğunluk ve antijen dağılımı, kapanımlar algılandığında kaydedilir. Yoğunluk + 4 ile + 1 arasında sınıflandırılır. Pozitif kontrol slaytı, + 4 yoğunluğu olarak adlandırılan yoğun, göz kamaştırıcı bir Magenta parlaklığı olmalıdır. Küçük bir renk kaybı özellikle örnek işleme en iyi olmadığı zaman ortaya çıkabilir (örn., örnek doku hafifçe deforme oldu) ve bu olarak not edilmelidir + 3. Dikkat çekecek şekilde mat leke, + 2 ila + 1 olarak değerlendirilmişse, kuduz virüsü enfeksiyonu için teşhis olarak kabul edilmez ve belirsiz olarak etiketlenir.
Ayrıca, antijen dağılımı + 4 ' ten + 1 ' den + 4 ' e kadar boyutu ve şekli değişen büyük ve küçük kapanımlar bir bolluk oluşan antijen dağıtımı temsil eden ve her alanda (ya da hemen her alanda) CNS dokusu içinde görünüm mevcuttur dokunmatik izlenim. Pozitif denetim genellikle bir + 4 antijen dağılımı vardır. Tüm görünüm alanlarının çoğunda değil, çeşitli boyutlarda kapanımlar olduğunda + 3 ' ün antijen dağılımı atanır. Mikroskop alanlarının% 10-50 ' inde kapanımlar bulunursa, bir + 2 antijen dağılımı atanır. Mikroskop alanlarının <% 10 ' unda kapanımlar bulunduğunda, bir + 1 antijen dağılımı atanır.
Çoğu CNS doku kuduz virüsü mevcut sergi tipik viral kapanımlar olarak dereceli + 3 veya + 4 yoğunluk ve antijen dağılımı. Sonuçlar bir + 2 veya + 1 yoğunluğu veya + 2 veya + 1 antijen dağılımı belirtiyorsa, örnek "belirsiz" olarak bildirilir ve tekrar test garantisi verilir. Aynı örnek tekrarlayıcı belirsiz bir test sonucu varsa, örnek DFA veya ilgili onaylayıcı test için bir başvuru laboratuvarına gönderilmelidir.
Drıt kullanan bir test örneği, CNS dokusunu içeren slayt 200x veya daha büyük bir büyütme ve hiçbir tipik virüs kapanımlar (Şekil 4) algılandığında tarandıktan sonra kuduz virüsü antijenleri için negatif olarak kabul edilir. Negatif örnekler, küçük veya hiç spesifik olmayan lekelerle mavimsi hücre gövdeleri sergiler.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59416/59416fig1.jpg"> Şekil 1: test için reaktifler ile 10 slayt boyama yemekleri kurulumu. Yemekler, protokol takip etmek için gerekli sırada reaktif adı ile etiketlenir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59416/59416fig1large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59416/59416fig2.jpg"> Şekil 2: ıslak kağıt havlu ve hücre kültürü plakaları ile oluşturulan basit nem odası.  Islak kağıt havlu ve hücre kültürü plakaları kullanarak basit bir nem odası alan tabanlı uygulama için izin verir.  <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59416/59416fig2large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59416/59416fig3.jpg"> Şekil 3: + 4 yoğunluğu ve + 4 antijen dağılımı ile kuduz pozitif viral inlüzyonlar temsilcisi slaytlar. (A ve B) 200x büyütme pozitif kuduz viral kapanımlar göster. (C ve D) 400x büyütme pozitif kuduz viral kapanımlar göster. Ölçek çubukları = 5 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59416/59416fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir sürümünü görüntülemek Için lütfen buraya tıklayın</a> .
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59416/59416fig4.jpg"> Şekil 4: Hiçbir kuduz viral kapanımlar ile negatif numunelerin temsilcisi slaytlar. (A ve B) 200x büyütme kuduz viral kapanımlar için örnekleri negatif göster. (C ve D) 400x büyütmede kuduz viral inlüzyonlar için örnekleri negatif göster. Ölçek çubukları = 5 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59416/59416fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir sürümünü görüntülemek Için lütfen buraya tıklayın</a> .
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59416/59416fig5.jpg"> Şekil 5: USDA ws tarafından kullanılan DRIT test olanaklarının temsilcisi fotoğrafları. (A) taşıma için kapalı bir römork içinde mobil test tesisi. (B) drıtt testi için dinlenme aracı tadilat. (C) üniversite Laboratuvarı ile birlikte drit test tesisi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59416/59416fig5large.jpg" target="_blank">Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Enhanced Rabies Surveillance Using a Direct Rapid Immunohistochemical Test at JoVE.com

Enhanced Rabies Surveillance Using a Direct Rapid Immunohistochemical Test

Doğrudan hızlı Immünhistokimyasal testi kullanarak gelişmiş kuduz gözetimi

Doğrudan hızlı immünhistokimyasal test (DRIT), kuduz tanısı için doğrudan floresan antikor (DFA) testine alternatif olarak tanınan hayvan sağlığı ve Dünya Sağlık Örgütü (OIS/WHO) için bir dünya organizasyonu sunmaktadır. Bu test, ışık mikroskobu kullanarak beyin gösterimleri üzerine yaklaşık 1 saat içinde gerçekleştirilebilecek alan tabanlı uygulamalar için izin verir.

Laboratory-based surveillance is integral for rabies prevention, control and management efforts. While the DFA is the gold standard for rabies diagnosis, ...

DrIT, alandaki ademi merkeziyetçi laboratuvarlarda veya elektron mikroskobuna rutin erişimi olmayan alanlarda yapabilen kuduz tanı testi sağladığı için önemlidir. DRIT'in en büyük avantajı sadece basit ışık mikroskobu ndan yararlanması ve sonuçların yaklaşık bir saat içinde elde edilebilmesidir. DRIT dünya çapında kuduz gözetim, önleme ve kontrol programlarını geliştirmek için laboratorians ve alan biyologlar tarafından kullanılabilecek kuduz tanısı için güçlü bir ekonomik araç sağlar.Taze olarak toplanan veya ortam sıcaklığına kadar çözülmüş hayvanlar için, hayvan supine'i servikal omurga hafifçe incemuayeneye doğru döndürülürken düz bir yüzeye yerleştirin. Palpate servikal omurganın lateral yönü atlanto-oksipital eklem belirlemek için. Bir neşter bıçak kullanarak, trakea ve yemek borusu da dahil olmak üzere kas ve yumuşak doku tüm katmanları ile kesme ventral yönü atlanto-oksipital eklem düzeyinde bir kesi yapmak.Servikal omurga omurlarının ön yönüne yaklaşana kadar devam edin. Sonra beyin sapı görünür kadar bir bitiş aralığı uzantısı içine hayvanın başını hareket ettirin. Örnek için tüm görünür beyin sapı ve merkezi sinir sistemi dokusu kaldırmak için bir neşter bıçak kullanın.Beyin sapı örneklerini kırılmaz bir kap içine yerleştirin ve buna göre etiketleyin. İlk olarak, örnek bir slayt tam daldırma sağlamak için yeterince derin boyama yemekleri yola. Çanak birini %10 fosfat tamponlu formalin ile doldurun.İki, dört ve beş tabakları TPBS ile doldurun. Çanak üç'ü %3 hidrojen peroksitle doldurun. Sonra damıtılmış veya deiyonize su ile altı, sekiz, dokuz ve 10 bulaşıkları doldurun.Yediyi Gill'in hematoksilin formülasyonu yla doldurun. Bir cam pipet kullanarak amino-etil-karbazol stok çözeltisi hazırlamak için, bir cam kap içinde N, N-dimethylformmide beş mililitre yerleştirin. Cam kap için 3-amino-9-ethylcarbazole 120 miligram tablet ekleyin ve tamamen çözülene kadar sallayın.AEC çalışma seyreltme hazırlamak için, 15 mililitrelik santrifüj tüp için asetat tampon yedi mililitre ekleyin. Santrifüj tüpüne 0,5 mililitre AEC stok çözeltisi eklemek için cam pipet kullanın. %3 hidrojen peroksit çözeltisi 0.75 mililitre ekleyin.Çözeltiyi filtrelemek için 0,45 mikrometre şırınga filtreli 10 mililitrelik bir şırınga kullanın. Başlamak için, her numune için benzersiz bir sayı ile cam mikroskop slaytlar etiketlemek için bir yayma geçirmez su geçirmez kalıcı mürekkep işareti kullanın. Kaptan beyin sapı kaldırmak ve bir kağıt havlu üzerine yerleştirmek için bir neşter bıçak kullanın.Sadece beyin sapı dokusunu ortaya çıkarmak için aşırı sıvı, kan veya kürkü hafifçe uzaklaştırmak için ikinci bir kağıt havlu kullanın. Gerekirse, bir kesit ortaya çıkarmak için beyin sapı dokusunu kesin. Çok nazikçe beyin sapı birkaç noktaya yanal hareket olmadan beyin sapı birden fazla alanda slayt transfer edilmesine izin vermek için sadece bir veya iki hücre tabakası beyin dokusundan slayt aktarılır emin olmak için mikroskop slayt dokunun.Slaytlar oda sıcaklığında yaklaşık beş dakika kuru masını bekleyin. Daha sonra slaytları 10 dakika boyunca %10 arabelleğe aldanan formalin imi tabağa batırın. Formalin gelen slaytlar çıkarın ve çanak iki TPBS çözeltisi onları durulayın.Durulanmış slaytları, çanak üç te bulunan hidrojen peroksit çözeltisi içinde 10 dakika batırın. Bundan sonra, hidrojen peroksit slaytlar çıkarın ve çanak dört bulunan taze TPBS onları durulayın. Herhangi bir aşırı hidrojen peroksit çıkardıktan sonra, taze TPBS çanak beş bulunan slaytlar yerleştirin.Slaytları beş tabaktan teker teker alın, fazla tamponları silkeleyin ve temizleyin ve kaydırağı laboratuvar bankındaki nemlendirilmiş bir kağıt havlunun üzerine yerleştirin. Tüm slaytlar aktarıldığında, CNS dokusunu kapsayacak kadar birincil anti-kuduz virüsü antikoru her slayta düşürmek için bir damlalık veya pipet kullanın. Bir nem odası oluşturmak için iyi plakalar veya başka bir basit kapak ile slaytlar kapak ve 10 dakika boyunca oda sıcaklığında slaytlar kuluçka.Bundan sonra, nem odasından slaytları çıkarın, çalkalayın ve herhangi bir fazla konjuge kapalı leke ve çanak beş TPBS slaytlar durulayın. Bir seferde bir slayt ile çalışma, TPBS bir slayt kaldırmak ve CNS doku kapsayacak kadar Streptavidin peroksidaz kompleksi damla bir damlalık veya pipet kullanın. Tüm slaytlar kapatıldıktan sonra, oda sıcaklığında 10 dakika boyunca nem odasında kuluçkaya yatırın.Daha sonra slaytları nem odasından çıkarın, fazla kompleksi sallayın ve lekeleyin ve çanak beşte yer alan TPBS'deki slaytları durulayın. Aynı anda tek bir slaytla çalışarak, TPBS'den bir slayt çıkarın ve CNS dokusunu kapsayacak kadar AEC çalışma solüsyonu bırakmak için bir pipet kullanın. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca nem odasında slaytlar kuluçka.Bundan sonra, altı tabakta bulunan distile suda slaytları durulayın ve iki dakika boyunca yedi dakika boyunca gill'in hematoksin bir karşı leke yerleştirin. Hemen bulaşık sekiz distile su damıtılmış su tüm slaytlar durulayın. Her yıkama için 9 ve 10 tabaklarda tatlı su kullanarak bunu iki kez tekrarlayın.Bir seferde bir slayt çalışma, sudan bir slayt çıkarın ve sallamak ve herhangi bir fazla su leke. Slayta bir kapak kayması yapıştırmak için suda çözünen bir montaj ortamı kullanın. Ardından slaytları görüntülemek için 20X hedefi olan bir ışık mikroskobu kullanın.DRIT'ten elde edilen olumlu sonuçlar, mavimsi hücre gövdelerinin sitoplazması içinde şekil ve boyut olarak değişebilen kırmızı intrasitoplazmik viral inklütümler göstermektedir. Eklemeler çok parlak kenar boşlukları ve daha az yoğun lekeli merkezi alan ile pürüzsüz görünür. Antijen dağılımı artı dört artı bir artı dört artı dört büyük ve küçük dahil büyük ve küçük dahil bir bolluk boyutu ve şekli ve CNS doku dokunmatik izlenim içinde görüş her alanda mevcut oluşan oluşan ile derecelendirilmiştir.Artı üç dağılımı, görüş alanlarının çoğunda çeşitli boyutlarda eklemeler olduğunda atanır, ancak tüm görünüm alanlarında değil. Mikroskop alanlarının %10-50'sinde eklemeler bulunursa, alanların %10'undan azında eklemeler bulunduğunda artı bir antijen dağılımı atanır. Kuduz virüsü ile çoğu CNS dokular artı üç veya artı dört yoğunluk ve antijen dağılımı olarak dereceli tipik viral inklütifler mevcut.Sonuçlar yoğunluk veya antijen dağılımında bir artı bir veya artı iki gösteriyorsa, örnek belirsiz olarak bildirilir ve tekrar testi garanti edilir. CNS dokusunu içeren slayt 200X veya daha büyük bir büyütme de tarandıktan sonra DRIT içeren bir test örneği kuduz virüsü antijenleri için negatif olarak kabul edilir ve tipik virüs inklümenleri tespit edilmeden sonra. Negatif örnekler de çok az veya hiç bilinen belirli boyama ile mavimsi hücre organları sergiler.Kuduz tanı testi yapılan her kişi standart ön pozlama kuduz aşısı almalı ve düzenli serolojik antikor değerlendirmesinden geçmelidir. Aşısız bireyler bu tür çalışmaların yürütüldüğü alanlara girmemelidir. Canlı kuduz virüsü ile çalışırken alınan önlemlere ek olarak, testte kullanılan reaktiflerin bir çoğu tehlikelidir.Her reaktif için güvenlik veri sayfalarına bakın.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Combination of Adhesive-tape-based Sampling and Fluorescence in situ Hybridization for Rapid Detection of Salmonella on Fresh Produce

Combination of Adhesive-tape-based Sampling and Fluorescence in situ Hybridization for Rapid Detection of Salmonella on Fresh Produce

Yapışkan bant tabanlı Örnekleme ve Floresans kombinasyonu In situ</emHızlı Algılama> Hibridizasyon Salmonella Taze üretin

This protocol describes a simple approach for adhesive-tape-based sampling of tomato and other fresh produce surfaces, followed by on-tape fluorescence in ...

Avian Influenza Surveillance with FTA  Cards: Field Methods, Biosafety, and Transportation Issues Solved

Kuş FTA Kartları İnfluenza Sürveyans: Alan Yöntemleri, Biyogüvenlik ve Ulaşım Sorunları çözüldü

Avian Influenza Viruses (AIVs) infect many mammals, including humans1. These AIVs are diverse in their natural hosts, harboring almost all possible viral ...

Enteric Bacterial Invasion Of Intestinal Epithelial Cells In Vitro Is Dramatically Enhanced Using a Vertical Diffusion Chamber Model

Enteric Bacterial Invasion Of Intestinal Epithelial Cells In Vitro Is Dramatically Enhanced Using a Vertical Diffusion Chamber Model

Bağırsak Epitel Hücreleri Of Enterik Bakteriyel Invasion<em&gt; In Vitro</em&gt; Dramatik bir Dikey Difüzyon Odası Modeli Geliştirilmiş mı

The interactions of bacterial pathogens with host cells have been investigated extensively using in vitro cell culture methods. However as such cell ...

Rapid Identification of Gram Negative Bacteria from Blood Culture Broth Using MALDI-TOF Mass Spectrometry

MALDI-TOF kütle spektrometrisi kullanılarak kan kültür besi yerinden, Gram negatif bakterilerin hızlı belirlenmesi

An important role of the clinical microbiology laboratory is to provide rapid identification of bacteria causing bloodstream infection. Traditional ...

A Rapid Strategy for the Isolation of New Faustoviruses from Environmental Samples Using Vermamoeba vermiformis

A Rapid Strategy for the Isolation of New Faustoviruses from Environmental Samples Using Vermamoeba vermiformis

Kullanımı Çevre Örneklerinde Yeni Faustoviruses İzolasyonunda bir Hızlı Stratejisi<em&gt; Vermamoeba vermiformis</em

The isolation of giant viruses is of great interest in this new era of virology, especially since these giant viruses are related to protists. Giant ...

Using Enhanced Green Fluorescence Protein-expressing Escherichia Coli to Assess Mouse Peritoneal Macrophage Phagocytosis

Using Enhanced Green Fluorescence Protein-expressing Escherichia Coli to Assess Mouse Peritoneal Macrophage Phagocytosis

Yeşil floresans Protein-ifade gelişmiş kullanma fare Peritoneal makrofaj fagositoz değerlendirmek için Escherichia Coli

This manuscript describes a simple and reproducible method to perform a phagocytosis assay. The first part of this method involves building a ...

In Vitro ELISA Test to Evaluate Rabies Vaccine Potency

In Vitro ELISA Testi Kuduz Aşısı Potens Değerlendirmek için

The growing global concern for the animal welfare is encouraging manufacturers and the National Control Laboratories (OMCLs) to follow the 3Rs strategy ...

Pan-lyssavirus Real Time RT-PCR for Rabies Diagnosis

Pan-Lyssavirus gerçek zamanlı RT-PCR Rabies tanı için

Molecular assays are rapid, sensitive and specific, and have become central to diagnosing rabies. PCR based assays have been utilized for decades to ...

Field Postmortem Rabies Rapid Immunochromatographic Diagnostic Test for Resource-Limited Settings with Further Molecular Applications

Field Postmortem Kuduz Hızlı İmmünromatografik Tanı Testi Kaynak Sınırlı Ayarlar için Diğer Moleküler Uygulamalar ile

Functional rabies surveillance systems are crucial to provide reliable data and increase the political commitment necessary for disease control. To date, ...

Immunohistochemistry Test for the Lyssavirus Antigen Detection from Formalin-Fixed Tissues

Formalin-Sabit Dokulardan Lyssavirüs Antijen Tespiti için İmmünohistokiniti Testi

One of the primary diagnostic modalities for rabies is the detection of viral ribonucleoprotein (RNP) complex (antigen) in the infected tissue samples. ...