Name: direct intrabronchial administration to improve the selective agent deposition within the mouse lung
Uploaded: 2019-05-20T14:00:00
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Diese Arbeit wurde durch NHLBI Grant HL125371 an E.P.S. und durch DOD (CDMRP) Grant W81XWH-17-1-0051 an Y.Y. finanziert.

Alle Tierprotokolle wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der University of Colorado Denver genehmigt. Alle unten beschriebenen Verfahren (Abschnitte 4–7) wurden sowohl mit männlichen als auch mit weiblichen C57BL/6-Mäusen optimiert. Dieser Ansatz wurde mit Mäusen im Körpergewicht von 19 bis 40 g validiert.
1. Schaffung einer Plattform für die IB-Administration
<ol><li>Biegen Sie das Buchend aus dem ursprünglichen 90°-Winkel zwischen dem Basalflügel und dem...

<ol>
	<li>MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+simple+method+of+mouse+lung+intubation.">An improved simple method of mouse lung intubation.</a> Journal of Applied Physiology. 106 (3), 984-987 (2009).</li><li>Thomas, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endotracheal+intubation+in+mice+via+direct+laryngoscopy+using+an+otoscope.">Endotracheal intubation in mice via direct laryngoscopy using an otoscope.</a> Journal of Visualized Experiments. (86), (2014).</li><li>Vandivort, T. C., An, D., Parks, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Improved+Method+for+Rapid+Intubation+of+the+Trachea+in+Mice.">An Improved Method for Rapid Intubation of the Trachea in Mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (108), 53771 (2016).</li><li>McGovern, T. K., Robichaud, A., Fereydoonzad, L., Schuessler, T. F., Martin, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+respiratory+system+mechanics+in+mice+using+the+forced+oscillation+technique.">Evaluation of respiratory system mechanics in mice using the forced oscillation technique.</a> Journal of Visualized Experiments. (75), e50172 (2013).</li><li>Halbower, A. C., Mason, R. J., Abman, S. H., Tuder, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Agarose+infiltration+improves+morphology+of+cryostat+sections+of+lung.">Agarose infiltration improves morphology of cryostat sections of lung.</a> Laboratory Investigation. 71 (1), 149-153 (1994).</li><li>Thrall, R. S., McCormick, J. R., Jack, R. M., McReynolds, R. A., Ward, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bleomycin-induced+pulmonary+fibrosis+in+the+rat:+inhibition+by+indomethacin.">Bleomycin-induced pulmonary fibrosis in the rat: inhibition by indomethacin.</a> American Journal of Pathology. 95 (1), 117-130 (1979).</li><li>Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+acute+lung+injury.">Animal models of acute lung injury.</a> American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), L379-L399 (2008).</li><li>Del Sorbo, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intratracheal+Administration+of+Small+Interfering+RNA+Targeting+Fas+Reduces+Lung+Ischemia-Reperfusion+Injury.">Intratracheal Administration of Small Interfering RNA Targeting Fas Reduces Lung Ischemia-Reperfusion Injury.</a> Criticial Care Medicine. 44 (8), e604-e613 (2016).</li><li>McLemore, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+intrapulmonary+model+for+orthotopic+propagation+of+human+lung+cancers+in+athymic+nude+mice.">Novel intrapulmonary model for orthotopic propagation of human lung cancers in athymic nude mice.</a> Cancer Research. 47 (19), 5132-5140 (1987).</li><li>Vertrees, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+human+to+murine+orthotopic+xenotransplanted+lung+cancer+model.">Development of a human to murine orthotopic xenotransplanted lung cancer model.</a> Journal of Investigative Surgery. 13 (6), 349-358 (2000).</li></ol>

Lungenverletzungen wurden bei Nagetieren mit Hilfe der IT-Verabreichung von schädigenden Wirkstoffen wie BLM6klassisch modelliert. Eine solche IT-Administration führt jedoch nur zu lückenhaften Verletzungen, was den nicht gezielten Charakter der Lungenabgabe mit diesem Ansatz widerspiegelt7. Diese Einschränkungen der Modellierung von Lungenverletzungen sind lehrreiche Herausforderungen, vor denen bei dem Versuch, die IT-Lieferung von nicht-verletzenden experimentellen W...

Die direkte Lungenverabreichung von Experimentellen Wirkstoffen bei Mäusen ermöglicht die Untersuchung von Lungenimmunreaktionen, akuten Lungenverletzungen und Lungenfibrose. Die direkte Lungenverabreichung erfolgt in der Regel über intratracheale (IT) Instillation, wie zuvor beschrieben1,2,3. Dieser Ansatz ist jedoch nicht selektiv und wirkt sich auf beide Lungen in einer nicht gezielten und oft asymmetrischen Weise aus.  Experimentelle Modellierung von Lungenverletzungen kann von der Fähigkeit profitieren, selektiv auf eine bestimmte Lunge zu zielen, was die Verwendung der kontralateralen Lunge als Kontrolle ermöglicht. Umgekehrt profitiert eine genaue Modellierung menschlicher diffuser Lungenerkrankungen von der symmetrischen Verteilung experimenteller Wirkstoffe auf das bilaterale Lungenparenchym.
Das übergeordnete Ziel dieses Berichts besteht darin, ein Verfahren zur selektiven Abgabe von Versuchsmitteln auf die linke oder rechte Lunge einer Maus zu beschreiben (Abbildung 1). Dieser intrabronchiale (IB) Verabreichungsansatz ermöglicht eine einseitige Behandlung einer Mauslunge und kann leicht angepasst werden, um die gleiche Abgabe eines Mittels an die bilaterale Mainstammbronchi zu gewährleisten. Durch die Verwendung der IB-Verabreichung, um größere Dosen von Experimentellen Wirkstoffen an die größere rechte Lunge und kleinere Volumina an die kleinere linke Lunge zu liefern (d. h. dosisbereinigte IB-Verabreichung), die in diesem Bericht gezeigt wird, ist eine Verbesserung der Homogenität der lungenmonalen Lieferung von Versuchsmitteln, Optimierung des Modells der diffusen Lungenverletzung bei Mäusen. Daher kann dieser Bericht für Forscher, die entweder einseitig Versuchsstoffe an Mäuse verabreichen oder die Symmetrie der Arzneimittelablagerung in beiden Lungen verbessern wollen, einen Wert haben.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:739px;" width="739">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:280px;">22 G shielded IV Catheter</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:140px;">381423</td>
			<td style="width:180px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:280px;">Bleomycin</td>
			<td style="width:139px;">Enzo life sciences</td>
			<td style="width:140px;">BML-AP302-0010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:280px;">Compact Mini rodent anesthesia machine&#160;</td>
			<td style="width:139px;">DRE Veterinary</td>
			<td style="width:140px;">9280</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:280px;">Evans blue dye</td>
			<td style="width:139px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:140px;">E2129</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:280px;">FITC-dextran</td>
			<td style="width:139px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:140px;">FD150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:280px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:139px;">Piramal Critical Care</td>
			<td style="width:140px;">NDC&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:280px;">LED-30W Fiber Optic Dual Gooseneck Lights Microscope Illuminator</td>
			<td style="width:139px;">AmScope</td>
			<td style="width:140px;">LED-30W</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Low temperature cautery with fine tip&#160;</td>
			<td style="width:139px;">Bovie</td>
			<td style="width:140px;">AA02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:280px;">Precisionglide needle, 18G x 1&#34;</td>
			<td style="width:139px;">BD</td>
			<td style="width:140px;">305195</td>
			<td>Beveled tip, 12 mm in length&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:280px;">Xylazine</td>
			<td style="width:139px;">AKORN</td>
			<td style="width:140px;">NDC 59399-110-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:280px;">Zatamine</td>
			<td>VetOne</td>
			<td style="width:140px;">NDC 13985-702-10&#160;</td>
			<td>Ketamine</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

direct intrabronchial administration to improve the selective agent deposition within the mouse lung

Die intratracheale (IT) Verabreichung von experimentellen Wirkstoffen ist eine wesentliche Technik bei murinen Modellen diffuser Lungenerkrankungen, wie Bleomycin-induzierte Lungenfibrose.  Die Verteilung der intratracheal verabreichten Wirkstoffe auf die distale Mauslunge ist jedoch oft asymmetrisch, wobei die Lungenparenchymalkonzentrationen in der kleineren (aber ebenso zugänglichen) linken Lunge der Maus erhöht werden.  Beschrieben in diesem Bericht ist ein neuartiger intrabronchialer (IB) Ansatz, um die linke und/oder rechte Lunge lebender Mäuse nicht operativ zu kleben.  Es wird auch gezeigt, wie dieser Ansatz verwendet werden kann, um Wirkstoffe selektiv an eine Lunge zu verabreichen oder angepasst (über dosisangepasste IB-Abgabe), um die Links-Rechts-Symmetrie der Lungenabgabe von Versuchsmitteln zu verbessern und dadurch die Modelle diffuser Lungenerkrankungen wie Bleomycin-induzierte Lungenfibrose.

Selektive IB-Intubation zielt auf bestimmte Lappen (rechte Lunge) oder Basilarsegmente (linke Lunge).
Die IB-Verabreichung von EBD in die rechte Lunge wurde wie in Abschnitt 5.1 beschrieben durchgeführt. Nach Abschluss des Experiments wurde den Mäusen eine tödliche Dosis intraperitonealen Ketamins/Xylazins verabreicht, und die Lunge wurde geerntet, um die EBD-Verteilung zu demonstrieren (Abbildung<strong clas...

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Direct Intrabronchial Administration to Improve the Selective Agent Deposition Within the Mouse Lung

Die intratracheale (IT) Verabreichung von Versuchsmitteln bei Mäusen führt oft zu einer asymmetrischen Abgabe in die distale Lunge.  In diesem Bericht beschreiben wir einen direkten intrabronchialen (IB) Ansatz, um jede Lunge bei lebenden Mäusen nicht operativ zu nulaten.  Dieser Ansatz kann verwendet werden, um Wirkstoffe selektiv in eine Lunge zu verabreichen, oder kann angepasst werden, um die symmetrische Wirkstoffabgabe in beide Lungen zu verbessern.

Direkte intrabronchiale Verabreichung zur Verbesserung der selektiven Agentenablagerung innerhalb der Mauslunge

Intratracheal (IT) administration of experimental agents is an essential technique in murine models of diffuse lung diseases, such as bleomycin-induced ...

Um Lungenerkrankungen bei Mäusen zu modellieren, werden experimentelle Wirkstoffe oft über intratracheale Injektion verabreicht. Dieser Ansatz kann jedoch nicht selektiv auf eine Lunge abzielen, und die Verteilung kann zwischen der Lunge asymmetrisch sein. Indem wir eine einzelne Lunge in einer anästhesierten Maus konnieren, können wir einseitig experimentelle Wirkstoffe verabreichen.Mit Der Modifikation kann dieser Ansatz bilateral verwendet werden, wodurch die Symmetrie der Ablagerung in beiden Lungen verbessert wird. Kathetervorbereitung einschließlich Polieren, leichte Winkelung und Etikettierung ist das Schlüsselelement für den Erfolg. Natürlich ist diese Technik auch in der Praxis notwendig.Demonstriert wird das Verfahren von Sumei Liao, einem professionellen wissenschaftlichen Mitarbeiter aus meinem Labor. Nachdem Sie einen Mangel an Reaktion auf Zehenkneifen bestätigt haben, setzen Sie eine anästhesierte, acht bis zehn Wochen alte, C57-Black/6 Maus von den Schneidezähnen auf einer drapierten Nahtlinie in einer supine Ausrichtung aus. Sichern Sie die Maus mit zwei bis drei Hakenstücken, und schleifen Sie das Band, um eine Einschränkung der Belüftung zu vermeiden, und schalten Sie eine Lichtemittierungsdiode-Faseroptiker ein.Positionieren Sie den Bediener hinter der Plattform, dorsal zur Maus. Richten Sie den Schwanenhals des Leuchters zwei bis drei Zentimeter von der Maus entfernt aus, so dass er den Kehlkopfbereich durch die Haut beleuchtet. Mit sterilen Zangen in der dominanten Hand, ziehen Sie die Zunge aus der Mundhöhle.Verwenden Sie die nicht dominante Hand und den sterilen Depressivum, um die Wurzel der Zunge abzuflachen, um den Oropharynx weit zu belichten. Nach dem Lösen der Zange verwenden Sie die dominante Hand, um den verlängerten Katheter über die Mundhöhle in die Luftröhre zu intubieren. Bestätigen Sie die Platzierung, indem Sie beobachten, ob sich die Blase in der Spritze mit jedem Atemzug nach oben und unten bewegt.Zur selektiven Lobar-Kanulation der distalen rechten Lunge drehen Sie nach intratrachealer Intubation die Kunststoffplatte um 30 Grad und führen die Nabe des Katheters parallel zur Mausmittellinie zur entsprechenden gewichtsbasierten Tiefe, wie in der Tabelle angegeben. Mit einer Gel-Ladespitze 20 Mikroliter 0,3%Evans blauer Farbstoff in den Katheter liefern, gefolgt von ein bis zwei 100-Mikroliter-Aliquots Luft durch Glastropfen. Ziehen Sie dann den Katheter ab und halten Sie die Maus 30 Sekunden lang in Position, bevor Sie das Tier auf eine wärmende Decke legen, mit Überwachung bis zur vollständigen Genesung.Für eine selektive Lobar-Kanulation der distalen linken Lunge drehen Sie nach intratrachealer Intubation das Kunststoffbrett minus 74 Grad und rücken den Katheter sanft in den linken Hauptstammbronchus vor, während sie einen moderaten Druck um 90 Grad nach unten und in Richtung Buchende ausüben. Nach der Cannulation der linken unteren Lungensegmente drehen Sie die Kunststoffplatte minus 30 Grad und liefern 40 Mikroliter 0,3% Evans blauer Farbstoff mit einer Gel-Ladespitze. Dann liefern Sie ein bis zwei 100-300-Mikroliter-Aliquots Luft über Glastropfen und ziehen Sie den Katheter zurück, damit sich die Maus erholen kann, wie gezeigt.Für die richtige gesamte Lungenadministration, nach intratrachealer Intubation, drehen Sie die Kunststoffplatte um 30 Grad und führen Sie den Katheter parallel zur Mausmittellinie, bis zu Tiefen, die für die rechtsseitige distale Lobar-Kanulation notwendig sind. Bestätigen Sie das Erscheinungsbild des Tachypnoe-Zeichens, und drehen Sie die Maus minus 74 Grad, um die Schwerkraftunterstützung für die Agentenlieferung zu aktivieren. Ziehen Sie den Katheter in eine Position, die dem Start des rechten Mainstem Bronchus entspricht, und stellen Sie sicher, dass die Abschrägung des Katheters nach unten zeigt.Liefern Sie 30 Mikroliter 0,3%Evans blauer Farbstoff in die rechte Lunge, gefolgt von ein bis zwei 100-bis 300-Mikroliter-Aliquots Luft. Ziehen Sie dann den Katheter ab, und lassen Sie die Maus wiederherstellen. Für die linke gesamte Lungenadministration, nach intratrachealer Cannulation, drehen Sie die Kunststoffplatte minus 74 Grad, und schieben Sie den Katheter sanft in den linken Hauptstamm Bronchus, während Sie bescheidenen Druck sowohl 90 Grad nach unten als auch in Richtung Buchende setzen.Bestätigen Sie das No-Tachypnoe-Zeichen, und drehen Sie die Maus um 86 Grad, um Schwerkraftunterstützung bei der Agentenverwaltung zu ermöglichen. Ziehen Sie den Katheter auf den linken Hauptstamm bronchus, und drehen Sie die Abschrägung des Katheters nach unten. Liefern Sie 30 Mikroliter 0,3%Evans blauer Farbstoff mit einer Gel-Ladespitze in die linke Lunge, gefolgt von ein bis zwei 100-bis 300-Mikroliter-Aliquots Luft.Ziehen Sie dann den Katheter ab, damit sich die Maus erholen kann, wie gezeigt. Die bilaterale Abgabe von FITC-Dextran durch intratracheale und symmetrische intrabronchiale Verabreichung führt zu asymmetrischer Lungenparenchymal-FITC-Fluoreszenz mit größeren relativen Konzentrationen in der linken Lunge. Dies deutet darauf hin, dass die asymmetrische Lungenabgabe von Versuchsmitteln nach intratrachealer Verabreichung nicht eine Folge der asymmetrischen Darstellung dieser Wirkstoffe zu jedem Mainstammbronchus ist, sondern dass die gleiche Hauptstammabgabe durch Unterschiede in Lungengewicht und Masse verdünnt wird.Die dosisbereinigte intrabronchiale Verabreichung verbessert die Symmetrie der Verabreichung von Lungenparenchymalen. Trotz dieser Korrektur wird jedoch innerhalb der verschiedenen Lappen der rechten Lunge immer noch eine anhaltende Heterogenität beobachtet. 21 Tage nach der intratrachealen Bleomycin-induzierten fibrotischen Lungenverletzung wird eine Entzündung vorwiegend in der linken Lunge beobachtet, wobei weniger Verletzungen in der rechten Lunge zu verzeichnen sind.Umgekehrt führt die dosisbereinigte intrabronchiale Bleomycin-Verabreichung zu einer leicht verminderten Verletzung der linken Lunge und einer erhöhten Verletzung der rechten Lunge, wobei die größte Verletzung in der Mitte und überlegenen Lappen zu erkennen ist. Vergessen Sie nicht, während der gesamten Lungenadministration den Katheter zurückzuziehen und die Abschrägung des Katheters mit dem Gesicht nach unten zu pflegen.

Research

JoVE Journal

Medicine

High-frequency High-resolution Echocardiography: First Evidence on Non-invasive Repeated Measure of Myocardial Strain, Contractility, and Mitral Regurgitation in the Ischemia-reperfused Murine Heart

Hochfrequenz-High-Resolution Echokardiographie: First Evidence on Non-invasive Wiederholte Messung der myokardialen Strain, Kontraktilität und Mitralinsuffizienz in der Ischämie-Reperfusion Murine Herz

Ischemia-reperfusion (IR) was surgically performed in murine hearts which were then subjected to repeated imaging to monitor temporal changes in ...

Forschung

Medizin

Bronchial Thermoplasty:  A Novel Therapeutic Approach to Severe Asthma

Bronchial Thermoplastie: einen neuen therapeutischen Ansatz bis schwerem Asthma

Bronchial thermoplasty is a non-drug procedure for severe persistent asthma that delivers thermal energy to the airway wall in a precisely controlled ...

Noninvasive Intratracheal Intubation to Study the Pathology and Physiology of Mouse Lung

Nichtinvasive Intratracheale Intubation, die Pathologie und Physiologie der Maus Lung Study

The use of a model that mimics the condition of lung diseases in humans is critical for studying the pathophysiology and/or etiology of a particular ...

Diagnostic Ultrasound Imaging of Mouse Diaphragm Function

Diagnostische Ultraschall-Bildgebung der Maus Membranfunktion

Function analysis of rodent respiratory skeletal muscles, particularly the diaphragm, is commonly performed by isolating muscle strips using invasive ...

A Murine Model of Myocardial Ischemia-reperfusion Injury through Ligation of the Left Anterior Descending Artery

Einem Mausmodell der myokardialen Ischämie-Reperfusion Injury durch Ligation des linken vorderen absteigenden Arterie

Acute or chronic myocardial infarction (MI) are cardiovascular events resulting in high morbidity and mortality. Establishing the pathological mechanisms ...

The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques

The Bovine Lung in Biomedical Research: Visually Guided Bronchoscopy, Intrabronchial Inoculation and In Vivo Sampling Techniques

Die Bovine Lung in der biomedizinischen Forschung: Optisch Geführte Bronchoskopie, intrabronchial Inokulation und<em&gt; In Vivo</em&gt; Sampling-Techniken

There is an ongoing search for alternative animal models in research of respiratory medicine. Depending on the goal of the research, large animals as ...

Visualization of Streptococcus pneumoniae within Cardiac Microlesions and Subsequent Cardiac Remodeling

Visualization of Streptococcus pneumoniae within Cardiac Microlesions and Subsequent Cardiac Remodeling

Visualisierung<em&gt; Streptococcus pneumoniae</em&gt; Innerhalb Cardiac Mikroläsionen und anschließende Herz Remodeling

During bacteremia Streptococcus pneumoniae can translocate across the vascular endothelium into the myocardium and form discrete bacteria-filled ...

Design, Fabrication, and Administration of the Hand Active Sensation Test (HASTe)

Design, Fabrication, and Administration of the Hand Active Sensation Test HASTe

Konstruktion, Fertigung und Verwaltung der Hand Aktive Sensation Test (Eile)

The concept of personalizing neurologic rehabilitation, based on individual impairments, has experienced a recent surge. In parallel, the number of ...

2-Methacryloyloxyethyl Phosphorylcholine Polymer Treatment of Complete Dentures to Inhibit Denture Plaque Deposition

2-Methacryloyloxyethyl Phosphorylcholin Polymer-Behandlung von Complete Zahnersatz auf Inhibit Zahnersatz- Plaqueanlagerung

Removable dentures made of poly (methyl methacrylate) (PMMA) are prone to bacterial adherence and dental plaque formation, which is called denture plaque. ...

Quantitative Mapping of Specific Ventilation in the Human Lung using Proton Magnetic Resonance Imaging and Oxygen as a Contrast Agent

Quantitative Mapping spezieller Belüftung in der menschlichen Lung mit Proton-Magnetresonanztomographie und Sauerstoff als Kontrastmittel

Specific ventilation imaging (SVI) is a functional magnetic resonance imaging technique capable of quantifying specific ventilation &#8213; the ratio of ...