Name: transthoracic echocardiographic examination in the rabbit model
Uploaded: 2019-06-01T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Transthoracic Echocardiographic Examination in the Rabbit Model at JoVE.com

Esta obra fue apoyada en parte por: Fundación Séneca, Agencia de Ciencia y Tecnología, Región de Murcia, España (JT) (Número de subvención: 11935/PI/09) y la Universidad de Reading, Reino Unido (AG, GB) (Central Funding). Los fórhechos no tuvieron ningún papel en el diseño del estudio, la recopilación y el análisis de datos, la decisión de publicar o la preparación del manuscrito.

Los experimentos descritos en el presente documento fueron aprobados por el Comité de Investigación Etica de la Universidad de Murcia, España, y se realizaron de conformidad con la Directiva 2010/63/UE de la Comisión Europea. Los pasos descritos se realizaron en virtud de protocolos operativos estándar que formaban parte del plan de trabajo y no se han realizado únicamente con el propósito de filmar el vídeo que acompaña a este documento.
1. Preparación del conejo
<ol><li>Antes de ...

<ol>
	<li>Pogwizd, S. M., Bers, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+models+of+heart+disease.">Rabbit models of heart disease.</a> Drug Discovery Today Disease Models. 5, 185-193 (2008).</li><li>Gandolfi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+for+cardiac+stem+cell+therapies.">Large animal models for cardiac stem cell therapies.</a> Theriogenology. 75, 1416-1425 (2011).</li><li>Harding, J., Roberts, R. M., Mirochnitchenko, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+for+stem+cell+therapy.">Large animal models for stem cell therapy.</a> Stem Cell Research &amp; Therapy. 4, 23 (2013).</li><li>Chong, J. J., Murry, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+regeneration+using+pluripotent+stem+cells--progression+to+large+animal+models.">Cardiac regeneration using pluripotent stem cells--progression to large animal models.</a> Stem Cell Research. 13, 654-665 (2014).</li><li>Del, M. F., Mynett, J. R., Sugden, P. H., Poole-Wilson, P. A., Harding, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subcellular+mechanism+of+the+species+difference+in+the+contractile+response+of+ventricular+myocytes+to+endothelin-1.">Subcellular mechanism of the species difference in the contractile response of ventricular myocytes to endothelin-1.</a> Cardioscience. 4, 185-191 (1993).</li><li>Sahn, D. J., DeMaria, A., Kisslo, J., Weyman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recommendations+regarding+quantitation+in+M-mode+echocardiography:+results+of+a+survey+of+echocardiographic+measurements.">Recommendations regarding quantitation in M-mode echocardiography: results of a survey of echocardiographic measurements.</a> Circulation. 58, 1072-1083 (1978).</li><li>Thomas, W. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recommendations+for+standards+in+transthoracic+two-dimensional+echocardiography+in+the+dog+and+cat.+Echocardiography+Committee+of+the+Specialty+of+Cardiology,+American+College+of+Veterinary+Internal+Medicine.">Recommendations for standards in transthoracic two-dimensional echocardiography in the dog and cat. Echocardiography Committee of the Specialty of Cardiology, American College of Veterinary Internal Medicine.</a> Journal of Veterinary Internal Medicine. 7, 247-252 (1993).</li><li>Lang, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recommendations+for+cardiac+chamber+quantification+by+echocardiography+in+adults:+an+update+from+the+American+Society+of+Echocardiography+and+the+European+Association+of+Cardiovascular+Imaging.">Recommendations for cardiac chamber quantification by echocardiography in adults: an update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging.</a> European Heart Journal Cardiovascular Imaging. 16, 233-270 (2015).</li><li>Talavera, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Upgrade+on+the+Rabbit+Model+of+Anthracycline-Induced+Cardiomyopathy:+Shorter+Protocol,+Reduced+Mortality,+and+Higher+Incidence+of+Overt+Dilated+Cardiomyopathy.">An Upgrade on the Rabbit Model of Anthracycline-Induced Cardiomyopathy: Shorter Protocol, Reduced Mortality, and Higher Incidence of Overt Dilated Cardiomyopathy.</a> BioMed Research International. 2015, 465342 (2015).</li><li>Borkowski, R., Karas, A. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sedation+and+anesthesia+of+pet+rabbits.">Sedation and anesthesia of pet rabbits.</a> Clinical Techniques in Small Animal Practice. 14, 44-49 (1999).</li><li>Cantwell, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ferret,+rabbit+and+rodent+anesthesia.">Ferret, rabbit and rodent anesthesia.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 4, 169-191 (2001).</li><li>Giraldo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Percutaneous+intramyocardial+injection+of+amniotic+membrane-derived+mesenchymal+stem+cells+improves+ventricular+function+and+survival+in+non-ischaemic+cardiomyopathy+in+rabbits.">Percutaneous intramyocardial injection of amniotic membrane-derived mesenchymal stem cells improves ventricular function and survival in non-ischaemic cardiomyopathy in rabbits.</a> European Heart Journal. 36, 149 (2015).</li><li>Giraldo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Allogeneic+amniotic+membrane-derived+mesenchymal+stem+cell+therapy+is+cardioprotective,+restores+myocardial+function,+and+improves+survival+in+a+model+of+anthracycline-induced+cardiomyopathy.">Allogeneic amniotic membrane-derived mesenchymal stem cell therapy is cardioprotective, restores myocardial function, and improves survival in a model of anthracycline-induced cardiomyopathy.</a> European Journal of Heart Failure. 19, 594 (2017).</li><li>Bellenger, N. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+left+ventricular+ejection+fraction+and+volumes+in+heart+failure+by+echocardiography,+radionuclide+ventriculography+and+cardiovascular+magnetic+resonance;+are+they+interchangeable?.">Comparison of left ventricular ejection fraction and volumes in heart failure by echocardiography, radionuclide ventriculography and cardiovascular magnetic resonance; are they interchangeable?.</a> European Heart Journal. 21, 1387-1396 (2000).</li><li>Flachskampf, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+Imaging+to+Evaluate+Left+Ventricular+Diastolic+Function.">Cardiac Imaging to Evaluate Left Ventricular Diastolic Function.</a> Journal of the American College of Cardiology Cardiovascular Imaging. 8, 1071-1093 (2015).</li></ol>

Hemos descrito un protocolo para el examen ecocardiográfico de los parámetrosde la función cardiaca en el conejo, que representa un gran modelo preclínico 1,2,3. La metodología paso a paso descrita en este documento debe considerarse orientación, que con un estudio complementario de los principios básicos de ecocardiografía, y un conocimiento básico de la imagen por ultrasonido, ayudará al investigador a obtener, a tra...

La evaluación longitudinal de la función cardíaca en grandes modelos animales es una metodología de investigación robusta comúnmente utilizada para la evaluación de los efectos de las terapias novedosas para el tratamiento de la miocardiopatía isquémica y no isquémica. Entre las diversas técnicas de imagen cardiovascular disponibles para la investigación preclínica, la ecocardiografía se ha utilizado ampliamente debido a sus características no invasivas y portátiles. En manos experimentadas, la ecocardiografía es también una técnica de imagen muy reproducible para estudiar la anatomía cardíaca, así como la función sistólica y diastólica del corazón.
Grandes modelos animales preclínicos como cerdos, perros y conejos, son primordiales para la investigación traslacional preclínica1,2,3. De hecho, el beneficio potencial de nuevas terapias como la medicina regenerativa cardíaca en el entorno de la cardiomiopatía requiere extensas pruebas de hipótesis en grandes modelos preclínicos antes de que puedan ser consideradas para uso humano2,4 . En comparación con otros grandes modelos preclínicos, el modelo de conejo ofrece algunas ventajas, incluyendo su bajo costo de mantenimiento, que es comparable al de ratones y ratas. Sin embargo, a diferencia de ratones y ratas, el sistema de transporte Ca+2 y la electrofisiología cardiaca son similares en conejos que los humanos, y los de otros grandes modelos animales como perros y cerdos, aumentando así el potencial traslacional del conejo modelo1,5. Por lo tanto, el conejo, como un gran modelo experimental preclínico, tiene un equilibrio excepcional de costo y reproducibilidad para la investigación traslacional preclínica.
El conejo tiene el beneficio adicional de su amenabilidad para la imagen ecocardiográfica utilizando unidades de ultrasonido clínico utilizadas rutinariamente en pacientes humanos y veterinarios, aprovechando así la superioridad de la imagen armónica y el estado de la técnica Tecnología. Para ello, se prefieren los transductores sectoriales (también conocidos como matriz de fase) de frecuencia relativamente alta (hasta 12 MHz), como los utilizados en cardiología neonatal/pediátrica. El examen ecocardiográfico en el modelo preclínico de conejo permite la evaluación completa de la función sistólica y diastólica utilizando múltiples vistas y diferentes modos disponibles en unidades ecocardiográficas modernas (por ejemplo, Doppler de ondas continuas (CWD), Doppler de onda pulsada (PWD) e imágenes Doppler de tejido (TDI)).
La ecocardiografía es una técnica dependiente del operador y, por lo tanto, requiere una amplia formación y conocimiento sin núcleo de la técnica de acuerdo con las directrices internacionales. Parte de esta formación se puede facilitar con la visualización de vídeos explicando en detalle cómo se pueden obtener diferentes vistas ecocardiográficas. El logro de una alta competencia en imágenes ecocardiográficas, así como el desarrollo de un protocolo estandarizado y una técnica correcta, son esenciales para minimizar la influencia del operador y generar datos cuantitativos fiables, como se requiere en rigurosos investigación científica.
Algunas consideraciones son necesarias con respecto al sistema y la configuración de laboratorio utilizado para la ecocardiografía en conejos y otros modelos animales grandes. Para una evaluación ecocardiográfica transtorácica estándar de la función cardíaca, el sistema de ultrasonido debe incluir las siguientes modalidades: modo bidimensional (modo B o 2D), modo de movimiento (modo M), Color Doppler, así como CWD, PWD y TDI. Además, la máquina debe tener instalado un software completo de medición y análisis cardíaco, así como suficiente espacio en el disco duro interno para almacenar suficientes imágenes fijas digitales de alta calidad y bucles de vídeo para el análisis fuera de línea. Algunos sistemas utilizan transductores de matriz lineal; sin embargo, para la mejor imagen del corazón, se prefieren transductores sectoriales de matriz por fases con un pequeño diámetro de cabeza de escaneo, ya que permiten un paso más fácil de las ondas de ultrasonido a través de los espacios intercostales estrechos. Para conejos, utilizamos transductores de frecuencia relativamente alta (hasta 12 MHz). La posición del animal para la toma de imágenes es de suma importancia para adquirir imágenes de buena calidad. Por lo tanto, se recomiendan las posiciones de reclinación laterales derecha e izquierda para obtener todos los planos de imagen estándar durante un examen ecocardiográfico. Para ello, se recomienda una mesa con una muesca que coincida con la zona cardiaca del tórax (Figura1A). Esta mesa con muescas facilita el acceso con el transductor a la zona del pecho que será escaneada, y por lo tanto permite la libre movilidad de la mano del operador sin tener la mejor posición de escaneo del animal. Colocar al animal en una posición lateral reclinada da como resultado una caída del corazón hacia el transductor y la elevación de los pulmones, así como enlachar la ventana de acceso del haz de ultrasonido a través de los espacios intercostales, mejorando así la imagen general calidad(Figura 1A). El examen ecocardiográfico debe realizarse de manera ciega y siguiendo las directrices del Comité de Ecocardiografía del Colegio Americano de Medicina Interna Veterinaria y la Sociedad Americana de Ecocardiografía/Europa Asociación para las Imágenes Cardiovasculares6,7,8.
Parte de nuestro equipo científico está asociado con el Servicio de Cardiología de un Hospital De Enseñanza Veterinaria que atiende diariamente a pacientes veterinarios (por ejemplo, perros y gatos), para lo cual cuenta con la formación y acreditación pertinente según la ecocardiografía, y sus diferentes modalidades de imagen, así como una amplia experiencia en la toma de imágenes de diferentes tamaños de pacientes animales y conformaciones torácicas con esta técnica. Además, utilizamos comúnmente ecocardiografía para la evaluación longitudinal de la función cardiaca enun modelo de conejo de cardiomiopatía inducida por antraciclinas 9. Aquí, describimos un protocolo de ecocardiografía paso a paso para la evaluación de la función cardíaca utilizando una unidad de ultrasonido clínico en un modelo preclínico grande como el conejo. Este protocolo está adaptadopara las directrices internacionales actuales 8, e incluye recomendaciones prácticas basadas en nuestras propias experiencias en entornos clínicos y experimentales.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:915px;" width="914">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:327px;">Bluesensor</td>
			<td style="width:135px;">Medicotest</td>
			<td style="width:187px;">13BY1062</td>
			<td style="width:267px;">Disposable adhesive ECG lectrodes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Domtor (Medetomidine)</td>
			<td style="width:135px;">Esteve</td>
			<td style="width:187px;">CN 570686.3</td>
			<td>Veterinary prescription is necessary</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:327px;">HD11 XE Ultrasound System</td>
			<td style="width:135px;">Philips</td>
			<td style="width:187px;">10670267</td>
			<td>Echocardiography system.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:327px;">Heating Pad</td>
			<td style="width:135px;">Solac</td>
			<td style="width:187px;">CT8632</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Imalgene (Ketamine)</td>
			<td style="width:135px;">Merial</td>
			<td style="width:187px;">RN 9767</td>
			<td>Veterinary prescription is necessary</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Omnifix-F 1 ml syringe</td>
			<td style="width:135px;">Braun</td>
			<td style="width:187px;">9161406V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:327px;">S12-4</td>
			<td style="width:135px;">Philips</td>
			<td style="width:187px;">B01YgG</td>
			<td>4-12 MHz phase array transducer</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;">Ultrasound Transmision Gel (Aquasone)</td>
			<td style="width:135px;">Parker laboratories Inc.</td>
			<td style="width:187px;">N 01-08</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

transthoracic echocardiographic examination in the rabbit model

Los grandes modelos animales como el conejo son valiosos para la investigación preclínica traslacional. Los conejos tienen una electrofisiología cardíaca similar en comparación con la de los seres humanos y la de otros grandes modelos animales como perros y cerdos. Sin embargo, el modelo de conejo tiene la ventaja adicional de menores costos de mantenimiento en comparación con otros modelos animales grandes. La evaluación longitudinal de la función cardíaca mediante ecocardiografía, cuando se implementa adecuadamente, es una metodología útil para la evaluación preclínica de nuevas terapias para la insuficiencia cardíaca con fracción de eyección reducida (por ejemplo, regeneración cardíaca). El uso correcto de esta herramienta no invasiva requiere la aplicación de un protocolo de examen estandarizado siguiendo las directrices internacionales. Aquí describimos, paso a paso, un protocolo detallado supervisado por cardiólogos veterinarios para realizar ecocardiografía en el modelo de conejo, y demostramos cómo obtener correctamente las diferentes vistas ecocardiográficas y planos de imagen, así como el diferentes modos de imagen disponibles en un sistema de ecocardiografía clínica utilizado rutinariamente en pacientes humanos y veterinarios.

Vista parasternal del eje largo del corazón
La Figura 5A muestra un plano de imagen de la vista PSLAX derecha donde las 4 cámaras del corazón están claramente distinguidas. Puede identificar en esta vista el ventrículo derecho (RV), la válvula tricúspide (TV), IVS, LV, FW, así como la válvula mitral (MV). Cuando el ápice es claramente visible en el lado izquierdo de la ima...

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Transthoracic Echocardiographic Examination in the Rabbit Model

Examen Ecocardiográfico Transtorácico en el Modelo Conejo

Aquí describimos, paso a paso, un protocolo detallado para realizar ecocardiografía en el modelo de conejo. Mostramos cómo obtener correctamente las diferentes vistas ecocardiográficas y planos de imagen, así como los diferentes modos de imagen disponibles en un sistema de ecocardiografía clínica utilizado rutinariamente en pacientes humanos y veterinarios.

Large animal models such as the rabbit are valuable for translational preclinical research. Rabbits have a similar cardiac electrophysiology compared to ...

Este video tiene como objetivo demostrar paso a paso un protocolo para un examen ecocardiográfico de grado de investigación en un modelo animal grande como el conejo. Esto se logra primero anestesiando al animal, y luego preparando cuidadosamente el pecho para el procedimiento. A continuación, después de colocar el conejo en una manta térmica y verificar que una señal de ECG se muestra correctamente, coloque el animal en una posición reclinada derecha para obtener los planos de imagen en una vista de eje largo parasternal, y una vista de eje corto parasternal del corazón.A continuación, coloque el conejo en una posición reclinada izquierda para obtener los diferentes planos de imagen disponibles en una vista apical de cuatro cámaras, y una vista apical de cinco cámaras del corazón. Las películas y las imágenes fijas deben adquirirse en modo B y modo M para el análisis de la función sistólica cardíaca, así como una combinación de modo B, doppler de color y doppler de onda pulsada, PWD, para el análisis del flujo sanguíneo. O una combinación de modo B e imágenes doppler tisulares, TDI, modos para el análisis de las velocidades miocárdicas en el corazón del conejo.Evaluación longitudinal de la función cardíaca utilizando modelos animales ecocardiográficos agrandados esto sirve como metodología para la evaluación apical de terapias de insuficiencia cardíaca. El propósito de este vidoe es demostrar un protocolo ecocardiográfico paso a paso para la evaluación de la función cardíaca utilizando un sistema de ultrasonido crítico en un modelo preclínico grande como el conejo. El protocolo que se muestra en este vídeo está en línea con las directrices internacionales actuales.También se incluyen recomendaciones prácticas basadas en nuestras propias experiencias en entornos clínicos y experimentales. Antes de proceder, comience por inyectar una combinación de ketamina y medetomidina para anestesiar al animal. Una vez que el animal sea anestesiado, usa un cortapelos para eliminar el cabello de la piel del tórax.Afeitar de uno a tres centímetros de la cara interna de la extremidad delantera derecha, así como las regiones mediotibiales de las extremidades posteriores derecha e izquierda. Después de colocar el conejo en una manta térmica aplicar un gel de conducción adecuado a los electrodos y colocarlos en las regiones afeitadas de las extremidades. Fije los electrodos con cinta quirúrgica.Compruebe que se muestra una señal ECG correcta en la pantalla del sistema. Para obtener una vista de eje largo parasternal del corazón, coloque el animal en la posición reclinada lateral derecha con las extremidades delanteras extendidas lejos del tórax con cinta quirúrgica. Es importante mantener la piel del tórax lo más plana posible.Para ello, mantenga las extremidades delanteras lejos del tórax con una mano mientras usa la mano libre para identificar cualquier pliegue y bolsillo de la piel, y aplanarlas de arriba a abajo moviendo cualquier piel doblando lejos del pecho y desplazando los órganos abdominales hacia la región caudal a través de un suave masaje. Aplique gel de transmisión por ultrasonido en la cabeza del transductor. A continuación, coloque el transductor cerca de la piel del hemitórax derecho a nivel del segundo al tercer espacio intercostal y a unos uno o tres centímetros de distancia de la línea parasternal derecha con la marca de orientación del transductor apuntando hacia el hombro derecho del animal.Debe obtener dos planos de diagnóstico por imágenes en la vista del eje corto parasternal del corazón. Un plano de diagnóstico por imágenes que se sectiona el corazón longitudinalmente y donde se pueden identificar las cuatro cámaras del corazón, dos aurículas y dos ventrículos. Realice movimientos sutiles del transductor, como barrido, balanceo y rotación en relación con el espacio intercostal, así como el ángulo antero, posterior y dorsoventral del haz de ultrasonido para obtener el otro plano de imagen de la vista de eje largo parasternal.Una vez que obtenga este plano de diagnóstico por imágenes, también podrá identificar el tracto de salida ventricular izquierdo, LVOT y la aorta. Después de obtener el plano de diagnóstico por imágenes adecuado, utilice una combinación de modo B y doppler de color para evaluar el flujo sanguíneo a través de todas las válvulas y la integridad del tabique interventricular. Con el transductor en una vista de eje largo parasternal, realice una rotación en sentido contrario a las agujas del reloj del transductor de aproximadamente 90 grados para obtener una vista de eje corto parasternal derecha.Esta vez la marca de orientación del transductor debe apuntar hacia el hombro izquierdo del conejo. Para ayudar a mantener el transductor en la misma ubicación del pecho mientras gira el transductor, utilice la mano izquierda para realizar la rotación desde el cable del transductor. En la vista de eje corto parasternal, debe obtener rutinariamente tres planos de imagen barriendo el transductor a lo largo del eje del corazón.El plano de diagnóstico por imágenes midventricular que se lega el corazón en los músculos papilares. Aquí normalmente puede visualizar el ventrículo derecho en la parte superior y el ventrículo izquierdo en la parte inferior de la imagen. Usando el modo B, puede evaluar la contracción radial y circunferencial y la relajación del ventrículo izquierdo.Usa el modo M y luego coloca el cursor en el centro del ventrículo izquierdo entre ambos músculos papilares. Al barrer el transductor hacia la región cefálica debe obtener un plano de válvula mitral. Utilice el modo B y el modo M y coloque el cursor a lo largo del centro del ventrículo izquierdo para evaluar la integridad y la motilidad de los foliolos de la válvula mitral.Al barrer el transductor más cranialmente, se producirá un plano de imagen a nivel de la base alta también conocido como plano de la válvula aórtica. Para visualizar completamente la arteria pulmonar y su bifurcación, puede ser necesaria una mayor angulación y, a veces, un desplazamiento craneal del transductor y el espacio intercostal. Debe identificar en este punto de vista la válvula aórtica y sus foliolos, la aurícula derecha, la aurícula izquierda, el tracto de salida ventricular derecho, la válvula pulmonar y la arteria pulmonar.Utilice el modo B y, a continuación, utilice el modo M y coloque el cursor a lo largo de la válvula aórtica y la aurícula izquierda. Por último, utilice los modos doppler de color y doppler de onda pulsada para registrar la velocidad del flujo sanguíneo a nivel de la válvula pulmonar colocando el volumen de la muestra justo debajo de la apertura de los foliolos de la válvula pulmonar. Para obtener una vista apical de cuatro cámaras, coloque el conejo en la posición reclinada lateral izquierda para mantener la piel del tórax plana de una manera similar a como se describió anteriormente.Aplique gel de ultrasonido en el transductor y colóquelo de cerca sobre la piel del hemithroax izquierdo a nivel del cuarto y quinto espacio intercostal con la línea midclavicular con la marca de orientación del transductor apuntando hacia la parte posterior del conejo en la dirección de la escápula izquierda. Desde esta posición, si es necesario, mueva el transductor hacia arriba un espacio intercostal a la vez, una maniobra a menudo llamada escaparate. Una vez que llegues al espacio intercostal apropiado debes observar una imagen del corazón desde el ápice hasta la base del corazón.La forma típica del corazón donde se pueden ver las cuatro cámaras con los ventrículos izquierdo y derecho en la parte superior y ambas aurículas en la parte inferior de la imagen. Utilice el modo B para comprobar si hay anomalías en el movimiento de la pared regional y tener una visión global de la función ventricular izquierda. Utilice doppler de color para evaluar el flujo a través de las válvulas auriculoventriculares y utilice doppler de onda pulsada y coloque el volumen de la muestra a nivel de las puntas del prospecto de la válvula mitral para obtener imágenes del espectro de entrada de la válvula mitral.Utilice el modo de imagen doppler tisular del tejido y coloque el volumen de la muestra en los lados del tabique y lateral de la válvula mitral anulus. Comenzando con el transductor en la vista apical de cuatro cámaras, realice una suave inclinación cordialmente hasta que el tracto de salida ventricular izquierdo y la válvula aórtica entren en vista. Esta es la vista apical de cinco cámaras del corazón.Utilice el modo B para evaluar el tracto de salida ventricular izquierdo, el movimiento de los foliolos de la válvula aórtica, así como el tamaño y la función de la cavidad ventricular izquierda. Utilice el modo doppler de color para evaluar el flujo de salida a través de la válvula aórtica y utilice doppler de onda pulsada para evaluar la velocidad de flujo a través de esta válvula colocando el volumen de la muestra justo detrás de la válvula aórtica. Aquí mostramos un plano de imagen de la vista de eje largo parasternal derecho donde las cuatro cámaras del corazón son claramente distinguibles.Puede identificar en esta vista el ventrículo derecho, el ventrículo izquierdo, la aurícula derecha, la aurícula izquierda, el tabique interventricular, la pared libre del ventrículo izquierdo, así como la válvula mitral. En esta vista, es posible estimar con precisión el volumen ventricular izquierdo utilizando el método biplano de discos. Esta es la regla modificada de los Simpson tal y como se muestra en de esta imagen en la diastole y en la sístole.Aquí se muestra el otro plano de imagen del eje largo parasternal derecho. La ubicación para la colocación de las pinzas para la medición precisa del tracto de salida ventricular izquierdo se muestra en esta imagen. En esta imagen, se muestra una vista de eje corto parasternal derecho del corazón a nivel del plano de los músculos papilares.Puede identificar en esta vista el ventrículo derecho, el ventrículo izquierdo, el tabique interventricular, la pared libre ventricular izquierda, así como los músculos papilares anterolaterales y posteromediales. Un ejemplo de un trazado de modo M en la vista del eje corto parasternal a nivel de los músculos papilares se muestra en esta imagen donde también se muestra la colocación de pinzas para las mediciones del ventrículo derecho, el ventrículo izquierdo, el tabique interventricular y la pared libre ventricular izquierda. También se muestran las medidas correspondientes al diámetro diastólico del extremo ventricular izquierdo, LVDd, y el diámetro sistólico del extremo ventricular izquierdo, LVD.Este es un ejemplo de un trazado de modo M en el nivel del plano de la válvula mitral en la vista de eje corto parasternal. También se muestra la ubicación de las pinzas para la medición de la separación septal del punto E, EPSS, de la válvula mitral. En esta imagen se muestra un ejemplo del análisis de salida de la válvula pulmonar utilizando doppler de color y doppler de onda pulsada.Aquí se muestra un ejemplo de entrada de válvula mitral utilizando doppler de color en una vista apical de cuatro cámaras. En esta misma vista y utilizando doppler de onda pulsada, el espectro de entrada de la válvula mitral se puede evaluar como se muestra en esta imagen donde las ondas de llenado Early, E y Late, A, durante la diástole se diferencian fácilmente. Esta imagen muestra un ejemplo de velocidades del tejido miocárdico utilizando imágenes doppler tisulares de tejido con el volumen de la muestra ubicado en la pared septal del anillo de la válvula mitral.El componente sistólico se denota por la onda S, mientras que las ondas E prime y A prime se corresponden con el movimiento miocárdico del anillo de la válvula mitral durante el llenado temprano, el primo E y el llenado tardío, un primo, componentes de la diástole. Esta imagen muestra un ejemplo de doppler de color situado en el tracto de salida del ventrículo izquierdo en una vista apical de cinco cámaras. Aquí mostramos un ejemplo de cómo cuantificar el flujo de salida de la válvula aórtica utilizando la señal doppler de onda pulsada para evaluar la integral de tiempo de volumen, VTI, tiempo de eyección sistólica, ET, así como el período previo a la eyección, PEP, de la válvula aórtica.El desarrollo de un protocolo estandarizado y una técnica correcta son esenciales para minimizar la influencia del operador y generar datos cuantitativos fiables. Después de ver este video, usted debe tener una buena comprensión de los pasos esenciales de cómo realizar un examen transtorácico y cardiográfico en el modelo de conejo. Si vas y practicas bajo la supervisión de un mentor te ayudará a encontrar y desarrollar tus habilidades ecocardiográficas.En manos experimentadas este examen se puede completar dentro de los 15 minutos después de inducir la anestesia.

Research

JoVE Journal

Medicine

Transthoracic Echocardiography in Mice

Ecocardiografía transtorácica en ratones

In recent years, murine models have become the primary avenue for studying the molecular mechanisms of cardiac dysfunction resulting from changes in gene ...

Investigación

Medicina

Microsurgical Venous Pouch Arterial-Bifurcation Aneurysms in the Rabbit Model: Technical Aspects

Microcirugía venosa bolsa arterial-Bifurcación Los aneurismas en el modelo de conejo: Aspectos Técnicos

For ruptured human cerebral aneurysms endovascular embolization has become an equivalent alternative to aneurysm clipping.1 However, large clinical trials ...

Echocardiographic Assessment of the Right Heart in Mice

Evaluación ecocardiográfica de la parte derecha del corazón en ratones

Transgenic and toxic models of pulmonary arterial hypertension (PAH) are widely used to study the pathophysiology of PAH and to investigate potential ...

The Rabbit Blood-shunt Model for the Study of Acute and Late Sequelae of Subarachnoid Hemorrhage: Technical Aspects

El Conejo Modelo Blood-shunt para el Estudio de la aguda y secuelas tardías de Hemorragia subaracnoidea: Aspectos Técnicos

Early brain injury and delayed cerebral vasospasm both contribute to unfavorable outcomes after subarachnoid hemorrhage (SAH). Reproducible and ...

Echocardiographic and Histological Examination of Cardiac Morphology in the Mouse

Examen ecocardiográfico e histológico de la morfología cardiaca en el ratón

An increasing number of genetically modified mouse models has become available in recent years. Moreover, the number of pharmacological studies performed ...

Echocardiographic Measurement of Right Ventricular Diastolic Parameters in Mouse

Medición ecocardiográfica de parámetros diastólicos ventriculares derecho en ratón

Diastolic dysfunction is a prominent feature of right ventricular (RV) remodeling associated with conditions of pressure overload. However, the RV ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

Medición de la contractilidad isométrica de la arteria mesentérica de ratón con cable miografía

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...

Isolated Lung Perfusion System in the Rabbit Model

Sistema de perfusión pulmonar aislada en el modelo de conejo

The isolated lung perfusion system has been widely used in pulmonary research, contributing to elucidate the lungs&#39; inner workings, both micro and ...

Translational Rabbit Model of Chronic Cardiac Pacing

Modelo traslacional de conejo de estimulación cardíaca crónica

Animal models of cardiac pacing are beneficial for testing novel devices, studying the pathophysiology of artificially paced heart rhythms, and studying ...

A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury

Un modelo de estenosis valvular aórtica de conejo inducida por lesión directa con balón

Animal models are emerging as an important tool to understand the pathologic mechanisms underlying aortic valve stenosis (AVS) because of the lack of ...