Name: a melanoma patient-derived xenograft model
Uploaded: 2019-05-20T14:30:00
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Les auteurs remercient le Wistar Institute Animal Facility, Microscopy Facility, Histotechnology Facility et Research Supply Center. Cette étude a été financée en partie par des subventions de la U54 (CA224070-01), du SPORE (CA174523), du P01 (CA114046-07), de la Dr Miriam and Sheldon G. Adelson Medical Research Foundation et de la Melanoma Research Foundation.

Les protocoles animaux suivants suivent les lignes directrices du comité d'éthique des animaux de l'Institut Wistar et les lignes directrices sur les soins aux animaux.
1. Collection de tissu de tumeur de mélanome
<ol><li>Recueillir le tissu tumoral (appelé passage 0) des patients de mélanome par l'une des méthodes suivantes de chirurgie ou de biopsie.<ol>
<li>Pour les tissus d'excision chirurgicale, maintenir un minimum de 1 g de tissu (métastases et lésions primaires) dans les mili...

<ol>
	<li>Garman, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+and+Genomic+Characterization+of+462+Melanoma+Patient-Derived+Xenografts,+Tumor+Biopsies,+and+Cell+Lines.">Genetic and Genomic Characterization of 462 Melanoma Patient-Derived Xenografts, Tumor Biopsies, and Cell Lines.</a> Cell Reports. 21 (7), 1936-1952 (2017).</li><li>Krepler, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Comprehensive+Patient-Derived+Xenograft+Collection+Representing+the+Heterogeneity+of+Melanoma.">A Comprehensive Patient-Derived Xenograft Collection Representing the Heterogeneity of Melanoma.</a> Cell Reports. 21 (7), 1953-1967 (2017).</li><li>Davies, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutations+of+the+BRAF+gene+in+human+cancer.">Mutations of the BRAF gene in human cancer.</a> Nature. 417 (6892), 949-954 (2002).</li><li>Paraiso, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recovery+of+phospho-ERK+activity+allows+melanoma+cells+to+escape+from+BRAF+inhibitor+therapy.">Recovery of phospho-ERK activity allows melanoma cells to escape from BRAF inhibitor therapy.</a> British Journal Of Cancer. 102 (12), 1724-1730 (2010).</li><li>Long, G. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-Term+Outcomes+in+Patients+With+BRAF+V600-Mutant+Metastatic+Melanoma+Who+Received+Dabrafenib+Combined+With+Trametinib.">Long-Term Outcomes in Patients With BRAF V600-Mutant Metastatic Melanoma Who Received Dabrafenib Combined With Trametinib.</a> Journal of Clinical Oncology. 36 (7), 667-673 (2018).</li><li>Hidalgo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patient-derived+xenograft+models:+an+emerging+platform+for+translational+cancer+research.">Patient-derived xenograft models: an emerging platform for translational cancer research.</a> Cancer Discovery. 4 (9), 998-1013 (2014).</li><li>Hausser, H. J., Brenner, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phenotypic+instability+of+Saos-2+cells+in+long-term+culture.">Phenotypic instability of Saos-2 cells in long-term culture.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 333 (1), 216-222 (2005).</li><li>Fiebig, H. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+three+human+small+cell+lung+cancer+models+in+nude+mice.">Development of three human small cell lung cancer models in nude mice.</a> Recent Results In Cancer Research. 97, 77-86 (1985).</li><li>Izumchenko, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patient-derived+xenografts+effectively+capture+responses+to+oncology+therapy+in+a+heterogeneous+cohort+of+patients+with+solid+tumors.">Patient-derived xenografts effectively capture responses to oncology therapy in a heterogeneous cohort of patients with solid tumors.</a> Annals of Oncology. 28 (10), 2595-2605 (2017).</li><li>Shi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acquired+resistance+and+clonal+evolution+in+melanoma+during+BRAF+inhibitor+therapy.">Acquired resistance and clonal evolution in melanoma during BRAF inhibitor therapy.</a> Cancer Discovery. 4 (1), 80-93 (2014).</li><li>Monsma, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Melanoma+patient+derived+xenografts+acquire+distinct+Vemurafenib+resistance+mechanisms.">Melanoma patient derived xenografts acquire distinct Vemurafenib resistance mechanisms.</a> American Journal of Cancer Research. 5 (4), 1507-1518 (2015).</li><li>Das Thakur, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modelling+vemurafenib+resistance+in+melanoma+reveals+a+strategy+to+forestall+drug+resistance.">Modelling vemurafenib resistance in melanoma reveals a strategy to forestall drug resistance.</a> Nature. 494 (7436), 251-255 (2013).</li><li>Meehan, T. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PDX-MI:+Minimal+Information+for+Patient-Derived+Tumor+Xenograft+Models.">PDX-MI: Minimal Information for Patient-Derived Tumor Xenograft Models.</a> Cancer Research. 77 (21), 62-66 (2017).</li><li>Gao, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+screening+using+patient-derived+tumor+xenografts+to+predict+clinical+trial+drug+response.">High-throughput screening using patient-derived tumor xenografts to predict clinical trial drug response.</a> Nature Medicine. 21 (11), 1318-1325 (2015).</li><li>De La Rochere, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Humanized+Mice+for+the+Study+of+Immuno-Oncology.">Humanized Mice for the Study of Immuno-Oncology.</a> Trends in Immunology. 39 (9), 748-763 (2018).</li></ol>

Nous avons décrit ici générant des modèles de PDX du mélanome avec le tissu patient dérivé des tumeurs primaires et métastatiques, des biopsies de noyau, et des FNAs. Lorsqu'elles sont directement greffées chez des souris DeNS, les tumeurs présentent des propriétés morphologiques, génomiques et biologiques similaires à celles observées chez le patient. Dans le cas où seulement une petite quantité de tissu est disponible pour les investigateurs, comme cela se produit souvent avec des FNA, la technique de ...

Les modèles précliniques sont essentiels pour tous les aspects de la recherche translationnelle sur le cancer, y compris la caractérisation des maladies, la découverte de vulnérabilités exploitables propres au cancer par rapport aux cellules normales, et le développement de thérapies efficaces qui exploitent ces vulnérabilités pour augmenter la survie globale des patients. Dans le domaine du mélanome, des dizaines de milliers de modèles de lignées cellulaires ont été fortement utilisés pour le dépistage des médicaments, avec 4 000 euros de contribution de notre seul groupe (série WMXXX). Ces modèles de lignée cellulaire ont été dérivés de patients atteints de mélanome présentant diverses formes de mélanome cutané (c.-à-d. la propagation acraleuse, uveale et superficielle) et de divers génotypes (c.-à-d., BRAFV600-mutant et neuroblastome RAS viral oncogene homolog [ NRAS (En) Q61R-mutant]), qui couvrent le spectre de la maladie présente dans la clinique1,2.
Sans équivoque, la stratégie thérapeutique la plus réussie et ciblée dans le domaine du mélanome est née de 1) la caractérisation génomique des tumeurs des patients identifiant les mutations BRAF dans 50% des mélanomes3 et de 2) l'enquête préclinique tirant parti des modèles de lignée cellulaire du mélanome4. La combinaison d'inhibiteurs BRAF/MEK a été approuvée en 2014 par la Food and Drug Administration (FDA) pour le traitement des patients dont les mélanomes abritent l'activation des mutations BRAFV600E/K et bénéficie d'un taux de réponsede 5. Malgré cette efficacité initiale, la résistance surgit rapidement dans presque tous les cas en raison des mécanismes intrinsèques et acquis multiples de résistance et de l'hétérogénéité intratumorale. Malheureusement, les modèles de lignées cellulaires ne récapitulent pas l'hétérogénéité biologique représentative lorsqu'ils sont cultivés dans une culture bidimensionnelle dans des récipients en plastique, ce qui masque leur potentiel cliniquement prédictif lorsque les chercheurs tentent de déterminer expérimentalement thérapies qui pourraient être efficaces chez les patients présentant une forme spécifique ou un génotype du mélanome6. Comprendre comment modéliser au mieux l'hétérogénéité intratumorale du patient permettra aux chercheurs de mieux développer des modalités thérapeutiques qui peuvent tuer les sous-populations résistantes à la thérapie qui entraînent l'échec aux thérapies actuelles de norme de soins.
La valeur prédictive limitée des modèles de lignées cellulaires est la façon dont ils sont initialement établis. Des altérations irréversibles se produisent dans le paysage clonal de tumeur quand une suspension unicellulaire d'une tumeur de patients est cultivée sur les navires bidimensionnels et de culture de tissu plastique, y compris des changements dans le potentiel proliférant et invasif, l'élimination de spécifique sous-populations, et l'altération de l'information génétique7. Les xénogreffes chez les souris de ces modèles de lignée cellulaire de mélanome représentent la plate-forme in vivo la plus fréquemment utilisée pour les études précliniques ; cependant, cette stratégie souffre également de la récapitulation pauvre de l'hétérogénéité complexe de tumeur observée médicalement. Pour surmonter cette lacune, il y a eu un intérêt croissant dans l'incorporation des modèles précliniques plus sophistiqués du mélanome, y compris le modèle de PDX. Les modèles de PDX ont été utilisés pendant 30 ans, avec des études séminales dans les patients de cancer du poumon démontrant la concordance entre la réponse des patients aux agents cytotoxiques et la réponse du modèle de PDX dérivé du même patient8. Récemment, il ya eu une volonté d'utiliser des modèles PDX comme l'outil de choix pour les enquêtes précliniques à la fois dans l'industrie et dans les centres universitaires. Les modèles de PDX, en raison de leur récapitulation supérieure de l'hétérogénéité de tumeur dans les patients humains, sont plus médicalement pertinents à employer dans des efforts d'optimisation de thérapie que les xénogreffesdeligne cellulaire 9. Dans le mélanome, il y a d'immenses obstacles qui émoussent la gestion thérapeutique de la maladie avancée10. Des modèles De PDX cliniquement pertinents ont été utilisés pour modéliser la résistance clinique et identifier des stratégies thérapeutiques avec des agents cliniquement disponibles pour traiter les tumeurs résistantes à la thérapie11,12. En bref, le protocole présenté ici pour générer des modèles de PDX exige l'implantation sous-cutanée de tissu frais des mélanomes primaires ou métastatiques (recueillis par biopsie ou chirurgie) dans les souris nulles de NOD/scid/IL2-récepteur (NSG). Différentes variations de l'approche méthodologique sont utilisées par différents groupes; cependant, un noyau fondamental existe13.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1104px;" width="1103">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:352px;">1 M Hepes</td>
			<td style="width:241px;">SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td>
			<td style="width:344px;">Cat # H0887-100ML</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">100x PenStrep&#160;</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>Cat # 15140163</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">1x HBSS-/- (w/o Ca++ or Mg++)</td>
			<td>MED</td>
			<td>Cat # MT21-023-CV</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="61">
			<td height="61" style="height:62px;">2.5% Trypsin&#160;</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td>
			<td>Cat # T4549-100ML</td>
			<td>10 mL aliquots stored at &#8211;20oC</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">BSA</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td>
			<td>Cat # A9418-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Chlorhexidine</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>Cat# 50-118-0313</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Collagenase IV (2,000 u/mL)</td>
			<td>Worthington&#160;</td>
			<td>Cat #4189</td>
			<td>make up in HBSS-/- from Collagenase IV powder stock (Worthington #4189, u/mg indicated on bottle and varies with each lot); freeze 1</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">DMSO</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td>
			<td>Cat # C6295-50ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">DNase</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td>
			<td>Cat # D4527</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">EGTA (ethylene glycol bis(2-aminoethyl ether)-N,N,N&#8217;N&#8217;-tetraacetic acid)</td>
			<td>Merck</td>
			<td>Cat # 324626.25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">FBS</td>
			<td>INVITROGEN LIFE TECHNOLOGIES</td>
			<td>Cat # 16000-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Fungizone</td>
			<td>INVITROGEN LIFE TECHNOLOGIES</td>
			<td>Cat # 15290-018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Gentamicin</td>
			<td>FISHER SCIENTIFIC</td>
			<td>Cat # BW17518Z</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Isoflurane</td>
			<td>HENRY SCHEIN ANIMAL HEALTH</td>
			<td>Cat # 050031</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Leibovitz&#39;s L15 media&#160;</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>Cat # 21083027</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;">Matrigel</td>
			<td>Corning</td>
			<td>Cat # 354230</td>
			<td>Artificial extracellular matrix</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Meloxicam</td>
			<td>HENRY SCHEIN ANIMAL HEALTHRequisition # ::Henry Schein</td>
			<td>Cat # 025115</td>
			<td>1-5mg/kg, as painkiller</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">NOD/SCID/IL2-receptor null (NSG) Mice</td>
			<td>The Wistar Institute, animal facility</td>
			<td></td>
			<td>breeding</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PVA (polyvinyl alcohol)</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH CORPORATION</td>
			<td>Cat # P8136-250G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">RPMI 1640 Medium (Mod.) 1X with L-Glutamine</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>Cat# MT10041CM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Scalpel</td>
			<td>Feather</td>
			<td>Cat # 2976-22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Virkon</td>
			<td>GALLARD-SCHLESINGER IND</td>
			<td>Cat # 222-01-06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Wound clips</td>
			<td>MikRon</td>
			<td>Cat #427631</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a melanoma patient-derived xenograft model

L'accumulation des preuves suggère que les propriétés moléculaires et biologiques diffèrent dans les cellules de mélanome cultivées dans les vaisseaux traditionnels de culture de tissu bidimensionnels contre in vivo dans les patients humains. Ceci est dû à la sélection de goulot d'étranglement des populations clonales des cellules de mélanome qui peuvent fortement se développer in vitro en l'absence de conditions physiologiques. De plus, les réponses à la thérapie dans les cultures tissulaires bidimensionnelles dans l'ensemble ne reflètent pas fidèlement les réponses à la thérapie chez les patients atteints de mélanome, la majorité des essais cliniques ne démontportant pas l'efficacité des combinaisons thérapeutiques qui se sont avérées efficaces dans Vitro. Bien que le xénogreffedes de cellules de mélanome chez la souris fournit le contexte physiologique in vivo absent des essais bidimensionnels de culture de tissu, les cellules de mélanome employées pour l'engraftment ont déjà subi la sélection de goulot d'étranglement pour des cellules qui pourraient se développer sous conditions bidimensionnelles lorsque la lignée cellulaire a été établie. Les modifications irréversibles qui se produisent à la suite du goulot d'étranglement comprennent des changements dans les propriétés de croissance et d'invasion, ainsi que la perte de sous-populations spécifiques. Par conséquent, les modèles qui récapitulent mieux la condition humaine in vivo peuvent mieux prévoir des stratégies thérapeutiques qui augmentent effectivement la survie globale des patients présentant le mélanome métastatique. La technique de xénogreffe (PDX) dérivée du patient implique l'implantation directe des cellules de tumeur du patient humain à un destinataire de souris. De cette manière, les cellules de tumeur sont uniformément cultivées sous des contraintes physiologiques in vivo et ne subissent jamais le goulot d'étranglement bidimensionnel, qui préserve les propriétés moléculaires et biologiques présentes quand la tumeur était dans le patient humain. Notable, les modèles PDX dérivés de sites d'organes de métastases (c.-à-d. le cerveau) présentent une capacité métastatique similaire, tandis que les modèles PDX dérivés de patients naïfs et de patients ayant une résistance acquise à la thérapie (c.-à-d. la thérapie inhibitrice BRAF/MEK) présentent un affichage sensibilité similaire à la thérapie.

Le tissu tumoral pour les modèles de mélanome PDX peut provenir d'une variété de différentes sources et peut également être traité par la dynamique de croissance des modèles individuels et l'utilisation désirée du tissu DeX. La priorité lors de l'établissement d'un modèle PDX est d'avoir suffisamment de matériel pour la banque pour une utilisation future et l'ADN pour la caractérisation (figure 1).
Une fois que le matériel suffisant est mis en ban...

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A Melanoma Patient-Derived Xenograft Model

Les modèles de xénogreffe (PDX) dérivés du patient récapitulent plus solidement les caractéristiques moléculaires et biologiques du mélanome et sont plus prédictifs de la réponse thérapeutique par rapport aux essais traditionnels fondés sur la culture des tissus plastiques. Nous décrivons ici notre protocole d'exploitation standard pour l'établissement de nouveaux modèles PDX et la caractérisation/expérimentation des modèles PDX existants.

Un modèle de xénogreffe dérivé du mélanome

Accumulating evidence suggests that molecular and biological properties differ in melanoma cells grown in traditional two-dimensional tissue culture ...

Le PDX a révolutionné les études précliniques expérimentales sur le cancer. Nous pouvons maintenant imiter, en laboratoire, ce qui se passe chez les patients. Et maintenant, nous pouvons travailler sur la façon de surmonter la résistance et comment, à long terme, nous pouvons augmenter la survie des patients.La démonstration de la procédure sera Min Xiao. Pour commencer, transférez le tissu précédemment recueilli de mélanome à une boîte stérile de Petri. En travaillant avec des ciseaux chirurgicaux, la lame de scalpel, et des forceps, d’abord enlever le tissu normal du tissu normal autant que possible.Et puis enlever le tissu nécrotique identifié par le tissu blanc pâle-ish situé centralement dans la tumeur. Ensuite, utilisez un scalpel pour subdiviser un morceau initial de tumeur en morceaux à peu près égaux pour l’implantation chirurgicale de souris. Si le tissu tumoral est trop dur pour la dissociation mécanique, utilisez un scalpel pour émincer les morceaux de tumeur aussi finement que possible pour former une boue.Transférer le lisier dans un tube de 50 millilitres avec la solution de sel équilibré de Hank froid sans ions calcium et magnésium. Centrifugeuse à 220 fois g pendant quatre minutes à quatre degrés Celsius. Après avoir enlevé le supernatant, re-suspendre le lisier en 10 millilitres de réchauffer, les médias de digestion fraîche par gramme de tissu tumoral.Placez le tube dans un bain d’eau de 37 degrés Celsius pendant 20 minutes et mélangez vigoureusement toutes les cinq minutes avec une pipette jetable. Laver le lisier à l’aide de jusqu’à 50 millilitres de HBSS, centrifugeuse à 220 fois g pendant quatre minutes à quatre degrés Celsius, puis enlever le supernatant. Ajouter cinq millilitres de tampon TEG préchauffé par gramme de tissu tumoral, secouer pour suspendre doucement, et placer le tube à 37 degrés Celsius pendant deux minutes, sans mélanger.Pour étancher la trypsine, ajouter au moins un volume égal de supports de coloration à froid et de centrifugeuse à 220 fois g pendant quatre minutes à quatre degrés Celsius. Après avoir enlevé le supernatant, ajouter 10 millilitres de colorant par gramme de tissu tumoral, et re-suspendre la pastille par pipetting de haut en bas. Filtrez-le à travers une passoire à cellules de 40 micromètres pour obtenir une suspension à cellule unique pour l’injection de souris.Pour implanter l’excision chirurgicale ou le tissu chirurgical de biopsie, rasez d’abord les cheveux du bas du dos des souris anesthésiées de six à huit semaines de NSG, laissant une zone d’environ 1,5 centimètres à trois centimètres sans cheveux. Préparez des morceaux de tumeur, et divisez le lisier de tumeur dans un Petri en monticules individuels pour l’implantation chirurgicale. À l’aide d’une lame de scalpel, faire une incision d’environ cinq millimètres de long au centre de l’arrière de la souris.Avec une paire de forceps, la vie jusqu’à la peau sur le côté de l’incision en face de l’opérateur. Avec des ciseaux dans l’autre main, séparer la peau de la couche musculaire en coupant doucement la membrane fasciale avec de petites coupures de ciseaux, créant ainsi une poche pour le tissu tumoral. Utilisez une lame de scalpel pour ramasser un mandrin tumoral, ainsi qu’un monticule individuel de tissu de boue tumorale, et placez doucement le tissu dans la poche créée.Ajoutez ensuite 100 microlitres de matrice extracellulaire artificielle sur le monticule de tissu tumoral dans la poche. À l’aide de deux paires de forceps, tirez vers le haut de l’incision sur les deux extrémités de sorte que les bords de la plaie s’approchent l’un de l’autre. Appliquez ensuite un ou deux clips de plaie pour fermer la plaie.Injecter subcutanément un à cinq milligrammes par kilogramme d’analgésique. Lorsque la guérison est complètement, après environ sept jours, enlever les clips de la plaie. Surveillez les souris une fois par semaine pour vérifier s’il y a des tumeurs palpables.Une fois que les tumeurs atteignent un volume désiré, utilisez des forceps chirurgicaux pour soulever la peau adjacente à la tumeur de la souris euthanasiée et faire une coupe horizontale à l’aide de ciseaux incurvés. Utilisez une technique de séparation émoussée pour mobiliser la peau des deux côtés de la tumeur et sur la tumeur, exposant la tumeur. Utilisez des ciseaux et une lame de scalpel pour séparer la tumeur du fascia.Découpez la tumeur et transférez-la dans une boîte de Pétri stérile. Couper la tumeur en petits morceaux et enlever le tissu nécrotique de la tumeur. Pour banquer le tissu tumoral pour l’implantation future, prenez deux à trois petits morceaux de tumeur et hachez-les en morceaux plus petits qu’un par un millimètre.Transférer tous les tissus hachés dans une vile cryogénique de deux millilitres. Ajouter un millilitre de congélation des médias et bien mélanger. Placer les flacons dans un contenant de congélation cellulaire pré-refroidi à base d’isopropanol sur de la glace sèche, conserver le contenant dans un congélateur de moins 80 degrés Celsius pendant la nuit, puis transférer les flacons dans un entrepôt d’azote liquide.Pour casser le tissu de gel pour des analyses en aval, placez les morceaux de tissu de tumeur dans un flacon cryogénique, mettez la vile cryogénique dans l’azote liquide immédiatement, et stockez les flacons dans un congélateur de moins 80 degrés Celsius. Quand trois méthodes différentes de tissu de tumeur croissant ont été comparées, la suspension simple de cellules de tumeur avec l’utilisation de la digestion enzymatique était la plus réussie. En plus de permettre une croissance tumorale plus rapide, il était également suffisant pour une tumeur initiale d’être étendue à 10 à 20 souris, tandis que le mandrin tumoral et la méthode du lisier ne peuvent être étendus qu’en cinq à 10 souris.Les modèles de xénogreffe patients-dérivés du mélanome reflètent souvent la sensibilité de drogue que le patient a montrée en thérapie. Une xénogreffe dérivée du patient de mélanome qui a au commencement répondu à un inhibiteur de BRAF, mais finalement rechuté, a également montré la sensibilité initiale à l’inhibition de protéine de BRAF, plus l’inhibiteur de kinase de MEK, mais les tumeurs ont finalement rechuté. Il est essentiel de prendre soin lors de la préparation des tissus PDX pour les opérations bancaires, car cela assurera le succès dans les futures expansions PDX, essais thérapeutique, ainsi que la caractérisation.Avec le matériel de PDX, le séquençage d’ARN simple de cellules, le séquençage exome entier, et la caractérisation protéomique, sont parmi les nombreuses méthodes que notre laboratoire tire parti pour disséquer la résistance de thérapie. La technique PDX permet aux chercheurs d’étudier la résistance à la thérapie à l’aide de cellules tumorales qui récapitulent mieux la biologie tumorale chez un patient humain par rapport aux modèles de cancer traditionnels cultivés sur du plastique. Cet avantage permet des idées plus prédictives.Les chercheurs devraient toujours prendre soin et utiliser le niveau de biosécurité deux précautions lors de la manipulation des tissus tumoraux dérivés d’un patient humain.

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Development and Maintenance of a Preclinical Patient Derived Tumor Xenograft Model for the Investigation of Novel Anti-Cancer Therapies

Développement et maintenance d&#39;une tumeur du patient Préclinique dérivé modèle de xénogreffe de l&#39;enquête de Novel Anti-Cancer Therapies

Patient derived tumor xenograft (PDTX) models provide a necessary platform in facilitating anti-cancer drug development prior to human trials. Human tumor ...

Recherche

Recherche en cancérologie

Tumor Engraftment in a Xenograft Mouse Model of Human Mantle Cell Lymphoma

Greffe de la tumeur dans un modèle murin de xénogreffe de lymphome du manteau homme

B lymphocytes are key players in immune cell circulation and they mainly home to and reside in lymphoid organs. While normal B cells only proliferate when ...

Establishment of a Primary Culture of Patient-derived Soft Tissue Sarcoma

Mise en place d’une Culture primaire de sarcome des tissus mous dérivé de Patient

Soft tissue sarcomas (STS) represent a spectrum of heterogeneous malignancies with a difficult diagnosis, classification, and management. To date, more ...

A 3D Organotypic Melanoma Spheroid Skin Model

Un modèle de peau 3D organotypique mélanome sphéroïde

Malignant transformation of melanocytes, the pigment cells of human skin, causes formation of melanoma, a highly aggressive cancer with increased ...

Patient-derived Orthotopic Xenograft Models for Human Urothelial Cell Carcinoma and Colorectal Cancer Tumor Growth and Spontaneous Metastasis

Modèles de xénogreffe orthopiques dérivés du patient pour le carcinome humain de cellules urotheliales et la croissance de tumeur de cancer colorectal et la métastasie spontanée

Cancer patients have poor prognoses when lymph node (LN) involvement is present in both high-grade urothelial cell carcinoma (HG-UCC) of the bladder and ...

Patient-derived Heterogeneous Xenograft Model of Pancreatic Cancer Using Zebrafish Larvae as Hosts for Comparative Drug Assessment

Modèle de xénogreffe hétérogène dérivé par le patient du cancer du pancréas à l'aide de larves de poisson zèbre comme hôtes pour l'évaluation comparative des médicaments

Patient-derived tumor xenograft (PDX) and cell-derived tumor xenograft (CDX) are important techniques for preclinical assessment, medication guidance and ...

Establishment of Gastric Cancer Patient-derived Xenograft Models and Primary Cell Lines

Établissement de modèles de xénogreffe dérivés du cancer gastrique et de lignées cellulaires primaires

The use of preclinical models to advance our understanding of tumor biology and investigate the efficacy of therapeutic agents is key to cancer research. ...

Generation of a Liver Orthotopic Human Uveal Melanoma Xenograft Platform in Immunodeficient Mice

Génération d'un foie orthotopic Human Uveal Melanoma Xenograft Platform in Immunodeficient Mice

In recent decades, subcutaneously implanted patient-derived xenograft tumors or cultured human cell lines have been increasingly recognized as more ...

The Establishment and Utilization of Patient Derived Xenograft Models of Central Nervous System Metastasis

L’établissement et l’utilisation de modèles de xénogreffes dérivés de patients de métastases du système nerveux central

The development of novel therapies for central nervous system (CNS) metastasis has been hindered by the lack of preclinical models that accurately ...

Assessment of Chimeric Antigen Receptor T Cell-Associated Toxicities Using an Acute Lymphoblastic Leukemia Patient-Derived Xenograft Mouse Model

Évaluation des toxicités associées aux lymphocytes T du récepteur de l’antigène chimérique à l’aide d’un modèle murin xénogreffé dérivé d’un patient atteint de leucémie lymphoblastique aiguë

Chimeric antigen receptor T (CART) cell therapy has emerged as a powerful tool for the treatment of multiple types of CD19+ malignancies, which has led to ...