Name: assessing the cellular immune response of the fruit fly, drosophila melanogaster, using an in vivo phagocytosis assay
Uploaded: 2019-04-10T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an In Vivo Phagocytosis Assay at JoVE.com

Die Autoren danken Dr. Beth Gonzalez und Dr. Aprajita Garg für Unterstützung bei der Durchführung der Phagozytose in-vivo-Experimente. Ein NSF UMD ADVANCE Seed Grant und UMD NIH T32 Ausbildung Zuschüsse, Zelle und Molekularbiologie (CMB) und der Wirt-Pathogen Interaktionen (HPI) finanziert diese Arbeit.

1. bereiten Sie Fluorescein Partikel zur Injektion
<ol><li>10 mg im Handel erhältlichen, Hitze getötet Bakterien rekonstruieren Partikel mit Fluorescein gekennzeichnet (siehe Tabelle der Materialien) Lager Konzentration von 10 mg/mL durch Zugabe von 990 µL steriler 1 X PBS und 10 µL 50 mM Natriumazid. Vortex mischen.<ol>
<li>In Einweg-8 µL-Aliquots in 0,2 mL Röhrchen teilen und speichern in einer dunklen Box bei 4 ° C, Lichtempfindlichkeit verbunden zu minimieren. Hinweis: Konservierungsmitte...

<ol>
	<li>Akira, S., Uematsu, S., Takeuchi, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogen+recognition+and+innate+immunity.">Pathogen recognition and innate immunity.</a> Cell. 124 (4), 783-801 (2006).</li><li>Kim, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studying+host-pathogen+interactions+and+innate+immunity+in+Caenorhabditis+elegans.">Studying host-pathogen interactions and innate immunity in Caenorhabditis elegans.</a> Disease Models &amp; Mechanisms. 1 (4-5), 205-208 (2008).</li><li>Lemaitre, B., Hoffmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+host+defense+of+Drosophila+melanogaster.">The host defense of Drosophila melanogaster.</a> Annual Review Immunology. 25, 697-743 (2007).</li><li>Wu, L. 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P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+glutamate-dependent+redox+system+in+blood+cells+is+integral+for+phagocytosis+in+Drosophila+melanogaster.">A glutamate-dependent redox system in blood cells is integral for phagocytosis in Drosophila melanogaster.</a> Current Biology. 23 (22), 2319-2324 (2013).</li><li>Nazario-Toole, A. E., Robalino, J., Okrah, K., Corrada-Bravo, H., Mount, S. M., Wu, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Splicing+Factor+RNA-Binding+Fox+Protein+1+Mediates+the+Cellular+Immune+Response+in+Drosophila+melanogaster.">The Splicing Factor RNA-Binding Fox Protein 1 Mediates the Cellular Immune Response in Drosophila melanogaster.</a> Journal of Immunology (Baltimore, Md: 1950). 201 (4), 1154-1164 (2018).</li><li>Guille, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Molecular Methods in Developmental Biology: Xenopus and Zebrafish. , (1999).</li><li>Koundakjian, E. J., Cowan, D. M., Hardy, R. W., Becker, A. 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Handelsübliche, Eindringmittel beschrifteten Partikel werden zur Phagozytose im Allgemeinen (0,2 µm Carboxylat-modifizierte Mikrosphären) oder Phagozytose von Mikroben (Eindringmittel beschriftet Hitze- oder chemisch tote Bakterien oder Hefe) zu beurteilen. Um Phagosom Reifung zu beurteilen, können Forscher wählen Sie Partikel beschriftet mit einem pH-Sensitive-Farbstoff, der fluoresziert, wenn der pH-Wert von neutral zu sauer, wie in der Phagolysosome abnimmt. Alternativ um die ersten Schritte der Phag...

Angeborenen Immunabwehr bilden die erste Verteidigungslinie gegen pathogene Keime. Diese Reaktionen können funktionell humorale und zelluläre angeborene Immunität unterteilt werden, die beide durch Keimbahn-kodierte Muster Anerkennung Rezeptoren (PRRs), die Pathogen-assoziierte molekulare Muster (PAMPs)1Sinn vermittelt werden. Ein Großteil der Signalwege und Effektor Mechanismen der angeborenen Immunität sind bei Säugetieren und Wirbellose Tiere, wie z. B. der Fadenwurm Caenorhabditis Elegans und der Fruchtfliege Drosophila Melanogaster2konserviert. Die Fruchtfliege ist ein leistungsfähiges System Host Verteidigung gegen infektiöse Mikroorganismen3studieren entstanden. Drosophila ist genetisch gefügig, einfach und kostengünstig in Laboratorien, aufgezogen und hat eine kurze Generationszeit. Darüber hinaus weist der Fruchtfliege hoch effiziente Abwehr gegen ein Array von Mikroben, die Prüfung der Host Immunität gegen virale, bakterielle, Pilze oder parasitäre Erreger aktivieren.
Drosophila Immunologen haben historisch verwendet vorwärts genetischer Bildschirme, genomweiten RNA-vermittelte Interferenz (RNAi screening von Insekten Zelllinien und bereits vorhandene mutierte Fliege Stämme um angeborene Immunität – führt zu untersuchen) die Identifizierung und Charakterisierung der mehrere evolutionär konservierte humorale Immunsystem Wege4,5,6,7,8. Die angeborene humorale Immunantwort ist wohl, das beste gekennzeichnet Immunabwehr bei Fruchtfliegen. Nach Infektion führt die humorale Antwort zu die Produktion und die systemische Freisetzung von antimikrobiellen Peptid (AMP) Moleküle in die Hämolymphe, das Blut gleichwertig in Insekten. Verstärker sind von hoch konservierte Maut und Imd Signalwege produziert. Der Maut-Pfad ist homolog zu Säugetieren TLR/IL-1R-Rezeptor Signalgebung und der Imd-Pfad ist homolog zu Säugetieren Tumor-Nekrose-Faktor-Alpha-Signalisierung. In Drosophila, Maut Signalisierung wird induziert durch Gram-positiven Bakterien, Pilze und Drosophila X Virus6,9,10 und Imd Signalisierung wird induziert durch gramnegative Bakterien11 ,12.
Zelluläre Immunität, bestehend aus Kapselung, Melanization und Phagozytose invasive Erreger durch spezialisierte Blutkörperchen genannt Hemocytes13durchgeführt. Es gibt drei Klassen von Hemocytes in der Taufliege: Kristall Zellen, Lamellocytes und Plasmatocytes13. Kristall-Zellen, die machen 5 % der zirkulierenden Hemocytes in Larven frei ProPhenoloxidase (d) Enzyme führt zu Melanization Erreger und Wirt Gewebe an Wunde Stellen. Lamellocytes, die normalerweise nicht in gesunden Embryonen oder Larven gefunden werden, sind adhärente Zellen, die Fremdkörper zu Kapseln. Diese Zellen induziert werden, beim Pupariation oder beim Fliegen Wespe Eier in die Larven hinterlegt sind. Phagocytic Plasmatocytes, die 95 % der zirkulierenden Hemocytes bei Larven und alle restlichen Hemocytes bei Erwachsenen ausmachen, spielen eine Rolle im Gewebe Umbau während der Entwicklung und vor allem dienen als die wichtigsten Effektor-Zelle von Drosophila zelluläre Immunität.
Phagozytose eine unmittelbare und entscheidende Linie der angeborenen Immunabwehr; Mikroben, die die Host epitheliale Barriere zu durchbrechen sind schnell verschlungen und eliminiert durch phagocytic Blutzellen (für eine umfassende Überprüfung der Zellbiologie der Phagozytose siehe Referenz 14). Dieser Prozess wird eingeleitet, wenn Keimbahn-codierte Mustererkennung Rezeptoren (PRRs) auf Hemocytes Erreger erkennen molekulare Muster (PAMPs) von Mikroben verbunden. Nach der Bindung an ihre Ziele, initiieren PRRs Signalisierung Kaskaden, die zur Bildung von Scheinfüßchen durch Aktin Zytoskelett Umgestaltung führen. Die Scheinfüßchen umgeben die Mikrobe, die anschließend verschlungen und in einer im Entstehen begriffenen Organell, das Phagosom verinnerlicht. Mikroben sind zerstört, als die Phagosom das Phagosom Reifung durchläuft wenn das Phagosom Opfer von in Richtung des Inneren der Hemocyte Menschenhandel ist und durch eine Reihe von Wechselwirkungen mit Lysosomen säuert. In Vitro und Zelle haben Studium der Biologie in Säugetierzellen Primary maßgeblich bei der Identifizierung und Charakterisierung von Faktoren, die Phagozytose, wie Säugetier-Fc-Gamma-Rezeptor und C3b Rezeptoren15,16zu regulieren. Dennoch sind die Fähigkeit zum Ausführen von großen Bildschirmen oder in vivo Studien in Säugetier-Systeme beschränkt.
Hier präsentieren wir Ihnen einen in-vivo Assay für Phagozytose bei Erwachsenen Fruchtfliegen, basiert auf einem Verfahren erstmals im Labor von David Schneider in 200017. Das Schneider-Labor zeigte, dass festsitzende Hemocytes gruppierten entlang der Abdominal-dorsalen Gefäß leicht Polystyrol-Kügelchen und Bakterien phagozytieren. Um Phagozytose zu visualisieren, fliegen mit Gewebekulturen beschrifteten Partikel (z. B. E. Coli mit Fluorescein erfolgt (E. Coli -FITC) gekennzeichnet), injiziert sind für 30 Minuten zu Hemocytes Zeit, um die Partikel zu verschlingen inkubiert und dann mit Trypan blau, die die Fluoreszenz der Partikel nicht phagozytiertes während der Inkubationszeit stillt injiziert. Fliegen dorsalen Gefäße werden dann abgebildet mit einem inversen Fluoreszenz-Mikroskop. Diese Samen-Papier mit ein relativ einfaches Experiment nachgewiesen, dass Hemocytes Bakterien phagozytieren und Latex Perlen, dass bakterielle Phagozytose durch die Injektion von Pre gehemmt werden können mit Latex Perlen fliegt und fliegt ohne zelluläre und humorale Immunantworten sind auch anfällig für E. Coli. Der Test in diesem Bericht vorgestellten baut auf der Arbeit von Schneider-Lab, in-vivo Phagozytose durch Messung der Fluoreszenzintensität von Partikeln durch dorsale Schiff verbundenen Hemocytes verschlungen zu quantifizieren.
Ähnlich wie bei dem Ansatz Säugetier-Systeme, Drosophila Genetiker ursprünglich verwendet genomweite in-vitro-RNAi-Bildschirme um zu identifizieren, die für die zelluläre Immunantwort18,19,20 erforderlich ,21,22,23. Jedoch ermöglichte die Entwicklung des Erwachsenen in-vivo Phagozytose Assays Follow-up-Experimente bereitwillig in ganze Tiere, so dass Forscher die biologischen überprüfen die Rolle der Faktoren, die in in-vitro-Studien durchgeführt werden. Dies war der Fall mit dem transmembrane Rezeptor Esser, die zunächst als ein bakterielle Rezeptor in einer RNAi-Bildschirm mit S224 Zellen identifiziert und dann später gezeigt, um Escherichia coli (E. Coli),, Enterococcus vermitteln Faecalis, und Staphylococcus Aureus (S. Aureus) Phagozytose in Erwachsene25.
Unser Labor beschäftigt die in-vivo Phagozytose Assay in vorwärts genetischer Bildschirme und genomweite Assoziationsstudien (unter Verwendung der Drosophila genetische Referenz Panel (DGRP)), um neuartige Gene zu identifizieren, die Phagozytose in Erwachsenen Hemocytes zu regulieren. Diese Studien führten bis hin zur Charakterisierung der Rezeptoren PGRP-SC1A und PGRP-SA26, die intrazelluläre Vesikel Handel Protein Rab1427, die Glutamat-Transporter Polyphem28und RNA-bindende Protein Fox-129.
Wir gehen davon aus, dass zukünftige Bildschirme unter Einbeziehung der in-vivo Phagozytose zur Identifizierung von zusätzlichen Gene führen könnte, die wichtig für die zelluläre Immunantwort bei Drosophilasind. Bildschirme mit vollständig sequenziert Inzuchtlinien, z. B. die DGRP oder die Drosophila synthetische Bevölkerung Ressource (DSPR), können natürliche Varianten die Phagozytose oder Hemocyte Entwicklung zu identifizieren. Darüber hinaus könnte die Technik angenommen in andere Arten von Drosophila oder verwendet, um Bildschirm neue Community-Ressourcen, wie z. B. die Sammlung von 250 Drosophila -Arten gepflegt durch die nationalen Drosophila Arten Lager Center (NDSSC ) an der Cornell University. Diese Experimente durchgeführt werden können mit Gewebekulturen beschriftet bakterielle oder Pilzinfektionen-Wand Bioparticles, die im Handel erhältlich sind oder können mit einer beliebigen Anzahl von bakterielle oder Pilzinfektionen Arten – vorausgesetzt, dass die Mikrobe fluoreszierenden Marker drückt durchgeführt werden .

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.2&#956;m Red Fluorescent Carboxylate Modified FluoSpheres</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>F8810</td>
			<td>Fluorescently-labeled latex beads to test general phagocytic capacity of phagocytes. (~580/~605 nm) Inject a 1:20 dilution in PBS with 5% dye.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5430-10 PicoNozzle Kit</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>5430-10</td>
			<td>Holder for 1.0mm pipette</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E. coli (K-12 Strain) BioParticles, Alexa Fluor 488 conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>E13231</td>
			<td>Killed E. coli labeled with Alexa Fluor 488. Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-negative bacteria. (~495/~519 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E. coli (K-12 Strain) BioParticles, Alexa Fluor 594 conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>E23370</td>
			<td>Killed E. coli labeled with Alexa Fluor 594. Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-negative bacteria. (~590/~617 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E. coli (K-12 Strain) BioParticles, Fluorescein conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>E2861</td>
			<td>Killed E. coli labeled with FITC (Fluorescein). Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-negative bacteria. (~494/~518 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E. coli (K-12 Strain) BioParticles, Texas Red conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>E2863</td>
			<td>Killed E. coli labeled with Texas Red. Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-negative bacteria. (~595/~615 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E. coli (K-12 Strain) BioParticles, Texas Red conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>E2863</td>
			<td>Killed E. coli labeled with Texas Red. Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-negative bacteria. (~595/~615 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Pipette Puller</td>
			<td>David Kopf Instruments</td>
			<td>Model 725</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pHrodo Red E. coli BioParticles Conjugate for Phagocytosis</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>P35361</td>
			<td>Killed E. coli labeled with pHrodo Red. Use to test phagocyte reconition, uptake, and phagosome maturation of gram-negative bacteria. (~560/~585 nm). No need to quench with Trypan Blue.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pHrodo Red S. aureus BioParticles Conjugate for Phagocytosis</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>A10010</td>
			<td>Killed S. aureus labeled with pHrodo Red. Use to test phagocyte reconition, uptake, and phagosome maturation of gram-positve bacteria. (~560/~585 nm). No need to quench with Trypan Blue.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pneumatic PicoPump PV820</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>SYS-PV820</td>
			<td>The World Precision Instruments Pneumatic PicoPump PV820 uses differential pressures to hold liquid in the glass needle between injections. The user manually controls short bursts of gas pressure to expel the liquid &#8211; allowing delivery of sub-nanoliter volumes. The amount of liquid delivered depends on two main variables &#8211; the size of the glass needle opening and the amount of time injection pressure is applied. set the instrument to 100 ms &#8220;TIMED&#8221; mode.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S. aureus (Wood Strain without protein A) BioParticles, Alexa Fluor 488 conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>S23371</td>
			<td>Killed S. aureus labeled with Alexa Fluor 488. Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-positive bacteria. (~495/~519 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S. aureus (Wood Strain without protein A) BioParticles, Alexa Fluor 594 conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>S23372</td>
			<td>Killed S. aureus labeled with Alexa Fluor 594. Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-positive bacteria. (~590/~617 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S. aureus (Wood Strain without protein A) BioParticles, Fluorescein conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>E2851</td>
			<td>Killed S. aureus labeled with FITC (Fluorescein). Use to test phagocyte recogntion and uptake of gram-positive bacteria. (~494/~518 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thin Wall Glass Capillaries</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>TW100F-3</td>
			<td>Needles for injection. OD = 1.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue Solution (0.4%)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T8154</td>
			<td>Used to quench extracellular fluorescence of Fluorescein, Alexa Fluor, or Texas Red labeled particles.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZEISS SteREO Microscope (Discovery.V8)</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>SteREO Discovery.V8</td>
			<td>Inverted fluorescence microscope for imaging flies. Use a digital camera (example: AxioCam HC camera) and the accompanying software (example: AxioVision 4.7 software) to take pictures.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zymosan A (Saccharomyces cerevisiae) BioParticles, Alexa Fluor 488 conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>Z23373</td>
			<td>Killed labeled with Alexa Fluor 488. Use to test phagocyte recogntion and uptake of yeast. (~495/~519 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zymosan A (Saccharomyces cerevisiae) BioParticles, Alexa Fluor 594 conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>Z23374</td>
			<td>Killed labeled with Alexa Fluor 594. Use to test phagocyte recogntion and uptake of yeast. (~590/~617 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zymosan A (Saccharomyces cerevisiae) BioParticles, Fluorescein conjugate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>Z2841</td>
			<td>Killed labeled with FITC (Fluorescein). Use to test phagocyte recogntion and uptake of yeast. (~494/~518 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zymosan A (Saccharomyces cerevisiae) BioParticles, Texas Red</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>Z2843</td>
			<td>Killed labeled with Texas Red. Use to test phagocyte recogntion and uptake of yeast. (~595/~615 nm)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

assessing the cellular immune response of the fruit fly, drosophila melanogaster, using an in vivo phagocytosis assay

Bei allen Tieren bietet die angeborene Immunität eine sofortige und robuste Verteidigung gegen ein breites Spektrum von Krankheitserregern. Humorale und zelluläre Immunantwort sind die Hauptzweige der angeborenen Immunität, und viele der Faktoren, die zur Regelung dieser Reaktionen sind evolutionär konserviert zwischen Wirbellosen und Säugetiere. Phagozytose, die zentraler Bestandteil der zellulären angeborenen Immunität erfolgt durch spezialisierte Zellen des Immunsystems. Die Fruchtfliege Drosophila Melanogaster, entstanden als ein leistungsfähiges genetisches Modell, die molekularen Mechanismen und physiologischen Auswirkungen der Phagozytose in ganze Tiere zu untersuchen. Hier zeigen wir einen Injektion-basierte in-vivo Phagozytose Assay um die Partikel Aufnahme und Zerstörung von Blutkörperchen Drosophila , Hemocytes zu quantifizieren. Das Verfahren ermöglicht Forschern genau steuern die Partikelkonzentration und Dosis, macht es möglich, hoch reproduzierbare Ergebnisse in kürzester Zeit zu erhalten. Das Experiment ist quantitativ, einfach durchzuführen, und Bildschirm für Host Faktoren dieser Einfluss Erreger Anerkennung, Aufnahme und Abstand angewendet werden können.

Abbildung 1Azeigt eine schematische Darstellung des in-vivo Phagozytose Assays mit Fluorescein-markierten Partikeln. Fliegen sind berittene Bauchseite nach unten auf ein Stück Isolierband und die ersten beiden Segmente des Abdomens, wo der dorsale Gefäß befindet, ist deutlich sichtbar (Abb. 1 b). Hauptquellen der experimentellen Fehler entstehen bei der Injektion und imaging-Schritte des Verfahrens (Abbild...

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Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an In Vivo Phagocytosis Assay

Dieses Protokoll beschreibt einen in-vivo Phagozytose Assay in Erwachsenen Drosophila Melanogaster , Phagozyten Anerkennung und Räumung von mikrobiellen Infektionen zu quantifizieren.

Beurteilung der zellulären Immunantwort der Fruchtfliege Drosophila Melanogaster, mit einem In-Vivo-Phagozytose-Assay

In all animals, innate immunity provides an immediate and robust defense against a broad spectrum of pathogens. Humoral and cellular immune responses are ...

Dieser in vivo Phagozytose-Assay ermöglicht es Forschern, genetische Screens und genomweite Assoziationsstudien durchzuführen, um neuartige Gene zu identifizieren, die die Phagozytose in adulten Blutzellen regulieren. Dieses Experiment ist quantitativ, einfach durchzuführen und kann auf das Screening von lebenden Tieren auf Wirtsfaktoren angewendet werden, die die Erkennung, Aufnahme und Clearance von Krankheitserregern beeinflussen. Nach dem Ziehen dünnwandigen Glaskapillaren mit einem Nadelzieher, verwenden Sie ein Mikrometer, um die Nadel unter dem Mikroskop zu halten, und verwenden Sie Nummer fünf, Feinpunkt, Edelstahl Pinzette, um die Spitze auf einen 100-Mikrometer-Spitzendurchmesser zu brechen.Um das Flüssigkeitsvolumen zu messen, das in jede Fliege injiziert wird, laden Sie eine Kapillarnadel mit steriler 5%Lebensmittelfärbung in PBS und vertreiben Sie die Flüssigkeit auf einen Tropfen Mineralöl auf einem 0,01-Millimeter-Mikrometer. 10 Mikroliter 1,6 Milligramm pro Milliliter Partikel auf ein kleines Quadrat Parafilm geben und die Flüssigkeit in die Nadel ziehen. Montieren Sie die Nadel in die Injektordüse und säumen Sie die anästhesierten Fliegen entlang ihres vorgesehenen Bereichs auf dem Fliegenpolster, ventrale Seite nach oben, mit den Köpfen, die nach vorne ausgerichtet sind.Legen Sie die Fläschchen in den entsprechenden Bereichen auf die Bank, und injizieren Sie die Fliegen an der oberen Ecke des Bauches mit fünf, 100-Millisekunden-Pumpen flüssigkeitsmenge, um insgesamt etwa 10 Nanoliter Partikel zu liefern. Übertragen Sie jede Fliege in die entsprechende Durchstechflasche, wie sie injiziert wird, unter Notierung der Zeit auf der Durchstechflasche. Als nächstes laden Sie eine neue Nadel mit 0,4%Trypan Blue Lösung, und stellen Sie den pneumatischen Injektor auf gated, um einen konstanten Luftstrom zu ermöglichen, um die Flüssigkeit aus der Nadel zu drücken.30 Minuten nach der ersten Injektion, injizieren Sie jeden Fliegenbauch mit Trypan Blue, bis die Bauchmuskeln voll und distended sind. Montieren Sie die Fliegen auf Mikroskop-Dias mit elektrischem Klebeband, ventrale Seite nach unten, schieben Sie die Flügel zur Seite der Fliege, um sie auf dem Band zu sichern. Dann drücken Sie vorsichtig den Kopf in das Band, um sicherzustellen, dass sich die Fliege nicht bewegt.Unmittelbar nachdem alle Fliegen gesichert sind, stellen Sie die Insekten, eine nach der anderen, bei einer 25- oder 32-fachen Vergrößerung auf einem invertierten Fluoreszenzmikroskop, das an einer Digitalkamera und einem Computer befestigt ist, ab und konzentrieren sich dabei auf das Dorsalgefäß jeder Fliege mit der Computersoftware für die Digitalkamera. Zeichnen Sie dann die Belichtungszeit und die Vergrößerung zwischen den Experimenten auf. Um die Fluoreszenz zu quantifizieren, öffnen Sie ein geeignetes bildgebendes Analyseprogramm, und öffnen Sie ein Bild.Um die Fluoreszenzintensität des dorsalen Gefäßes zu messen, zeichnen Sie ein Polygon um das dorsale Gefäß, und wählen Sie Messen aus, um die Fluoreszenzintensität innerhalb des Polygons aufzuzeichnen. Um die Hintergrundfluoreszenzintensität zu bestimmen, kopieren Sie das erste Polygon und verschieben Sie es in einen Bereich neben dem dorsalen Gefäß jeder Fliege. Wählen Sie dann Messen aus, und zeichnen Sie die Fluoreszenzintensität des Hintergrundbereichs auf.Um die Fluoreszenz des Dorsalgefäßes durch die Hintergrundfluoreszenz zu normalisieren, nachdem die Fluoreszenzintensitäten der übrigen Fliegen gemessen wurden, teilen Sie die dorsale Gefäßfluoreszenz durch die Hintergrundfluoreszenz auf und berechnen Die durchschnittliche normalisierte fluoreszenzierte Fluoreszenzintensität aller Fliegen in einem Stamm. Nach der Montage der ventralen Seite nach unten auf einem Stück elektrischem Klebeband sind die ersten beiden Segmente des Bauches, in denen sich das Rückengefäß befindet, deutlich sichtbar. Bei den Injektions- und Bildgebungsschritten des Verfahrens entstehen wichtige Quellen für experimentelle Fehler.Die Verwendung der gleichen Nadel, um mehrere Fliegen zu injizieren, kann dazu führen, dass es mit Fliegengewebe oder Partikeln verstopft wird. Fliegen, die nicht genügend Trypan Blue Fluoreszenz hell über ihren gesamten Bauch erhalten, was das Verhältnis des Rückengefäßes zur Hintergrundfluoreszenz reduzieren kann, wodurch das wahre Fluoreszenzintensitätsverhältnis des Tieres verringert wird. Fliegen sollten fotografiert werden, während sie durch Kohlendioxid immobilisiert werden, da aktiv bewegte Fliegen verschwommene Bilder erzeugen, die nicht quantifiziert werden können.Eine mutierte Linie aus der Zuker-Sammlung von Ethylmethansulfonat-behandelten Fliegen ist nicht in der Lage, gramnegative und grampositive Bakterien zu phagozytose und zeigt fast keine dorsale Gefäßfluoreszenz im in vivo phagozytose-Assay, gepaart mit dem isogenen Hintergrund Zuker-Stamm und einem weiteren gemeinsamen Laborkontrollstamm. Verfolgen Sie die Zeit und die Reihenfolge, in der Fliegen injiziert werden, um sicherzustellen, dass sich Fliegen in vergleichbaren Stadien der Erkennung und Aufnahme von Krankheitserregern befinden, wenn sie abgebildet werden. Die molekularen Mechanismen, die phagozytischen Defekten zugrunde liegen, können durch Untersuchung einzelner Hämozyten mit konfokaler Mikroskopie oder nach fluoreszenzaktivierter Zellsortierung oder durch magnetische Perlenisolierung von adulten Hämoszyten bestimmt werden.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an In Vivo Phagocytosis Assay

Multicolor Flow Cytometry Analyses of Cellular Immune Response in Rhesus Macaques

Multicolor Durchflusszytometrie Analysen der zellulären Immunantwort in Rhesusaffen

The rhesus macaque model is currently the best available model for HIV-AIDS with respect to understanding the pathogenesis as well as for the development ...

Forschung

Immunologie und Infektion

Seven Steps to Stellate Cells

Seven Steps to Cells Stellate

Hepatic stellate cells are liver-resident  cells of star-like morphology and are located in the space of Disse between  liver sinusoidal endothelial cells ...

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

Eine Einführung in die parasitischen Wespen<em&gt; Drosophila</em&gt; Und die antiparasitäre Immune Response

Most known parasitoid wasp species attack the larval or pupal stages of Drosophila. While Trichopria drosophilae infect the pupal stages of the host (Fig. ...

Intravital Imaging of the Mouse Thymus using 2-Photon Microscopy

Intravital Imaging of the Mouse Thymus mittels 2-Photonen-Mikroskopie

Two-photon Microscopy (TPM) provides image acquisition in deep areas inside tissues and organs. In combination with the development of new stereotactic ...

Quantitative Measurement of the Immune Response and Sleep in Drosophila

Quantitative Measurement of the Immune Response and Sleep in Drosophila

Quantitative Messung der Immunantwort und Sleep in<em&gt; Drosophila</em

A complex interaction between the immune response and  host behavior has been described in a wide range of species. Excess sleep, in  particular, is known ...

Quantification of the Respiratory Burst Response as an Indicator of Innate Immune Health in Zebrafish

Die Quantifizierung der Atem Burst Antwort als Indikator für Angeborene Immunsystem Gesundheit in Zebrafisch

The phagocyte respiratory burst is part of the innate immune response to  pathogen infection and involves the production of reactive oxygen species (ROS). ...

Investigating the Effects of Probiotics on Pneumococcal Colonization Using an In Vitro Adherence Assay

Investigating the Effects of Probiotics on Pneumococcal Colonization Using an In Vitro Adherence Assay

Untersuchung der Effekte von Probiotika auf Pneumokokken-Kolonisation Mit ein<em&gt; In-vitro-</em&gt; Einhaltung Assay

Adherence of Streptococcus pneumoniae (the pneumococcus) to the epithelial lining of the nasopharynx can result in colonization and is considered a ...

Using RNA-interference to Investigate the Innate Immune Response in Mouse Macrophages

Mit RNA-Interferenz, um die angeborene Immunantwort in Makrophagen der Maus Untersuchen

Macrophages are key phagocytic innate immune cells.  When macrophages encounter a pathogen, they produce antimicrobial proteins and compounds to kill the ...

In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection

In Vitro Analysis of Myd88-mediated Cellular Immune Response to West Nile Virus Mutant Strain Infection

In-vitro-Analyse Myd88-vermittelte zelluläre Immunantwort gegen das West-Nil-Virus-Infektion Mutantenstamm

An attenuated West Nile virus (WNV), a nonstructural (NS) 4B-P38G mutant, induced higher innate cytokine and T cell responses than the wild-type WNV in ...

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

Systemische bakterielle Infektion und Immunabwehr Phänotypen in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the premier model organisms for studying the function and evolution of immune defense. Many aspects of ...