Name: rabies necropsy techniques in large and small animals
Uploaded: 2019-07-30T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Rabies Necropsy Techniques in Large and Small Animals at JoVE.com

Biz bu projeyi desteklemek için sağlık Wadsworth Center New York Eyalet Bakanlığı minnettar. Biz de Amy Willsey ve Frank Blaisdell bölümü sağlık Wadsworth merkezi ve LL Ranch, Altamont, NY destek kabul etmek istiyorum.

Açıklanan tüm yöntemler Wadsworth Center kurumsal hayvan bakımı ve kullanım Komitesi (ıAYUC) tarafından onaylanmıştır.
1. hazırlık
<ol><li>Don PPE, minimum göz koruması (gözlük veya yüz kalkanı), cerrahi veya N-95 maske ve lateks içermeyen eldivenler.</li>
	<li>Tek kullanımlık çalışma yüzeyi (örn. Kraft kağıt veya emici pedler) ve temiz Otopsi aletleri (Şekil 1) ile, ideal olarak bir bio-güvenlik dolabı (BSc), çalışma alanı h...

<ol>
	<li>Centers for Disease Control and Prevention (CDC). <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=West+Nile+virus+activity+-+United+States,+2009.">West Nile virus activity - United States, 2009.</a> MMWR Morbidity and Mortality Weekly Report. 59 (25), 769-772 (2010).</li><li>McDaniel, C. J., Cardwell, D. M., Moeller, R. B., Gray, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Humans+and+cattle:+A+review+of+bovine+zoonoses.">Humans and cattle: A review of bovine zoonoses.</a> Vector Borne and Zoonotic Diseases. 14 (1), 1-19 (2014).</li><li>Zoonotic diseases. Merck Veterinary Manual Available from: <a target="_blank" href="https://www.merckvetmanual.com/public-health/zoonoses/zoonotic-diseases">https://www.merckvetmanual.com/public-health/zoonoses/zoonotic-diseases</a> (2019)</li><li>Wenner, L., Pauli, U., Summermatter, K., Gantenbein, H., Vidondo, B., Posthaus, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aerosol+generation+during+bone-sawing+procedures+in+veterinary+autopsies.">Aerosol generation during bone-sawing procedures in veterinary autopsies.</a> Veterinary Pathology. 54 (3), 425-436 (2017).</li><li>Green, F. H. Y., Yoshida, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characteristics+of+aerosols+generated+during+autopsy+procedures+and+their+potential+role+as+carriers+of+infectious+agents.">Characteristics of aerosols generated during autopsy procedures and their potential role as carriers of infectious agents.</a> Applied Occupational and Environmental Hygiene. 5 (12), 853-858 (1990).</li><li>Barrat, J., Meslin, F. X., Kaplan, M. M., Koprowski, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simple+technique+for+the+collection+and+shipment+of+brain+specimens+for+rabies+diagnosis.">Simple technique for the collection and shipment of brain specimens for rabies diagnosis.</a> Laboratory techniques in Rabies 4th Edition. , 425-427 (1996).</li><li>Ness, S. L., Bain, F. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=How+to+perform+an+equine+field+necropsy.">How to perform an equine field necropsy.</a> American Association of Equine Practitioners. 55, 313-316 (2009).</li><li>. Sample requirements for TSE testing and confirmation &#8211; EURL guidance Available from: <a target="_blank" href="https://science.vla.gov.uk/tse-lab-net/documents/tse-oie-rl-samp.pdf">https://science.vla.gov.uk/tse-lab-net/documents/tse-oie-rl-samp.pdf</a> (2019)</li><li>. Rabies reports Available from: <a target="_blank" href="https://www.wadsworth.org/programs/id/rabies/reports">https://www.wadsworth.org/programs/id/rabies/reports</a> (2019)</li><li>. Protocol for postmortem diagnosis of rabies in animals by direct fluorescent antibody testing: A minimum standard for rabies diagnosis in the United States Available from: <a target="_blank" href="https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf">https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf</a> (2019)</li><li>Miller, L. D., Davis, A. J., Jenny, A. L., Fekadu, M., Whitfield, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surveillance+for+lesions+of+bovine+spongiform+encephalopathy+in+U.S.+cattle.">Surveillance for lesions of bovine spongiform encephalopathy in U.S. cattle.</a> Developments in Biological Standardizations. 80, 119-121 (1993).</li><li>Andrews, C., Gerdin, J., Patterson, J., Buckles, E. L., Fitzgerald, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eastern+equine+encephalitis+in+puppies+in+Michigan+and+New+York+states.">Eastern equine encephalitis in puppies in Michigan and New York states.</a> Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 30 (4), 633-636 (2018).</li><li>Appler, K., Brunt, S., Jarvis, J. A., Davis, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clarifying+indeterminate+results+on+the+rabies+direct+fluorescent+antibody+test+using+real-time+reverse+transcriptase+polymerase+chain+reaction.">Clarifying indeterminate results on the rabies direct fluorescent antibody test using real-time reverse transcriptase polymerase chain reaction.</a> Public Health Reports. 134 (1), 57-62 (2019).</li><li>Rupprecht, C. E., Fooks, A. R., Abela-Ridder, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+7.+Brain+removal.">Chapter 7. Brain removal.</a> Laboratory techniques in Rabies 5th Edition. , 67-72 (2018).</li></ol>

Kuduz otopsi için gönderilen numuneler genellikle nörolojik bir hastalıktır ile uyumlu klinik belirtiler öyküsü vardır. Klinik hastalığın varlığı, Zoonotik hastalıklar da dahil olmak üzere çeşitli bozukluklar ile ilişkili olabilir, bir laboratuar personeli için risk artan enfeksiyon elde. Bu riskleri azaltmak için, numunelerin işlenmesi ve manipülasyonunu azaltan teknikler uygulanmaktadır.
Gösterilen Yöntemler sadece tek bir hayvandan istenen dokulardan kaldırmak i?...

Kuduz laboratuarının otopsi katında çalışmak doğal olarak tehlikelidir. Zaman zaman, numuneler gömülü kirpi quills, oklar/mermi/granül veya koruyucu nakliye Wrap nüfuz olabilir maruz kemik parçaları dahil yabancı nesneler ile gelir. Yanlış paketleme, numuneleri açmak isteyen bireyleri tehlikeye atarak sızıntıya neden olabilir. Fiziksel yaralanmalara ek olarak, otopsi teknisyenler CNS ve numunelerin vücut sıvılarından bilinmeyen zoonotik bulaşıcı ajanlar maruz risk. Ayrıca, numune tarafından taşınan Ektoparazitleri diğer zoonotik hastalıkları iletebilir, Pire ve keneler yaygın olarak sunulan hayvanların görülür. Coğrafi konuma ve türlere bağlı olarak maruz kalan hastalıklar farklılık gösterir. Doğu Equine Ensefalit virüsü (eeev) veya Batı Nil virüsü (WNV) gibi arbovirüsler, Lyme hastalığı veya Tularemi de dahil olmak üzere kene kaynaklı hastalıklar, Q ateşi veya tüberküloz neden bakteri, ve bulaşıcı prionlar olası tehlikeleri az sayıda isim1 , 2 , 3' ü yapın.
Bu yöntemlerin amacı, elektrikli aletlerin veya testere4,5' in aksine aerosolizasyon potansiyelini en aza indiren enstrümanları kullanarak güvenli ve verimli nekropsy teknikleri göstermektir. Genellikle, kuduz laboratuarında küçük hayvanların Nekropsi kranial kaslar uzağa kesme ve bir çekiç kullanarak ve kalvarium6kaudal dorsal kısmını açmak için kesmeli gerektirir. Kalvarium bu alanın çıkarılması arka beyin ortaya çıkarır, tüm beyinli ve kranial beyin kökü de dahil olmak üzere. Değiştirilmiş Otopsi teknikleri kafatası ventral kısmında yapılabilir, büyük kranial kaslar ve kafatası kalın bölgelerden kaçınarak. Ancak, bu değiştirilmiş Otopsi teknikleri sadece numune servikal vertebra olmadan mümkündür.
Benzer şekilde, büyük hayvanlarda beyin dokusu kafatası kasları ayırarak ve kafatasının kaudal dorsal kısmını açarak kaldırılabilir7. Büyük hayvanların kafatasları genellikle kalın olarak beyinli ve beyin kökü açığa çıkarmak için önemli çaba gereklidir. Kafatasının nüfuz edilmesini önlemek için, büyük bir hayvanın kafası, kafatasının Ventro-caudal kısmı teknisyene bakacak şekilde konumlandırılır. Modifiye enstrümanları kullanarak, serebellum ve beyin kökü foramen magnum üzerinden kaldırılır. Bu, TSE Avrupa Birliği referans laboratuvarı tarafından önerilen, Trans, Spongiform ensefalopati (TSE) araştırmaları için tavsiye edilen örnek edinme yöntemine benzerdir8. Cranial vertebra önceden foramen magnum erişim sağlamak için kaldırılmalıdır.
Bu tekniklerin uygulanması, kuduz laboratuvarlarında uygun şekilde eğitimli teknisyenler için faydalıdır. Kuduz laboratuvarı çeşitli boyutlarda örnekler aldığında, juvenil yarasalar yetişkin taslak atlar9, teknisyen bireysel koşula göre seçim için çeşitli yöntemler vardır. Büyük bir hayvan için gösterilen yöntem, alanda otopsi gerçekleştiren veterinerler için de uygundur, çünkü kuduz testi için tüm büyük bir hayvan kafası nakliye hantal ve pahalıdır. Bu tekniklerden herhangi birini uygulamak, aerosol üretiminin potansiyelini azaltarak, numunenin işlenmesini azaltarak ve işlem süresini tasarruf ederek güvenliği artıracaktır. Ancak, alanda kuduz testi için özel olarak ayarlanan bir laboratuar ile aynı avantajlara sahip olmadığı için, bu prosedürlerde yapılan değişikliklerin özellikle kişisel koruyucu ekipmanların (PPE) kullanımı güvenlik üzerine odaklanmasını gereklidir.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Chemistry spoon</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved, sharp-blunt mayo scissors</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>14-2055</td>
			<td>Sklar Operating Scissors 5-1/2 Inch Premium OR Grade Stainless Steel Finger Ring Handle Curved Sharp/Blunt</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Large sharp restaurant-quality carving knife</td>
			<td>Dexter</td>
			<td>P94848</td>
			<td>8&#34; Scalloped Utility Knife, white handle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Locking tumor-tenacula</td>
			<td>Diamond Scientific and Surgicals</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Czerny Tenaculum Forcep</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Modified stiletto knife (6.5 inch long blade carving knife ground to 0.5 inch wide)</td>
			<td>Dexter</td>
			<td>P94848</td>
			<td>Modified 8&#34; Scalloped Utility Knife, white handle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Orthopedic mallet-hammer</td>
			<td>Mortech</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Postmortem hammer with hook</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sharp councilman orthopedic bone chisel</td>
			<td>Shandon</td>
			<td>60-5</td>
			<td>Councilman&#39;s Chisel Blade: 2 in x 2.25 in standard 7 in</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sharpened tablespoon or other long handled spoon</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Smooth-tipped tissue dressing forceps without teeth</td>
			<td>Shandon</td>
			<td>63-03</td>
			<td>Shandon Broad Point Dressing Thumb Forceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Powder-free non-latex gloves</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safety glasses, goggles, or faceshield</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgery or N-95 mask</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kraft paper, butcher paper, absorbent pad, etc</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

rabies necropsy techniques in large and small animals

New York Devlet Sağlık Bakanlığı (NYSDOH) kuduz Laboratuvarı her yıl 9.000 numuneleri 6.000 arasında alır ve New York dışında tüm devlet için kuduz testi gerçekleştirir. Kuduz Laboratuvarı, yarasalardan boporn 'a kadar olan çeşitli hayvanları otopsi. Bu numunelerin çoğu hayvan nörolojik işaretler sergileme, ancak, az 10% aslında kuduz için test pozitif; Bu semptomların nedeni olarak travma, lezyonlar veya diğer bulaşıcı ajanlar ima. Tanısı konulmamış bulaşıcı ajanlar aerosolizasyon riski nedeniyle, kuduz Laboratuvarı elektrik aleti veya testereleri kullanmaz. Kafatasları makas ile girilmez hayvanlar için üç Otopsi teknikleri sunulacak. Laboratuar, enfeksiyöz ajanlar için potansiyel maruz kalma azaltmak, numunenin gereksiz manipülasyon ortadan kaldırmak ve işlem süresini azaltmak için bu teknikleri uyguladı. Tercih edilen bir tekniğin diğerine karşı avantajları, numunenin eğitilmiş bireyin işlenmesine tabidir.

31 Ocak 2019 ve 28 Şubat 2019 tarihleri arasında kafatası ile gönderilen tüm karasal numuneler, bir boyun varlığı ve toplanan otopsi yöntemi ile ilgili bilgiler vardı. Bu süre zarfında 170 kafaları temsil edilen 18 tür ile necropsied edildi. 52% (89/170) düzgün bir şekilde çökmemiş. Kalan üç tüm vücut örnekleri dahil olmak üzere en az bir vertebra bağlı vardı. % 75 (128/170) kullanılan ventral Yöntem, o zaman, bu boynları, 49 tarihinde mevcuttu. Bir boyun i...

Watch this Scientific Journal Video about Rabies Necropsy Techniques in Large and Small Animals at JoVE.com

Rabies Necropsy Techniques in Large and Small Animals

Bu protokolün amacı, kuduz testi için tatmin edici doku örnekleri elde etmek için küçük ve büyük hayvanlarda güvenli Otopsi teknikleri göstermektir.

Büyük ve küçük hayvanlarda kuduz Necropsy teknikleri

The New York State Department of Health (NYSDOH) Rabies Laboratory receives between 6,000 to 9,000 specimens annually and performs rabies testing for the ...

Kuduz testi için doku toplama hem bariz hem de belirgin tehlikeleri vardır. Teknisyen mevcut en güvenli yöntemleri kullanmalı ve uygun kişisel koruyucu ekipman giymelidir. Bu protokoller, elektrikli aletler veya testereler kullanmadan güvenli nekropsi teknikleri sağlar ve aerosol üretimini en aza indirir.Büyük hayvan protokolü de alanında yapılabilir. Sahada büyük hayvan numune salma yönteminin kullanılması, 45 kilogram ağırlığındaki bir hayvan kafasının laboratuvara taşınması zorluğunu ortadan kaldırır. Büyük hayvan yöntemi, transmissible süngerimsi ensefalopati örnek alımı için Avrupa protokolüne benzer ve beyin sapı ve beyincik kullanılarak herhangi bir araştırma için kullanılabilir.Ventral yöntemle beyincik ve beyin sapını almak için, numune ventral tarafını biyogüvenlik kabininin arkasına doğru distal olarak yönlendirilen burunla yukarı doğru yerleştirin. Baskın elinde bir ortopedik tokmak ve diğer taraftan bir meclis üyesi keski tutarak, temporal ve oksipital kemiklerin sağ tarafı arasında V şeklinde açıklık keski köşe noktası ile 45 derecelik bir açıyla keski yerleştirin. İki kemik ayrılana kadar keski tokmak ile üst vurun.Ve bazfenoid kemiğe bitişik bir kesik yapın. Az önce gösterildiği gibi, numunenin sol tarafındaki zamansal ve oksipital kemikleri ayırın. Ve beynin tüm rhombencephalon alanını ortaya çıkarmak için kafatasının V bölgesini aşağı doğru bükmek için keski kullanın.Daha sonra, beyin sapı ve beyincik dışarı kepçe makas ve forceps kullanın, gerektiğinde kafatasından kalan doku parçaları kaldırarak. Numune ventral alma pozisyonuna izin vermiyorsa, burun biyogüvenlik kabininin arkasına distal olarak yönlendirilmiş numune yiyişdirilir. Ve tenacula dişleri ile sol temporal kas kavramak için bir tümör tenacula kullanın.Doku etrafında dişleri kilitlemek için kolu sıkmak ve kemiğe temporal kas kesmek için keskin bir oyma bıçak kullanın. Tenakula ve bıçakla numuneyi 180 derece döndürün ve kafatasını ortaya çıkarmak için karşı temporal kastaki kesiği tekrarlayın. Başın orijinal yönünü döndürün ve keskiyi köşe noktası yla birlikte kafatasının ortasına, parietal ve intraparietal kemiklerin tam ortasındaki keskiye yerleştirin.Ve parietal kemik kafatasının üst yarısında yatay bir açıklık yapılana kadar tokmak ile keski üst grev. Örneği 180 derece döndürün ve kafatasının karşı tarafında az önce gösterildiği gibi bir açıklık yapın. Keski noktasını yatay açıklığa 90 derecelik bir açıyla ilk kesiğin ucuna yerleştirmek için gerekli olan başlığı yerleştirin ve açıklık oksipital kemiğe ulaşana kadar keskiye vurun.Aynı şekilde karşı oksipital kemik üzerinde bir açıklık yapmak için örnek rulo. Kafatasındaki açıklıklar, tenaculanın dişlerini alttaki kafatasına ters bir U.Insert'e benzemelidir ve serebrumun ve beyincik leilgili kaudal ucunu ortaya çıkarmak için kemiği geriye doğru çekmelidir. Sonra kavite içinde tüm beyincik dışarı gözetlemek için bir kepçe olarak makas kullanın.Ve foramenin beyin sapını çıkarmak için doku forsepsi kullan. Büyük hayvan serebellum ve beyin sapı alımı için, kafatasının dorsal kısmı nekropsi yüzeyi ile temas halinde olacak şekilde örnek konumlandırın. Kafatasının kaudal kısmı ve foramen magnum biyogüvenlik kabinesinin ön kısmına bakacak şekilde.Beyin sapını forceps ile kavrayın. Omurilik ve omurilik meninges arasında foramen magnum içine değiştirilmiş bir stiletto bıçak yerleştirin ve beyincik ve beyin sapı omurilik meninges ayırmak için omurilik etrafında ovmak. Sonra foramenin sapını forsepsle çıkar.Bıçak foramen magnum aracılığıyla takıldığında, yavaşça mümkün olduğunca kafatası boyunca takip etmek için bıçak açı ve nöral doku ve spinal meninges arasındaki boşluğa beyin altında ulaşmak için yeterince uzun bir sapı ile metal bir spatula veya bıçak takın. Omurilik menenjitlerinin koptuğundan emin olmak için beyincik çevresinde sonda. Menenjler tamamen kesildiğinde spatula rostrally ve dorsally beyincik kadar kepçe için ilerlemek.Sonra spatula ile beyincik dışarı kepçe. 31 Ocak 2019 ile 28 Şubat 2019 tarihleri arasında kafatasları ile gönderilen tüm karasal örneklerde boyun varlığı ve toplanan nekropsi yöntemi hakkında bilgiler vardı. Bu süre zarfında 170 baş nekropsied edildi ve 18 tür temsil edildi.%52'si düzgün bir şekilde kafası kesildi. Geri kalan üç bütün vücut örneği de dahil olmak üzere bağlı en az bir omur vardı. Ventral yöntem %75 oranında kullanıldı.Bunlardan 49'unda boyunlar vardı. Üç büyük hayvan teslim edildi ve iki durumda, büyük hayvan protokolü kullanıldı. Bir sincap ezilmiş bir kafatası ile sunuldu ve sadece deri kesip beyin dokusu maruz böylece gösterilen yöntemlerin hiçbiri kullanılmadı.Birden fazla hayvanı işlerken mikroskobik slaytlar yapmak için kullanılan veya moleküler yöntemlerden çıkarılan dokular, yeni eldiven aletleri ve temiz bir çalışma alanı kullanarak çapraz kontaminasyonu önler. Örnekler kuduz virüsü veya diğer zoonotik hastalıklar ile enfekte olabilir gibi bu protokolleri yaparken dikkatli olun. Keskin nesnelerin numunelerin içinde de bulunabileceğini unutmayın.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Electrode Fabrication and Implantation in Aplysia californica for Multi-channel Neural and Muscular Recordings in Intact, Freely Behaving Animals

Electrode Fabrication and Implantation in Aplysia californica for Multi-channel Neural and Muscular Recordings in Intact, Freely Behaving Animals

Elektrot İmalat ve İmplantasyon Aplysia californica Bozulmamış, Serbestçe Behaving Hayvanlar Çok kanallı Sinir ve Kas Kayıtlar

Recording from key nerves and muscles of Aplysia during feeding behavior allows us to study the patterns of neural control in an intact animal.  ...

Efficient Derivation of Human Neuronal Progenitors and Neurons from Pluripotent Human Embryonic Stem Cells with Small Molecule Induction

Küçük Molekül İndüksiyon Pluripotent İnsan Embriyonik Kök Hücreleri İnsan Nöronal atalarıdır ve Nöronlar Verimli türetilmesi

There is a large unfulfilled need for a clinically-suitable human neuronal cell source for repair or regeneration of the damaged central nervous system ...

Large-scale Recording of Neurons by Movable Silicon Probes in Behaving Rodents

Kemirgenler davranmak yılında Hareketli Silikon Problar tarafından Nöronlar Büyük ölçekli Kaydı

A major challenge in neuroscience is linking behavior to the collective activity of neural assemblies. Understanding of input-output relationships of ...

Design and Assembly of an Ultra-light Motorized Microdrive for Chronic Neural Recordings in Small Animals

Küçük Hayvanlar Kronik Sinir Kayıtlar için Ultra-hafif Motorlu Microdrive Tasarımı ve Montajı

The ability to chronically record from populations of neurons in freely behaving animals has proven an invaluable tool for dissecting the function of ...

Assessing Spatial Learning and Memory in Small Squamate Reptiles

Küçük pul pul Sürüngenler Mekansal Öğrenme ve Bellek değerlendirilmesi

Clinical research has leveraged a variety of paradigms to assess cognitive decline, commonly targeting spatial learning and memory abilities. However, ...

High-Resolution 3D Imaging of Rabies Virus Infection in Solvent-Cleared Brain Tissue

Solvent-temizlenmiş beyin dokusu kuduz virüs enfeksiyonu yüksek çözünürlüklü 3D görüntüleme

The visualization of infection processes in tissues and organs by immunolabeling is a key method in modern infection biology. The ability to observe and ...

Multi-Fiber Photometry to Record Neural Activity in Freely-Moving Animals

SerbestÇe Hareket Eden Hayvanlarda Nöral AktiviteYi Kaydetmek Için Çoklu Fiber Fotometri

Recording the activity of a group of neurons in a freely-moving animal is a challenging undertaking. Moreover, as the brain is dissected into smaller and ...

Generation of Oligodendrocytes and Oligodendrocyte-Conditioned Medium for Co-Culture Experiments

Oligodendrocytes ve Oligodendrocyte-Ko-Kültür Deneyleri için Şartlı Orta Üretimi

In the central nervous system, oligodendrocytes are well-known for their role in axon myelination, that accelerates the propagation of action potentials ...

Real-Time fMRI Brain Mapping in Animals

Hayvanlarda Gerçek Zamanlı fMRI Beyin Haritalaması

Dynamic fMRI responses vary largely according to the physiological conditions of animals either under anesthesia or in awake states. We developed a ...

Subretinal Transplantation of Human Embryonic Stem Cell-Derived Retinal Tissue in a Feline Large Animal Model

Bir Kedi Büyük Hayvan Modelinde İnsan Embriyonik Kök Hücre Kaynaklı Retinal Dokunun Subretinal Transplantasyonu

Retinal degenerative (RD) conditions associated with photoreceptor loss such as age-related macular degeneration (AMD), retinitis pigmentosa (RP) and ...