1. klargøring af værktøj og tilbehør
<ol><li>Spids/tragt propper
	<ol>
<li>Få to svamp propper (diameteren af stikkene skal være lidt større end den indvendige diameter af hætteglassene, der anvendes til at overføre fluer). Lav et hul i centrene af svamp propper med en opvarmet elektrisk loddekolbe.</li>
		<li>Få to 1 mL pipettespidser, skær en i halvt på tværs med en skarp kniv, og kassér den spidde ende. Skær derefter 1,5 cm af den spidde ende af den anden pipettespids. Lim resterne af...

<ol>
	<li>Jennings, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+&#8211;+a+versatile+model+in+biology+&#38;+medicine.">Drosophila &#8211; a versatile model in biology &#38; medicine.</a> Materials Today. 14 (5), 190-195 (2011).</li><li>JoVE Science Education Database. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biology I: yeast, Drosophila and C. elegans. An Introduction to Drosophila melanogaster. , (2018).</li><li>Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+Culture+of+Drosophila.">Laboratory Culture of Drosophila.</a> Drosophila Protocols. , (2000).</li><li>Greenspan, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fly+pushing:+The+theory+and+practice+of+Drosophila+genetics.">Fly pushing: The theory and practice of Drosophila genetics.</a> Cold Spring Harbor Laboratory Press. , (2004).</li><li>Ashburner, M., Thompson, J., Ashburner, M., Wright, T. R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+laboratory+culture+of+Drosophila.">The laboratory culture of Drosophila.</a> The genetics and biology of Drosophila. 2a, 1-109 (1978).</li><li>Ratterman, D. M., O&#39;Donnell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eliminating+ether+by+using+ice+for+Drosophila+labs.">Eliminating ether by using ice for Drosophila labs.</a> Tested Studies For Laboratory Teaching. , 259-265 (2003).</li><li>. Culturing techniques for Drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf">https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf</a> (2019)</li><li>Markow, T. A., O&#39;Grady, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: A Guide to Species Identification and Use. , (2006).</li><li>Artiss, T., Hughes, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Taking+the+Headaches+Out+of+Anesthetizing+Drosophila:+A+Cheap+&#38;+Easy+Method+of+Constructing+Carbon+Dioxide+Staging.">Taking the Headaches Out of Anesthetizing Drosophila: A Cheap &#38; Easy Method of Constructing Carbon Dioxide Staging.</a> The American Biology Teacher. 69 (8), e77-e80 (2007).</li><li>Qu, W. -. H., Zhu, T. -. B., Yang, D. -. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Modified+Cooling+Method+and+its+Application+in+Drosophila+Experiments.">A Modified Cooling Method and its Application in Drosophila Experiments.</a> Journal Of Biological Education. 49 (3), 302-308 (2015).</li><li>. Egg-laying cages for drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17">https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17</a> (2018)</li><li>Roberts, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: a practical approach. , (1998).</li><li>Tang, M., Peng, Q. -. F., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+devices+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Two devices for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 45 (11), 49-50 (2010).</li><li>Zhou, T. -. y., Gan, J., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+sponge+plug+and+sponge+plug+based+fly+transferring+device+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Preparation of sponge plug and sponge plug based fly transferring device for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 46 (6), 49-50 (2011).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Genetics laboratory investigation. , (2016).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carnivory+in+the+larvae+of+Drosophila+melanogaster+and+other+Drosophila+species.">Carnivory in the larvae of Drosophila melanogaster and other Drosophila species.</a> Scientific Reports. 8, (2018).</li><li>Stocker, H., Gallant, P., Dahmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Getting+Started:+An+Overview+on+Raising+and+Handling+Drosophila.">Getting Started: An Overview on Raising and Handling Drosophila.</a> Drosophila: Methods and Protocols. , (2008).</li></ol>

Nogle hjemmelavede værktøjer til håndtering af grundlæggende aktiviteter involveret i Drosophila opdræt og eksperimenter er beskrevet i dette dokument. Disse værktøjer er enkle, men ret effektive. Næsten, enhver Lab kan gøre disse værktøjer med lethed, og en forskning eller et undervisningslaboratorium behøver ikke at finde et færdiggjort alternativ, der er måske ikke tilgængelig lokalt.
Fly overførsel er den mest almindeligt praksis og en vanskelig opgave i Drosop...

Frugten flue, Drosophila melanogaster, er en model organisme udbredt i biologisk forskning og biologi uddannelse til at studere en bred vifte af emner1,2. De grundlæggende problemer med håndtering Drosophila er overførsel af voksne fra hætteglas til hætteglas og immobilisering af fluer, så de er lettere at håndtere, som alle voksne (bortset fra nogle mutanter3,4) kan flyve.
Konventionelt, en forsker overførsler flyver fra et hætteglas til et andet ved at holde to hætteglas mund til mund, tappe fluer ned eller tillade fluer at flyve op i et andet hætteglas, derefter adskille og genkoble begge hætteglas4. Det kræver naturligvis, at åbningen af to hætteglas med samme diameter, og det er svært at kontrollere mængden af fluer overført. I mellemtiden, dette kræver hurtige hænder til at få arbejdet gjort, og undslippe herreløse fluer kan resultere i problemer for laboratoriet eller klasseværelset. Tilføjelse af ekstra jomfru fluer eller mandlige fluer til et allerede forberedt kors er en anden rutineopgave i Drosophila eksperimenter. Konventionelt, skal fluer være immobiliseret i Cross hætteglasset før tilsætning af ekstra fluer.
Voksne Drosophila er rutinemæssigt bedøvet af ETHER, co2, eller Chilling5. Sammenlignet med ether og co2 eksponering, Chilling er den mest omkostningseffektive agent for immobilisering voksne Drosophila og den mindst skadelige for både fluer og forskere (især unge studerende)6,7. Men vand, der kondenserer kontinuerligt på den kolde overflade eller kammer Wets fluer. Det er svært at bestemme fænotyper af våde fluer, og de kan nemt blive beskadiget under manipulation8,9. Dette har holdt chillings metoden fra at blive mere bredt accepteret.
Værktøjer til fly dokumentation og en metode til flyve køling er tidligere beskrevet10. Heri, en modificeret Chilling anæstesi teknik er rapporteret, der er sikker, pålidelig, og muligt for Drosophila eksperimenter. Også beskrevet i dette papir er 1) metoder til at dræbe voksne til optælling, sortering eller kassere, 2) arbejdsbesparende anordninger og protokoller til rengøring glas kultur hætteglas, og 3) en simpel bur til opsamling af æg. De let designede og omkostningseffektive værktøjer, der er beskrevet her, kan bruges til at løse de vanskelige problemer med flyve håndtering, og disse metoder er blevet testet og har vist sig at være robuste, pålidelige og nemme at håndtere for erfarne og uerfarne forskere.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>a pair of pliers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cordless drill driver</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>max speed: 500 rpm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electric soldering iron</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>file</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>funnel</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>diameter of disk&#60;60mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ice box</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>insect pins</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>infrared thermometer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>HCIYET HT-830</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>long cuff rubber gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mechanical pencils</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>medical gauze</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microcentrifuge tube</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>100 ul</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microwave oven</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>internal diameter 60 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pipette tips</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic film</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;36 mm used to cover the empty vial</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>point tweezers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>protective work gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>re-freezable hard icepacks</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>26.5&#215;14.5&#215;2.5 cm or larger</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rubber air blower</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>snap cutter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>soft drink bottle</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>500 ml, internal diameter c.a. 65 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sponge stopper</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stainless steel sponges</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tube brush</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>vial</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;34 mm &#215; 90 mm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

simple homemade tools to handle fruit flies&#8212;drosophila melanogaster

Frugten flyver, Drosophila melanogaster, er meget udbredt både i biologisk forskning og biologi uddannelse. Håndtering af voksne fluer er almindeligt, men vanskeligt i praksis, som voksne fluer flyver. Demonstreret her er, hvordan man laver nogle enkle og omkostningseffektive værktøjer til at løse vanskelige problemer i håndteringen af Drosophila. Huller i skum propper er lavet, og pipettespidser eller tragte indsættes i hullerne. Fluer bevæger sig derefter kun i én retning ind i pipettespidsen/tragten, hvilket giver effektiv kontrol over overførslen af voksen Drosophila til eller fra et hætteglas. Eksisterende protokoller er blevet ændret for cool-bedøvelsesmidler fluer ved afkøling i knust is og overføre dem til en kold, hård is overflade. Is er dækket med et stykke medicinsk gaze, der holder immobiliserede fluer fra det kondenserede vand, når de undersøges under et stereomicroskop. Fluerne er endelig aflives til optælling og sortering eller kasseres ved microwaving. En flaske formet bur er også blevet udviklet til opsamling af æg, samt en arbejdsbesparende anordning og ledsagende protokol til rengøring glas kultur hætteglas.

T-og F-stopperne blev udviklet som et sæt af enkle værktøjer, der kan tilpasses og anvendes i enhver flyve overførsel aktiviteter. Overførsel af fluer fra en gammel kultur til flere friske kulturer indebærer fjernelse af propper af de friske hætteglas, erstatte dem med F-propper, derefter tappe ned fluer i det gamle hætteglas, hurtigt at fjerne stikket, og erstatte det med en T-prop. Hvis den gamle mad er kompakt, er det vigtigt at vende det gamle hætteglas og indsætte spidsen a...

Watch this Scientific Journal Video about Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃ¢â‚¬â€Drosophila melanogaster at JoVE.com

Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃƒÂ¢Ã¢â€šÂ¬Ã¢â‚¬ÂDrosophila melanogaster

Beskrevet her er brugen af flere hjemmelavede værktøjer til at overføre, chill, og dræbe voksne Drosophila, samt at rense glas kultur hætteglas og indsamle æg. Disse værktøjer er nemme at lave og er ret effektive i håndteringen af Drosophila.

Enkle hjemmelavede værktøjer til at håndtere frugt fluer —Drosophila melanogaster

The fruit fly, Drosophila melanogaster, is widely used both in biological research and biology education. Handling adult flies is common but difficult in ...

Det kan være udfordrende at overføre og immobilisere bananfluer. Ved hjælp af disse teknikker og værktøjer, kan du gøre rutinemæssig flyve overførsel og immobilisering lettere. De materialer, der er nødvendige for at gøre disse værktøjer er billige og nemme at opnå.Rådgivning og undervisning eller forskning lab kan gøre dem med lethed. Før du begynder denne procedure, skal du bruge en elektrisk sodlering jern til at gøre et hul i centrene for to svamp stik, der er større end den interne diameter af hætteglas, der vil blive brugt til at overføre fluer. Dernæst skal du bruge en skarp kniv til at skære en en-millimeter mikropipette spids tværgående i halve og til at skære 1,5 centimeter fra spidsen af en anden en-millimeter mikropipette spids.Lim stykkerne af de to pipettespidser sammen med et universalklæbemiddel. Sæt derefter den aflange mikropipettespids i et svampstik, og sæt en tragt ind i det andet svampestik, og hætten pipettespidserne med individuelle mikrotjættemikrocentrifugerør. For at forberede mikrodissektion nåle, skal du vælge insekt stifter, der matcher diametre af bly refills af ergonomiske mekaniske blyanter, og bruge et par tænger til at afskære den enøjede ender af stifterne.Derefter fil nedskæringer fladt, og erstatte bly i blyanter med de modificerede stifter. For at forberede en Drosophila æg indsamling sag, bruge en snap cutter til at skære en blød-plast 500-milliliter drikke flaske ca 2 / 3 ned i flasken, og bruge tape til at sikre en strimmel af kortpapir omkring en 60-millimeter diameter æblesaft plade. For at overføre de voksne fluer mellem hætteglassene skal tægtens stilk kontrolleres omhyggeligt i tragtproppen og spidsen af pipetten i spidsen.Bank fluerne ned i det første hætteglas, og udskift stikket med en spidsprop. Sæt det andet hætteglas med en tragtprop, og anslæm det første hætteglas over det andet hætteglas, således at pipettespidsenden af spidsen prop indsættes i tragtåbningen på tragtproppen. Bank kanten af det første hætteglas, så fluerne glider ud af pipettespidsen og gennem tængestammen i det andet hætteglas.Hvis gamle fødevarer i det første hætteglas bliver mindre kompakt og falder, når hætteglasset vendes, vendes det andet hætteglas over det første hætteglas, og fluerne kravler op i det andet hætteglas. Når det ønskede antal fluer er blevet overført, skal du adskille spidsen prop fra tragten prop, og erstatte spidsen prop med den oprindelige prop. Sæt derefter tragtproppen i det andet hætteglas ud med et passende stik.For voksen frugtflue immobilisering ved nedkøling, placere en genfrysning ispose, der er blevet kølet ved minus 80 grader Celsius i mindst 24 timer, ved stuetemperatur, og chill en tom hætteglas i knust is. 20 minutter senere, lidt fugte et stykke ikke-aseptisk medicinsk gaze, der er lidt mindre end den kølede ispose, med rindende vand. Placer gaze på overfladen af isen pack, så gaze klamrer sig tæt til overfladen af pakken.Brug derefter et stykke absorberende papir til at tørre vandet af det kølede, tomme hætteglas og overføre de voksne fluer, der skal immobiliseres, ind i hætteglasset. Når alle fluerne er blevet overført, dække det kølede hætteglas, og banke hætteglasset mod den knuste is to til tre gange for at banke alle fluerne til bunden af hætteglasset. Fluerne vil straks blive immobiliseret.Læg hætteglasset tilbage på isen i et minut, før fluerne hældes på den gaze, der dækker ispakken. Brug derefter en pensel til at sprede de overlappende fluer. For at undersøge de immobiliserede fluer under et stereomikroskop skal du fjerne sceneklippene fra det dissekerende mikroskop og dække scenen med et stykke plastfilm.Placer isposen på scenen, og tænd for mikroskopets kolde lyskilde som tilgængelig. Fokuser derefter stereomikroskopet, og flyt isposen, indtil de kølede fluer kan ses tydeligt. Efter at have set fluerne, overføre hver flue, ved vingen, i en ny kultur hætteglas.Til mikrobølgeoffer de voksne flyver til optælling, sortering eller kassering, overføre de voksne fluer af interesse i et tomt hætteglas, og dække hætteglasset med en petriskål. Derefter vendes hætteglasset inde i en mikrobølgeovn, og hætteglasset opvarmes ved standardtemperatur i 80 sekunder. De døde fluer vil falde ned i petriskålen.Iført beskyttende arbejdshandsker, hæld fluerne på et hvidt, papirkort, og overfør kortet under et stereomikroskop til undersøgelse og/eller optælling med de tidligere forberedte mikrodissektionsnåle. Fluerne kan kasseres ved undersøgelsens afslutning. Ved overførsel af ægformet ægopsamlingsbur indsættes den modificerede ægopsamlingskasseflaske i æblesaftpladen.Brug en stribe paraffinfilm til at forsegle leddet omkring de to komponenter. Næste sæt buret med en tragt prop, og vende kultur hætteglasset på proppen. Derefter tilsættes fluerne til buret, gennem tragtproppen, før du sætter buret med dyrkningsglasproppen.For at skifte maden overføres fluerne til et tomt hætteglas, før æblesaftpladen udskiftes med en ny plade. Overfør derefter fluerne fra hætteglasset tilbage til buret. I slutningen af ægsamlingen overføres fluerne til et tomt hætteglas, før fluerne overføres til flere nye kulturhætteglas.Ved hjælp af denne modificerede chill bedøvende metode, fluerne holdes immobile på isen pack, og den medicinske gaze, der absorberer kondenserende vand holder fluerne tørre og tillader fænotypebestemmelse eller håndtering af de kølede fluer med lethed. Ved stuetemperatur på 25 grader Celsius stiger temperaturen på overfladen af en kølet, hård ispose dramatisk, fra minus 19 grader Celsius til minus to grader Celsius, inden for 20 minutter, hurtigt at nå et plateau, der er sikkert for både gamle og nyudklækkede fluer. Mikrobølge dielektrisk opvarmning er en hurtigere og mere bekvem agent for at dræbe voksne fluer i forhold til over-etherizing eller dyb frysning.Svarende til over-etherized fluer, microwaved fluer udvide deres vinger vinkelret fra kroppen. Generelt er fluekroppe, der aflives ved mikroaffald, betydeligt lettere end dem, der aflives ved ether eller frysning, men varmen fordrejer ikke kropsformen, og kroppene bliver ikke sprøde eller fastslåede. Sørg for at presse så meget vand ud af den fugtede gaze som muligt, før du trykker på isen, og sørg for, at gazen klamrer sig tæt til isen.Det er også vigtigt at tørre kondensvandet af det afkølede, tomme hætteglas, før du overfører fluer ind i hætteglasset.

Research

JoVE Journal

Biology

Simple Homemade Tools to Handle Fruit Flies&#8212;Drosophila melanogaster

Studying Aggression in Drosophila (fruit flies)

Studying Aggression in Drosophila fruit flies

Aggression is an innate behavior that evolved in the framework of defending or obtaining resources.  This complex social behavior is influenced by ...

Using Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) to Develop Diagnostic Tools

Using Micro-Electro-Mechanical Systems MEMS to Develop Diagnostic Tools

Homemade Site Directed Mutagenesis of Whole Plasmids

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. With this method the cloned ...

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

In Drosophila melanogaster, as in other insects, a waxy layer on the outer surface of the cuticle, composed primarily of hydrocarbon compounds, provides ...

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Conserved nutrient sensing mechanisms exist between mammal and fruit fly where peptides resembling mammalian insulin and glucagon, respectively function ...

Isolation and Biophysical Study of Fruit Cuticles

Isolering og Biofysisk Undersøgelse af Frugt neglebånd

The cuticle, a hydrophobic protective layer on the aerial parts of terrestrial plants, functions as a versatile defensive barrier to various biotic and ...

Fruit Volatile Analysis Using an Electronic Nose

Frugt flygtige Analyse Brug af en elektronisk næse

Numerous and diverse physiological changes occur during fruit ripening, including the development of a specific volatile blend that characterizes fruit ...

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Måling af Levetid i<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aging is a phenomenon that results in steady physiological deterioration in nearly all organisms in which it has been examined, leading to reduced ...

High-throughput Functional Screening using a Homemade Dual-glow Luciferase Assay

High-throughput Funktionel Screening ved hjælp af en hjemmelavet Dual-glød Luciferase Assay

We present a rapid and inexpensive high-throughput screening protocol to identify transcriptional regulators of alpha-synuclein, a gene associated with ...