1. gereedschappen en accessoires voorbereiden
<ol><li>Tip/trechter stoppers
	<ol>
<li>Verkrijg twee spons pluggen (de diameter van de stekkers moet iets groter zijn dan de inwendige diameter van de flacons gebruikt voor het overbrengen van vliegen). Maak een gat in de centra van de spons pluggen met een verwarmde elektrische soldeerbout.</li>
		<li>Verkrijg twee pipetpunten van 1 mL, snijd één op de helft dwars met een scherp mes en gooi het puntige uiteinde weg. Snijd vervolgens 1,5 cm van het punti...

<ol>
	<li>Jennings, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+&#8211;+a+versatile+model+in+biology+&#38;+medicine.">Drosophila &#8211; a versatile model in biology &#38; medicine.</a> Materials Today. 14 (5), 190-195 (2011).</li><li>JoVE Science Education Database. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biology I: yeast, Drosophila and C. elegans. An Introduction to Drosophila melanogaster. , (2018).</li><li>Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+Culture+of+Drosophila.">Laboratory Culture of Drosophila.</a> Drosophila Protocols. , (2000).</li><li>Greenspan, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fly+pushing:+The+theory+and+practice+of+Drosophila+genetics.">Fly pushing: The theory and practice of Drosophila genetics.</a> Cold Spring Harbor Laboratory Press. , (2004).</li><li>Ashburner, M., Thompson, J., Ashburner, M., Wright, T. R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+laboratory+culture+of+Drosophila.">The laboratory culture of Drosophila.</a> The genetics and biology of Drosophila. 2a, 1-109 (1978).</li><li>Ratterman, D. M., O&#39;Donnell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eliminating+ether+by+using+ice+for+Drosophila+labs.">Eliminating ether by using ice for Drosophila labs.</a> Tested Studies For Laboratory Teaching. , 259-265 (2003).</li><li>. Culturing techniques for Drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf">https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf</a> (2019)</li><li>Markow, T. A., O&#39;Grady, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: A Guide to Species Identification and Use. , (2006).</li><li>Artiss, T., Hughes, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Taking+the+Headaches+Out+of+Anesthetizing+Drosophila:+A+Cheap+&#38;+Easy+Method+of+Constructing+Carbon+Dioxide+Staging.">Taking the Headaches Out of Anesthetizing Drosophila: A Cheap &#38; Easy Method of Constructing Carbon Dioxide Staging.</a> The American Biology Teacher. 69 (8), e77-e80 (2007).</li><li>Qu, W. -. H., Zhu, T. -. B., Yang, D. -. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Modified+Cooling+Method+and+its+Application+in+Drosophila+Experiments.">A Modified Cooling Method and its Application in Drosophila Experiments.</a> Journal Of Biological Education. 49 (3), 302-308 (2015).</li><li>. Egg-laying cages for drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17">https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17</a> (2018)</li><li>Roberts, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: a practical approach. , (1998).</li><li>Tang, M., Peng, Q. -. F., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+devices+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Two devices for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 45 (11), 49-50 (2010).</li><li>Zhou, T. -. y., Gan, J., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+sponge+plug+and+sponge+plug+based+fly+transferring+device+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Preparation of sponge plug and sponge plug based fly transferring device for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 46 (6), 49-50 (2011).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Genetics laboratory investigation. , (2016).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carnivory+in+the+larvae+of+Drosophila+melanogaster+and+other+Drosophila+species.">Carnivory in the larvae of Drosophila melanogaster and other Drosophila species.</a> Scientific Reports. 8, (2018).</li><li>Stocker, H., Gallant, P., Dahmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Getting+Started:+An+Overview+on+Raising+and+Handling+Drosophila.">Getting Started: An Overview on Raising and Handling Drosophila.</a> Drosophila: Methods and Protocols. , (2008).</li></ol>

In dit artikel worden enkele zelfgemaakte hulpmiddelen beschreven voor het verwerken van basisactiviteiten die betrokken zijn bij het fokken en experimenteren met Drosophila . Deze tools zijn eenvoudig maar wel effectief. Praktisch, elk lab kan deze tools gemakkelijk te maken, en een onderzoek of een onderwijs laboratorium hoeft niet te vinden van een kant-en-klare alternatief dat is misschien niet beschikbaar lokaal.
Fly-overdracht is de meest voorkomende praktijk en een moeilijke ta...

De fruitvlieg, Drosophila melanogaster, is een modelorganisme dat op grote schaal wordt gebruikt in biologisch onderzoek en biologie onderwijs om een breed scala aan onderwerpen1,2te bestuderen. De fundamentele problemen van de behandeling Drosophila zijn de overdracht van volwassenen van flacon naar injectieflacon en immobilisatie van de vliegen, zodat ze gemakkelijker te hanteren, als alle volwassenen (behalve voor sommige mutanten3,4) kan vliegen.
Conventioneel, een onderzoeker transfers vliegt van de ene flacon naar de andere door het houden van twee flesjes mond-tot-mond, het tikken van de vliegen naar beneden of het toestaan van vliegen om te vliegen in een andere flacon, vervolgens scheiden en opnieuw aansluiten beide flesjes4. Natuurlijk, dit vereist dat de opening van twee flesjes met dezelfde diameter, en het is moeilijk om de hoeveelheid vliegen overgedragen. Ondertussen vereist dit snelle handen om de klus te klaren, en ontsnappen aan zwerf vliegen kan resulteren in problemen voor het laboratorium of klaslokaal. Het toevoegen van extra Virgin vliegen of mannetjes vliegen naar een reeds voorbereide Kruis is een andere routine taak in Drosophila experimenten. Conventioneel, vliegen moet worden geïmmobiliseerd in het Kruis flacon voor de toevoeging van extra vliegen.
Volwassen Drosophila wordt routinematig verdoofd door ether, co2of chillen5. In vergelijking met ether en co2 blootstelling, is koeling de meest kostenefficiënte agent voor het immobiliseren van volwassen Drosophila en het minst schadelijk voor zowel de vliegen als onderzoekers (vooral jonge studenten)6,7. Echter, water dat continu condenseert op het koude oppervlak of de kamer voor de vliegen. Het is moeilijk om de fenotypes van natte vliegen te bepalen, en ze kunnen gemakkelijk beschadigd raken tijdens het manipuleren8,9. Dit heeft de koelmethode steeds meer geaccepteerd.
Tools voor Fly-transferal en een methode voor vlieg koeling zijn eerder beschreven10. Hierin wordt een gemodificeerde koel anesthesie techniek gerapporteerd die veilig, betrouwbaar en haalbaar is voor Drosophila experimenten. Ook beschreven in dit artikel zijn 1) methoden voor het doden van volwassenen voor het tellen, sorteren of verwijderen, 2) arbeidsbesparende apparaten en protocollen voor het schoonmaken van glazen cultuur flesjes, en 3) een eenvoudige kooi voor het verzamelen van eieren. De gemakkelijk ontworpen en kosteneffectieve instrumenten die hier worden beschreven, kunnen worden gebruikt om de moeilijke problemen van vlieg afhandeling aan te pakken, en deze methoden zijn getest en zijn bewezen robuust, betrouwbaar en gemakkelijk te hanteren voor ervaren en beginnende onderzoekers.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>a pair of pliers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cordless drill driver</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>max speed: 500 rpm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electric soldering iron</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>file</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>funnel</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>diameter of disk&#60;60mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ice box</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>insect pins</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>infrared thermometer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>HCIYET HT-830</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>long cuff rubber gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mechanical pencils</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>medical gauze</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microcentrifuge tube</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>100 ul</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microwave oven</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>internal diameter 60 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pipette tips</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic film</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;36 mm used to cover the empty vial</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>point tweezers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>protective work gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>re-freezable hard icepacks</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>26.5&#215;14.5&#215;2.5 cm or larger</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rubber air blower</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>snap cutter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>soft drink bottle</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>500 ml, internal diameter c.a. 65 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sponge stopper</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stainless steel sponges</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tube brush</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>vial</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;34 mm &#215; 90 mm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

simple homemade tools to handle fruit flies&#8212;drosophila melanogaster

De fruitvlieg, Drosophila melanogaster, wordt veel gebruikt zowel in biologisch onderzoek als in het biologie onderwijs. Het hanteren van volwassen vliegen is gebruikelijk, maar moeilijk in de praktijk, als volwassen vliegen vliegen. Hier wordt gedemonstreerd hoe u enkele eenvoudige en kosteneffectieve hulpmiddelen maakt om moeilijke problemen bij de behandeling van Drosophilaaan te pakken. Gaten in Foam stoppers worden gemaakt en pipetpunten of trechters worden in de gaten gestoken. Vliegen gaat dan slechts in één richting naar de pipetpunt/trechter assemblage, waardoor de overdracht van volwassen Drosophila in of uit een injectieflacon efficiënt kan worden besturen. Bestaande protocollen zijn aangepast voor koel-anesthetiserende vliegen door te koelen in gemalen ijs en ze over te dragen op een koud, hard icepack oppervlak. Het icepack is bedekt met een stukje medisch gaas dat geïmmobiliseerde vliegt uit het gecondenseerde water wanneer onderzocht onder een stereomicroscoop. De vliegen worden uiteindelijk geëerd voor het tellen en sorteren of weggegooid door Microwaving. Er is ook een fles vormige kooi ontwikkeld voor het verzamelen van eieren, evenals een arbeidsbesparend apparaat en een begeleidend protocol voor het reinigen van glazen kweek flesjes.

De T-en F-stoppers werden ontwikkeld als een set van eenvoudige gereedschappen die kunnen worden aangepast en gebruikt in elke Fly overdragen activiteiten. Het overdragen van vliegen van een oude cultuur in verschillende verse culturen omvat het verwijderen van de stekkers van de verse flesjes, vervangen door F-stoppers, dan aftappen van de vliegen in de oude injectieflacon, snel verwijderen van de stekker, en vervangen door een T-stopper. Als het oude voedsel compact is, dan is het belan...

Watch this Scientific Journal Video about Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃ¢â‚¬â€Drosophila melanogaster at JoVE.com

Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃƒÂ¢Ã¢â€šÂ¬Ã¢â‚¬ÂDrosophila melanogaster

Hier beschreven is het gebruik van verschillende zelfgemaakte tools om volwassen Drosophilaover te dragen, te koelen en te doden, evenals om glazen cultuur flesjes schoon te maken en eieren te verzamelen. Deze gereedschappen zijn gemakkelijk te maken en zijn vrij efficiënt in het hanteren van Drosophila.

Eenvoudige zelfgemaakte gereedschappen voor het hanteren van fruit vliegjes-Drosophila melanogaster

The fruit fly, Drosophila melanogaster, is widely used both in biological research and biology education. Handling adult flies is common but difficult in ...

Het kan een uitdaging zijn om fruitvliegjes over te brengen en te immobiliseren. Met behulp van deze technieken en tools u routinematige vliegoverdracht en immobilisatie eenvoudiger maken. De materialen die nodig zijn om deze tools te maken zijn goedkoop en gemakkelijk te verkrijgen.Advies- en onderwijs- of onderzoekslab kan ze met gemak maken. Gebruik voor het begin van deze procedure een elektrisch snikkend strijkijzer om een gat te maken in de centra van twee sponspluggen die groter zijn dan de interne diameter van de flacons die worden gebruikt om de vliegen over te brengen. Gebruik vervolgens een scherp mes om een micropipetpunt van één millimeter dwars doormidden te snijden en 1,5 centimeter van de punt van een tweede micropipetpunt van een millimeter af te snijden.Lijm de stukken van de twee pipettips samen met een all-purpose lijm. Steek vervolgens de langwerpige micropipetpunt in één sponsplug en steek een trechter in de andere sponsplug en dop de pipettetips af met individuele 100-microliter microcentrifugebuizen. Om de microdissection naalden voor te bereiden, selecteer insectenspelden die overeenkomen met de diameters van de loodvullingen van ergonomische mechanische potloden, en gebruik een tang om de eenogige uiteinden van de pinnen af te snijden.Dan bestand van de bezuinigingen plat, en vervang het lood in de potloden met de gewijzigde pinnen. Om een Drosophila ei inzameling geval voor te bereiden, gebruik een snap cutter om een zacht-plastic 500-milliliter drankfles ongeveer 2/3 in de fles te snijden, en gebruik tape om een strook kaartpapier rond een 60 millimeter diameter appelsapplaat te beveiligen. Om de volwassen vliegen tussen flacons over te brengen, controleer dan zorgvuldig de steel van de trechter in de trechterstop en de punt van de pipet in de tipstop.Tik op de vliegen in de eerste flacon, en vervang de stekker met een tip stop. Sluit de tweede flacon aan met een trechterstopper en plaats het eerste flesje over het tweede flesje zodat het pipettepunteind van de tipstop in de trechteropening van de trechterstop wordt geplaatst. Klop de rand van de eerste flacon om de vliegen uit de pipetpunt en door de steel van de trechter in de tweede flacon te laten glijden.Als een oud voedsel in de eerste flacon minder compact wordt en daalt wanneer de flacon wordt omgekeerd, keer dan de tweede flacon over de eerste flacon en laat de vliegen omhoog kruipen in de tweede flacon. Wanneer het gewenste aantal vliegen is overgedragen, scheidt u de tipstop van de trechterstop en vervangt u de tipstop door de originele stekker. Vervang vervolgens de trechterstopper in het tweede flesje door een geschikte stekker.Voor volwassen fruit vliegen immobilisatie door koelen, plaats een refreezable ijs pack, dat is gekoeld op min 80 graden Celsius voor ten minste 24 uur, op kamertemperatuur, en chill een lege flacon in gemalen ijs. 20 minuten later, iets bevochtigen een stuk van niet-aseptische medische gaas, dat is iets kleiner dan de gekoelde ijspak, met stromend water. Plaats het gaas op het oppervlak van het ijspak, zodat het gaas zich dicht aan het oppervlak van de verpakking vastklampt.Gebruik vervolgens een stuk absorberend papier om het water uit de gekoelde, lege flacon te vegen en de volwassen vliegen die moeten worden geïmmobiliseerd in de flacon over te brengen. Wanneer alle vliegen zijn overgebracht, dek de gekoelde flacon, en klop de flacon tegen het gemalen ijs twee tot drie keer om alle vliegen te tikken op de bodem van de flacon. De vliegen worden onmiddellijk geïmmobiliseerd.Plaats de flacon terug op ijs voor een minuut voordat het gieten van de vliegen op het gaas dat het ijs pack. Gebruik dan een penseel om de overlappende vliegen te verspreiden. Om de geïmmobiliseerde vliegen onder een stereomicroscoop te onderzoeken, verwijder de stadiumklemmen van de ontledenmicroscoop, en bedek het stadium met een stuk plastic film.Plaats de ijslaag op het podium en zet de koude lichtbron van de microscoop aan als beschikbaar. Richt vervolgens de stereomicroscoop en verplaats het ijspakket totdat de gekoelde vliegen duidelijk te zien zijn. Na het bekijken van de vliegen, breng elke vlieg, door de vleugel, in een nieuwe cultuur flacon.Om de volwassen vliegen voor het tellen, sorteren of weggooien in de magnetron op te offeren, breng je de volwassen vliegen van belang in een lege flacon en bedek je de flacon met een petrischaaltje. Vervolgens omkeren de flacon in een magnetron, en verwarm de flacon bij standaard temperatuur gedurende 80 seconden. De dode vliegen zullen in de petrischaal vallen.Het dragen van beschermende werkhandschoenen, giet de vliegen op een witte, papieren kaart, en breng de kaart onder een stereomicroscoop voor onderzoek en / of tellen met de eerder voorbereide microdissection naalden. De vliegen kunnen aan het einde van het onderzoek worden weggegooid. Voor flesvormige eieropvang kooi overdracht, steek de gewijzigde ei collectie kooi fles in de appelsap plaat.Gebruik een strook paraffine film om het gewricht rond de twee componenten te verzegelen. Sluit vervolgens de kooi aan met een trechterstopper en omker de cultuur flacon op de stop. Voeg vervolgens de vliegen toe aan de kooi, door de trechterstop, voordat u de kooi aansluit met de kweekbladstopper.Om het voedsel te veranderen, breng de vliegen naar een lege flacon voordat u de appelsapplaat vervangt door een nieuw bord. Breng vervolgens de vliegen van het flesje terug naar de kooi. Breng aan het einde van de eiercollectie de vliegen in een lege flacon voordat u de vliegen overzet naar verschillende nieuwe cultuur flesjes.Met behulp van deze gewijzigde chill verdoving methode, worden de vliegen gehouden onbeweeglijk op het ijs, en de medische gaas dat het condenserende water absorbeert houdt de vliegen droog en maakt fenotypering of behandeling van de gekoelde vliegen met gemak. Bij kamertemperatuur van 25 graden Celsius stijgt de temperatuur van het oppervlak van een gekoeld, hard ijspakket dramatisch, van min 19 graden Celsius tot min twee graden Celsius, binnen 20 minuten, en bereikt snel een plateau dat veilig is voor zowel oude als nieuw uitgebroede vliegen. Magnetron diëlektrische verwarming is een snellere, handiger middel voor het doden van volwassen vliegen in vergelijking met over-etheriserende of diepe bevriezing.Vergelijkbaar met over-etherized vliegen, magnetron vliegen uit te breiden hun vleugels in rechte hoeken van het lichaam. Over het algemeen zijn vliegenkarkassen gedood door microwaving aanzienlijk lichter in gewicht dan die gedood door ether of bevriezing, maar de hitte vervormt de lichaamsvorm niet en de karkassen worden niet knapperig of turgid. Zorg ervoor dat u zoveel mogelijk water uit het bevochtigde gaas knijpt voordat u het op het ijs stampt en zorg ervoor dat het gaas zich dicht aan het ijspak vastklampt.Het is ook belangrijk om het gecondenseerde water van de gekoelde, lege flacon af te vegen voordat u vliegt in de flacon overzet.

Research

JoVE Journal

Biology

Simple Homemade Tools to Handle Fruit Flies&#8212;Drosophila melanogaster

Studying Aggression in Drosophila (fruit flies)

Studying Aggression in Drosophila fruit flies

Studeren Agressie in Drosophila (fruitvliegjes)

Aggression is an innate behavior that evolved in the framework of defending or obtaining resources.  This complex social behavior is influenced by ...

Using Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) to Develop Diagnostic Tools

Using Micro-Electro-Mechanical Systems MEMS to Develop Diagnostic Tools

Met behulp van Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) voor diagnostische instrumenten te ontwikkelen

Homemade Site Directed Mutagenesis of Whole Plasmids

Homemade plaatsgerichte mutagenese van Whole Plasmids

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. With this method the cloned ...

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Dissectie van Oenocytes tegen Adult Drosophila melanogaster</em

In Drosophila melanogaster, as in other insects, a waxy layer on the outer surface of the cuticle, composed primarily of hydrocarbon compounds, provides ...

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Insuline-injectie en hemolymfe Extraction om de gevoeligheid voor insuline meten in het volwassenenonderwijs Drosophila melanogaster</em

Conserved nutrient sensing mechanisms exist between mammal and fruit fly where peptides resembling mammalian insulin and glucagon, respectively function ...

Isolation and Biophysical Study of Fruit Cuticles

Isolatie en Biofysische Studie van Fruit nagelriemen

The cuticle, a hydrophobic protective layer on the aerial parts of terrestrial plants, functions as a versatile defensive barrier to various biotic and ...

Fruit Volatile Analysis Using an Electronic Nose

Fruit Vluchtige analyse met behulp van een elektronische neus

Numerous and diverse physiological changes occur during fruit ripening, including the development of a specific volatile blend that characterizes fruit ...

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Meting van de levensduur in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aging is a phenomenon that results in steady physiological deterioration in nearly all organisms in which it has been examined, leading to reduced ...

High-throughput Functional Screening using a Homemade Dual-glow Luciferase Assay

High-throughput Functionele Screening met behulp van een zelfgemaakte Dual-gloed Luciferase Assay

We present a rapid and inexpensive high-throughput screening protocol to identify transcriptional regulators of alpha-synuclein, a gene associated with ...

Simple Method for Fluorescence DNA In Situ Hybridization to Squashed Chromosomes

Simple Method for Fluorescence DNA In Situ Hybridization to Squashed Chromosomes

Eenvoudige methode voor fluorescentie DNA<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridisatie aan Geplette Chromosomen

DNA in situ hybridization (DNA ISH) is a commonly used method for mapping sequences to specific chromosome regions. This approach is particularly ...