1. Préparation d'outils et d'accessoires
<ol><li>Arrêts tip/funnel
	<ol>
<li>Obtenir deux bouchons d'éponge (le diamètre des bouchons doit être légèrement plus grand que le diamètre interne des flacons utilisés pour transférer les mouches). Faire un trou dans les centres des bouchons d'éponge avec un fer à souder électrique chauffé.</li>
		<li>Obtenir deux pointes de pipette de 1 ml, couper une en deux transversalement avec un couteau pointu, et jeter l'extrémité pointue. Ensuite, coupe...

<ol>
	<li>Jennings, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+&#8211;+a+versatile+model+in+biology+&#38;+medicine.">Drosophila &#8211; a versatile model in biology &#38; medicine.</a> Materials Today. 14 (5), 190-195 (2011).</li><li>JoVE Science Education Database. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biology I: yeast, Drosophila and C. elegans. An Introduction to Drosophila melanogaster. , (2018).</li><li>Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+Culture+of+Drosophila.">Laboratory Culture of Drosophila.</a> Drosophila Protocols. , (2000).</li><li>Greenspan, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fly+pushing:+The+theory+and+practice+of+Drosophila+genetics.">Fly pushing: The theory and practice of Drosophila genetics.</a> Cold Spring Harbor Laboratory Press. , (2004).</li><li>Ashburner, M., Thompson, J., Ashburner, M., Wright, T. R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+laboratory+culture+of+Drosophila.">The laboratory culture of Drosophila.</a> The genetics and biology of Drosophila. 2a, 1-109 (1978).</li><li>Ratterman, D. M., O&#39;Donnell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eliminating+ether+by+using+ice+for+Drosophila+labs.">Eliminating ether by using ice for Drosophila labs.</a> Tested Studies For Laboratory Teaching. , 259-265 (2003).</li><li>. Culturing techniques for Drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf">https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf</a> (2019)</li><li>Markow, T. A., O&#39;Grady, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: A Guide to Species Identification and Use. , (2006).</li><li>Artiss, T., Hughes, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Taking+the+Headaches+Out+of+Anesthetizing+Drosophila:+A+Cheap+&#38;+Easy+Method+of+Constructing+Carbon+Dioxide+Staging.">Taking the Headaches Out of Anesthetizing Drosophila: A Cheap &#38; Easy Method of Constructing Carbon Dioxide Staging.</a> The American Biology Teacher. 69 (8), e77-e80 (2007).</li><li>Qu, W. -. H., Zhu, T. -. B., Yang, D. -. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Modified+Cooling+Method+and+its+Application+in+Drosophila+Experiments.">A Modified Cooling Method and its Application in Drosophila Experiments.</a> Journal Of Biological Education. 49 (3), 302-308 (2015).</li><li>. Egg-laying cages for drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17">https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17</a> (2018)</li><li>Roberts, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: a practical approach. , (1998).</li><li>Tang, M., Peng, Q. -. F., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+devices+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Two devices for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 45 (11), 49-50 (2010).</li><li>Zhou, T. -. y., Gan, J., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+sponge+plug+and+sponge+plug+based+fly+transferring+device+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Preparation of sponge plug and sponge plug based fly transferring device for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 46 (6), 49-50 (2011).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Genetics laboratory investigation. , (2016).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carnivory+in+the+larvae+of+Drosophila+melanogaster+and+other+Drosophila+species.">Carnivory in the larvae of Drosophila melanogaster and other Drosophila species.</a> Scientific Reports. 8, (2018).</li><li>Stocker, H., Gallant, P., Dahmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Getting+Started:+An+Overview+on+Raising+and+Handling+Drosophila.">Getting Started: An Overview on Raising and Handling Drosophila.</a> Drosophila: Methods and Protocols. , (2008).</li></ol>

Certains outils faits maison pour la manipulation des activités de base impliquées dans l'élevage et l'expérimentation d'origine d'origine d'origine d'origine d'origine sont décrits dans cet article. Ces outils sont simples mais plutôt efficaces. Pratiquement, n'importe quel laboratoire peut fabriquer ces outils facilement, et un laboratoire de recherche ou un laboratoire d'enseignement n'a pas besoin de trouver une alternative prête à l'emploi qui n'est peut-être pas disponible localement.
<p class...

La mouche des fruits, Drosophila melanogaster, est un organisme modèle largement utilisé dans la recherche biologique et l'éducation en biologie pour étudier un large éventail de sujets1,2. Les problèmes de base de la manipulation de Drosophila sont le transfert des adultes de flacon à flacon et l'immobilisation des mouches afin qu'ils soient plus faciles à manipuler, comme tous les adultes (sauf pour certains mutants3,4) peuvent voler.
Traditionnellement, un chercheur transfère les mouches d'une fiole à l'autre en tenant deux flacons bouche-à-bouche, en tapant sur les mouches vers le bas ou en permettant aux mouches de voler vers le haut dans une autre fiole, puis en séparant et en rebranchant les deux flacons4. Évidemment, cela exige que l'ouverture de deux flacons avec le même diamètre, et il est difficile de contrôler la quantité de mouches transférées. Pendant ce temps, cela nécessite des mains rapides pour faire le travail, et échapper aux mouches errantes peut entraîner des problèmes pour le laboratoire ou la salle de classe. L'ajout de mouches extra vierges ou de mouches mâles à une croix déjà préparée est une autre tâche de routine dans les expériences Drosophila. Traditionnellement, les mouches doivent être immobilisées dans le flacon de croix avant l'ajout de mouches supplémentaires.
Drosophila adulte sont systématiquement anesthésiés par l'éther, CO2, ou de refroidissement5. Par rapport à l'exposition à l'éther et au CO 2, le refroidissement est l'agent le plus économique pour immobiliser la drosophile adulte et le moins nocif pour les mouches et les chercheurs (surtout les jeunes étudiants)6,7. Cependant, l'eau qui se condense continuellement sur la surface froide ou la chambre mouille les mouches. Il est difficile de déterminer les phénotypes des mouches humides, et ils peuvent facilement être endommagés lors de la manipulation8,9. Cela a empêché la méthode de refroidissement de devenir plus largement acceptée.
Les outils pour le transfert de mouche et une méthode pour le refroidissement de mouche ont été précédemment décrits10. Ici, une technique modifiée d'anesthésie de refroidissement est rapportée qui est sûre, fiable, et faisable pour des expériences de Drosophila. Également décrit sa part dans ce document 1) les méthodes pour tuer les adultes pour le comptage, le tri ou le rejet, 2) les dispositifs et les protocoles d'économie de main-d'œuvre pour le nettoyage des flacons de culture du verre, et 3) une cage simple pour la collecte des œufs. Les outils faciles à concevoir et rentables décrits ici peuvent être utilisés pour répondre aux problèmes difficiles de la manipulation des mouches, et ces méthodes ont été testées et se sont avérées robustes, fiables et faciles à manipuler pour les chercheurs expérimentés et débutants.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>a pair of pliers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cordless drill driver</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>max speed: 500 rpm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electric soldering iron</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>file</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>funnel</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>diameter of disk&#60;60mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ice box</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>insect pins</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>infrared thermometer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>HCIYET HT-830</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>long cuff rubber gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mechanical pencils</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>medical gauze</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microcentrifuge tube</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>100 ul</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microwave oven</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>internal diameter 60 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pipette tips</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic film</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;36 mm used to cover the empty vial</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>point tweezers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>protective work gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>re-freezable hard icepacks</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>26.5&#215;14.5&#215;2.5 cm or larger</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rubber air blower</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>snap cutter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>soft drink bottle</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>500 ml, internal diameter c.a. 65 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sponge stopper</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stainless steel sponges</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tube brush</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>vial</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;34 mm &#215; 90 mm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

simple homemade tools to handle fruit flies&#8212;drosophila melanogaster

La mouche des fruits, Drosophila melanogaster, est largement utilisé à la fois dans la recherche biologique et l'éducation en biologie. La manipulation des mouches adultes est courante, mais difficile dans la pratique, car les mouches adultes volent. Démontré ici est de savoir comment faire quelques outils simples et rentables pour répondre à des questions difficiles dans le traitement de Drosophila. Des trous dans les bouchons de mousse sont faits et des bouts de pipette ou des entonnoirs sont insérés dans les trous. Les mouches se déplacent alors seulement dans une direction dans l'assemblage de pointe de pipette/funnel, permettant le contrôle efficace du transfert de Drosophila adulte dans ou hors d'une fiole. Les protocoles existants ont été modifiés pour les mouches d'anesthésie fraîche en se refroidissant dans la glace concassée et en les transférant sur une surface froide et dure. Le banquise est recouvert d'un morceau de gaze médicale qui maintient les mouches immobilisées de l'eau condensée lorsqu'elles sont examinées au microscope stéréomicroscope. Les mouches sont finalement euthanasiées pour le comptage et le tri ou jetées par micro-ondes. Une cage en forme de bouteille a également été développée pour la collecte des œufs, ainsi qu'un dispositif d'économie de main-d'œuvre et un protocole d'accompagnement pour le nettoyage des flacons de culture du verre.

Les T- et F-stoppers ont été développés comme un ensemble d'outils simples qui peuvent être adaptés et utilisés dans toutes les activités de transfert de mouche. Transférer les mouches d'une ancienne culture à plusieurs cultures fraîches implique d'enlever les bouchons des flacons frais, de les remplacer par des bouchons F, puis de tapoter les mouches dans l'ancienne fiole, de retirer rapidement sa prise et de la remplacer par un bouchon En T. Si l'ancien aliment est compact, a...

Watch this Scientific Journal Video about Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃ¢â‚¬â€Drosophila melanogaster at JoVE.com

Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃƒÂ¢Ã¢â€šÂ¬Ã¢â‚¬ÂDrosophila melanogaster

Décrit ici est l'utilisation de plusieurs outils faits maison pour transférer, refroidir et tuer d'adultes Drosophila, ainsi que pour nettoyer les flacons de culture du verre et de recueillir des œufs. Ces outils sont faciles à fabriquer et sont plutôt efficaces dans la manipulation de La Drosophila.

Outils faits maison simples pour manipuler les mouches des fruits—Drosophila melanogaster

The fruit fly, Drosophila melanogaster, is widely used both in biological research and biology education. Handling adult flies is common but difficult in ...

Il peut être difficile de transférer et d’immobiliser les mouches des fruits. En utilisant ces techniques et outils, vous pouvez faciliter le transfert et l’immobilisation des mouches de routine. Les matériaux nécessaires à la construction de ces outils sont peu coûteux et faciles à obtenir.Le laboratoire consultatif et d’enseignement ou de recherche peut les faire facilement. Avant de commencer cette procédure, utilisez un fer à sodlering électrique pour faire un trou dans les centres de deux bouchons d’éponge qui sont plus grands que le diamètre interne des flacons qui seront utilisés pour transférer les mouches. Ensuite, utilisez un couteau pointu pour couper une pointe de micropipette d’un millimètre transversalement en deux et pour couper 1,5 centimètre de la pointe d’une deuxième pointe de micropipette d’un millimètre.Collez les morceaux des deux pointes de pipette avec un adhésif tout usage. Insérez ensuite la pointe allongée de micropipette dans une prise d’éponge, et insérez un entonnoir dans l’autre prise d’éponge, et plafonnez les bouts de pipette avec les tubes individuels de microcentrifugeuse de 100 microlitres. Pour préparer les aiguilles de microdissection, sélectionnez des épingles à insectes qui correspondent aux diamètres des recharges de plomb des crayons mécaniques ergonomiques, et utilisez une paire de pinces pour couper les extrémités borgniques des broches.Puis classez les coupes à plat, et remplacez le plomb dans les crayons par les broches modifiées. Pour préparer un étui de collecte d’œufs Drosophila, utilisez un coupe-bouchon pour couper une bouteille de boisson en plastique souple de 500 millilitres environ 2/3 dans la bouteille, et utilisez du ruban adhésif pour fixer une bande de papier de carte autour d’une plaque de jus de pomme de 60 millimètres de diamètre. Pour transférer les mouches adultes entre les flacons, vérifiez soigneusement la tige de l’entonnoir dans le bouchon de l’entonnoir et le bout de la pipette dans le bouchon de pointe.Appuyez sur les mouches dans le premier flacon, et remplacer la fiche par un bouchon de pointe. Branchez le deuxième flacon à l’aide d’un bouchon en entonnoir et placez le premier flacon sur le deuxième flacon de sorte que l’extrémité pipette-pointe du bouchon de pointe soit insérée dans l’ouverture en entonnoir du bouchon en entonnoir. Frappez le bord du premier flacon pour permettre aux mouches de glisser hors de la pointe de la pipette et à travers la tige de l’entonnoir dans le deuxième flacon.Si une vieille nourriture dans le premier flacon devient moins compacte et tombe lorsque le flacon est inversé, inverser le deuxième flacon sur le premier flacon, et permettre aux mouches de ramper dans le deuxième flacon. Lorsque le nombre souhaité de mouches a été transféré, séparez le bouchon de pointe du bouchon de l’entonnoir et remplacez le bouchon d’extrémité par la fiche d’origine. Remplacez ensuite le bouchon en entonnoir dans le deuxième flacon par une prise appropriée.Pour l’immobilisation des mouches des fruits adultes par refroidissement, placez un sac de glace regelable, refroidi à moins 80 degrés Celsius pendant au moins 24 heures, à température ambiante, et refroidissez un flacon vide dans de la glace concassée. 20 minutes plus tard, humidifier légèrement un morceau de gaze médicale non aseptique, légèrement plus petite que la banquise réfrigérée, avec de l’eau courante. Placez la gaze sur la surface de la banquise de sorte que la gaze s’accroche étroitement à la surface de la meute.Ensuite, utilisez un morceau de papier absorbant pour essuyer l’eau du flacon froid et vide, et transférer les mouches adultes qui doivent être immobilisées dans le flacon. Lorsque toutes les mouches ont été transférées, couvrez le flacon réfrigéré et frappez le flacon contre la glace concassée deux à trois fois pour tapoter toutes les mouches au fond du flacon. Les mouches seront immédiatement immobilisées.Remettre le flacon sur la glace pendant une minute avant de verser les mouches sur la gaze qui recouvre la banquise. Ensuite, utilisez un pinceau pour étaler les mouches qui se chevauchent. Pour examiner les mouches immobilisées au microscope stéréo, retirez les clips de scène du microscope disséquant et couvrez la scène d’un morceau de film plastique.Placez la banquise sur la scène et allumez la source de lumière froide du microscope disponible. Ensuite, concentrez le microscope stéréo et déplacez la banquise jusqu’à ce que les mouches réfrigérées puissent être vues clairement. Après avoir vu les mouches, transférez chaque mouche, par l’aile, dans un nouveau flacon de culture.Pour sacrifier au micro-ondes les mouches adultes pour compter, trier ou jeter, transférer les mouches adultes d’intérêt dans un flacon vide, et couvrir le flacon avec une boîte de Petri. Ensuite, inverser le flacon à l’intérieur d’un four à micro-ondes, et chauffer le flacon à température standard pendant 80 secondes. Les mouches mortes tomberont dans la boîte de Petri.Porter des gants de travail protecteurs, verser les mouches sur une carte blanche en papier et transférer la carte au microscope stéréo pour examen et/ou compter avec les aiguilles de microdissection préparées précédemment. Les mouches peuvent être jetées à la fin de l’examen. Pour le transfert de cage de collecte d’oeufs en forme de bouteille, insérez la bouteille modifiée cage de collecte d’oeufs dans la plaque de jus de pomme.Utilisez une bande de film de paraffine pour sceller l’articulation autour des deux composants. Branchez ensuite la cage à l’aide d’un bouchon en entonnoir et inversez le flacon de culture sur le bouchon. Ajoutez ensuite les mouches à la cage, à travers le bouchon en entonnoir, avant de brancher la cage avec le bouchon de flacon de culture.Pour changer les aliments, transférer les mouches dans un flacon vide avant de remplacer l’assiette de jus de pomme par une nouvelle assiette. Ensuite, transférez les mouches du flacon vers la cage. À la fin de la collecte des œufs, transférer les mouches dans un flacon vide avant de transférer les mouches dans plusieurs flacons de nouvelle culture.En utilisant cette méthode d’anesthésie par refroidissement modifiée, les mouches sont maintenues immobiles sur la banquise, et la gaze médicale qui absorbe l’eau condensante maintient les mouches au sec et permet le phénotypage ou la manipulation des mouches réfrigérées avec facilité. À une température ambiante de 25 degrés Celsius, la température de la surface d’une banquise froide et dure augmente considérablement, de moins 19 degrés Celsius à moins deux degrés Celsius, en moins de 20 minutes, atteignant rapidement un plateau sûr pour les mouches anciennes et nouvellement écloses. Le chauffage diélectrique par micro-ondes est un agent plus rapide et plus pratique pour tuer les mouches adultes par rapport à la suréthisation ou au gel profond.À l’semblable aux mouches suréthisées, les mouches à micro-ondes étendent leurs ailes à angle droit du corps. En général, les carcasses de mouches tuées par micro-ondes ont un poids beaucoup plus léger que celles tuées par éther ou par congélation, mais la chaleur ne déforme pas la forme du corps, et les carcasses ne deviennent pas croquantes ou turgid. Assurez-vous de presser autant d’eau de la gaze humidifié que possible avant de la presser sur la banquise et de vous assurer que la gaze s’accroche étroitement à la banquise.Il est également important d’essuyer l’eau condensée du flacon froid et vide avant de transférer les mouches dans le flacon.

Research

JoVE Journal

Biology

Simple Homemade Tools to Handle Fruit Flies&#8212;Drosophila melanogaster

Studying Aggression in Drosophila (fruit flies)

Studying Aggression in Drosophila fruit flies

Etudier l&#39;agressivité chez les drosophiles (mouches des fruits)

Aggression is an innate behavior that evolved in the framework of defending or obtaining resources.  This complex social behavior is influenced by ...

Recherche

Biologie

Using Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) to Develop Diagnostic Tools

Using Micro-Electro-Mechanical Systems MEMS to Develop Diagnostic Tools

Utiliser Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) pour développer des outils diagnostiques

Homemade Site Directed Mutagenesis of Whole Plasmids

Mutagenèse dirigée maison des plasmides entiers

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. With this method the cloned ...

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Dissection de Oenocytes d&#39;adultes Drosophila melanogaster</em

In Drosophila melanogaster, as in other insects, a waxy layer on the outer surface of the cuticle, composed primarily of hydrocarbon compounds, provides ...

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Injection d&#39;insuline et d&#39;extraction hémolymphe pour mesurer la sensibilité d&#39;insuline dans les adultes Drosophila melanogaster</em

Conserved nutrient sensing mechanisms exist between mammal and fruit fly where peptides resembling mammalian insulin and glucagon, respectively function ...

Isolation and Biophysical Study of Fruit Cuticles

Isolement et étude biophysique des cuticules de fruits

The cuticle, a hydrophobic protective layer on the aerial parts of terrestrial plants, functions as a versatile defensive barrier to various biotic and ...

Fruit Volatile Analysis Using an Electronic Nose

Analyse de fruits instable avec un nez électronique

Numerous and diverse physiological changes occur during fruit ripening, including the development of a specific volatile blend that characterizes fruit ...

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Mesure de la durée de vie en<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aging is a phenomenon that results in steady physiological deterioration in nearly all organisms in which it has been examined, leading to reduced ...

High-throughput Functional Screening using a Homemade Dual-glow Luciferase Assay

Criblage à haut débit fonctionnelle utilisant une maison double lueur de dosage de luciférase

We present a rapid and inexpensive high-throughput screening protocol to identify transcriptional regulators of alpha-synuclein, a gene associated with ...

Simple Method for Fluorescence DNA In Situ Hybridization to Squashed Chromosomes

Simple Method for Fluorescence DNA In Situ Hybridization to Squashed Chromosomes

Méthode simple pour l&#39;ADN fluorescence<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridation des chromosomes écrasé

DNA in situ hybridization (DNA ISH) is a commonly used method for mapping sequences to specific chromosome regions. This approach is particularly ...