1. Vorbereiten von Werkzeugen und Zubehör
<ol><li>Tip/Trichter-Stopper
	<ol>
<li>Erhalten Sie zwei Schwammstecker (der Durchmesser der Stecker muss etwas größer sein als der Innendurchmesser der Fläschchen, die zum Übertragen von Fliegen verwendet werden). Machen Sie ein Loch in den Zentren der Schwammstopfen mit einem beheizten elektrischen Lötkolben.</li>
		<li>Besorgen Sie sich zwei 1 ml Pipettenspitzen, schneiden Sie eine mit einem scharfen Messer quer zur Hälfte und entsorgen Sie das spitze...

<ol>
	<li>Jennings, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+&#8211;+a+versatile+model+in+biology+&#38;+medicine.">Drosophila &#8211; a versatile model in biology &#38; medicine.</a> Materials Today. 14 (5), 190-195 (2011).</li><li>JoVE Science Education Database. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biology I: yeast, Drosophila and C. elegans. An Introduction to Drosophila melanogaster. , (2018).</li><li>Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+Culture+of+Drosophila.">Laboratory Culture of Drosophila.</a> Drosophila Protocols. , (2000).</li><li>Greenspan, R. 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F., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+devices+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Two devices for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 45 (11), 49-50 (2010).</li><li>Zhou, T. -. y., Gan, J., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+sponge+plug+and+sponge+plug+based+fly+transferring+device+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Preparation of sponge plug and sponge plug based fly transferring device for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 46 (6), 49-50 (2011).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Genetics laboratory investigation. , (2016).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carnivory+in+the+larvae+of+Drosophila+melanogaster+and+other+Drosophila+species.">Carnivory in the larvae of Drosophila melanogaster and other Drosophila species.</a> Scientific Reports. 8, (2018).</li><li>Stocker, H., Gallant, P., Dahmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Getting+Started:+An+Overview+on+Raising+and+Handling+Drosophila.">Getting Started: An Overview on Raising and Handling Drosophila.</a> Drosophila: Methods and Protocols. , (2008).</li></ol>

Einige hausgemachte Werkzeuge für den Umgang mit grundlegenden Aktivitäten in Drosophila Aufzucht und Experimente beteiligt sind in diesem Papier beschrieben. Diese Werkzeuge sind einfach, aber ziemlich effektiv. Praktisch kann jedes Labor diese Werkzeuge mit Leichtigkeit herstellen, und ein Forschungs- oder Lehrlabor muss keine vorgefertigte Alternative finden, die vielleicht nicht lokal verfügbar ist.
Fliegentransfer ist die häufigste Praxis und eine schwierige Aufgabe in Dr...

Die Fruchtfliege, Drosophila melanogaster, ist ein Modellorganismus weit verbreitet in der biologischen Forschung und Biologie-Bildung verwendet, um eine breite Palette von Themen1,2zu studieren. Die grundlegenden Probleme des Umgangs mit Drosophila sind die Übertragung von Erwachsenen von der Durchstechflasche in die Durchstechflasche und die Immobilisierung der Fliegen, so dass sie leichter zu handhaben sind, da alle Erwachsenen (mit Ausnahme einiger Mutanten3,4) fliegen können.
Konventionell überträgt ein Forscher Fliegen von einer Durchstechflasche zur anderen, indem er zwei Fläschchen mund-zu-Mund-Propaganda hält, die Fliegen heruntertippt oder Fliegen in eine andere Durchstechflasche fliegen lässt, dann beide Fläschchen trennt und wieder einsteckt4. Offensichtlich erfordert dies, dass das Öffnen von zwei Fläschchen mit dem gleichen Durchmesser, und es ist schwer, die Menge der übertragenen Fliegen zu kontrollieren. In der Zwischenzeit erfordert dies schnelle Hände, um die Arbeit zu erledigen, und die Flucht aus streunenden Fliegen kann zu Problemen für das Labor oder Klassenzimmer führen. Das Hinzufügen von extra jungfräulichen Fliegen oder männlichen Fliegen zu einem bereits vorbereiteten Kreuz ist eine weitere Routineaufgabe in Drosophila-Experimenten. Konventionell müssen Fliegen in der Kreuzdurchstecher immobilisiert werden, bevor zusätzliche Fliegen hinzukommen.
Erwachsene Drosophila werden routinemäßig durch Äther, CO2oder kühlend5anbeäscht. Im Vergleich zur Ether- und CO2-Exposition ist das Kühlen das kostengünstigste Mittel zur Immobilisierung von Erwachsenen Drosophila und der am wenigsten schädliche für die Fliegen und Forscher (vor allem junge Studenten)6,7. Wasser, das sich kontinuierlich auf der kalten Oberfläche kondensiert oder Kammer benetzt die Fliegen. Es ist schwierig, die Phänotypen von Nassfliegen zu bestimmen, und sie können leicht während der Manipulation beschädigt werden8,9. Dies hat verhindert, dass die Kühlmethode immer mehr akzeptiert wird.
Werkzeuge für den Fliegentransfer und ein Verfahren zur Fliegenkühlung wurden zuvor beschrieben10. Hierbei wird eine modifizierte Kühlanästhesietechnik berichtet, die für Drosophila-Experimente sicher, zuverlässig und machbar ist. Ebenfalls in diesem Papier beschrieben sind 1) Methoden zum Töten von Erwachsenen zum Zählen, Sortieren oder Entsorgen, 2) arbeitssparende Geräte und Protokolle zur Reinigung von Glaskulturfläschchen und 3) ein einfacher Käfig zum Sammeln von Eiern. Die leicht zu gestaltenden und kostengünstigen Tools, die hier beschrieben werden, können verwendet werden, um die schwierigen Probleme der Fliegenhandhabung anzugehen, und diese Methoden wurden getestet und haben sich als robust, zuverlässig und für erfahrene Forscher bewährt.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>a pair of pliers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cordless drill driver</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>max speed: 500 rpm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electric soldering iron</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>file</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>funnel</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>diameter of disk&#60;60mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ice box</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>insect pins</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>infrared thermometer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>HCIYET HT-830</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>long cuff rubber gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mechanical pencils</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>medical gauze</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microcentrifuge tube</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>100 ul</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microwave oven</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>internal diameter 60 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pipette tips</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic film</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;36 mm used to cover the empty vial</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>point tweezers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>protective work gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>re-freezable hard icepacks</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>26.5&#215;14.5&#215;2.5 cm or larger</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rubber air blower</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>snap cutter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>soft drink bottle</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>500 ml, internal diameter c.a. 65 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sponge stopper</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stainless steel sponges</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tube brush</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>vial</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;34 mm &#215; 90 mm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

simple homemade tools to handle fruit flies&#8212;drosophila melanogaster

Die Fruchtfliege, Drosophila melanogaster, ist sowohl in der biologischen Forschung als auch in der Biologieausbildung weit verbreitet. Der Umgang mit erwachsenen Fliegen ist häufig, aber schwierig in der Praxis, da erwachsene Fliegen fliegen. Hier wird gezeigt, wie Sie einige einfache und kostengünstige Werkzeuge herstellen, um schwierige Probleme im Umgang mit Drosophilaanzugehen. Löcher in Schaumstopfen werden gemacht und Pipettenspitzen oder Trichter werden in die Löcher eingesetzt. Fliegen bewegen sich dann nur in eine Richtung in die Pipette-Spitze/Trichter-Assemblage, was eine effiziente Kontrolle der Übertragung von erwachsenen Drosophila in oder aus einer Durchstechflasche ermöglicht. Bestehende Protokolle wurden für die Kühlung von Fliegen modifiziert, indem sie in zerkleinertem Eis gekühlt und auf eine kalte, harte Eispackung übertragen werden. Die Eispackung ist mit einem Stück medizinischer Gaze bedeckt, das immobilisierte Fliegen aus dem kondensierten Wasser hält, wenn sie unter einem Stereomikroskop untersucht werden. Die Fliegen werden schließlich zum Zählen und Sortieren eingeschläfert oder durch Mikrowaden entsorgt. Ein flaschenförmiger Käfig wurde auch zum Sammeln von Eiern entwickelt, sowie ein arbeitssparendes Gerät und ein Begleitprotokoll zur Reinigung von Glaskulturfläschchen.

Die T- und F-Stopper wurden als eine Reihe einfacher Werkzeuge entwickelt, die angepasst und in jeder Fliegenübertragung eingesetzt werden können. Das Übertragen von Fliegen aus einer alten Kultur in mehrere frische Kulturen beinhaltet das Entfernen der Stecker der frischen Fläschchen, deren Austausch durch F-Stopper, das Abklopfen der Fliegen in der alten Durchstechflasche, das schnelle Entfernen des Steckers und das Ersetzen durch einen T-Stopper. Wenn das alte Essen kompakt ist, da...

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Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃƒÂ¢Ã¢â€šÂ¬Ã¢â‚¬ÂDrosophila melanogaster

Beschrieben hier ist die Verwendung von mehreren hausgemachten Werkzeugen zu übertragen, kühlen, und töten erwachsene Drosophila, sowie Glaskultur Fläschchen zu reinigen und Eier zu sammeln. Diese Werkzeuge sind einfach zu machen und sind ziemlich effizient im Umgang mit Drosophila.

Einfache hausgemachte Werkzeuge, um Fruchtfliegen zu behandeln —Drosophila melanogaster

The fruit fly, Drosophila melanogaster, is widely used both in biological research and biology education. Handling adult flies is common but difficult in ...

Es kann eine Herausforderung sein, Fruchtfliegen zu übertragen und immobilisieren. Mit diesen Techniken und Tools können Sie die routinemäßige Fliegenübertragung und Immobilisierung vereinfachen. Die Materialien, die für die Herstellung dieser Werkzeuge benötigt werden, sind kostengünstig und leicht zu erhalten.Beratung und Lehre oder Forschungslabor können sie mit Leichtigkeit machen. Bevor Sie mit diesem Verfahren beginnen, verwenden Sie ein elektrisches Einschläfern, um ein Loch in den Zentren von zwei Schwammsteckern zu machen, die größer als der Innendurchmesser der Fläschchen sind, die verwendet werden, um die Fliegen zu übertragen. Als nächstes schneiden Sie mit einem scharfen Messer eine Ein-Millimeter-Mikropipettespitze quer in die Hälfte und schneiden Sie 1,5 Zentimeter von der Spitze einer zweiten Ein-Millimeter-Mikropipettespitze ab.Kleben Sie die Stücke der beiden Pipettenspitzen zusammen mit einem Allzweckkleber. Dann legen Sie die längsige Mikropipettespitze in einen Schwammstecker ein, legen Sie einen Trichter in den anderen Schwammstecker ein und verschließen Sie die Pipettenspitzen mit einzelnen 100-Mikroliter-Mikrozentrifugenrohren. Um die Mikrodissektionsnadeln vorzubereiten, wählen Sie Insektenstifte aus, die den Durchmessern der Bleinachfüllungen ergonomischer mechanischer Bleistifte entsprechen, und verwenden Sie eine Zange, um die einäugigen Enden der Stifte abzuschneiden.Dann legen Sie die Schnitte flach, und ersetzen Sie die Führung in den Bleistiften mit den modifizierten Stiften. Um eine Drosophila-Ei-Sammlung vorzubereiten, schneiden Sie mit einem Druckknopfschneider eine 500-Milliliter-Trinkflasche aus weichem Kunststoff etwa 2/3 in die Flasche und befestigen Sie mit Klebeband einen Streifen Kartenpapier um eine Apfelsaftplatte mit einem Durchmesser von 60 Millimetern. Um die erwachsenen Fliegen zwischen Fläschchen zu übertragen, überprüfen Sie sorgfältig den Stiel des Trichters im Trichterstopfen und die Spitze der Pipette im Spitzenstopfen.Tippen Sie auf die Fliegen in der ersten Durchstechflasche und ersetzen Sie den Stecker durch einen Spitzenstopfen. Stecken Sie die zweite Durchstechflasche mit einem Trichterstopfen an, und legen Sie die erste Durchstechflasche über die zweite Durchstechflasche, so dass das Pipettenspitzenende des Spitzenstoppers in die Trichteröffnung des Trichterstopfens eingesetzt wird. Klopfen Sie die Kante der ersten Durchstechflasche, damit die Fliegen aus der Pipettenspitze und durch den Stiel des Trichters in die zweite Durchstechflasche rutschen können.Wenn ein altes Essen in der ersten Durchstechflasche weniger kompakt wird und fällt, wenn die Durchstechflasche invertiert wird, invertieren Sie die zweite Durchstechflasche über der ersten Durchstechflasche und lassen Sie die Fliegen in die zweite Durchstechflasche kriechen. Wenn die gewünschte Anzahl von Fliegen übertragen wurde, trennen Sie den Spitzenstopfen vom Trichterstopfen und ersetzen Sie den Spitzenstopfen durch den Originalstecker. Dann den Trichterstopfen in der zweiten Durchstechflasche durch einen entsprechenden Stecker ersetzen.Für die Immobilisierung von Erwachsenenfruchtfliegen durch Abkühlen eine wiederfreibare Eispackung, die mindestens 24 Stunden bei minus 80 Grad Celsius gekühlt wurde, bei Raumtemperatur abkühlen lassen und eine leere Durchstechflasche in zerkleinertem Eis kühlen. 20 Minuten später, leicht befeuchten ein Stück nicht-aseptische medizinische Gaze, die etwas kleiner als die gekühlte Eispackung ist, mit fließendem Wasser. Legen Sie die Gaze auf die Oberfläche der Eispackung, so dass die Gaze eng an der Oberfläche der Packung klammert.Verwenden Sie als nächstes ein Stück saugfähiges Papier, um das Wasser aus der gekühlten, leeren Durchstechflasche abzuwischen und die erwachsenen Fliegen, die immobilisiert werden müssen, in die Durchstechflasche zu übertragen. Wenn alle Fliegen übertragen wurden, bedecken Sie die gekühlte Durchstechflasche und klopfen Sie die Durchstechflasche zwei- bis dreimal gegen das zerkleinerte Eis, um alle Fliegen auf den Boden der Durchstechflasche zu tippen. Die Fliegen werden sofort bewegungsunfähig.Legen Sie die Durchstechflasche für eine Minute wieder auf Eis, bevor Sie die Fliegen auf die Gaze gießen, die die Eispackung bedeckt. Verwenden Sie dann einen Pinsel, um die überlappenden Fliegen zu verteilen. Um die immobilisierten Fliegen unter einem Stereomikroskop zu untersuchen, entfernen Sie die Bühnenclips aus dem Sezierendes Mikroskop und bedecken Sie die Bühne mit einem Stück Plastikfolie.Legen Sie die Eispackung auf die Bühne und schalten Sie die Kaltlichtquelle des Mikroskops ein, sobald sie verfügbar ist. Dann fokussieren Sie das Stereomikroskop und bewegen Sie die Eispackung, bis die gekühlten Fliegen deutlich zu sehen sind. Nach dem Betrachten der Fliegen, übertragen Sie jede Fliege, durch den Flügel, in eine neue Kultur Fläschchen.Um die Erwachsenen zum Zählen, Sortieren oder Entsorgen zu opfern, übertragen Sie die erwachsenen Fliegen von Interesse in eine leere Durchstechflasche und bedecken Sie die Durchstechflasche mit einer Petrischale. Als nächstes invertieren Sie die Durchstechflasche in einer Mikrowelle und erhitzen Sie die Durchstechflasche bei Standardtemperatur für 80 Sekunden. Die toten Fliegen fallen in die Petrischale.Mit schützenden Arbeitshandschuhen gießen Sie die Fliegen auf eine weiße Papierkarte und übertragen Sie die Karte unter einem Stereomikroskop zur Untersuchung und/oder Zählung mit den zuvor vorbereiteten Mikrodissektionsnadeln. Die Fliegen können am Ende der Prüfung entsorgt werden. Für den flaschenförmigen Eiersammelkäfigtransfer die modifizierte Eiersammelkäfigflasche in den Apfelsaftteller geben.Verwenden Sie einen Streifen Paraffinfolie, um das Gelenk um die beiden Komponenten zu versiegeln. Als nächstes den Käfig mit einem Trichterstopfen stopfen und die Kulturdurchstechflasche auf den Stopfen umkehren. Dann fügen Sie die Fliegen in den Käfig, durch den Trichterstopfen, bevor Sie den Käfig mit dem Kultur-Fläschchen-Stopfen.Um das Essen zu wechseln, übertragen Sie die Fliegen in eine leere Durchstechflasche, bevor Sie die Apfelsaftplatte durch einen neuen Teller ersetzen. Dann die Fliegen von der Durchstechflasche zurück in den Käfig übertragen. Am Ende der Eiersammlung die Fliegen in eine leere Durchstechflasche übertragen, bevor sie die Fliegen in mehrere neue Kulturfläschchen übertragen.Mit dieser modifizierten Kaltanästhesizing-Methode werden die Fliegen unbeweglich auf der Eispackung gehalten, und die medizinische Gaze, die das Kondenswasser absorbiert, hält die Fliegen trocken und ermöglicht das Phänotypisieren oder behandeln der gekühlten Fliegen mit Leichtigkeit. Bei einer Raumtemperatur von 25 Grad Celsius steigt die Temperatur der Oberfläche einer gekühlten, harten Eispackung dramatisch an, von minus 19 Grad Celsius auf minus zwei Grad Celsius, innerhalb von 20 Minuten, und erreicht schnell ein Plateau, das sowohl für alte als auch für frisch geschlüpfte Fliegen sicher ist. Mikrowellen-Dielektrikum-Heizung ist ein schnelleres, bequemeres Mittel zum Töten von erwachsenen Fliegen im Vergleich zu Überätherisieren oder Tiefkühlen.Ähnlich wie bei überätherisierten Fliegen dehnen Mikrowellenfliegen ihre Flügel im rechten Winkel vom Körper aus. Im Allgemeinen sind durch Mikrowaving getötete Flugkörper deutlich leichter als die durch Äther oder Gefrieren getöteten, aber die Hitze verzerrt die Körperform nicht, und die Kadaver werden nicht knackig oder turgid. Achten Sie darauf, so viel Wasser wie möglich aus der befeuchteten Gaze zu pressen, bevor Sie sie auf die Eispackung drücken, und stellen Sie sicher, dass die Gaze eng an der Eispackung festhält.Es ist auch wichtig, das kondensierte Wasser von der gekühlten, leeren Durchstechflasche abzuwischen, bevor Sie Fliegen in die Durchstechflasche übertragen.

Research

JoVE Journal

Biology

Simple Homemade Tools to Handle Fruit Flies&#8212;Drosophila melanogaster

Studying Aggression in Drosophila (fruit flies)

Studying Aggression in Drosophila fruit flies

Studieren Aggression in Drosophila (Taufliege)

Aggression is an innate behavior that evolved in the framework of defending or obtaining resources.  This complex social behavior is influenced by ...

Forschung

Biologie

Using Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) to Develop Diagnostic Tools

Using Micro-Electro-Mechanical Systems MEMS to Develop Diagnostic Tools

Mit Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) zu Diagnose-Tools entwickeln

Homemade Site Directed Mutagenesis of Whole Plasmids

Hausgemachte Mutagenese von Whole Plasmide

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. With this method the cloned ...

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Präparation Oenocytes von Adult Drosophila melanogaster</em

In Drosophila melanogaster, as in other insects, a waxy layer on the outer surface of the cuticle, composed primarily of hydrocarbon compounds, provides ...

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Insulin-Injektion und Hämolymphe Extraction die Insulinsensitivität in Adult Measure Drosophila melanogaster</em

Conserved nutrient sensing mechanisms exist between mammal and fruit fly where peptides resembling mammalian insulin and glucagon, respectively function ...

Isolation and Biophysical Study of Fruit Cuticles

Isolierung und biophysikalische Untersuchung der Cuticula

The cuticle, a hydrophobic protective layer on the aerial parts of terrestrial plants, functions as a versatile defensive barrier to various biotic and ...

Fruit Volatile Analysis Using an Electronic Nose

Obst-Volatile-Analyse mit einem elektronische Nase

Numerous and diverse physiological changes occur during fruit ripening, including the development of a specific volatile blend that characterizes fruit ...

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Messung der Lebensdauer in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aging is a phenomenon that results in steady physiological deterioration in nearly all organisms in which it has been examined, leading to reduced ...

High-throughput Functional Screening using a Homemade Dual-glow Luciferase Assay

Hochdurchsatz-Screening mit einem Funktionshomemade Dual-Luciferase Assay-Schein

We present a rapid and inexpensive high-throughput screening protocol to identify transcriptional regulators of alpha-synuclein, a gene associated with ...

Simple Method for Fluorescence DNA In Situ Hybridization to Squashed Chromosomes

Simple Method for Fluorescence DNA In Situ Hybridization to Squashed Chromosomes

Einfache Methode zur Fluoreszenz DNA<em&gt; In-situ-</em&gt; Die Hybridisierung an Squashed Chromosomen

DNA in situ hybridization (DNA ISH) is a commonly used method for mapping sequences to specific chromosome regions. This approach is particularly ...