1. klargjøre verktøy og tilbehør
<ol><li>Tips/trakt propper
	<ol>
<li>Skaff to svamp plugger (diameteren av pluggene må være litt større enn den interne diameteren av hetteglassene som brukes til å overføre fluer). Lag et hull i sentrene av svamp plugger med en oppvarmet elektrisk loddebolt.</li>
		<li>Skaff to 1 mL pipette spisser, skjær en i halv tvers med en skarp kniv, og kast den spisse enden. Deretter klippes 1,5 cm av den spisse enden av den andre pipette spissen. Lim restene av de to p...

<ol>
	<li>Jennings, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+&#8211;+a+versatile+model+in+biology+&#38;+medicine.">Drosophila &#8211; a versatile model in biology &#38; medicine.</a> Materials Today. 14 (5), 190-195 (2011).</li><li>JoVE Science Education Database. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biology I: yeast, Drosophila and C. elegans. An Introduction to Drosophila melanogaster. , (2018).</li><li>Ashburner, M., Roote, J., Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+Culture+of+Drosophila.">Laboratory Culture of Drosophila.</a> Drosophila Protocols. , (2000).</li><li>Greenspan, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fly+pushing:+The+theory+and+practice+of+Drosophila+genetics.">Fly pushing: The theory and practice of Drosophila genetics.</a> Cold Spring Harbor Laboratory Press. , (2004).</li><li>Ashburner, M., Thompson, J., Ashburner, M., Wright, T. R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+laboratory+culture+of+Drosophila.">The laboratory culture of Drosophila.</a> The genetics and biology of Drosophila. 2a, 1-109 (1978).</li><li>Ratterman, D. M., O&#39;Donnell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eliminating+ether+by+using+ice+for+Drosophila+labs.">Eliminating ether by using ice for Drosophila labs.</a> Tested Studies For Laboratory Teaching. , 259-265 (2003).</li><li>. Culturing techniques for Drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf">https://www.ptbeach.com/cms/lib/NJ01000839/Centricity/Domain/113/ap%20biology%20Labs/Culturing%20techniques%20for%20Drosophila.pdf</a> (2019)</li><li>Markow, T. A., O&#39;Grady, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: A Guide to Species Identification and Use. , (2006).</li><li>Artiss, T., Hughes, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Taking+the+Headaches+Out+of+Anesthetizing+Drosophila:+A+Cheap+&#38;+Easy+Method+of+Constructing+Carbon+Dioxide+Staging.">Taking the Headaches Out of Anesthetizing Drosophila: A Cheap &#38; Easy Method of Constructing Carbon Dioxide Staging.</a> The American Biology Teacher. 69 (8), e77-e80 (2007).</li><li>Qu, W. -. H., Zhu, T. -. B., Yang, D. -. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Modified+Cooling+Method+and+its+Application+in+Drosophila+Experiments.">A Modified Cooling Method and its Application in Drosophila Experiments.</a> Journal Of Biological Education. 49 (3), 302-308 (2015).</li><li>. Egg-laying cages for drosophila Available from: <a target="_blank" href="https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17">https://www.kisker-biotech.com/frontoffice/product?produitId=0H-19-17</a> (2018)</li><li>Roberts, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: a practical approach. , (1998).</li><li>Tang, M., Peng, Q. -. F., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+devices+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Two devices for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 45 (11), 49-50 (2010).</li><li>Zhou, T. -. y., Gan, J., Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+sponge+plug+and+sponge+plug+based+fly+transferring+device+for+Drosophila+experiments+(in+Chinese).">Preparation of sponge plug and sponge plug based fly transferring device for Drosophila experiments (in Chinese).</a> Bulletin of Biology. 46 (6), 49-50 (2011).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Genetics laboratory investigation. , (2016).</li><li>Yang, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carnivory+in+the+larvae+of+Drosophila+melanogaster+and+other+Drosophila+species.">Carnivory in the larvae of Drosophila melanogaster and other Drosophila species.</a> Scientific Reports. 8, (2018).</li><li>Stocker, H., Gallant, P., Dahmann, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Getting+Started:+An+Overview+on+Raising+and+Handling+Drosophila.">Getting Started: An Overview on Raising and Handling Drosophila.</a> Drosophila: Methods and Protocols. , (2008).</li></ol>

Noen hjemmelagde verktøy for håndtering av grunnleggende aktiviteter involvert i Drosophila oppdrett og eksperimentering er beskrevet i denne utredningen. Disse verktøyene er enkle, men ganske effektive. Nesten, enhver Lab kan gjøre disse verktøyene med letthet, og en forskning eller en pedagogisk laboratorium trenger ikke å finne et ferdig alternativ som er kanskje ikke tilgjengelig lokalt.
Fly overføring er den vanligste praksisen og en vanskelig oppgave i Drosophila </em...

Frukten fly, Drosophila melanogaster, er en modell organisme mye brukt i biologisk forskning og biologi utdanning for å studere et bredt spekter av emner1,2. De grunnleggende problemene med håndtering Drosophila er overføring av voksne fra hetteglass til hetteglass og immobilisering av fluene slik at de er lettere å håndtere, som alle voksne (med unntak av noen mutanter3,4) kan fly.
Konvensjonelt, en forsker overfører fluer fra ett hetteglass til et annet ved å holde to hetteglass munn til munn, trykke på fluene ned eller la fluer å fly opp i et annet hetteglass, deretter skille og replugging begge hetteglass4. Selvfølgelig krever dette at åpningen av to ampuller med samme diameter, og det er vanskelig å kontrollere mengden av fluer overført. I mellomtiden, dette krever raske hender for å få jobben gjort, og rømmer Stray fluer kan føre til problemer for laboratoriet eller klasserommet. Legge ekstra jomfru fluer eller mannlige fluer til en allerede forberedt kors er en annen rutine oppgave i Drosophila eksperimenter. Konvensjonelt, må fluer være immobilisert i korset hetteglasset før tilsetning av ekstra fluer.
Voksen Drosophila er rutinemessig anesteserte av ETER, co2, eller Chilling5. Sammenlignet med Eter og co2 eksponering, kjøling er den mest kostnadseffektive agent for immobilizing voksen Drosophila og minst skadelig for både fluer og forskere (spesielt unge studenter)6,7. Men vann som kondenserer kontinuerlig på den kalde overflaten eller kammer tisser fluene. Det er vanskelig å bestemme fenotyper av våte fluer, og de kan lett bli skadet under manipulasjon8,9. Dette har beholdt den skremmende metoden fra å bli mer allment akseptert.
Verktøy for flue overføring og en metode for fly kjøling har tidligere blitt beskrevet10. Heri er en modifisert kjøling anestesi teknikk rapporteres som er trygt, pålitelig, og gjennomførbart for Drosophila eksperimenter. Også beskrevet i dette papiret er 1) metoder for å drepe voksne for telling, sortering, eller forkaste, 2) arbeidsbesparende enheter og protokoller for rengjøring glass kultur hetteglass, og 3) et enkelt bur for å samle egg. De lett utformede og kostnadseffektive verktøyene som er beskrevet her, kan brukes til å håndtere de vanskelige spørsmålene om fly håndtering, og disse metodene har blitt testet og er bevist å være robuste, pålitelige og enkle å håndtere for erfarne og uerfarne forskere.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>a pair of pliers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cordless drill driver</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>max speed: 500 rpm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electric soldering iron</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>file</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>funnel</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>diameter of disk&#60;60mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ice box</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>insect pins</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>infrared thermometer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>HCIYET HT-830</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>long cuff rubber gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mechanical pencils</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>medical gauze</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microcentrifuge tube</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>100 ul</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microwave oven</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>internal diameter 60 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pipette tips</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic film</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic peri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;36 mm used to cover the empty vial</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>point tweezers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>protective work gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>re-freezable hard icepacks</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>26.5&#215;14.5&#215;2.5 cm or larger</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rubber air blower</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>snap cutter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>soft drink bottle</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>500 ml, internal diameter c.a. 65 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sponge stopper</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stainless steel sponges</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tube brush</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>vial</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>&#934;34 mm &#215; 90 mm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

simple homemade tools to handle fruit flies&#8212;drosophila melanogaster

Frukten fly, Drosophila melanogaster, er mye brukt både i biologisk forskning og biologi utdanning. Håndtering voksen fluer er vanlig, men vanskelig i praksis, som voksne fluer fly. Demonstrert her er hvordan å gjøre noen enkle og kostnadseffektive verktøy for å ta vanskelige problemer i håndteringen av Drosophila. Hull i skum propper er laget og pipette tips eller trakter er satt inn i hullene. Fluer flytter deretter bare i én retning inn i pipette spissen/trakt samling, noe som gir effektiv kontroll av overføring av voksen Drosophila inn i eller ut av et hetteglass. Eksisterende protokoller har blitt modifisert for kjølig-anesthetizing fluer ved Chilling i knust is og overføre dem på en kald, hard ismasken overflate. Ismasken er dekket med et stykke medisinsk gasbind som holder immobilisert fluer fra kondensert vann når undersøkt under en stereomikroskopet. Fluene er endelig euthanized for telling og sortering eller forkastet av mikrobølgeovnen. En flaske-formet buret har også blitt utviklet for å samle egg, samt en arbeidsbesparende enhet og tilhørende protokoll for rengjøring glass kultur hetteglass.

T-og F-propper ble utviklet som et sett med enkle verktøy som kan tilpasses og brukes i enhver flue overføring aktiviteter. Overføring av fluer fra en gammel kultur til flere friske kulturer innebærer å fjerne pluggene på de friske hetteglassene, erstatte dem med F-propper, deretter trykke ned fluene i det gamle hetteglasset, raskt fjerne pluggen, og erstatte den med en T-propp. Hvis den gamle maten er kompakt, er det viktig å snu det gamle hetteglasset og sette tuppen av T-proppen...

Watch this Scientific Journal Video about Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃ¢â‚¬â€Drosophila melanogaster at JoVE.com

Simple Homemade Tools to Handle Fruit FliesÃƒÂ¢Ã¢â€šÂ¬Ã¢â‚¬ÂDrosophila melanogaster

Beskrevet her er bruken av flere hjemmelagde verktøy for å overføre, chill, og drepe voksne Drosophila, samt å rengjøre glass kultur hetteglass og samle egg. Disse verktøyene er enkle å lage og er ganske effektive i å håndtere Drosophila.

Enkle hjemmelagde verktøy for å håndtere Fruit fluer-Drosophila melanogaster

The fruit fly, Drosophila melanogaster, is widely used both in biological research and biology education. Handling adult flies is common but difficult in ...

Det kan være utfordrende å overføre og immobilisere fruktfluer. Ved hjelp av disse teknikkene og verktøyene kan du gjøre rutinemessig flyoverføring og immobilisering enklere. Materialene som trengs for å gjøre disse verktøyene er billig og lett å få tak i.Veiledning og undervisning eller forskningslaboratorium kan gjøre dem med letthet. Før du begynner denne prosedyren, bruk et elektrisk sodleringsjern for å lage et hull i sentrene til to svampplugger som er større enn den indre diameteren på hetteglassene som skal brukes til å overføre fluene. Deretter bruker du en skarp kniv til å kutte en en millimeter mikropipettespiss tverrgående i to og å kutte 1,5 centimeter av spissen av en annen en millimeter mikropipettespiss.Lim bitene av de to pipettespissene sammen med et all-purpose lim. Sett deretter den langstrakte mikropipettespissen inn i den ene svamppluggen, og sett inn en trakt i den andre svamppluggen, og het pipettespissene med individuelle 100 mikrocentrifugerør. For å forberede mikrodisseksjonsnålene, velg insektpinner som samsvarer med diameteren på blypåfyllingene av ergonomiske mekaniske blyanter, og bruk et par tang til å kutte av de enøyde endene av pinnene.Deretter fil kuttene flat, og erstatte ledningen i blyanter med de modifiserte pinnene. For å forberede en Drosophila egg samling tilfelle, bruk en snap cutter å kutte en myk plast 500-milliliter drikkeflaske ca 2/3 ned flasken, og bruk tape for å sikre en stripe av kortpapir rundt en 60-millimeter diameter eplejuice plate. For å overføre de voksne fluene mellom hetteglass, kontroller forsiktig stammen på trakten i traktproppen og tuppen av pipetten i tuppen.Trykk ned fluene i det første hetteglasset, og sett på pluggen med en tupppropp. Koble det andre hetteglasset med en traktprop, og plasser det første hetteglasset over det andre hetteglasset slik at pipettespissen på tuppen settes inn i traktåpningen på traktproppen. Slå kanten av det første hetteglasset slik at fluene glir ut av pipettespissen og gjennom stammen av trakten inn i det andre hetteglasset.Hvis noen gammel mat i det første hetteglasset blir mindre kompakt og faller når hetteglasset er invertert, inverter det andre hetteglasset over det første hetteglasset, og la fluene krype opp i det andre hetteglasset. Når ønsket antall fluer er overført, skiller du tuppproppen fra traktproppen og skifter spissen med den originale pluggen. Sett deretter traktproppen tilbake i det andre hetteglasset med et passende støpsel.For voksen frukt fly immobilisering ved chilling, plassere en refreezable ispakke, som har blitt kjølt på minus 80 grader Celsius i minst 24 timer, ved romtemperatur, og chill en tom ampulle i knust is. 20 minutter senere fukter litt et stykke ikke-aseptisk medisinsk gasbind, som er litt mindre enn den kjølte ispakken, med rennende vann. Plasser gasbind på overflaten av ispakken slik at gasbind klamrer seg tett til overflaten av pakken.Bruk deretter et stykke absorberende papir for å tørke vannet fra det avkjølte, tomme hetteglasset og overføre de voksne fluene som må immobiliseres inn i hetteglasset. Når alle fluene er overført, dekk det avkjølte hetteglasset og bank hetteglasset mot den knuste isen to til tre ganger for å tappe alle fluene til bunnen av hetteglasset. Fluene vil umiddelbart bli immobilisert.Legg hetteglasset tilbake på isen i ett minutt før du heller fluene på gasbind som dekker ispakken. Bruk deretter en pensel til å spre ut de overlappende fluene. For å undersøke de immobiliserte fluene under et stereomikroskop, fjern sceneklemmene fra det dissekerende mikroskopet, og dekk scenen med et stykke plastfilm.Plasser ispakken på scenen, og slå på den kalde lyskilden til mikroskopet som tilgjengelig. Fokuser deretter stereomikroskopet, og flytt ispakken til de avkjølte fluene kan ses tydelig. Etter å ha sett fluene, overfør hver fly, av vingen, til et nytt kultur hetteglass.For å mikrobølgeofferer de voksne for å telle, sortere eller kaste, overføre de voksne fluene av interesse til et tomt hetteglass, og dekk hetteglasset med en petriskål. Deretter inverter hetteglasset inne i en mikrobølgeovn, og varm hetteglasset ved standardtemperatur i 80 sekunder. De døde fluene vil falle ned i petriskålen.Bruk vernehansker, hell fluene på et hvitt, papirkort og overfør kortet under et stereomikroskop for undersøkelse og / eller telling med de tidligere forberedte mikrodisseksjonsnålene. Fluene kan kastes på slutten av undersøkelsen. For flaskeformet eggsamlingsmerdoverføring, sett den modifiserte eggsamlingsburflasken inn i eplejuiceplaten.Bruk en parafinstripe til å forsegle leddet rundt de to komponentene. Deretter plugger du buret med en traktproppen, og snu kultur hetteglasset på proppen. Legg deretter fluene til buret, gjennom traktproppen, før du kobler buret til kulturhetten.For å bytte mat, overfør fluene til et tomt hetteglass før du erstatter eplejuiceplaten med en ny tallerken. Deretter overfører fluene fra hetteglasset tilbake til buret. På slutten av eggsamlingen overfører du fluene til et tomt hetteglass før du overfører fluene til flere nye kulturhuller.Ved hjelp av denne modifiserte chill bedøvelsesmetoden holdes fluene immobile på ispakken, og den medisinske gasbinden som absorberer kondenserende vann holder fluene tørre og tillater fenotyping eller håndtering av de kjølte fluene med letthet. Ved romtemperatur på 25 grader Celsius øker temperaturen på overflaten av en kjølt, hard ispakke dramatisk, fra minus 19 grader Celsius til minus to grader Celsius, innen 20 minutter, og når raskt et platå som er trygt for både gamle og nyklekkede fluer. Mikrobølgeovn dielektrisk oppvarming er en raskere, mer praktisk agent for å drepe voksne fluer i forhold til overetering eller dyp frysing.I likhet med overetiserte fluer strekker mikrobølgefluer vingene sine i rett vinkel fra kroppen. Generelt er flueskrotter drept av mikrobølge betydelig lettere i vekt enn de som blir drept av eter eller frysing, men varmen forvrenger ikke kroppsformen, og skrottene blir ikke skarpe eller turgid. Pass på å klemme så mye vann ut av fuktet gasbind som mulig før du trykker den på ispakken, og for å sikre at gasbind klamrer seg tett til ispakken.Det er også viktig å tørke det kondenserte vannet av det avkjølte, tomme hetteglasset før du overfører fluer inn i hetteglasset.

Research

JoVE Journal

Biology

Simple Homemade Tools to Handle Fruit Flies&#8212;Drosophila melanogaster

Studying Aggression in Drosophila (fruit flies)

Studying Aggression in Drosophila fruit flies

Aggression is an innate behavior that evolved in the framework of defending or obtaining resources.  This complex social behavior is influenced by ...

Using Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) to Develop Diagnostic Tools

Using Micro-Electro-Mechanical Systems MEMS to Develop Diagnostic Tools

Homemade Site Directed Mutagenesis of Whole Plasmids

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. With this method the cloned ...

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

Dissection of Oenocytes from Adult Drosophila melanogaster

In Drosophila melanogaster, as in other insects, a waxy layer on the outer surface of the cuticle, composed primarily of hydrocarbon compounds, provides ...

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Insulin Injection and Hemolymph Extraction to Measure Insulin Sensitivity in Adult Drosophila melanogaster

Conserved nutrient sensing mechanisms exist between mammal and fruit fly where peptides resembling mammalian insulin and glucagon, respectively function ...

Isolation and Biophysical Study of Fruit Cuticles

Isolering og Biofysikalsk Study of Fruit neglebåndene

The cuticle, a hydrophobic protective layer on the aerial parts of terrestrial plants, functions as a versatile defensive barrier to various biotic and ...

Fruit Volatile Analysis Using an Electronic Nose

Frukt Volatile Analysis Bruke en elektronisk nese

Numerous and diverse physiological changes occur during fruit ripening, including the development of a specific volatile blend that characterizes fruit ...

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster

Måling av levetid i<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aging is a phenomenon that results in steady physiological deterioration in nearly all organisms in which it has been examined, leading to reduced ...

High-throughput Functional Screening using a Homemade Dual-glow Luciferase Assay

Høy gjennomstrømming Funksjonell Screening ved hjelp av en hjemmelaget Dual-glød Luciferase Assay

We present a rapid and inexpensive high-throughput screening protocol to identify transcriptional regulators of alpha-synuclein, a gene associated with ...