Name: human blastocyst biopsy and vitrification
Uploaded: 2019-07-26T12:30:00
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AG et RM ont recueilli les données et rédigé le manuscrit. DC a analysé les données, rédigé les résultats représentatifs, effectué les statistiques et révisé le manuscrit. L'UMF et LR ont fourni une discussion critique des résultats et de l'ensemble du manuscrit.

Le protocole pour la biopsie humaine de blastocyste, ici décrit, suit les lignes directrices du comité d'éthique de recherche humaine de G.EN.E.R.A.
REMARQUE: Consultez le Tableau des matériaux pour les matériaux requis. D'autres matériaux requis comprennent des chaussures et des tenues de laboratoire, un masque chirurgical, un couvre-cheveux, des gants chirurgicaux, un marqueur permanent non toxique, des forceps et du désinfectant. L'utilisation d'une ...

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	<li>Glujovsky, D., Farquhar, C., Quinteiro Retamar, A. M., Alvarez Sedo, C. R., Blake, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleavage+stage+versus+blastocyst+stage+embryo+transfer+in+assisted+reproductive+technology.">Cleavage stage versus blastocyst stage embryo transfer in assisted reproductive technology.</a> Cochrane Database of Systematic Reviews. (6), CD002118 (2016).</li><li>Dahdouh, E. M., Balayla, J., Garcia-Velasco, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comprehensive+chromosome+screening+improves+embryo+selection:+a+meta-analysis.">Comprehensive chromosome screening improves embryo selection: a meta-analysis.</a> Fertility and Sterility. 104 (6), 1503-1512 (2015).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Impact+of+Biopsy+on+Human+Embryo+Developmental+Potential+during+Preimplantation+Genetic+Diagnosis.">The Impact of Biopsy on Human Embryo Developmental Potential during Preimplantation Genetic Diagnosis.</a> Biomedical Research International. 2016, 7193075 (2016).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlation+between+standard+blastocyst+morphology,+euploidy+and+implantation:+an+observational+study+in+two+centers+involving+956+screened+blastocysts.">Correlation between standard blastocyst morphology, euploidy and implantation: an observational study in two centers involving 956 screened blastocysts.</a> Human Reproduction. 29 (6), 1173-1181 (2014).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implementing+PGD/PGD-A+in+IVF+clinics:+considerations+for+the+best+laboratory+approach+and+management.">Implementing PGD/PGD-A in IVF clinics: considerations for the best laboratory approach and management.</a> Journal of Assisted Reproduction and Genetics. , (2016).</li><li>McArthur, S. J., Leigh, D., Marshall, J. T., de Boer, K. A., Jansen, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pregnancies+and+live+births+after+trophectoderm+biopsy+and+preimplantation+genetic+testing+of+human+blastocysts.">Pregnancies and live births after trophectoderm biopsy and preimplantation genetic testing of human blastocysts.</a> Fertility and Sterility. 84 (6), 1628-1636 (2005).</li><li>Kokkali, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Birth+of+a+healthy+infant+following+trophectoderm+biopsy+from+blastocysts+for+PGD+of+beta-thalassaemia+major.">Birth of a healthy infant following trophectoderm biopsy from blastocysts for PGD of beta-thalassaemia major.</a> Human Reproduction. 20 (7), 1855-1859 (2005).</li><li>Rienzi, L., Ubaldi, F., Anniballo, R., Cerulo, G., Greco, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preincubation+of+human+oocytes+may+improve+fertilization+and+embryo+quality+after+intracytoplasmic+sperm+injection.">Preincubation of human oocytes may improve fertilization and embryo quality after intracytoplasmic sperm injection.</a> Human Reproduction. 13 (4), 1014-1019 (1998).</li><li>Wale, P. L., Gardner, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+chemical+and+physical+factors+on+mammalian+embryo+culture+and+their+importance+for+the+practice+of+assisted+human+reproduction.">The effects of chemical and physical factors on mammalian embryo culture and their importance for the practice of assisted human reproduction.</a> Human Reproduction Update. 22 (1), 2-22 (2016).</li><li>Rienzi, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oocyte,+embryo+and+blastocyst+cryopreservation+in+ART:+systematic+review+and+meta-analysis+comparing+slow-freezing+versus+vitrification+to+produce+evidence+for+the+development+of+global+guidance.">Oocyte, embryo and blastocyst cryopreservation in ART: systematic review and meta-analysis comparing slow-freezing versus vitrification to produce evidence for the development of global guidance.</a> Human Reproduction Update. 23 (2), 139-155 (2017).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Associations+of+blastocyst+features,+trophectoderm+biopsy+and+other+laboratory+practice+with+post-warming+behavior+and+implantation.">Associations of blastocyst features, trophectoderm biopsy and other laboratory practice with post-warming behavior and implantation.</a> Human Reproduction. , (2018).</li><li>Evans, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fresh+versus+frozen+embryo+transfer:+backing+clinical+decisions+with+scientific+and+clinical+evidence.">Fresh versus frozen embryo transfer: backing clinical decisions with scientific and clinical evidence.</a> Human Reproduction Update. 20 (6), 808-821 (2014).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Consistent+and+reproducible+outcomes+of+blastocyst+biopsy+and+aneuploidy+screening+across+different+biopsy+practitioners:+a+multicentre+study+involving+2586+embryo+biopsies.">Consistent and reproducible outcomes of blastocyst biopsy and aneuploidy screening across different biopsy practitioners: a multicentre study involving 2586 embryo biopsies.</a> Human Reproduction. 31 (1), 199-208 (2016).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Failure+mode+and+effects+analysis+of+witnessing+protocols+for+ensuring+traceability+during+PGD/PGS+cycles.">Failure mode and effects analysis of witnessing protocols for ensuring traceability during PGD/PGS cycles.</a> Reproductive Biomedicine Online. 33 (3), 360-369 (2016).</li><li>Gardner, D. K., Schoolcraft, B., Jansen, R., Mortimer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Towards Reproductive Certainty: Infertility and Genetics Beyond 1999. , 377-388 (1999).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inconclusive+chromosomal+assessment+after+blastocyst+biopsy:+prevalence,+causative+factors+and+outcomes+after+re-biopsy+and+re-vitrification.+A+multicenter+experience.">Inconclusive chromosomal assessment after blastocyst biopsy: prevalence, causative factors and outcomes after re-biopsy and re-vitrification. A multicenter experience.</a> Human Reproduction. , (2018).</li><li>de Boer, K. A., Catt, J. W., Jansen, R. P., Leigh, D., McArthur, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Moving+to+blastocyst+biopsy+for+preimplantation+genetic+diagnosis+and+single+embryo+transfer+at+Sydney+IVF.">Moving to blastocyst biopsy for preimplantation genetic diagnosis and single embryo transfer at Sydney IVF.</a> Fertility and Sterility. 82 (2), 295-298 (2004).</li><li>Capalbo, A., Rienzi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mosaicism+between+trophectoderm+and+inner+cell+mass.">Mosaicism between trophectoderm and inner cell mass.</a> Fertility and Sterility. 107 (5), 1098-1106 (2017).</li><li>McCoy, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+of+Selection+against+Complex+Mitotic-Origin+Aneuploidy+during+Preimplantation+Development.">Evidence of Selection against Complex Mitotic-Origin Aneuploidy during Preimplantation Development.</a> PLoS Genetics. 11 (10), e1005601 (2015).</li><li>Scott, R. T., Upham, K. M., Forman, E. J., Zhao, T., Treff, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleavage-stage+biopsy+significantly+impairs+human+embryonic+implantation+potential+while+blastocyst+biopsy+does+not:+a+randomized+and+paired+clinical+trial.">Cleavage-stage biopsy significantly impairs human embryonic implantation potential while blastocyst biopsy does not: a randomized and paired clinical trial.</a> Fertility and Sterility. 100 (3), 624-630 (2013).</li><li>Lee, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live+births+after+transfer+of+rebiopsy+and+revitrification+of+blastocyst+that+had+&#8220;no+diagnosis&#8221;+following+trophectoderm+biopsy.">Live births after transfer of rebiopsy and revitrification of blastocyst that had &#8220;no diagnosis&#8221; following trophectoderm biopsy.</a> Fertility and Sterility. 106 (3), e164 (2016).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diagnostic+efficacy+of+blastocoel+fluid+and+spent+media+as+sources+of+DNA+for+preimplantation+genetic+testing+in+standard+clinical+conditions.">Diagnostic efficacy of blastocoel fluid and spent media as sources of DNA for preimplantation genetic testing in standard clinical conditions.</a> Fertility and Sterility. 110 (5), 870-879 (2018).</li><li>Hammond, E. R., Shelling, A. N., Cree, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nuclear+and+mitochondrial+DNA+in+blastocoele+fluid+and+embryo+culture+medium:+evidence+and+potential+clinical+use.">Nuclear and mitochondrial DNA in blastocoele fluid and embryo culture medium: evidence and potential clinical use.</a> Human Reproduction. 31 (8), 1653-1661 (2016).</li><li>Vera-Rodriguez, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Origin+and+composition+of+cell-free+DNA+in+spent+medium+from+human+embryo+culture+during+preimplantation+development.">Origin and composition of cell-free DNA in spent medium from human embryo culture during preimplantation development.</a> Human Reproduction. 33 (4), 745-756 (2018).</li></ol>

Seuls les embryologistes qualifiés expérimentés qui ont terminé leur période de formation devraient effectuer la biopsie TE et la vitrification blastocyste. De plus, un témoin est tenu de surveiller les procédures et de garantir une traçabilité efficace pendant i) les mouvements du blastocyste biopsié du plat de biopsie (figure supplémentaire 1) au plat post-biopsie (figure supplémentaire1 ), puis à la plaque de vitrification (figure supplémentaire 1) et en...

L'objectif principal de l'embryologie humaine moderne est de maximiser le nombre de naissances vivantes par cycle stimulé et de réduire les coûts, le temps et les efforts pour atteindre une grossesse. Pour atteindre cet objectif, des approches validées pour la sélection des embryons devraient être utilisées pour identifier les embryons compétents en matière de reproduction au sein d'une cohorte obtenue au cours d'un cycle de FIV. Selon les dernières preuves, la culture blastocyste1 combinée à des tests chromosomiques complets et au transfert d'embryons euploïdes vitrifiés (ET) est le cadre le plus efficace pour augmenter l'efficacité de la FIV2. De toute évidence, le dépistage de l'anéuploïde nécessite un spécimen embryonnaire, qui est actuellement principalement représenté à partir de quelques cellules extraites du trophectoderm (TE), c'est-à-dire la section du blastocyste qui donne naissance aux annexes embryonnaires (par exemple, le placenta) pendant la grossesse . Au-delà de l'analyse karyotype, des mutations génétiques uniques pourraient également être évaluées à partir d'une biopsie TE dans le cadre d'une stratégie clinique connue sous le nom de test génétique préimplantatoire (PGT; -A pour les anéuploidies, -SR pour les réarrangements chromosomiques structurels, -M pour les maladies monogéniques). D'autres méthodes de biopsie d'ovocyte/embryon ont été théorisées et adoptées cliniquement au cours des dernières décennies, à savoir la biopsie des corps polaires et la biopsie blastomere. Cependant, leur utilisation est réduite de nos jours puisque leurs inconvénients procéduraux (p. ex., charge de travail et risque accrus d'impact sur la reproduction) et leurs limitations diagnostiques (p. ex., problèmes d'analyse cellulaire unique) entravent implicitement un équilibre suffisant entre les coûts, les risques et les avantages (pour un examen voir3).
Dans cet article, l'un des protocoles principaux pour la biopsie de TE est soigneusement décrit avec les procédures suivantes de vitrification, de réchauffement et de transfert exigées. Le flux de travail décrit ici est idéal pour une unité DE TGP occupée.
Comme déjà décrit précédemment par notre groupe4,5, la procédure implique l'ouverture séquentielle de la pellucida zona de blastocystes entièrement élargis et l'élimination de quelques cellules TE (en moyenne 7-8). Comparée à la méthode de biopsie blastocyste à base d'éclosion laser-assistée36, cette procédure pourrait faciliter le programme quotidien d'une unité de FIV où les procédures délicates, telles que la biopsie blastocyste et la vitrification, doivent être exécutées en temps opportun. Dès que le blastocyste atteint sa pleine expansion, la biopsie peut être effectuée en sélectionnant les cellules TE à enlever, empêchant ainsi le risque d'hernie de la masse cellulaire interne (ICM), ce qui rendrait autrement la procédure difficile. Dans la littérature, un troisième protocole de biopsie blastocyste a également été décrit, qui implique l'éclosion au laser assistée étant effectuée une fois que l'embryon a déjà atteint le stade blastocyste, quelques heures avant la procédure5,7. Cependant, cette approche prend plus de temps et convient principalement aux unités de FIV qui mettent en œuvre la biopsie TE entre les mains d'opérateurs peu expérimentés et en raison d'une charge de travail quotidienne modérée-faible.
L'injection de spermatozoïdes intracytoplasmatic (ICSI)8 devrait être une technique consolidée si l'objectif de mener des analyses génétiques dans la FIV. De même, un système de culture approprié pour récolter en toute sécurité les embryons au stade blastocyste est crucial pour la mise en œuvre de la stratégie de biopsie TE. Un nombre suffisant d'incubateurs, ainsi que l'utilisation de faible tension d'oxygène sont des conditions préalables clés à cette fin, de ne pas compromettre le taux de blastocyste9. En même temps, un programme de cryoconservation efficace est nécessaire pour gérer en toute sécurité un cycle pgT. Au cours de la dernière décennie, la mise en œuvre de la vitrification a augmenté les taux de cryo-survie des embryons, même jusqu'à 99 %10,11. Cela a fourni suffisamment de temps pour effectuer des tests génétiques et reporter le transfert d'embryons au cycle menstruel suivant, sur un endomètre non stimulé et probablement plus réceptif12.
La biopsie TE et la vitrification exigent des tâches exigeantes et leur efficacité peut varier d'un opérateur inexpérimenté à l'autre. Une période de formation spécifique est donc préconisée avant de permettre à chaque opérateur d'effectuer ces interventions cliniquement; en outre, le maintien des compétences des opérateurs devrait être évalué périodiquement en surveillant les indicateurs de performance clés (KPI) pour les procédures de cryoconservation et de biopsie. Chaque clinique de FIV doit définir les indicateurs de la santé interne à cette fin, qui doivent se rapprocher de ceux publiés par les consortiums internationaux et/ou des résultats publiés par les laboratoires de référence.
La biopsie TE, le réchauffement de la vitrification et les procédures de témoignage sont des techniques validées dans notre unité, qui ont été normalisées dans tous les opérateurs impliqués comme indiqué dans trois publications précédentes11,13,14 .

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cold tube rack</td>
			<td>Biocision</td>
			<td>XTPCR96</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electronic pipette controller</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>710931</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flexipet adjustable handle set</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G18674</td>
			<td>Stripper holder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gilson Pipetman</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>66003</td>
			<td>p20</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IVF Electronic Witness System</td>
			<td>CooperSurgical Fertility &#38; Genomic Solutions</td>
			<td></td>
			<td>RI Witness ART Management System</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Eclipse TE2000-U</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laminar Flow Hood</td>
			<td>IVF TECH</td>
			<td></td>
			<td>Grade A air flow</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser objective</td>
			<td>RI</td>
			<td>Saturn 5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microinjectors</td>
			<td>Nikon Narishige</td>
			<td>NT-88-V3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini centrifuge for PCR tubes</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>CSLQSPIN</td>
			<td>for 0.2ml PCR tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>Leica M80</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermostat</td>
			<td>Panasonic</td>
			<td>MCO-5AC-PE</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tri-gas incubator</td>
			<td>Panasonic</td>
			<td>MCO-5M-PE</td>
			<td>02/CO2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Consumables</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biopsy pipette</td>
			<td>RI</td>
			<td>7-71-30FB35720</td>
			<td>30&#181;m ID, flat 35&#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cryolock</td>
			<td>Cryolock</td>
			<td>CL-R-CT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CSCM complete</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>90165</td>
			<td>IVF culture medium supplemented with HSA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Embryo Transfer Catheter</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G17934</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flexipet pipette</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G26712</td>
			<td>140&#181;m stripping pipette tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flexipet pipette</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G46020</td>
			<td>300&#181;m stripping pipette tips</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Holding pipette</td>
			<td>RI</td>
			<td>7-71-IH35/20</td>
			<td>30&#181;m ID, flat 35&#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Serum Albumin</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>9988</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IVF One well dish</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353653</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mineral Oil for embryo culture</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>9305</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Modified HTF Medium</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>90126</td>
			<td>Hepes-Buffered medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nuclon Delta Surface</td>
			<td>Thermofisher scientific</td>
			<td>176740</td>
			<td>IVF dish 4-well plate with sliding lid</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primaria Cell culture dish</td>
			<td>Corning</td>
			<td>353802</td>
			<td>60x15mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reproplate</td>
			<td>Kitazato</td>
			<td>83016</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serological pipette</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>357551</td>
			<td>10ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile disposable Gilson tips</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>0030 075.021</td>
			<td>200&#181;l</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tubing Kit</td>
			<td>Provided by the genetic lab</td>
			<td></td>
			<td>PCR tubes (0.2mL), loading solution, biopsy washing solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vitrification media</td>
			<td>Kitazato</td>
			<td>VT801</td>
			<td>Equilibration and vitrification solutions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Warming media</td>
			<td>Kitazato</td>
			<td>VT802</td>
			<td>Thawing and dilution solutions</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

human blastocyst biopsy and vitrification

La biopsie de Blastocyst est effectuée pour obtenir un diagnostic génétique fiable pendant des cycles de FIV avec l'essai génétique préimplantatoire. Ensuite, le flux de travail idéal implique un protocole de vitrification sûr et efficace, en raison du délai d'exécution des techniques de diagnostic et de transférer l'embryon sélectionné sur un endomètre physiologique dans un cycle naturel suivant. Une approche de biopsie englobant l'ouverture séquentielle de la zona pellucida et la récupération de 5-10 cellules de trophectoderm (idéalement 7-8) limite le nombre de manipulations exigées et l'exposition de l'embryon aux conditions environnementales sous-optimales. Après une formation adéquate, la technique a été reproductible entre différents opérateurs en termes de synchronisation de la biopsie (8 min, allant de 3 à 22 min en fonction du nombre d'embryons à la biopsie par plat), diagnostics concluants obtenus (97,5%) et les taux de natalité vivante après le transfert de blastocyste euploïde vitrifié (40 %). Le taux de survie après biopsie, vitrification et réchauffement était aussi élevé que 99,8%. Le taux de réexpansion à 1,5 h du réchauffement était aussi élevé que 97%, en grande partie dépendant du moment entre la biopsie et la vitrification (idéalement 30 min), la qualité morphologique blastocyste et le jour de la biopsie. En général, il est préférable de vitrifier un blastocyste effondré; par conséquent, dans les cycles non-PGT, le rétrécissement artificiel laser-assisté pourrait être exécuté pour induire l'effondrement d'embryon avant la cryoconservation. La perspective future la plus prometteuse est l'analyse non invasive des médias de culture de FIV après la culture blastocyste comme source putative de l'ADN embryonnaire. Toutefois, cette avant-garde potentielle est toujours à l'étude et un protocole fiable doit encore être défini et validé.

La figure 6 représente un schéma de tous les résultats d'une procédure de biopsie qui peut être adoptée pour normaliser le protocole et surveiller le rendement de chaque opérateur. Le principal résultat procédural est le moment pour terminer la biopsie/biopsies; le principal résultat technique est la qualité de l'intrigue produite après des tests génétiques qui pourraient entraîner un diagnostic concluant ou non concluant, ce dernier qui néces...

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Human Blastocyst Biopsy and Vitrification

La biopsie et la vitrification de Blastocyst sont nécessaires pour mener efficacement le test génétique préimplantatoire. Une approche impliquant l'ouverture séquentielle de la pellucida de zona et la récupération de 7-8 cellules de trophectoderm dans le jour 5-7 post-insémination limite le nombre de manipulations exigées et l'exposition de l'embryon aux conditions environnementales sous-optimales.

Biopsie et vitrification humaines de Blastocyst

Blastocyst biopsy is performed to obtain a reliable genetic diagnosis during IVF cycles with preimplantation genetic testing. Then, the ideal workflow ...

La biopsie blastocyste et la vitrification ont été une révolution dans la FIV, la fécondation in vitro, permettant aux embryologistes du monde entier d’effectuer des tests génétiques préimplantatoires sur des embryons humains avec un risque minimal pour l’embryon. La biopsie trophectoderm a permis la récupération d’environ sept cellules à partir d’un embryon adulte, permettant ainsi une analyse génétique robuste en aval. De plus, aucune incidence n’a été démontrée, à ce jour, sur cette approche.L’efficacité clinique de ce flux de travail permet aux patients présentant des conditions monogéniques et à tous les patients présentant un risque accru d’anomalies chromosomiques dans leur blastocyste de bénéficier de tests génétiques préimplantation. Il est encore temps d’améliorer les stratégies actuelles de sélection des embryons. Par exemple, le profilage miRNomic et protéomique représente des options intrigantes pour compléter les tests génétiques préimplantation sur une biopsie trophectoderm unique.Les opérateurs inexpérimentés ont souvent du mal à ouvrir et pénétrer la zona pellucida. C’est juste une question de concentration. Le blastocyste, l’objectif laser et les pipettes doivent être sur le même plan focal.Après avoir étiqueté le plat de biopsie avec les détails du patient, avec un marqueur permanent et non toxique, numérotez chaque goutte de 10 microlitres de milieu tamponné HEPES avec l’embryon et le cycle ID.Using a 300-micrometer décapage pipette, transférer un viable, blastocyste entièrement élargi à la première goutte du plat de biopsie et rincer la goutte pour enlever le milieu de culture excédentaire, avant de déplacer le blastocyste dans la deuxième goutte dans le plat. Placer le plat sous un microscope inversé, et amorce la pipette biopsie avec moyen à partir de la troisième goutte du plat de biopsie. Sous un grossissement de 20 fois, orientez le blastocyste pour obtenir une vue claire de la masse cellulaire interne à sept heures, et fixez l’embryon sur la pipette de fixation.Concentrez-vous sur la zona pellucida afin que les pipettes et les blastocystes soient sur le même plan focal. Passez à l’objectif laser, et placez le pointeur laser sur la zona pellucida de l’autre côté de la masse cellulaire interne. Percer la zona pellucida avec deux à trois impulsions laser, et appuyez doucement sur la pipette biopsie contre la zona pellucida pour permettre au milieu d’être soufflé par la brèche pour détacher les cellules trophectoderm de la surface interne.Lorsque le trophectoderm est détaché, entrez par le trou et aspirez sept à huit cellules trophectoderm dans la pipette biopsie avec aspiration douce. Tout en appliquant une aspiration modérée pour étirer les cellules cibles, déplacez légèrement la pipette biopsie vers l’arrière et dirigez le laser vers la partie la plus mince des cellules aspirées. Tirez deux à cinq impulsions laser aux jonctions entre les cellules pour séparer les cellules cibles du corps de l’embryon.Lorsque le fragment trophectoderm a été séparé du blastocyste, relâchez le fragment dans la même chute de biopsie loin du blastocyste pour empêcher le fragment d’être aspiré dans la pipette biopsie. Relâchez le blastocyste de la pipette de fixation, et soulevez rapidement les deux pipettes pour empêcher le fragment de coller aux pipettes. Puis l’image du fragment biopsié à des fins de contrôle de la qualité.Lorsque tous les blastocystes ont été biopsiés comme il vient de le démontrer, déplacez le plat de biopsie vers le capot d’écoulement laminaire et étiquetez le plat de culture post-biopsie avec l’ID du couple et chaque goutte avec l’embryon et les pièces d’identité à cycle. En présence d’un témoin, rincer le blastocyste dans un milieu de FIV propre et déplacer le blastocyste à sa baisse correspondante dans le plat post-biopsie. Ensuite, placez le plat post-biopsie à un 37 degrés Celsius, 6% de dioxyde de carbone, et 5% incubateur d’oxygène.En présence du témoin et à l’intérieur d’un capot d’écoulement laminaire à température ambiante, étiquetez les tubes PCR avec un marqueur permanent et non toxique. Étiquetez le couvercle d’un plat de culture de tube de 60 x 15 millimètres avec les pièces d’iD d’embryon biopsiées, et ajoutez deux gouttes de 10 microlitres de solution de lavage de biopsie au plat. Prime une pipette de décapage de 140 micromètres avec solution de lavage biopsie de la deuxième goutte du plat de tube sous le microscope stéréo pour visualiser les fragments de trophectoderm.Relâchez doucement une solution de lavage de biopsie sur le fragment de trophectoderme, et chargez le fragment dans la pipette de décapage. Déplacez le fragment vers la deuxième goutte de la solution de lavage de biopsie, et rincez soigneusement le tissu deux à trois fois. Transférer le fragment de trophectoderm au fond du tube PCR dûment étiqueté avec la solution de chargement, en prenant soin d’éviter de toucher les parois du tube avec la pointe de la pipette de décapage.Lorsque tous les fragments ont été ajoutés à leurs tubes, faites tourner tous les tubes dans une mini centrifugeuse pendant quelques secondes pour sédimenter les fragments. Rangez ensuite les échantillons à moins 20 degrés Celsius jusqu’à ce qu’ils soient expédiés au laboratoire génétique de référence pour analyse. Dans les 30 minutes de biopsie trophectoderm, étiquetez une plaque de vitrification avec les détails du patient et les iD des blastocystes qui doivent être vitrifiés.À l’aide de cryolabels spéciaux résistants à la température froide, étiquetez les supports de vitrification avec le nom et le nom de famille du patient, l’identification du couple, l’identité de l’embryon qui y sera chargé et la date de l’intervention. À température ambiante, distribuez 300 microlitres de solution d’équilibrage pour chaque blastocyste qui sera vitrifié et, en présence d’un témoin, utilisez une pipette décapage de 300 micromètres pour déplacer le blastocyste en un volume de solution d’équilibrage. Laissez le blastocyste dans la solution d’équilibrage pendant 13 à 15 minutes.Après un retrait initial du volume, une ré-expansion progressive sera observée. À la fin de l’équilibrage, ajouter 300 microlitres de solution de vitrification au deuxième puits de la plaque de vitrification et transférer le blastocyste complètement re-élargi à la solution de vitrification pendant une minute. À la fin de l’incubation, rincer le blastocyste pour diluer la solution d’équilibrage et, en présence d’un témoin, charger le blastocyste sur le support de vitrification.Supprimer l’excès de solution de vitrification. Un film subtil de solution devrait entourer le blastocyste. Plongez le support de vitrification dans de l’azote liquide et déplacez vigoureusement le support pour réduire le risque de formation de bulles près de l’échantillon.Placez ensuite le bouchon protecteur sur le support pendant que le support de vitrification est encore immergé dans de l’azote liquide. Sur les 1 544 interventions de biopsie trophectoderm effectuées au cours de cette période représentative de deux ans, entre un et quatre blastocystes ont été biopsiés par procédure pendant trois à 22 minutes par intervention. Dans ces parcelles, le moment moyen de la biopsie pour chaque opérateur le long des trimestres d’étude est indiqué, avec une valeur globale moyenne de 8,24 minutes.Il est utile d’acquérir une image de chaque fragment biopsié à des fins de contrôle de la qualité afin d’évaluer si la cause des diagnostics non concluants était imputable à la dimension et/ou à la qualité du fragment, au tube ou à certains problèmes dans le traitement de l’échantillon dans le laboratoire génétique. Dans cette étude, 572 blastocystes euploïdes ont été réchauffés pour subir un transfert d’embryon après un diagnostic d’euploïde. Tous les blastocystes vitrifiés dans les 30 minutes, avec 2,4% des blastocystes ne se redynamisonne pas entre 31 et 90 minutes et 4,9% ne se ré-expansion au-delà de 90 minutes de réchauffage.Surtout pour les blastocystes de mauvaise qualité et/ou de septième jour, le moment entre biopsie et vitrification semble crucial pour parvenir à une ré-expansion après le réchauffement. Prenez soin de se concentrer avant d’ouvrir la zona pellucida lors de l’exposition de la jonction entre la cellule trophectoderm et le tir, et prendre soin aussi d’empêcher la réexpane blastocyste avant la vitrification. Deux autres approches de biopsie blastocyste existent, impliquant à la fois l’ouverture de zona pellucida et l’attente d’un arqué spontané des cellules trophectoderm.Ces approches sont plus faciles, mais nécessitent plus de manipulations et prennent plus de temps. L’efficacité de ce flux de travail permet la mise en œuvre de technologies moléculaires en FIV afin d’essayer de sélectionner le blastocyste ayant le plus de chances de s’implanter avant le transfert d’embryons. N’oubliez pas de ne pas utiliser d’appareil ou de solution qui pourrait être toxique pour les embryons et de prévenir la contamination par l’ADN en utilisant des matériaux exempts d’ADN.

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

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Biologie du développement

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