Name: human blastocyst biopsy and vitrification
Uploaded: 2019-07-26T12:30:00
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A AG e a RM coletaram os dados e elaboraram o manuscrito. A DC analisou os dados, elaborou os resultados representativos, realizou as estatísticas e revisou o manuscrito. A FMU e a LR forneceram discussão crítica dos resultados e de todo o manuscrito.

O protocolo para a biópsia humana do blastocisto, descrito aqui, segue as directrizes do Comitê de Ethic da pesquisa humana de G. en. a.r.a..
Nota: Consulte a tabela de materiais para materiais necessários. Material adicional necessário implica calçado de laboratório e equipamento, facemask cirúrgico, tampa do cabelo, luvas cirúrgicas, um marcador permanente não-tóxico, fórceps e desinfetante. O uso do vestido cirúrgico, luvas cirúrgicas descartá...

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	<li>Glujovsky, D., Farquhar, C., Quinteiro Retamar, A. M., Alvarez Sedo, C. R., Blake, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleavage+stage+versus+blastocyst+stage+embryo+transfer+in+assisted+reproductive+technology.">Cleavage stage versus blastocyst stage embryo transfer in assisted reproductive technology.</a> Cochrane Database of Systematic Reviews. (6), CD002118 (2016).</li><li>Dahdouh, E. M., Balayla, J., Garcia-Velasco, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comprehensive+chromosome+screening+improves+embryo+selection:+a+meta-analysis.">Comprehensive chromosome screening improves embryo selection: a meta-analysis.</a> Fertility and Sterility. 104 (6), 1503-1512 (2015).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Impact+of+Biopsy+on+Human+Embryo+Developmental+Potential+during+Preimplantation+Genetic+Diagnosis.">The Impact of Biopsy on Human Embryo Developmental Potential during Preimplantation Genetic Diagnosis.</a> Biomedical Research International. 2016, 7193075 (2016).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlation+between+standard+blastocyst+morphology,+euploidy+and+implantation:+an+observational+study+in+two+centers+involving+956+screened+blastocysts.">Correlation between standard blastocyst morphology, euploidy and implantation: an observational study in two centers involving 956 screened blastocysts.</a> Human Reproduction. 29 (6), 1173-1181 (2014).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implementing+PGD/PGD-A+in+IVF+clinics:+considerations+for+the+best+laboratory+approach+and+management.">Implementing PGD/PGD-A in IVF clinics: considerations for the best laboratory approach and management.</a> Journal of Assisted Reproduction and Genetics. , (2016).</li><li>McArthur, S. J., Leigh, D., Marshall, J. T., de Boer, K. A., Jansen, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pregnancies+and+live+births+after+trophectoderm+biopsy+and+preimplantation+genetic+testing+of+human+blastocysts.">Pregnancies and live births after trophectoderm biopsy and preimplantation genetic testing of human blastocysts.</a> Fertility and Sterility. 84 (6), 1628-1636 (2005).</li><li>Kokkali, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Birth+of+a+healthy+infant+following+trophectoderm+biopsy+from+blastocysts+for+PGD+of+beta-thalassaemia+major.">Birth of a healthy infant following trophectoderm biopsy from blastocysts for PGD of beta-thalassaemia major.</a> Human Reproduction. 20 (7), 1855-1859 (2005).</li><li>Rienzi, L., Ubaldi, F., Anniballo, R., Cerulo, G., Greco, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preincubation+of+human+oocytes+may+improve+fertilization+and+embryo+quality+after+intracytoplasmic+sperm+injection.">Preincubation of human oocytes may improve fertilization and embryo quality after intracytoplasmic sperm injection.</a> Human Reproduction. 13 (4), 1014-1019 (1998).</li><li>Wale, P. L., Gardner, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+chemical+and+physical+factors+on+mammalian+embryo+culture+and+their+importance+for+the+practice+of+assisted+human+reproduction.">The effects of chemical and physical factors on mammalian embryo culture and their importance for the practice of assisted human reproduction.</a> Human Reproduction Update. 22 (1), 2-22 (2016).</li><li>Rienzi, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oocyte,+embryo+and+blastocyst+cryopreservation+in+ART:+systematic+review+and+meta-analysis+comparing+slow-freezing+versus+vitrification+to+produce+evidence+for+the+development+of+global+guidance.">Oocyte, embryo and blastocyst cryopreservation in ART: systematic review and meta-analysis comparing slow-freezing versus vitrification to produce evidence for the development of global guidance.</a> Human Reproduction Update. 23 (2), 139-155 (2017).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Associations+of+blastocyst+features,+trophectoderm+biopsy+and+other+laboratory+practice+with+post-warming+behavior+and+implantation.">Associations of blastocyst features, trophectoderm biopsy and other laboratory practice with post-warming behavior and implantation.</a> Human Reproduction. , (2018).</li><li>Evans, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fresh+versus+frozen+embryo+transfer:+backing+clinical+decisions+with+scientific+and+clinical+evidence.">Fresh versus frozen embryo transfer: backing clinical decisions with scientific and clinical evidence.</a> Human Reproduction Update. 20 (6), 808-821 (2014).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Consistent+and+reproducible+outcomes+of+blastocyst+biopsy+and+aneuploidy+screening+across+different+biopsy+practitioners:+a+multicentre+study+involving+2586+embryo+biopsies.">Consistent and reproducible outcomes of blastocyst biopsy and aneuploidy screening across different biopsy practitioners: a multicentre study involving 2586 embryo biopsies.</a> Human Reproduction. 31 (1), 199-208 (2016).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Failure+mode+and+effects+analysis+of+witnessing+protocols+for+ensuring+traceability+during+PGD/PGS+cycles.">Failure mode and effects analysis of witnessing protocols for ensuring traceability during PGD/PGS cycles.</a> Reproductive Biomedicine Online. 33 (3), 360-369 (2016).</li><li>Gardner, D. K., Schoolcraft, B., Jansen, R., Mortimer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Towards Reproductive Certainty: Infertility and Genetics Beyond 1999. , 377-388 (1999).</li><li>Cimadomo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inconclusive+chromosomal+assessment+after+blastocyst+biopsy:+prevalence,+causative+factors+and+outcomes+after+re-biopsy+and+re-vitrification.+A+multicenter+experience.">Inconclusive chromosomal assessment after blastocyst biopsy: prevalence, causative factors and outcomes after re-biopsy and re-vitrification. A multicenter experience.</a> Human Reproduction. , (2018).</li><li>de Boer, K. A., Catt, J. W., Jansen, R. P., Leigh, D., McArthur, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Moving+to+blastocyst+biopsy+for+preimplantation+genetic+diagnosis+and+single+embryo+transfer+at+Sydney+IVF.">Moving to blastocyst biopsy for preimplantation genetic diagnosis and single embryo transfer at Sydney IVF.</a> Fertility and Sterility. 82 (2), 295-298 (2004).</li><li>Capalbo, A., Rienzi, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mosaicism+between+trophectoderm+and+inner+cell+mass.">Mosaicism between trophectoderm and inner cell mass.</a> Fertility and Sterility. 107 (5), 1098-1106 (2017).</li><li>McCoy, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+of+Selection+against+Complex+Mitotic-Origin+Aneuploidy+during+Preimplantation+Development.">Evidence of Selection against Complex Mitotic-Origin Aneuploidy during Preimplantation Development.</a> PLoS Genetics. 11 (10), e1005601 (2015).</li><li>Scott, R. T., Upham, K. M., Forman, E. J., Zhao, T., Treff, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleavage-stage+biopsy+significantly+impairs+human+embryonic+implantation+potential+while+blastocyst+biopsy+does+not:+a+randomized+and+paired+clinical+trial.">Cleavage-stage biopsy significantly impairs human embryonic implantation potential while blastocyst biopsy does not: a randomized and paired clinical trial.</a> Fertility and Sterility. 100 (3), 624-630 (2013).</li><li>Lee, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live+births+after+transfer+of+rebiopsy+and+revitrification+of+blastocyst+that+had+&#8220;no+diagnosis&#8221;+following+trophectoderm+biopsy.">Live births after transfer of rebiopsy and revitrification of blastocyst that had &#8220;no diagnosis&#8221; following trophectoderm biopsy.</a> Fertility and Sterility. 106 (3), e164 (2016).</li><li>Capalbo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diagnostic+efficacy+of+blastocoel+fluid+and+spent+media+as+sources+of+DNA+for+preimplantation+genetic+testing+in+standard+clinical+conditions.">Diagnostic efficacy of blastocoel fluid and spent media as sources of DNA for preimplantation genetic testing in standard clinical conditions.</a> Fertility and Sterility. 110 (5), 870-879 (2018).</li><li>Hammond, E. R., Shelling, A. N., Cree, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nuclear+and+mitochondrial+DNA+in+blastocoele+fluid+and+embryo+culture+medium:+evidence+and+potential+clinical+use.">Nuclear and mitochondrial DNA in blastocoele fluid and embryo culture medium: evidence and potential clinical use.</a> Human Reproduction. 31 (8), 1653-1661 (2016).</li><li>Vera-Rodriguez, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Origin+and+composition+of+cell-free+DNA+in+spent+medium+from+human+embryo+culture+during+preimplantation+development.">Origin and composition of cell-free DNA in spent medium from human embryo culture during preimplantation development.</a> Human Reproduction. 33 (4), 745-756 (2018).</li></ol>

Somente os embriologistas hábeis bem experientes que concluíram seu período de treinamento devem executar a biópsia do te e a vitrificação do blastocisto. Além disso, uma testemunha é exigida para monitorar os procedimentos e para garantir uma rastreabilidade eficiente durante i) os movimentos do blastocisto biópsia do prato da biópsia (Figura complementar 1) ao prato da borne-biópsia (Figura 1 suplementar ), depois à placa de vitrificação (Figura 1 suplementar</str...

O principal objetivo da embriologia humana moderna é maximizar o número de nascidos vivos por ciclo estimulado e reduzir custos, tempo e esforços para conseguir uma gravidez. Para atingir esse objetivo, devem ser empregadas abordagens validadas para a seleção de embriões para identificar embrião reproductivamente competentes dentro de uma coorte obtida durante um ciclo de FIV. De acordo com as evidências as mais atrasadas, a cultura1 do blastocisto combinada com o teste cromossomático detalhado e transferência Vitrified-aquecida do embrião do ADN (et) é a estrutura a mais eficiente para aumentar a eficiência2de IVF. Claramente, o teste de aneuploidia requer um espécime embrionário, que presentemente é representado na maior parte de poucas pilhas recuperadas do trofectoderma (te), isto é, a seção do blastocisto que dá a origem aos anexos do embrião (por exemplo, a placenta) durante a gravidez . Além da análise do karyotype, também as únicas mutações genéticas puderam ser avaliadas de uma biópsia do te como parte de uma estratégia clínica conhecida como o teste genético do preimplante (PGT;-a para aneuploidies,-Sr para rearranjos cromossomáticos estruturais,-M para doenças monogênica). Outros métodos da biópsia do oocyte/embrião foram teorized e adotados clìnica através das últimas décadas, a saber biópsia dos corpos polares e biópsia do blastômero. No entanto, a sua utilização é reduzida nos dias de hoje, uma vez que as suas desvantagens processuais (por exemplo, maior carga de trabalho e risco de impacto reprodutivo) e limitações diagnósticas (por exemplo, problemas de análise de células únicas) impedem implicitamente um equilíbrio suficiente entre custos, riscos e benefícios (para uma revisão ver3).
Neste trabalho, um dos principais protocolos para a biópsia TE é completamente descrito juntamente com os procedimentos subsequentes de vitrificação, aquecimento e transferência necessários. O fluxo de trabalho aqui descrito é ideal para uma unidade PGT ocupada.
Como já descrito anteriormente pelo nosso grupo4,5, o procedimento envolve a abertura sequencial da zona pelúcida de blastocistos totalmente expandidos e remoção de poucas células te (em média 7-8). Comparado ao dia 3 laser-ajudado a incubação-baseou o método6da biópsia do blastocisto, este procedimento pôde facilitar a programação diária de uma unidade de IVF onde os procedimentos delicados, tais como a biópsia e a vitrificação do blastocisto, devam ser executados oportuna. Assim que o blastocisto alcança sua expansão cheia, a biópsia pode ser realizada selecionando as pilhas do te a remover, assim impedindo o risco do herniation da massa interna da pilha (ICM), que de outra maneira tornaria o procedimento desafiante. Na literatura, um terceiro Protocolo da biópsia do blastocisto foi descrito igualmente, que envolva o incubação laser-ajudado que está sendo executado uma vez que o embrião já alcangou o estágio do blastocisto, poucas horas antes do procedimento5,7. Entretanto, esta aproximação é mais demorada e sere principalmente as unidades de IVF que estão implementando a biópsia do te nas mãos de operadores limitadamente experimentados e em vista de uma carga de trabalho diária moderada-baixa.
A injeção intracytoplasmatic do esperma (ICSI)8 deve ser uma técnica consolidada se visando conduzir análises genéticas em IVF. Da mesma forma, um sistema de cultura adequado para a colheita segura de embriões para o estágio de blastocist é crucial para a implementação da estratégia de biópsia de TE. Um número adequado de incubadoras, bem como o uso de baixa tensão de oxigênio são pré-requisitos chave para este fim, para não comprometer a taxa de blastocist9. Ao mesmo tempo, um programa de criopreservação eficiente é necessário para gerenciar com segurança um ciclo de PGT. Na última década, a implantação da vitrificação impulsionou as taxas de criosobrevivência embrionária até > 99%10,11. Isso proporcionou tempo suficiente para realizar testes genéticos e adiar a transferência de embriões para o seguinte ciclo menstrual, em um endométrio não estimulado e provavelmente mais receptivo12.
Tanto a biópsia de TE quanto a vitrificação são tarefas exigentes que exigem habilidades rigorosas e sua eficácia pode variar em operadores não experientes. Um período de formação específico é, portanto, defendido antes de permitir que cada operador realize estes procedimentos clinicamente; Além disso, a manutenção das competências dos operadores deve ser avaliada periodicamente através da monitorização dos indicadores-chave de desempenho (KPI) para os procedimentos de criopreservação e biópsia. Cada clínica de fertilização in vitro deve definir KPIs internos para esse fim, que devem aproximar os publicados por consórcios internacionais e/ou os resultados publicados por laboratórios de referência.
Os procedimentos de biópsia, vitrificação-aquecimento e testemunhando são técnicas validadas em nossa unidade, que foram padronizadas em todos os operadores envolvidos, conforme relatado em três publicações anteriores11,13,14 .

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cold tube rack</td>
			<td>Biocision</td>
			<td>XTPCR96</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electronic pipette controller</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>710931</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flexipet adjustable handle set</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G18674</td>
			<td>Stripper holder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gilson Pipetman</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>66003</td>
			<td>p20</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IVF Electronic Witness System</td>
			<td>CooperSurgical Fertility &#38; Genomic Solutions</td>
			<td></td>
			<td>RI Witness ART Management System</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Eclipse TE2000-U</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laminar Flow Hood</td>
			<td>IVF TECH</td>
			<td></td>
			<td>Grade A air flow</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser objective</td>
			<td>RI</td>
			<td>Saturn 5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microinjectors</td>
			<td>Nikon Narishige</td>
			<td>NT-88-V3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini centrifuge for PCR tubes</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>CSLQSPIN</td>
			<td>for 0.2ml PCR tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>Leica M80</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermostat</td>
			<td>Panasonic</td>
			<td>MCO-5AC-PE</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tri-gas incubator</td>
			<td>Panasonic</td>
			<td>MCO-5M-PE</td>
			<td>02/CO2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Consumables</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biopsy pipette</td>
			<td>RI</td>
			<td>7-71-30FB35720</td>
			<td>30&#181;m ID, flat 35&#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cryolock</td>
			<td>Cryolock</td>
			<td>CL-R-CT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CSCM complete</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>90165</td>
			<td>IVF culture medium supplemented with HSA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Embryo Transfer Catheter</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G17934</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flexipet pipette</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G26712</td>
			<td>140&#181;m stripping pipette tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flexipet pipette</td>
			<td>Cook</td>
			<td>G46020</td>
			<td>300&#181;m stripping pipette tips</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Holding pipette</td>
			<td>RI</td>
			<td>7-71-IH35/20</td>
			<td>30&#181;m ID, flat 35&#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Serum Albumin</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>9988</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IVF One well dish</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353653</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mineral Oil for embryo culture</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>9305</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Modified HTF Medium</td>
			<td>Irvine Scientific</td>
			<td>90126</td>
			<td>Hepes-Buffered medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nuclon Delta Surface</td>
			<td>Thermofisher scientific</td>
			<td>176740</td>
			<td>IVF dish 4-well plate with sliding lid</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primaria Cell culture dish</td>
			<td>Corning</td>
			<td>353802</td>
			<td>60x15mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reproplate</td>
			<td>Kitazato</td>
			<td>83016</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serological pipette</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>357551</td>
			<td>10ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile disposable Gilson tips</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>0030 075.021</td>
			<td>200&#181;l</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tubing Kit</td>
			<td>Provided by the genetic lab</td>
			<td></td>
			<td>PCR tubes (0.2mL), loading solution, biopsy washing solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vitrification media</td>
			<td>Kitazato</td>
			<td>VT801</td>
			<td>Equilibration and vitrification solutions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Warming media</td>
			<td>Kitazato</td>
			<td>VT802</td>
			<td>Thawing and dilution solutions</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

human blastocyst biopsy and vitrification

A biópsia do Blastocyst é executada para obter um diagnóstico genético de confiança durante ciclos de IVF com teste genético do pré-implante. Em seguida, o fluxo de trabalho ideal implica um protocolo de vitrificação seguro e eficiente, devido ao tempo de resposta das técnicas diagnósticas e à transferência do (s) embrião (es) selecionado em um endométrio fisiológico em um ciclo natural seguinte. Uma aproximação da biópsia que abrange a abertura seqüencial do pelúcida da zona e a recuperação de 5-10 pilhas do trofectoderma (idealmente 7-8) limita o número de manipulações exigidas e a exposição do embrião às condições ambientais suboptimal. Após o treinamento adequado, a técnica foi reprodutível em diferentes operadores em termos de tempo de biópsia (~ 8 min, variando de 3-22 min com base no número de embriões para biópsia por prato), diagnósticos conclusivos obtidos (~ 97,5%) e taxas de natalidade ao vivo após a transferência de blastocisto de euplóide vitrificado-aquecido (> 40%). A taxa de sobrevida após biópsia, vitrificação e aquecimento foi tão alta quanto 99,8%. A taxa da re-expansão em 1,5 h do aquecimento era tão elevada quanto 97%, pela maior parte dependente do sincronismo entre a biópsia e a vitrificação (idealmente ≤ 30 minutos), a qualidade morfológica do blastocisto e o dia da biópsia. Em geral, é melhor vitrificar um blastocist colapsado; Conseqüentemente, em ciclos da não-PGT, o encolhimento artificial laser-ajudado pôde ser executado para induzir o colapso do embrião antes da criopreservação. A perspectiva futura a mais prometedora é a análise não invasora dos meios de cultura do IVF após a cultura do blastocisto como uma fonte putativo do ADN embrionário. No entanto, este potencial avant-garde ainda está investigação e um protocolo confiável ainda precisa ser definido e validado.

A Figura 6 representa um esquema de todos os desfechos de um procedimento de biópsia que pode ser adotado para padronizar o protocolo e monitorar o desempenho de cada operador. O resultado processual principal é o sincronismo para terminar a biópsia/biópsias; o principal resultado técnico é a qualidade do enredo produzido após o teste genético que pode resultar em um diagnóstico conclusivo ou inconclusivo, o último dos quais requer uma re-biópsia d...

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Human Blastocyst Biopsy and Vitrification

A biópsia e a vitrificação do Blastocyst são exigidas para conduzir eficientemente o teste genético do pré-implante. Uma aproximação que implica a abertura seqüencial da zona pelúcida e a recuperação de 7-8 pilhas do trofectoderma no dia 5-7 pós-inseminação limita o número de manipulações exigidas e a exposição do embrião às condições ambientais suboptimal.

Biópsia e vitrificação humana do Blastocyst

Blastocyst biopsy is performed to obtain a reliable genetic diagnosis during IVF cycles with preimplantation genetic testing. Then, the ideal workflow ...

Tanto a biópsia do blastocisto quanto a vitrificação têm sido uma revolução na fertilização in vitro, permitindo que embriologistas de todo o mundo realizem testes genéticos de pré-implantação em embriões humanos com risco mínimo para o embrião. A biópsia de tropetoderme permitiu a recuperação de cerca de sete células de um embrião totalmente crescido, permitindo assim uma análise genética robusta a jusante. Além disso, nenhum impacto foi demonstrado, até o momento, para essa abordagem.A eficiência clínica deste fluxo de trabalho permite que pacientes com condições monogênicas e todos aqueles pacientes com risco aumentado de anormalidades cromossômicas dentro de seu blastocisto se beneficiem de testes genéticos pré-implantação. Ainda há espaço para melhorar as estratégias atuais de seleção de embriões. Por exemplo, o perfil miRNomic e proteômico representam opções intrigantes para complementar os testes genéticos de pré-implantação em uma única biópsia de tropectoderme.Operadores não experientes muitas vezes lutam para abrir e penetrar na zona pellucida. É só uma questão de foco. O blastocisto, objetivo laser e pipetas devem estar no mesmo plano focal.Depois de rotular o prato de biópsia com os detalhes do paciente, com um marcador permanente, não tóxico, numerar cada gota de 10 microliter de meio tamponado hepes com o embrião e iD de ciclo.Usando uma pipeta de descascamento de 300 micrômetros, transfira um blastocisto viável e totalmente expandido para a primeira gota da placa de biópsia e enxágue a gota para remover o meio de cultura em excesso, antes de mover o blastocisto para a segunda gota no prato. Coloque o prato sob um microscópio invertido, e prime a pipeta biópsia com médio a partir da terceira gota do prato de biópsia. Sob uma ampliação de 20 vezes, oriente o blastocisto para obter uma visão clara da massa celular interna às sete horas, e fixar o embrião na pipeta de retenção.Concentre-se na zona pellucida para que tanto as pipetas quanto o blastocisto estejam no mesmo plano focal. Mude para o objetivo do laser e posicione o ponteiro laser na zona pellucida no lado oposto da massa celular interna. Perfurar a zona pellucida com dois a três pulsos de laser, e pressione suavemente a pipeta da biópsia contra a zona pellucida para permitir que o meio seja soprado através da fenda para separar as células de trophectoderm da superfície interna.Quando o trophectoderm for destacado, entre pelo orifício e aspire de sete a oito células de trophectoderm na pipeta da biópsia com sucção suave. Ao aplicar uma sucção moderada para esticar as células-alvo, mova ligeiramente a pipeta da biópsia para trás e direcione o laser para a parte mais fina das células aspiradas. Dispare de dois a cinco pulsos de laser nas junções entre as células para separar as células-alvo do corpo do embrião.Quando o fragmento de trophectoderm tiver sido separado do blastocisto, solte o fragmento na mesma gota de biópsia longe do blastocisto para evitar que o fragmento seja sugado de volta para a pipeta da biópsia. Solte o blastocisto da pipeta de retenção e levante prontamente ambas as pipetas para evitar que o fragmento grude em pipetas. Em seguida, imagem o fragmento biopsiado para fins de controle de qualidade.Quando todos os blastocistos tiverem sido biópsiados como apenas demonstrado, mova o prato de biópsia de volta para a capa de fluxo laminar e rotule o prato de cultura pós-biópsia com o ID do casal e cada gota com o embrião e os IDs de ciclo. Na presença de uma testemunha, enxágue o blastocisto em meio de FERTILIZAÇÃO INVIP limpa e mova o blastocisto para sua queda correspondente no prato pós-biópsia. Em seguida, coloque o prato pós-biópsia em uma incubadora de 37 graus Celsius, 6% de dióxido de carbono e 5% de oxigênio.Na presença da testemunha e dentro de uma coifa de fluxo laminar à temperatura ambiente, rotule os tubos PCR com um marcador permanente e não tóxico. Rotule a tampa de um prato de cultura de tubulação de 60 x 15 milímetros com os IDs de embriões biópsias, e adicione duas gotas de 10 microliter de solução de lavagem de biópsia ao prato. Prime uma pipeta de 140 micrômetros com solução de lavagem de biópsia a partir da segunda gota do prato de tubulação sob o microscópio estéreo para visualizar os fragmentos de trophectoderm.Solte delicadamente alguma solução de lavagem de biópsia sobre o fragmento do trofederm e carregue o fragmento na pipeta de descascamento. Mova o fragmento para a segunda gota da solução de lavagem da biópsia, e enxágue cuidadosamente o tecido duas a três vezes. Transfira o fragmento de trophectoderm para a parte inferior do tubo PCR apropriadamente rotulado com solução de carregamento, tomando cuidado para evitar tocar nas paredes do tubo com a ponta da pipeta de descascamento.Quando todos os fragmentos tiverem sido adicionados aos seus tubos, gire todos os tubos em uma mini centrífuga por alguns segundos para sedimentar os fragmentos. Em seguida, armazene as amostras a menos 20 graus Celsius até que sejam enviadas para o laboratório genético de referência para testes. Dentro de 30 minutos de biópsia de trophectoderm, rotule uma placa de vitrificação com os detalhes do paciente e as identidades dos blastocistos que devem ser vitrificadas.Utilizando criolatos especiais resistentes à temperatura fria, rotule os suportes de vitrificação com o nome e sobrenome do paciente, identificação do casal, identificação do embrião que será carregado nele e a data do procedimento. À temperatura ambiente, dispense 300 microliters de solução de equilíbrio para cada blastocisto que será vitrificado e, na presença de uma testemunha, use uma pipeta de descascamento de 300 micrômetros para mover o blastocisto em um volume de solução de equilíbrio. Deixe o blastocisto na solução de equilíbrio por 13 a 15 minutos.Após uma redução inicial do volume, será observada uma reestração gradual. No final do equilíbrio, adicione 300 microliters de solução de vitrificação ao segundo poço da placa de vitrificação e transfira o blastocisto completamente re-expandido para a solução de vitrificação por um minuto. No final da incubação, enxágue o blastocisto para diluir a solução de equilíbrio e, na presença de uma testemunha, carregar o blastocisto no suporte de vitrificação.Remova o excesso de solução de vitrificação. Um filme sutil de solução deve cercar o blastocisto. Mergulhe o suporte de vitrificação em nitrogênio líquido, e mova vigorosamente o suporte para reduzir o risco de formação de bolhas perto da amostra.Em seguida, coloque a tampa protetora no suporte enquanto o suporte de vitrificação ainda está submerso em nitrogênio líquido. Dos 1.544 procedimentos de biópsia de trophectoderm realizados durante este período representativo de dois anos, entre um a quatro blastocistos foram biópsias por procedimento entre três a 22 minutos por procedimento. Nestes gráficos, é mostrado o tempo médio da biópsia para cada operador ao longo dos trimestres de estudo, com um valor médio global de 8,24 minutos.É útil adquirir uma imagem de cada fragmento biópsia para fins de controle de qualidade para avaliar se a causa de diagnósticos inconclusivos era imputável à dimensão e/ou qualidade do fragmento, à tubulação ou a algumas questões no processamento da amostra no laboratório genético. Neste estudo, 572 blastocistos euploides foram aquecidos para serem submetidos a uma transferência de embriões após o diagnóstico de euploidia. Todos os blastocistos vitrificados em 30 minutos, com 2,4% dos blastocistos não se rees expandindo entre 31 e 90 minutos e 4,9% não se expandindo além de 90 minutos de reaquecimento.Especialmente para a má qualidade e/ou dia sete blastocistos, o tempo entre biópsia e vitrificação parece crucial para alcançar a reestrução após o aquecimento. Tome cuidado para se concentrar antes de abrir a zona pellucida ao expor a junção entre a célula de trophectoderm e o disparo, e tome cuidado também para evitar a reestrucionação do blastocisto antes da vitrificação. Existem duas outras abordagens de biópsia blastocisto, ambas implicando a abertura da zona pellucida e esperando por um arqueamento espontâneo das células de trophectoderm.Essas abordagens são mais fáceis, mas exigem mais manipulações e são mais demoradas. A eficácia deste fluxo de trabalho permite a implementação de tecnologias moleculares na FIV, a fim de tentar selecionar o blastocisto com maior chance de implantar antes da transferência do embrião. Lembre-se de não usar nenhum dispositivo ou solução que possa ser tóxico para os embriões e para evitar a contaminação do DNA usando materiais livres de DNA.

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Isolation and Quantitative Immunocytochemical Characterization of Primary Myogenic Cells and Fibroblasts from Human Skeletal Muscle

Isolamento e Quantitative Immunocytochemical caracterização de células Miogênica primários e fibroblastos de músculo-esquelético humano

The repair and regeneration of skeletal muscle requires the action of satellite cells, which are the resident muscle stem cells. These can be isolated ...

Biologia do Desenvolvimento

Three-dimensional Quantification of Dendritic Spines from Pyramidal Neurons Derived from Human Induced Pluripotent Stem Cells

A quantificação tridimensional das espinhas dendríticas de Piramidal neurônios derivados pluripotentes induzidas pelo homem Células-Tronco

Dendritic spines are small protrusions that correspond to the post-synaptic compartments of excitatory synapses in the central nervous system. They are ...

Culturing Human Pluripotent and Neural Stem Cells in an Enclosed Cell Culture System for Basic and Preclinical Research

Cultura pluripotentes humanas e células-tronco neurais em um sistema de cultura celular fechado de Pesquisa Básica e pré-clínica

This paper describes how to use a custom manufactured, commercially available enclosed cell culture system for basic and preclinical research. Biosafety ...

Modified MicroSecure Vitrification: A Safe, Simple and Highly Effective Cryopreservation Procedure for Human Blastocysts

Modificada Vitrificação MicroSecure: Um Altamente procedimento seguro, simples e eficaz para Criopreservação blastócitos humanos

Clinical embryo vitrification evolved with the development of unique vitrification devices in the 21st century and with the misconception that ultra-rapid ...

Cell Aggregation Assays to Evaluate the Binding of the Drosophila Notch with Trans-Ligands and its Inhibition by Cis-Ligands

Cell Aggregation Assays to Evaluate the Binding of the Drosophila Notch with Trans-Ligands and its Inhibition by Cis-Ligands

Celular agregação ensaios para avaliar a vinculação do entalhe drosófila com Trans-ligantes e sua inibição pelo Cis-ligantes

Notch signaling is an evolutionarily conserved cell-cell communication system used broadly in animal development and adult maintenance. Interaction of the ...

Minimally Invasive Embryo Transfer and Embryo Vitrification at the Optimal Embryo Stage in Rabbit Model

Transferência de embriões minimamente invasivos e vitrificação embrionária na fase de embrião ideal em modelo de coelho

Assisted reproductive techniques (ARTs), such as in vitro embryo culture or embryo cryopreservation, affect natural development patterns with perinatal ...

Isolation, Culture, Characterization, and Differentiation of Human Muscle Progenitor Cells from the Skeletal Muscle Biopsy Procedure

Isolamento, cultura, caracterização e diferenciação de células progenitoras do músculo humano do procedimento de biópsia do músculo esquelético

The use of primary human tissue and cells is ideal for the investigation of biological and physiological processes such as the skeletal muscle ...

Determining Bile Duct Density in the Mouse Liver

Determinando a densidade do ducto biliar no fígado do rato

Mouse is broadly used as a model organism to study biliary diseases. To evaluate the development and function of the biliary system, various techniques ...

Human Egg Maturity Assessment and Its Clinical Application

Avaliação da maturidade do ovo humano e sua aplicação clínica

The optimal timing of intracytoplasmic sperm injection (ICSI) is of a serious concern for fertility programs because untimely sperm entry diminishes the ...

Generation of Multicellular Human Primary Endometrial Organoids

Geração de organóides endometriais primários humanos multicelulares

The human endometrium is one of the most hormonally responsive tissues in the body and is essential for the establishment of pregnancy. This tissue can ...