Name: dna sequence recognition by dna primase using high-throughput primase profiling
Uploaded: 2019-10-08T13:00:00
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Esta investigación fue apoyada por la ISRAEL SCIENCE FOUNDATION (concesión No 1023/18).

1. Diseño de microarray
NOTA: Las sondas de ADN representan secuencias personalizadas de 36 nucleótidos, que consisten en el sitio de reconocimiento de la primasa de ADN T7 (GTC) situada entre dos regiones de flanqueo variables, seguidas de una secuencia constante de 24 nucleótidos aunada a una diapositiva de vidrio3. Usamos un formato de microarray de 4 x 180.000, que permitía la detección de cada secuencia de ADN en seis réplicas, distribuidas aleatoriamente en la...

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	<li>Berger, M. F., Bulyk, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+binding+microarrays+(PBMs)+for+rapid,+high-throughput+characterization+of+the+sequence+specificities+of+DNA+binding+proteins.">Protein binding microarrays (PBMs) for rapid, high-throughput characterization of the sequence specificities of DNA binding proteins.</a> Methods in Molecular Biology. 338, 245-260 (2006).</li><li>Berger, M. F., Bulyk, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Universal+protein-binding+microarrays+for+the+comprehensive+characterization+of+the+DNA-binding+specificities+of+transcription+factors.">Universal protein-binding microarrays for the comprehensive characterization of the DNA-binding specificities of transcription factors.</a> Nature Protocols. 4 (3), 393-411 (2009).</li><li>Afek, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DNA+Sequence+Context+Controls+the+Binding+and+Processivity+of+the+T7+DNA+Primase.">DNA Sequence Context Controls the Binding and Processivity of the T7 DNA Primase.</a> iScience. 2, 141-147 (2018).</li><li>Afek, A., Schipper, J. L., Horton, J., Gordan, R., Lukatsky, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein-DNA+binding+in+the+absence+of+specific+base-pair+recognition.">Protein-DNA binding in the absence of specific base-pair recognition.</a> Proceedings of the Nationaly Academy of Sciences of the Unitet States of America. 111 (48), 17140-17145 (2014).</li><li>Frick, D. N., Richardson, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interaction+of+bacteriophage+T7+gene+4+primase+with+its+template+recognition+site.">Interaction of bacteriophage T7 gene 4 primase with its template recognition site.</a> Journal of Biological Chemistry. 274 (50), 35889-35898 (1999).</li><li>Tabor, S., Richardson, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Template+recognition+sequence+for+RNA+primer+synthesis+by+gene+4+protein+of+bacteriophage+T7.">Template recognition sequence for RNA primer synthesis by gene 4 protein of bacteriophage T7.</a> Proceedings of the Nationaly Academy of Sciences of the Unitet States of America. 78 (1), 205-209 (1981).</li><li>Fried, M., Crothers, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Equilibria+and+kinetics+of+lac+repressor-operator+interactions+by+polyacrylamide+gel+electrophoresis.">Equilibria and kinetics of lac repressor-operator interactions by polyacrylamide gel electrophoresis.</a> Nucleic Acids Research. 9 (23), 6505-6525 (1981).</li><li>Galas, D. J., Schmitz, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DNAse+footprinting:+a+simple+method+for+the+detection+of+protein-DNA+binding+specificity.">DNAse footprinting: a simple method for the detection of protein-DNA binding specificity.</a> Nucleic Acids Research. 5 (9), 3157-3170 (1978).</li><li>Jost, J. P., Munch, O., Andersson, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Study+of+protein-DNA+interactions+by+surface+plasmon+resonance+(real+time+kinetics).">Study of protein-DNA interactions by surface plasmon resonance (real time kinetics).</a> Nucleic Acids Research. 19 (10), 2788 (1991).</li><li>Bowen, B., Steinberg, J., Laemmli, U. K., Weintraub, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+detection+of+DNA-binding+proteins+by+protein+blotting.">The detection of DNA-binding proteins by protein blotting.</a> Nucleic Acids Research. 8 (1), 1-20 (1980).</li><li>Oliphant, A. R., Brandl, C. J., Struhl, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Defining+the+sequence+specificity+of+DNA-binding+proteins+by+selecting+binding+sites+from+random-sequence+oligonucleotides:+analysis+of+yeast+GCN4+protein.">Defining the sequence specificity of DNA-binding proteins by selecting binding sites from random-sequence oligonucleotides: analysis of yeast GCN4 protein.</a> Molecular Cell Biology. 9 (7), 2944-2949 (1989).</li><li>Marmorstein, R., Fitzgerald, M. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modulation+of+DNA-binding+domains+for+sequence-specific+DNA+recognition.">Modulation of DNA-binding domains for sequence-specific DNA recognition.</a> Gene. 304, 1-12 (2003).</li></ol>

El método PBM se ha utilizado ampliamente para investigar las propiedades de unión de los factores de transcripción y también se puede aplicar a enzimas de procesamiento de ADN, como la primasa del ADN, que se unen al ADN con baja afinidad. Sin embargo, se requieren ciertas modificaciones de los procedimientos experimentales. El experimento de microarray implica varios pasos: diseño de la biblioteca de ADN, preparación del chip, unión de la diana proteica, etiquetado fluorescente y escaneo. Los pasos de lavado lev...

HTPP hace uso de la tecnología de microarray de unión al ADN combinada con el análisis bioquímico(Figura 1) para identificar estadísticamente características específicas de las plantillas de ADN que afectan a la actividad enzimática de la primasa del ADN. Por lo tanto, HTPP proporciona una plataforma tecnológica que facilita un salto de conocimiento en el campo. Las herramientas clásicas utilizadas para determinar sitios de reconocimiento de primas no tienen la capacidad de producir una gran cantidad de datos, mientras que HTPP sí.
PBM es una técnica utilizada rutinariamente para determinar las preferencias de unión de los factores de transcripción al ADN1,2; sin embargo, no es adecuado para la detección de la unión débil / transitoria de proteínas al ADN. A diferencia del PBM universal que proporciona información sobre la especificidad media de unión a proteínas a todas las secuencias posibles que consisten en ocho pares de base, HTPP se basa en la biblioteca de plantillas de ADN de una sola cadena que comprende elementos de secuencia únicos. Estos elementos de secuencia de ADN implican decenas de miles de secuencias genómicas cortas (pocas decenas de bp), así como secuencias de ADN diseñadas computacionalmente enriquecidas en ciertos elementos de secuencia repetitiva de ADN presentes en el genoma, que poseen diferentes contenidos promedio de GC . Este enfoque de alto rendimiento permite determinar, de forma sistemática, cuantitativa y basada en hipótesis, las propiedades relacionadas con la secuencia que son importantes para la unión de primas y su actividad enzimática3. En particular, se ha identificado el importante vínculo entre las preferencias de unión a primas-ADN (moduladas por secuencias de ADN que flanquean sitios específicos de unión a trinucleótidos) y la procesatividad de la primas para este sistema enzimático4.
La nueva tecnología se aplicó para revisar nuestra comprensión de los sitios de reconocimiento de primas, incluso para la primasa de ADN T7 que ha sido ampliamente estudiada5. Específicamente, el reexamen de conceptos clásicos, como los sitios de reconocimiento de ADN de la primasa tensa T7 (que se determinaron hace casi cuatro décadas 6) utilizando microarray de unión a proteínas y ADN (PBM) ha dado lugar a una visión sin precedentes de las características relacionadas con la secuencia de flanqueo de estos sitios de reconocimiento3. Se esperaba que las secuencias que flanquean el sitio de reconocimiento de trinucleótidos de t7 ADN primas (5'-GTC-3') sean aleatorios. En su lugar, encontramos que las secuencias de flanqueo ricas en TG aumentan las posibilidades de que la primasa de ADN T7 sintete imprimaciones de ARN más largas que indiquen un aumento en la procesabilidad.
Otros métodos que se pueden utilizar para estudiar las propiedades de unión al ADN de las proteínas in vitro incluyen el ensayo de cambio de movilidad electroforética (EMSA)7, DNase I huella8, resonancia de plán (SPR)9, y hincha del sudoeste 10. Sin embargo, estos son métodos de bajo rendimiento sólo aplicables a la investigación de un pequeño número de secuencias de ADN. Además, la precisión y sensibilidad de algunas de estas técnicas (por ejemplo, EMSA) es baja. Por otro lado, la selección in vitro11 es una técnica que, de forma similar a PBM, puede utilizarse para la identificación de numerosas secuencias de unión. Sin embargo, las secuencias de baja afinidad generalmente se excluyen en la mayoría de las aplicaciones de selección in vitro; por lo tanto, este enfoque no es adecuado para obtener datos vinculantes comparativos para todas las secuencias disponibles. El PBM1universal,2 se utiliza principalmente para caracterizar las especificidades vinculantes de los factores de transcripción de prokaryotes y eucariotas, así como factores específicos (por ejemplo, presencia de ciertos ligandos, cofactores, etc.) que pueden afectan a esta interacción12.
HTPP expande la aplicación PBM a las enzimas de procesamiento de ADN mediante la combinación de potencia estadística de alto rendimiento sin precedentes con alta precisión para proporcionar información sobre el contexto de secuencia de enlace. Estos datos aún no se han obtenido para los primas y enzimas relacionadas (que tienen una unión débil/transitoria al ADN) debido a las limitaciones técnicas antes mencionadas de otras técnicas disponibles.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>40% acrylamide-bisacrylamide (19:1) solution</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1006401000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>95% formamide</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F9037-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa 488-conjugated anti-his antibody</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>35310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonuium persulfate (APS)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A3678-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ATP, [&#945;-32P] &#8211; 3000 Ci/mmol</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>NEG003H250UC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Boric acid, granular</td>
			<td>Glentham Life Sciences</td>
			<td>GE4425</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin (BSA)</td>
			<td>Roche</td>
			<td>10735094001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bromophenol blue</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>B0126-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coplin jar</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dithiothreitol (DTT)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D0632-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNA microarray</td>
			<td>Agilent</td>
			<td></td>
			<td>4x180K (AMADID #78366) 
			https://www.agilent.com</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)</td>
			<td>Acros Organics</td>
			<td>AC118430010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fujifilm FLA-5100 phosphorimager</td>
			<td>FUJIFILM Life Science</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass slide staining rack</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>12869995</td>
			<td>If several slides are used</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab rotator</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>88880025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnesium chloride</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>63064-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microarray Hybridization Chamber</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>G2534A</td>
			<td>https://www.agilent.com/cs/library/usermanuals/Public/G2534-90004_HybridizationChamber_User.pdf</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microarray scanner (GenePix 4400A)</td>
			<td>Molecular Devices</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline (PBS)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P4417-100TAB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium glutamate</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>A172232</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ribonucleotide Solution Mix (rNTPs)</td>
			<td>New England BioLabs</td>
			<td>N0466S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Salmon testes DNA</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D1626-1G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Skim milk powder</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>70166-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Staining dish</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>12657696</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetramethylethylenediamine (TEMED)</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>1610800</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris base (2-Amino-2-(hydroxymethyl)-1,3-propanediol)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>93362-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>X100-500ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tween-20</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P9416-50ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Urea</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>U6504-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylene cyanol</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>B21530</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dna sequence recognition by dna primase using high-throughput primase profiling

DNA primase sintetiza imprimaciones cortas de ARN que inician la síntesis de ADN de fragmentos de Okazaki en la hebra rezagada por ADN polimerasa durante la replicación del ADN. La unión de primas procariotas similares a DnaG al ADN se produce en una secuencia de reconocimiento de trinucleótidos específica. Es un paso fundamental en la formación de fragmentos de Okazaki. Las herramientas bioquímicas convencionales que se utilizan para determinar la secuencia de reconocimiento de ADN de la primasa del ADN proporcionan sólo información limitada. Utilizando un ensayo de unión basado en microarrays de alto rendimiento y análisis bioquímicos consecutivos, se ha demostrado que 1) el contexto de unión específico (secuencias de flanqueo del sitio de reconocimiento) influye en la fuerza de unión de la primasa de ADN a su plantilla EL ADN, y 2) la unión más fuerte de la primasa al ADN produce imprimaciones de ARN más largas, lo que indica una mayor procesatividad de la enzima. Este método combina el ensayo de actividad de PBM y primase y se designa como perfilado de primas de alto rendimiento (HTPP), y permite la caracterización del reconocimiento de secuencia específica por primas aganlos en un tiempo y escalabilidad sin precedentes.

Este avance tecnológico para el mapeo de los sitios de unión de primas permite la obtención de propiedades de unión al ADN que son difíciles, si no imposibles, de observar utilizando herramientas clásicas. Más importante aún, HTPP permite la revisión de la comprensión tradicional de los sitios de encuadernación de primas. Específicamente, HTPP revela especificidades de unión además de conocidas 5 '-GTC-3' secuencias de reconocimiento, que conduce a cambios en las actividades...

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DNA Sequence Recognition by DNA Primase Using High-Throughput Primase Profiling

Los experimentos de microarray de unión a proteínas (PBM) combinados con ensayos bioquímicos vinculan las propiedades lácteas y catalíticas de la primasa de ADN, una enzima que sintetiza los imprimadores de ARN en el ADN de la plantilla. Este método, designado como perfilado de primas de alto rendimiento (HTPP), se puede utilizar para revelar patrones de unión al ADN de una variedad de enzimas.

Reconocimiento de secuencia de ADN por ADN primas mediante perfiles de primas de alto rendimiento

DNA primase synthesizes short RNA primers that initiate DNA synthesis of Okazaki fragments on the lagging strand by DNA polymerase during DNA replication. ...

Este protocolo describe la recopilación de datos masivos de microarray de unión proteína-ADN para primasa, una enzima que se une transitoriamente a secuencias de ADN específicas y a su vez cataliza la formación de imprimaciones de ARN. Este video cubrirá cómo la tecnología de microarray puede ayudar a redefinir los sitios de reconocimiento de secuencias de primasa y cómo un enfoque de alto rendimiento puede complementar la bioquímica clásica. Esta técnica combina dos enfoques: microarray de unión al ADN de primasa y ensayo de actividad de primasa.El microarray proporciona datos masivos de unión de primasa a secuencias de ADN, donde como el ensayo bioquímico proporciona información sobre la formación de imprimación de ARN por primasa de ADN. La actividad enzimática probada depende de la información del experimento de microarray y de su menor rendimiento en su naturaleza. Se sondea el vínculo entre la eficiencia de la unión, la selección de la secuencia de ADN y la actividad de la enzima.La identificación de la determinación de la secuencia mediante microarray, nos permite sacar conclusiones precisas basadas en datos masivos del microarray. Este enfoque se ha utilizado hasta ahora para describir secuencias de unión de ADN de factores de transcripción. Los factores de transcripción son proteínas estáticas que se unen estrechamente al ADN.Demostrar el procedimiento será Stefan Ilic. Para comenzar este procedimiento, humedezca previamente la diapositiva del microarray colocándola en un frasco de coplina que contenga 0,01%Triton-X 100. Y girando sobre un rotador de laboratorio, agregue 125 rpm durante cinco minutos.Pipetear la solución de bloqueo en una caja de plástico. A continuación, retire la diapositiva de microarray del frasco de coplina. Utilice una toallita fina para conducir el lado no ADN y los bordes de la diapositiva.Coloque lentamente el microbarra en la caja de plástico. Incubar a temperatura ambiente durante una hora con agitación lenta. Después de esto, lave el portaobjetos una vez con 0.01%Tween-20 en PBS.En un rotador de laboratorio a 125 rpm durante cinco minutos. Retire el Tween-20 y enjuague el portaobjetos una vez con 0.01%Triton-X 100 en PBS en un rotador de laboratorio a 125 rpm durante dos minutos. A continuación, transfiera rápidamente la diapositiva a un frasco de coplina que contenga PBS.En primer lugar, monte la cámara PMB como se describe en el protocolo de texto. Coloque la diapositiva en el espacio designado. Usa pinzas para empujarla hacia abajo y hacia la izquierda.Coloque la junta de silicio en la parte superior, asegurándose de que esté bien alineada con la parte inferior de la cámara PBM. A continuación, cierre la cámara y apriete los tornillos diagonalmente. Pipetear la mezcla de unión a proteínas en cada pozo de la junta.Luego, incubar a temperatura ambiente durante 30 minutos. Para comenzar, pipetear 0.05%Tween-20 en PBS en la cámara PBM para lavar brevemente el portaobjetos. Con un aspirador de vacío, retire la solución de los pozos de la cámara teniendo cuidado de no tocar las manchas de ADN.Repita esto, lave brevemente el portaobjetos con PBS. Y utilice el vacío para extraer la solución de los pozos de la cámara mientras tenga cuidado de no tocar las manchas de ADN. A continuación, agregue Alexa 488 conjugado anti-Su Anticuerpo a cada pozo de la cámara PBM.Incubar en la oscuridad a temperatura ambiente durante 30 minutos. Después de esto, lave brevemente el portaobjetos dentro de la cámara PBM añadiendo unas gotas de 0.05%Tween-20 en PBS en cada pozo. Y utilice el aspirador de vacío para eliminar la solución de los pozos de la cámara, teniendo cuidado de no tocar las manchas de ADN.Desmonte la cámara PBM y retire la corredera. Enjuague los portaobjetos dos veces en 0.05%Tween-20 en PBS, con cada enjuagar durante tres minutos. Luego, enjuague los portaobjetos dos veces en PBS, con cada enjuagar durante tres minutos cada uno.Y una vez en agua destilada doble durante tres minutos. Seque los portaobjetos con aire comprimido. Y guárdelos en una caja deslizante oscura hasta que estén listos para escanear.Cuando esté listo, utilice un escáner de microarray para escanear el chip con una excitación de 495 nanómetros y una emisión de 19 nanómetros. Y recoger la intensidad de fluorescencia media. En este estudio pi rendimiento de perfiles de primasa se utiliza para asignar los sitios de enlace de primasa, incluidos aquellos que son difíciles si no imposibles de observar utilizando herramientas clásicas.Es importante destacar que la generación de perfiles de primasa de rendimiento pi permite revisar la comprensión tradicional de los sitios de enlace de primasa. Especialmente pi throughput primasse profiling revela especificidades vinculantes además de las secuencias de reconocimiento 5'GTC3', que conduce a cambios en las actividades funcionales de la primasa de ADN T7. A saber, se identifican dos grupos de secuencias.Secuencias de ADN de unión fuertes que contenían TG en los flancos y secuencias de ADN de unión débiles que contenían AG en los flancos. No se detectó ningún enlace de primasa a las plantillas de ADN que faltaban 5'GTC3'dentro de sus secuencias. Los sitios de reconocimiento de ADN de primasa que contiene características específicas como flancos ricos en TG, aumentan la unión de ADN de primasa hasta 10 veces.Sorprendentemente, también aumentan la longitud del ARN recién formado. Es importante destacar que el perfilado de primasa de alto rendimiento nos permite observar y cuantificar la variabilidad en la longitud de imprimación en relación con la secuencia de la plantilla de ADN. Al realizar este procedimiento, los pasos de lavado deben ser sutiles.Y los buffers deben contener componentes que registraron la primasa en el ADN. También se determina bioquímicamente un umbral de eventos de unión inútiles. Por lo tanto, el análisis de la microarray es insuficiente.Métodos como una resonancia plasmática superficial y ensayos de desplazamiento de gel pueden determinar la afinidad de unión de la primasa para seleccionar las secuencias de ADN. Mi laboratorio implementa modelos de predicción de aprendizaje automático para detectar determinantes de secuencia de primasa que producen imprimaciones productivas que pueden ser extendidas por la polimerasa del ADN. En la era del big data, una implementación de métodos estadísticos para analizar big data, la técnica definitivamente ayudará a caracterizar mejor las secuencias de ADN específicas y vincular el reconocimiento de secuencias a la actividad de la primasa.Cualquier persona que trabaje con radiación debe tener una comprensión exhaustiva de las regulaciones y los peligros asociados con el uso de radiación ionizante. Debe someterse a capacitación y debe trabajar con equipos de seguridad.

Research

JoVE Journal

Biochemistry

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Una sola molécula Simple, robusto y alto rendimiento flujo estiramiento aplicación de análisis para el estudio de transporte de moléculas a lo largo de la DNA

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Bioquímica

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