Name: dual bioluminescence imaging of tumor progression and angiogenesis
Uploaded: 2019-08-01T13:00:00
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Questa ricerca è stata sostenuta dal National Key R&D Program of China (2017YFA0103200), dalla National Natural Science Foundation of China (81671734) e dai progetti chiave del programma di sostegno alla scienza e la tecnologia di Tianjin (18YF università centrali (63191155). Riconosciamo le revisioni di Gloria Nance, che sono state preziose per migliorare la qualità del nostro manoscritto.

Gli esperimenti devono essere conformi alle normative nazionali e istituzionali relative all'uso degli animali a fini di ricerca. Devono essere ottenuti i permessi per effettuare esperimenti. Il trattamento degli animali e le procedure sperimentali dello studio aderiscono alle linee guida del Comitato per la cura e l'uso degli animali dell'Università di Nankai che sono conformi alle Linee guida per la cura degli animali approvate dai National Institutes of Health (NIH).
1. Imballaggio e produzi...

<ol>
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W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumor+cell-specific+bioluminescence+platform+to+identify+stroma-induced+changes+to+anticancer+drug+activity.">Tumor cell-specific bioluminescence platform to identify stroma-induced changes to anticancer drug activity.</a> Nature Medicine. 16, 483-489 (2010).</li><li>Madero-Visbal, R. A., Hernandez, I. C., Myers, J. N., Baker, C. H., Shellenberger, T. 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P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dual-action+combination+therapy+enhances+angiogenesis+while+reducing+tumor+growth+and+spread.">Dual-action combination therapy enhances angiogenesis while reducing tumor growth and spread.</a> Cancer Cell. 27, 123-137 (2015).</li><li>Mezzanotte, L., van &#39;t Root, M., Karatas, H., Goun, E. A., Lowik, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+Molecular+Bioluminescence+Imaging:+New+Tools+and+Applications.">In vivo Molecular Bioluminescence Imaging: New Tools and Applications.</a> Trends in Biotechnology. 35, 640-652 (2017).</li><li>Du, W., Tao, H., Zhao, S., He, Z. 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R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Red-emitting+chimeric+firefly+luciferase+for+in+vivo+imaging+in+low+ATP+cellular+environments.">Red-emitting chimeric firefly luciferase for in vivo imaging in low ATP cellular environments.</a> Analytical Biochemistry. 534, 36-39 (2017).</li><li>McLatchie, A. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Highly+sensitive+in+vivo+imaging+of+Trypanosoma+brucei+expressing+&amp;#34;red-shifted&amp;#34;+luciferase.">Highly sensitive in vivo imaging of Trypanosoma brucei expressing &amp;#34;red-shifted&amp;#34; luciferase.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 7, e2571 (2013).</li></ol>

In questo protocollo, viene descritto un approccio duale BLI non invasivo per il monitoraggio dello sviluppo del tumore e dell'angiogenesi. Il sistema di reporter BLI viene inizialmente sviluppato, contenente il gene suicida HSV-ttk/GCV per monitorare la progressione del tumore e la regressione in vivo da parte dell'imaging Rluc. Nel frattempo, l'angiogenesi tumorale viene valutata utilizzando topi Vegfr2-Fluc-KI tramite l'imaging Fluc. Questo modello murino portante è in grado di fornire una piattaforma pratica per lo ...

L'angiogenesi è un processo essenziale nella progressione del cancro da neoplasmi piccoli e localizzati a tumori più grandi e potenzialmente metastatici1,2. La correlazione tra la crescita del tumore e l'angiogenesi diventa uno dei punti di enfasi nel campo della ricerca oncologica. Tuttavia, i metodi tradizionali di misurazione dei cambiamenti morfologici non riescono a monitorare contemporaneamente la progressione del tumore e l'angiogenesi negli animali viventi utilizzando un approccio visualizzato.
L'imaging di bioluminescenza (BLI) delle cellule tumorali è un metodo sperimentale particolarmente appropriato per monitorare la crescita del tumore a causa della sua non invasiva, sensibilità e specificità3,4,5,6 . La tecnologia BLI si basa sul principio che la luciferasi può catalizzare l'ossidazione di un substrato specifico emettendo bioluminescenza. Le luciferasi espresse nelle cellule tumorali impiantate reagiscono con il substrato iniettato, che può essere rilevato da un sistema di imaging vivente, e i segnali riflettono indirettamente i cambiamenti nel numero di cellule o nella localizzazione cellulare in vivo6,7.
Fatta eccezione per la crescita del tumore, l'angiogenesi tumorale (il passo critico nella progressione del cancro) può essere visualizzata anche attraverso la tecnologia BLI utilizzando topi transgenici Vegfr2-Fluc-KI8,9,10. Il fattore di crescita endoteliale vascolare (Vegf) recettore 2 (Vegfr2), un tipo di recettore Vegf, è per lo più espresso nelle cellule endoteliali vascolari dei topi adulti11. Nei topi transgenici Vegfr2-Fluc-KI, la sequenza di DNA della luciferasi di lucciola (Fluc) viene gettata nel primo esone della sequenza endogena di Vegfr2. Di conseguenza, il Fluc è espresso (che appare come segnali BLI) in un modo che è identico al livello di angiogenesi nei topi. Per crescere oltre pochi millimetri di dimensioni, il tumore recluta nuove vascoli dal vaso sanguigno esistente, che esprimono altamente il Vegfr2 innescato da fattori di crescita dalle cellule tumorali1. Questo apre la possibilità di utilizzare topi transgenici Vegfr2-Fluc-KI per monitorare non invasiva l'angiogenesi tumorale di BLI.
In questo protocollo, viene stabilito un modello murino portatore di tumore per monitorare la progressione del tumore e l'angiogenesi in un singolo topo attraverso Firefly luciferate (Fluc) e Renilla luciferate (Rluc) imaging, rispettivamente (Figura 1). Viene creata una linea cellulare 4T1 (4T1-RR) che esprime stabilmente Rluc e proteina fluorescente rossa (RFP) per tracciare la crescita cellulare mediante Rluc imaging. Per studiare ulteriormente i cambiamenti dinamici dell'angiogenesi nella progressione e nella regressione del tumore, viene creata un'altra linea cellulare 4T1 (4T1-RRT) che esprime il gene suicida dell'herpes simplex virus troncato la tiofina (HSV-ttk), Rluc e RFP. Con la somministrazione del ganciclovir (GCV), le cellule che esprimono HSV-ttk sono selettivamente ablate. Sulla base di queste linee cellulari, viene costruito un modello portante del tumore nei topi Vegfr2-Fluc-KI che funge da modello sperimentale che rileva la progressione del tumore e l'angiogenesi tumorale in vivo.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.25% Trypsin-0.53 mM EDTA</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>25200072</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 mL Tubes</td>
			<td>Axygen Scientific</td>
			<td>MCT-105-C-S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 mL Tubes</td>
			<td>Corning Glass Works</td>
			<td>601052-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>293T</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>CRL-3216</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4T1</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>CRL-2539</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>60 mm Dish</td>
			<td>Corning Glass Works</td>
			<td>430166</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-well Plate</td>
			<td>Corning Glass Works</td>
			<td>3516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biosafety Cabinet</td>
			<td>Shanghai Lishen Scientific</td>
			<td>Hfsafe-900LC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blasticidine S Hydrochloride (BSD)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>15205</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Counting Kit-8</td>
			<td>MedChem Express</td>
			<td>HY-K0301</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CO2 Tegulated Incubator</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>4111</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coelenterazine (CTZ)</td>
			<td>NanoLight Technology</td>
			<td>479474</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-luciferin Potassium Salt</td>
			<td>Caliper Life Sciences</td>
			<td>119222</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM Medium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>C11995500BT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td>BIOIND</td>
			<td>04-001-1A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescence Microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Ti-E/U/S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ganciclovir (GCV)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>Y0001129</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphics Software</td>
			<td>GraphPad Software</td>
			<td>Graphpad Prism 6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin Syringe Needles</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>328421</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>691477H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lentiviral Packaging System</td>
			<td>Biosettia</td>
			<td>cDNA-pLV03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liposome</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>11668019</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Living Imaging Software</td>
			<td>Caliper Life Sciences</td>
			<td>Living Imaging Software 4.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Living Imaging System</td>
			<td>Caliper Life Sciences</td>
			<td>IVIS Lumina II</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEM Medium</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>31985-070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>15140122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline (PBS)</td>
			<td>Corning Glass Works</td>
			<td>R21031399</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polybrene</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H9268-1G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI1640 Medium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>C11875500BT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SORVALL ST 16R Centrifuge</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>Thermo Sorvall ST 16 ST16R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultra-low Temperature Refrigerator</td>
			<td>Haier</td>
			<td>DW-86L338</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>XGI-8 Gas Anesthesia System</td>
			<td>XENOGEN Corporation</td>
			<td>7293</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dual bioluminescence imaging of tumor progression and angiogenesis

L'angiogenesi, come un processo cruciale di progressione del tumore, è diventata un hotspot di ricerca e bersaglio della terapia anti-tumorale. Tuttavia, non esiste un modello affidabile per tracciare la progressione del tumore e l'angiogenesi contemporaneamente in modo visivo e sensibile. L'imaging a bioluminescenza mostra la sua superiorità unica nell'imaging vivente grazie ai suoi vantaggi di alta sensibilità, forte specificità e misurazione accurata. Presentato qui è un protocollo per stabilire un modello di topo portatore di tumore iniettando una linea cellulare 4T1 con la luciferae del morina con etichetta a Renilla nel topo transgenico con espressione di luciferasi Firefly indotta dall'angiogenesi. Questo modello di topo fornisce uno strumento prezioso per monitorare simultaneamente la progressione del tumore e l'angiogenesi in tempo reale mediante l'imaging a doppia bioluminescenza in un singolo topo. Questo modello può essere ampiamente applicato nello screening farmacoanti e nella ricerca oncologica.

In questo esperimento, è stato stabilito un modello di topo del cancro al seno utilizzando cellule 4T1 per studiare la relazione tra la crescita tumorale e l'angiogenesi tumorale (Figura 1). In primo luogo, sono stati confezionati due lentivirus, che portavano sequenze geniche che esprimevano rispettivamente Rluc/RFP (LV-RR) e Rluc/RFP/HSV-ttk (LV-RRT), come precedentemente riportato7. Quindi, due diverse linee cellulari 4T1, denomina...

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Dual Bioluminescence Imaging of Tumor Progression and Angiogenesis

Doppia bioluminescenza Imaging della progressione tumorale e dell'angiogenesi

Questo protocollo descrive l'istituzione di un modello murino portatore di tumori per monitorare la progressione del tumore e l'angiogenesi in tempo reale mediante la doppia bioluminescenza.

Angiogenesis, as a crucial process of tumor progression, has become a research hotspot and target of anti-tumor therapy. However, there is no reliable ...

L'angiogenesi gioca un ruolo importante nella metastasi e nella progressione tumorale. In questo protocollo, useremo il doppio metodo di imaging della bioluminescenza per monitorare la progressione dinamica del tumore e l'angiogenesi in un modello di topo di cancro al seno. In questo modello, possiamo monitorare la crescita tumorale e l'angiogenesi contemporaneamente nel singolo topo attraverso l'imaging luciferasi firefly e renilla luciferasi, rispettivamente.Questo modello può essere ampiamente applicato nello screening antitumore e nella ricerca oncologica. Questo modello di doppia bioluminescenza può essere utilizzato per tracciare la progressione e la regressione tumorale e per rilevare i processi molecolari correlati al tumore in risposta alle strategie terapeutiche. L'angiogenesi è un processo cruciale di progressione tumorale.Pertanto, il monitoraggio della progressione del tumore e dell'angiogenesi in modo visivo e sensibile è necessario per sviluppare trattamenti tumorali efficaci. Le procedure saranno dimostrate da Kaiyue Zhang, Chen Wang e Shang Chen, studenti del nostro laboratorio. Per il confezionamento del lentivirus e i semi di produzione uno per 10 al sesto di 293T cellule in due millilitri di DMEM integrati con siero bovino fetale al 10% per pozzo in una piastra a sei porri per la coltura notturna in un incubatore umidificato a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica.La mattina seguente mescolare 7,5 microlitri di liposoma con 250 microlitri di Minimal Essential Medium in due tubi separati da 1,5 millilitri per un'incubazione di cinque minuti a temperatura ambiente. Per preparare le soluzioni di DNA aggiungere il vettore RR del lentivirus plasmide e i plasmidi aiutanti a 250 microlitri di Minimal Essential Medium in singoli tubi da 1,5 millilitri come delineato nella tabella. Al termine dell'incubazione aggiungere delicatamente le soluzioni di DNA RR alle sospensioni liposomiche in modo drop-wise e lasciare che il DNA si lega alle membrane lipidiche per 20 minuti a temperatura ambiente.Mentre la miscela è in incubazione, sostituire il supernatante della coltura cellulare 293T con un millilitro di mezzo di coltura fresco e aggiungere delicatamente 0,5 millilitri della miscela di DNA liposoma appropriata ad ogni pozzo. Riportare le cellule nell'incubatrice di coltura cellulare per 12-16 ore prima di sostituire il supernatante in ogni pozzo con un millilitro di mezzo di coltura fresco integrato con antibiotici. Dopo altre 36 ore di incubazione, mettere in comune i supernaganti in un tubo conico per ceppo di lentivirus per sedimentare le cellule 293T mediante centrifugazione.Quindi trasferire i supernaganti contenenti lentivirus RR in singoli tubi di stoccaggio in polipropilene sterile da 1,5 millilitri per lo stoccaggio a meno 80 gradi Celsius. Per la trasduzione lentivirale per l'espressione genica nelle cellule tumorali mammarie 4T1, sostituire il supernatante in ogni pozzo di una piastra di coltura cellulare 4T1 a sei pozzetto con un millilitro di mezzo di coltura cellulare fresco a base di RPMI integrato con siero bovino fetale e un millilitro di stock lentivirale. Quindi aggiungere otto microgrammi per millilitro di Polibrene a ciascun pozzo e pipettare delicatamente alcune volte per mescolare.Centrifugare la piastra per aumentare l'efficienza di trasduzione e riportare le cellule nell'incubatore di coltura cellulare per quattro o 12 ore. Al termine dell'incubazione, sostituire il supernatante in ogni pozzo con un mezzo di coltura fresco integrato con siero e antibiotici per rimuovere eventuali particelle lentivirali e Polibrene. Per selezionare le cellule trasdutite da lentivirus, passare le colture cellulari 4T1 trasdotto con un rapporto uno-tre a uno-quattro con mezzo di selezione, cambiando il mezzo ogni due o tre giorni.Dopo sette giorni di coltura media di selezione, visualizzare le colture cellulari trasdotto sotto un microscopio a contrasto di fase invertito a fluorescenza e contare il numero di cellule rosso fluorescenti positive o RFP-4T1 e tutte le cellule 4T1 in tre campi visivi per stimare il rapporto RFP-positivo. Per impostare un modello di topo portante di tumore, lavare le colture cellulari trasdutte confluente all'80% con PBS prima di staccare le cellule con due millilitri di tripside-EDTA per piastra di coltura di 60 millimetri. Quando le cellule si sono alzate dai fondi della piastra fermare la reazione con da cinque a 10 millilitri di siero integrato mezzo per piastra.E trasferire le colture in singoli tubi di centrifuga da 15 millilitri per il conteggio. Diluire le cellule a una per 10-sesta cellule per 100 microlitri di mezzo di coltura senza concentrazione siere. E iniettare per via sottocutanea 100 microlitri della linea cellulare 4T1-RR nella spalla sinistra di un topo modello anestetizzato che porta tumore, e 100 microlitri della linea cellulare 4T1-RRT nella spalla destra dello stesso mouse.Dopo le iniezioni, posizionare ogni mouse in un'area di recupero appropriata con un supporto termico fino a completo recupero. Palpare le masse tumorali ogni giorno per sette giorni per confermare che i topi sono portanti di tumore. Al settimo giorno dopo l'impianto, iniettare per via intraperitoneale 50 microgrammi per chilogrammo di Ganciclovir in ogni topo portante di tumore due volte al giorno fino alla fine dell'esperimento.Per la crescita tumorale, aprire il Living Imaging System. Inizializzare il software Living Imaging e inizializzare il sistema. Durante l'inizializzazione del sistema, utilizzare una siringa per insulina per iniettare ogni mouse da immagini con il volume appropriato di coelenterazina nella retrobulbar.Posizionare i topi iniettati nella camera della fotocamera e ottenere immediatamente diverse immagini del mouse dorsalmente per acquisire i segnali di Renilla luciferasi dalle cellule 4T1 fino a quando i segnali bioluminescenti svaniscono. 10 minuti dopo l'imaging della renilla luciferasi, utilizzare una siringa per insulina per iniettare per via intraperitoneale il volume appropriato di D-luciferina in ogni animale. 10 minuti dopo l'iniezione di D-luciferina, posizionare i topi nella camera della fotocamera e ottenere diverse immagini della dorsale del mouse per acquisire i segnali di luciferasi firefly dall'angiogenesi.Dopo la trasduzione del lentivirus, più del 99% delle cellule sono positive alla RFP senza differenze nella morfologia della coltura cellulare osservata tra le due linee cellulari trasdotto. Successivamente, l'imaging a bioluminescenza delle cellule trasdutte rivela che entrambe le linee cellulari emettono forti segnali bioluminescenti di una forza simile. Dopo l'iniezione sottocutanea delle linee cellulari trasdutte in un modello di topo trasgenico che porta tumore, la crescita tumorale indotta dall'angiogenesi può essere valutata dai segnali luciferasi firefly in presenza di D-luciferina nello stesso animale.A sette giorni dal post-impianto, la somministrazione di Ganciclovir induce la morte nelle cellule 4T1-RRT con conseguente drastica riduzione del segnale di Renilla luciferasi nei tumori stabiliti da queste cellule. Anche i segnali della lucciola luciferasi aumentano in concomitanza con un aumento dell'espressione della renilla luciferasi e diminuiscono a seguito del declino della luciferasi. Nel loro insieme, questi risultati suggeriscono che esiste una correlazione diretta tra angiogenesi tumorale e crescita tumorale.Infatti, la morte cellulare tumorale indotta da Ganciclovir può portare a un'inibizione dell'angiogenesi tumorale. Inoltre, l'immunostaining per il recettore del fattore di crescita endoteliale anti-vascolare II, come marcatore di angiogenesi, rivela una struttura microvascolare più significativamente stabilita nelle sezioni del tessuto tumorale 4T1-RR rispetto alle sezioni dei tumori 4T1-RRT, coerentemente con il declino del segnale luciferasi Firefly osservato dopo la somministrazione di Ganciclovir. Il passaggio più critico del protocollo è l'utilizzo di due tipi di luciferasi, come FLuc e RLuc per il tracciamento simultaneo delle cellule e l'angiogenesi.Questa tecnologia potrebbe essere utilizzata per trattare le cellule tumorali in luoghi diversi, e può essere ampiamente utilizzata nei modelli di cancro al virus. Questo modello di topo consente di visualizzare dinamicamente la crescita tumorale e gli effetti antitumorali del sistema di tracciamento HSV-ttk/GCV in un animale vivente. Una struttura di livello II di biosicurezza è necessaria per prevenire una trasfezione del lentivirus, poiché il supporto contiene particelle di lentivirus che potrebbero essere dannose per l'uomo.

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Our understanding of how and when breast cancer cells transit from established primary tumors to metastatic sites has increased at an exceptional rate ...

MAME Models for 4D Live-cell Imaging of Tumor: Microenvironment Interactions that Impact Malignant Progression

Modelli per MAME 4D Live-Imaging cellule di tumore: Interazioni microambiente che Impact progressione maligna

We have developed 3D coculture models, which we term MAME (mammary architecture and microenvironment engineering), and used them for live-cell imaging in ...

In vivo Imaging of Tumor Angiogenesis using Fluorescence Confocal Videomicroscopy

In vivo Imaging of Tumor Angiogenesis using Fluorescence Confocal Videomicroscopy

In vivo imaging dell&#39;angiogenesi tumorale mediante fluorescenza confocale Videomicroscopy

Fibered confocal fluorescence in vivo imaging with a fiber optic bundle uses the same principle as fluorescent confocal microscopy. It can excite ...

A Novel High-resolution In vivo Imaging Technique to Study the Dynamic Response of Intracranial Structures to Tumor Growth and Therapeutics

A Novel High-resolution In vivo Imaging Technique to Study the Dynamic Response of Intracranial Structures to Tumor Growth and Therapeutics

Un romanzo ad alta risoluzione<em&gt; In vivo</em&gt; Tecnica di imaging per studiare la risposta dinamica di strutture intracraniche alla crescita del tumore e Terapeutica

We have successfully integrated previously established Intracranial window (ICW) technology 1-4 with intravital 2-photon confocal microscopy to develop a ...

Retinal Detachment Model in Rodents by Subretinal Injection of Sodium Hyaluronate

Distacco della retina Modello in Roditori da iniezione sottoretinico di ialuronato di sodio

Subretinal injection of sodium hyaluronate is a widely accepted method of inducing retinal detachment (RD). However, the height and duration of RD or the ...

Candida albicans Biofilm Development on Medically-relevant Foreign Bodies in a Mouse Subcutaneous Model Followed by Bioluminescence Imaging

Candida albicans Biofilm Development on Medically-relevant Foreign Bodies in a Mouse Subcutaneous Model Followed by Bioluminescence Imaging

Candida albicans Biofilm sviluppo sulla medicalmente rilevanti Foreign Bodies in un mouse sottocutaneo modello seguito da Bioluminescence Imaging

Candida albicans biofilm development on biotic and/or abiotic surfaces represents a specific threat for hospitalized patients. So far, C. albicans ...

Establishment of a Human Multiple Myeloma Xenograft Model in the Chicken to Study Tumor Growth, Invasion and Angiogenesis

Istituzione di un mieloma multiplo umano Xenograft modello nel pollo per studiare la crescita del tumore, invasione e l&#39;angiogenesi

Multiple myeloma (MM), a malignant plasma cell disease, remains incurable and novel drugs are required to improve the prognosis of patients. Due to the ...