Name: cultivation of the marine pelagic tunicate dolioletta gegenbauri (uljanin 1884) for experimental studies
Uploaded: 2019-08-09T14:30:00
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Wir sind dankbar für die vielen Personen, die im Laufe der Jahre an diesem Projekt gesammeltes Wissen, einschließlich G.-A. Paffenhöfer und D. Deibel, die diese Protokolle ursprünglich entwickelt haben. Auch M. Köster und L. Lamboley haben wesentlich zur Entwicklung dieser Verfahren beigetragen.  Die in Tabelle 1 enthaltenen Schätzungen der dolioliden Fülle wurden von N.B. Lépez-Figueroa und Der E.E. Rodriguez-Santiago erstellt. Diese Studie wurde teilweise von der US National Science Foundation awards OCE 082599, 1031263 an MEF, den Kooperationsprojekten OCE 1459293 und OCE 14595010 an MEF und DMG und dem National Oceanic and Atmospheric Administration Award NA16SEC4810007 an DMG unterstützt. Wir danken der fleißigen und professionellen Crew der R/V Savannah. Lee Ann DeLeo bereitete die Figuren vor, Charles Y. Robertson korrekturlas das Manuskript und James (Jimmy) Williams fertigte das Planktonrad

1. Vorbereitung von Aufzuchteinrichtungen Für D. gegenbauri
HINWEIS: Alle benötigten Materialien und Ausrüstungen sind in der Materialtabelleaufgeführt.
<ol><li>Bereiten Sie 1 M Natriumhydroxid (NaOH), 0,06 M Kaliumpermanganat (KMnO4) Lösung vor. Um diese Lösung vorzubereiten, lösen Sie 400 g NaOH in 10 L entionisiertes Wasser auf. 100 g KMnO4 in die NaOH-Lösung geben und gut vermischen.</li>
	<li>Eine 0,1 M Natriumbisulfitlösung (NaHS...

<ol>
	<li>Banse, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zooplankton+&#8211;+Pivotal+role+in+the+control+of+ocean+production.">Zooplankton &#8211; Pivotal role in the control of ocean production.</a> Ices Journal of Marine Science. 52 (3-4), 265-277 (1995).</li><li>Wilson, S. E., Ruhl, H. A., Smith, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zooplankton+fecal+pellet+flux+in+the+abyssal+northeast+Pacific:+A+15+year+time-series+study.">Zooplankton fecal pellet flux in the abyssal northeast Pacific: A 15 year time-series study.</a> Limnology and Oceanography. 58 (3), 881-892 (2013).</li><li>Bode, A., &#193;lvarez-Ossorio, M. T., Miranda, A., Ruiz-Villarreal, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Shifts+between+gelatinous+and+crustacean+plankton+in+a+coastal+upwelling+region.">Shifts between gelatinous and crustacean plankton in a coastal upwelling region.</a> Ices Journal of Marine Science. 70 (5), 934-942 (2013).</li><li>Kiorboe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zooplankton+body+composition.">Zooplankton body composition.</a> Limnology and Oceanography. 58 (5), 1843-1850 (2013).</li><li>Holland, L. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tunicates.">Tunicates.</a> Current Biology. 26 (4), R146-R152 (2016).</li><li>Walters, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diet+and+trophic+interactions+of+a+circumglobally+significant+gelatinous+marine+zooplankter,+Dolioletta+gegenbauri+(Uljanin,+1884).">Diet and trophic interactions of a circumglobally significant gelatinous marine zooplankter, Dolioletta gegenbauri (Uljanin, 1884).</a> Molecular Ecology. , (2018).</li><li>Piette, J., Lemaire, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thaliaceans,+the+neglected+pelagic+relatives+of+ascidians:+a+developmental+and+evolutionay+enigma.">Thaliaceans, the neglected pelagic relatives of ascidians: a developmental and evolutionay enigma.</a> Quarterly Review of Biology. 90 (2), 117-145 (2015).</li><li>Acu&#241;a, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pelagic+tunicates:+Why+gelatinous?.">Pelagic tunicates: Why gelatinous?.</a> American Naturalist. 158 (1), 100-107 (2001).</li><li>Alldredge, A. L., Madin, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pelagic+tunicates+&#8211;+unique+herivores+in+the+marine+plankton.">Pelagic tunicates &#8211; unique herivores in the marine plankton.</a> Bioscience. 32 (8), 655-663 (1982).</li><li>Wada, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolutionary+history+of+free-swimming+and+sessile+lifestyles+in+urochordates+as+deduced+from+18S+rDNA+molecular+phylogeny.">Evolutionary history of free-swimming and sessile lifestyles in urochordates as deduced from 18S rDNA molecular phylogeny.</a> Molecular Biology and Evolution. 15 (9), 1189-1194 (1998).</li><li>Zeng, L. Y., Jacobs, M. W., Swalla, B. 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F., Bucklin, A., Madin, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+molecular+phylogeny+of+the+Thaliacea.">A molecular phylogeny of the Thaliacea.</a> Journal of Plankton Research. 33 (6), 843-853 (2011).</li><li>Godeaux, D., Bone, Q., Braconnot, J. C., Bone, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Biology of Pelagic Tunicates. , 1-24 (1998).</li><li>Deibel, D., Lowen, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+life+cycles+and+life-history+adaptations+of+pelagic+tunicates+to+environmental+conditions).">A review of the life cycles and life-history adaptations of pelagic tunicates to environmental conditions).</a> Ices Journal of Marine Science. 69 (3), 358369 (2012).</li><li>Paffenh&#246;fer, G., K&#246;ster, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+one+to+many:+on+the+life+cycle+of+Dolioletta+gegenbauri+Uljanin+(Tunicata,+Thaliacea).">From one to many: on the life cycle of Dolioletta gegenbauri Uljanin (Tunicata, Thaliacea).</a> Journal of Plankton Research. 33 (7), 1139-1145 (2011).</li><li>Paffenh&#246;fer, G. A., Gibson, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determination+of+generation+time+and+asexual+fecundity+of+doliolids+(Tunicata,+Thaliacea).">Determination of generation time and asexual fecundity of doliolids (Tunicata, Thaliacea).</a> Journal of Plankton Research. 21 (6), 1183-1189 (1999).</li><li>Conley, K. R., Lombard, F., Sutherland, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mammoth+grazers+on+the+ocean's+minuteness:+a+review+of+selective+feeding+using+mucous+meshes.">Mammoth grazers on the ocean's minuteness: a review of selective feeding using mucous meshes.</a> Proceedings of the Royal Society B-Biological Sciences. 285 (1878), (2018).</li><li>Bouquet, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Culture+optimization+for+the+emergent+zooplanktonic+model+organism+Oikopleura+dioica.">Culture optimization for the emergent zooplanktonic model organism Oikopleura dioica.</a> Journal of Plankton Research. 31 (4), 359370 (2009).</li><li>Denoeud, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasticity+of+Animal+Genome+Architecture+Unmasked+by+Rapid+Evolution+of+a+Pelagic+Tunicate.">Plasticity of Animal Genome Architecture Unmasked by Rapid Evolution of a Pelagic Tunicate.</a> Science. 330 (6009), 1381-1385 (2010).</li><li>Harrison, P. J., Waters, R. E., Taylor, F. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+broad-spectrum+artificial+seawater+medium+for+coastal+and+open+ocean+phytoplankton.">A broad-spectrum artificial seawater medium for coastal and open ocean phytoplankton.</a> Journal of Phycology. 16 (1), 2835 (1980).</li><li>Ohman, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zooglider:+An+autonomous+vehicle+for+optical+and+acoustic+sensing+of+zooplankton.">Zooglider: An autonomous vehicle for optical and acoustic sensing of zooplankton.</a> Limnology and Oceanography-Methods. 17 (1), 69-86 (2019).</li><li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+situ+observations+of+a+doliolid+bloom+in+a+warm+water+filament+using+a+video+plankton+recorder:+Bloom+development,+fate,+and+effect+on+biogeochemical+cycles+and+planktonic+food+webs.">In situ observations of a doliolid bloom in a warm water filament using a video plankton recorder: Bloom development, fate, and effect on biogeochemical cycles and planktonic food webs.</a> Limnology and Oceanography. 60 (5), 1763-1780 (2015).</li><li>Deibel, D., Bone, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The biology of pelagic tunicates. , 171-186 (1998).</li><li>Gibson, D. M., Paffenh&#246;fer, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+and+growth+rates+of+the+doliolid,+Dolioletta+gegenbauri+Uljanin+(Tunicata,+Thaliacea).">Feeding and growth rates of the doliolid, Dolioletta gegenbauri Uljanin (Tunicata, Thaliacea).</a> Journal of Plankton Research. 22 (8), 1485-1500 (2000).</li><li>Haskell, A., Hofmann, E., Paffenh&#246;fer, G., Verity, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+the+effects+of+doliolids+on+the+plankton+community+structure+of+the+southeastern+US+continental+shelf.">Modeling the effects of doliolids on the plankton community structure of the southeastern US continental shelf.</a> Journal of Plankton Research. 21 (9), 1725-1752 (1999).</li><li>Gibson, D. M., Paffenh&#246;ffer, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Asexual+reproduction+of+the+doliolid,+Dolioletta+gegenbauri+Uljanin+(Tunicata,+Thaliacea).">Asexual reproduction of the doliolid, Dolioletta gegenbauri Uljanin (Tunicata, Thaliacea).</a> Journal of Plankton Research. 24 (7), 703-712 (2002).</li><li>Frischer, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reliability+of+qPCR+for+quantitative+gut+content+estimation+in+the+circumglobally+abundant+pelagic+tunicate+Dolioletta+gegenbauri+(Tunicata,+Thaliacea).">Reliability of qPCR for quantitative gut content estimation in the circumglobally abundant pelagic tunicate Dolioletta gegenbauri (Tunicata, Thaliacea).</a> Food Webs. 1, 7 (2014).</li><li>K&#246;ster, M., Paffenh&#246;fer, G., Baker, C., Williams, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oxygen+consumption+of+doliolids+(Tunicata,+Thaliacea).">Oxygen consumption of doliolids (Tunicata, Thaliacea).</a> Journal of Plankton Research. 32 (2), 171-180 (2010).</li><li>Paffenh&#246;fer, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+hypothesis+on+the+fate+of+blooms+of+doliolids+(Tunicata,+Thaliacea).">A hypothesis on the fate of blooms of doliolids (Tunicata, Thaliacea).</a> Journal of Plankton Research. 35 (4), 919-924 (2013).</li><li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sapphirinid+copepods+as+predators+of+doliolids:+Their+role+in+doliolid+mortality+and+sinking+flux.">Sapphirinid copepods as predators of doliolids: Their role in doliolid mortality and sinking flux.</a> Limnology and Oceanography. 58 (6), 1972-1984 (2013).</li><li>Mart&#237;-Solans, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oikopleura+dioica+Culturing+Made+Easy:+A+Low-Cost+Facility+for+an+Emerging+Animal+Model+in+EvoDevo.">Oikopleura dioica Culturing Made Easy: A Low-Cost Facility for an Emerging Animal Model in EvoDevo.</a> Genesis. 53 (1), 183-193 (2015).</li><li>Nishida, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+the+appendicularian+Oikopleura+dioica:+Culture,+genome,+and+cell+lineages.">Development of the appendicularian Oikopleura dioica: Culture, genome, and cell lineages.</a> Development Growth &amp; Differentiation. 50, S239-S256 (2008).</li></ol>

Die Fähigkeit zur Kultur von Doliolids wurde in den letzten Jahrzehnten etabliert und zur Unterstützung der Forschung in mehreren Bereichen genutzt. Experimentelle Studien in unseren Laboratorien haben die Veröffentlichung von mindestens 15 wissenschaftlichen Studien unterstützt, die sich auf die Fütterung und das Wachstum konzentrierten18,26, Reproduktion18,28, Diät6,</...

Zooplankton ist die größte tierische Biomasse im Ozean, sind Schlüsselkomponenten in marinen Nahrungsbahnen und spielen eine wichtige Rolle in den biogeochemischen Zyklen der Ozeane1,2. Zooplankton, obwohl aus einer großen Vielfalt von Organismen besteht, kann grob in zwei Kategorien unterschieden werden: gelatinös und nicht-gelatinelatinus mit wenigen Zwischentaxa3,4. Im Vergleich zum nicht-gelatinösen Zooplankton ist das gelatinöse Zooplankton aufgrund seiner komplexen Lebensgeschichten5besonders schwer zu untersuchen und ihre empfindlichen Gewebe werden beim Erfassen und Handling leicht beschädigt. Gelatinezooplankton-Arten sind daher notorisch schwer zu kulturierieren im Labor und im Allgemeinen weniger untersucht im Vergleich zu nicht-gelatinösen Arten6.
Unter den gelatinösen Zooplanktongruppen sind die Thaliaceans eine reichliche und ökologische Bedeutung im Weltmeer. Thaliaceans sind eine Klasse von pelagischen Tunikaten, die die Ordnungen Salpida, Pyrosomida und Doliolida7enthalten. Doliolida, kollektiv als Doliolide bezeichnet, sind kleine fassförmige freischwimmende pelagische Organismen, die in produktiven neritischen Regionen subtropischer Ozeane hohe Mengen erreichen können. Doliolids gehören zu den am häufigsten vorkommenden aller Zooplanktongruppen4,8. Als Suspensionszubringer sammeln Doliolids Lebensmittelpartikel aus der Wassersäule, indem sie Filterströme erzeugen und auf Schleimnetzen erfassen9. Taxonomisch werden Doliolide in das Phylum Urochordata10eingestuft. Die Thaliazer sind neben ihrer ökologischen Bedeutung als Schlüsselkomponenten mariner pelagischer Systeme von Bedeutung für das Verständnis der Ursprünge der kolonialen Lebensgeschichte10,11 und der Evolution. der Akkorddaten5,7,10,12,13,14.
Die Lebensgeschichte der Dolioliden ist komplex und trägt dazu bei, dass es schwierig ist, sie durch ihren Lebenszyklus zu kultivieren und zu erhalten. Einen Überblick über den dolioliden Lebenszyklus und die Anatomie finden Sie in Godeaux et al.15. Der doliolidische Lebenszyklus, der einen obligatorischen Wechsel zwischen sexuellen und asexuellen lebensgeschichtlichen Stadien beinhaltet, ist in Abbildung 1dargestellt. Eier und Spermien werden von den hermaphroditischen Gonozooiden, dem einzigen einsamen Stadium des Lebenszyklus, produziert. Gonozooiden geben Spermien in die Wassersäule frei und Eier werden intern befruchtet und freigesetzt, um sich zu Larven zu entwickeln. Larven schlüpfen und metamorphosen zu Oozooiden, die 1-2 mm erreichen können. Unter der Voraussetzung, dass die bedingungenund die Ernährung förderlich sind, werden Oozooide innerhalb von 1-2 Tagen bei 20 °C zu frühen Krankenschwestern und initiieren die kolonialen Stadien des Lebenszyklus. Oozooiden produzieren asexuell Knospen auf ihrem ventralen Stolon. Diese Knospen verlassen den Stolon und wandern zum dorsalen Cadophor, wo sie sich in drei gepaarten Reihen aneinanderreihen. Die zentralen Doppelreihen werden zu Phorozooiden und die äußeren zwei Doppelreihen zu Trophozooiden. Letztere versorgen sowohl die Krankenschwester als auch die Phorozooiden mit Nahrung16,17. Die Trophozooide versorgen die Krankenschwester mit Nahrung, da sie alle inneren Organe verliert. Mit zunehmender Fülle von Trophozooiden kann die Größe der Krankenschwester im Labor 15 mm erreichen. Während die Phorozooide wachsen, schlucken sie zunehmend planktonische Beute und erreichen eine Größe von 1,5 mm, bevor sie als Individuen17freigelassen werden. Eine einzige Krankenschwester kann > 100 Phorozooide während ihrer Lebensdauer18freisetzen. Nachdem die Phorozoiden aus dem Cadophor befreit wurden, wachsen sie weiter und sind die zweite koloniale Phase des Lebenszyklus. Sobald sie 5 mm groß sind, entwickelt jeder Phorozooid einen Haufen Gonozooide auf seinem ventralen Pedunkel. Diese Gonozooide können Partikel aufnehmen, wenn sie eine Länge von 1 mm erreichen. Nachdem die Gonozooiden 2 bis 3 mm groß sind, werden sie aus dem Phorozooid befreit und werden zum einzigen Einzelstadium des Lebenszyklus. Sobald sie 6 mm groß werden, werden Gonozooide geschlechtsreif17. Gonozooide können 9 mm oder mehr länge werden. Gonozooide sind hermaphroditisch, Spermien werden zeitweise freigesetzt, während die Befruchtung der Eier intern erfolgt16,17. Wenn der Gonozooid 6 mm groß ist, gibt er bis zu 6 befruchtete Eier frei. Erfolgreiche Kultivierung erfordert die Unterstützung der spezifischen Bedürfnisse jeder dieser einzigartigen Lebensgeschichte-Stadien.
Aufgrund der ökologischen und evolutionären Bedeutung der Thaliaceaner, einschließlich der Dolioliden, sind die Kultivierungsmethoden erforderlich, um das Verständnis der einzigartigen Biologie, Physiologie, Ökologie und Evolutionsgeschichte dieses Organismus zu fördern19 . Doliolids haben als experimentelle Modellorganismen in der Entwicklungsbiologie und der funktionellen Genomik erhebliche Versprechen, weil sie transparent sind und wahrscheinlich die Genome20,21gestrafft haben. Der Mangel an zuverlässigen Anbaumethoden behindert jedoch deren Nutzen als Labormodelle. Obwohl eine Handvoll Laboratorien Ergebnisse veröffentlicht haben, die auf kultivierten Dolioliden basieren, wurden zu unserem Wissen Anbauansätze und detaillierte Protokolle bisher nicht veröffentlicht. Basierend auf jahrelanger Erfahrung und Versuchs- und Fehlerkultivierungsversuchen bestand der Zweck dieser Studie darin, Erfahrungen zu überprüfen und Protokolle für die Sammlung und Kultivierung von Dolioliliden, insbesondere der Art Dolioletta gegenbauri,auszutauschen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1860px;" width="1860">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Algal culture tubes (55 mL sterile disposable glass culture tubes)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td style="width:595px;">For algal cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Autoclave</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For sterilizing equipment and seawater for algal cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Beakers (2 L glass)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For sorting diluted plankton net tow contents</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Buckets (5 gallon, ~20L)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For diluting contents of planton net tow - should be seawater conditioned before first use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Carboys (20 L)&#160;</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For storing seawater</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Doliolid glass culturing jar (1.9 L narrow mouth glass jar with cap)</td>
			<td>Qorpak</td>
			<td>GLC-01882</td>
			<td>Container for culture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Doliolid glass culturing jar (3.8 L narrow mouth glass jar with cap)</td>
			<td>Qorpak</td>
			<td>GLC-01858</td>
			<td>Container for culture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Environmental Chamber (Temperature controlled enviromental chamber)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>To accommodate plankton wheel and culture maintenance</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Filtration apparatus for 47 mm filters</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For filtering seawater for cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Glass microfiber filters, 47 mm</td>
			<td>Whatman</td>
			<td>1825-047</td>
			<td>For filtering seawater for cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Glass pipette (borosillicate glass pipette (glass tubing), OD 10mm, ID 8 mm, wall thickness 1mm)</td>
			<td>Science Company</td>
			<td>NC-10894</td>
			<td>Custom cut and edges polished</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Hose clamps, stainless steel, #104 (178 mm)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For holding culturing jars to the plankton wheel</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isochrysis galbana strain CCMP1323</td>
			<td>National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA)</td>
			<td>strain CCMP1323</td>
			<td>For feeding doliolid cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">L1 Media Kit, 50 L</td>
			<td>National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA)</td>
			<td>MKL150L</td>
			<td>For culturing algae</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Lamp (Fluorescent table lamp with an adjustable arm)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For illuminating doliolids in the jars and beakers</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Lighted temperature controlled incubator</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For algal cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Micropipettes and sterile tips (0-20 &#181;l, 20-200 &#181;l, 200-1000&#160;&#181;l)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For algal cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Plankton Net (202 &#181;m 0.5 m, 5:1 length) with cod end ring and &#160;4 L aquarium cod-end</td>
			<td>Sea-Gear Corporation</td>
			<td>90-50x5-200-4A/BB</td>
			<td>For collecting living doliolids (see Figure 4)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Plankton Wheel</td>
			<td style="width:417px;">NA</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>Custom built (see Figure 2)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Plastic wrap</td>
			<td>Any</td>
			<td>NA</td>
			<td>To cover inside of lid of doliolid culture jars</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Potassium Permanganate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>P279-500</td>
			<td>Reagent for cleaning jars and glassware</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Rhodomonas&#160;sp. strain CCMP740</td>
			<td>National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA)</td>
			<td>strain CCMP740</td>
			<td>For feeding doliolid cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Rubber Tubing</td>
			<td style="width:417px;">NA</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For holding culturing jars to the plankton wheel (can be made from tygon tubing)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sodium Bisulfite</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>S654-500</td>
			<td>Reagent for cleaning jars and glassware</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sodium Hydroxide</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP359-212</td>
			<td>Reagent for cleaning jars and glassware</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Sterile serological pipettes (1 mL, 5 mL, 10 mL, 25 mL)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For algal cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Thalassiosira weissflogii strain CCMP1051</td>
			<td>National Center for Marine Algae and Microbiota (NCMA)</td>
			<td>strain CCMP1051</td>
			<td>For feeding doliolid cultures</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:681px;">Tissue culture flasks (250 mL)</td>
			<td style="width:417px;">Any</td>
			<td style="width:167px;">NA</td>
			<td>For algal cultures</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cultivation of the marine pelagic tunicate dolioletta gegenbauri (uljanin 1884) for experimental studies

Gelatinezooplanktons spielen eine entscheidende Rolle in den Ökosystemen der Ozeane. Jedoch, Es ist in der Regel schwierig, ihre Physiologie zu untersuchen, Wachstum, Fruchtbarkeit, und trophische Wechselwirkungen in erster Linie aufgrund methodischer Herausforderungen, einschließlich der Fähigkeit, sie zu kulturisieren. Dies gilt insbesondere für die Doliolid, Dolioletta gegenbauri. D. gegenbauri kommt weltweit häufig in produktiven subtropischen Kontinentalschelfsystemen vor, oft in Blütenkonzentrationen, die einen großen Teil der täglichen Primärproduktion verbrauchen können. In dieser Studie beschreiben wir Anbauansätze für das Sammeln, Aufziehen und Pflegen von D. gegenbauri zum Zweck der Durchführung von Laborstudien. D. gegenbauri und andere doliolid Arten können live mit schräg geschleppten konischen 202 m Mesh Planktonnetzen von einem treibenden Schiff gefangen werden. Kulturen werden am zuverlässigsten etabliert, wenn die Wassertemperaturen unter 21 °C liegen und von unreifen Gonozooiden, reifenden Phorozooiden und großen Krankenschwestern gestartet werden. Kulturen können in abgerundeten Kulturgefäßen auf einem sich langsam drehenden Planktonrad gepflegt und auf einer Ernährung von kultivierten Algen im natürlichen Meerwasser für viele Generationen aufrechterhalten werden. Neben der Fähigkeit, Laborkulturen von D. gegenbaurizu etablieren, zeigen wir, dass der Sammelzustand, die Algenkonzentration, die Temperatur und die Exposition gegenüber natürlich bedingtem Meerwasser für die Kultur entscheidend sind. Gründung, Wachstum, Überleben und Reproduktion von D. gegenbauri.

Nach den beschriebenen Verfahren zur Erhebung und Kultivierung des Doliolids, D. gegenbauri in Abbildung 3beschrieben, ist es möglich, eine Kultur von D. gegenbauri während seiner komplexen Lebensgeschichte zu erhalten (Abbildung 1) und für viele Generationen erhalten. Obwohl hier der Anbau von D. gegenbauri beschrieben wird, sollten diese Verfahren auch für den Anbau anderer Doliolidarten relevant sein.
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Cultivation of the Marine Pelagic Tunicate Dolioletta gegenbauri Uljanin 1884 for Experimental Studies

Anbau des Marine Pelagischen Tunikas Dolioletta gegenbauri (Uljanin 1884) für experimentelle Studien

Doliolide, einschließlich der Art Dolioletta gegenbauri, sind kleine gelatinöse Marine Zooplankton von ökologischer Bedeutung auf produktiven subkontinentalen Regalsystemen weltweit gefunden. Die Schwierigkeit, diese empfindlichen Organismen zu kultivieren, schränkt ihre Untersuchung ein. In dieser Studie beschreiben wir Anbauansätze für das Sammeln, Aufzucht und die Pflege des Doliolid Dolioletta gegenbauri.

Gelatinous zooplanktons play a crucial role in ocean ecosystems. However, it is generally difficult to investigate their physiology, growth, fecundity, ...

Die Verfügbarkeit von kultivierbaren Modellorganismen war in vielen Studienbereichen von grundlegender Bedeutung für den Fortschritt. Dieses Protokoll ist unserer Kenntnis nach der einzige Ansatz, der für die Kultivierung von Doliolids zur Verfügung steht. Zuverlässige Doliolid-Kulturtechnologie bietet ein einzigartiges experimentelles Modell, um Organismen zu untersuchen, die für einige der produktivsten Regionen des Ozeans wichtig sind und die frühesten evolutionären Vorfahren von Wirbeltieren darstellen.Diese Technik ist einzigartig, da sie die Algennahrungspartikel und die Organismen, die in der Wassersäule hängen, ohne Kontakt mit den Wänden des Behälters hält, wie sie in der Natur erfahren. Diese Kultivierungsmethode kann auf die Kultivierung anderer kleiner Gelatine- und Krebstiere oder Planktonarten angewendet werden. Da Doliolids einen komplexen Lebenszyklus haben, ist es entscheidend, die Bedürfnisse jedes Lebensabschnitts zu verstehen und zu erkennen.Den Lebenszyklus zu lernen und wie man sie erkennt und handhabt, erfordert viel Übung. Nach unserer Erfahrung ist der einzige Weg, diese Kultivierungstechnik zu lernen, sie zu sehen und zu tun. Mehrere andere Projektteilnehmer, darunter Erin Arneson, Nicholas Castalaine, Natalia Lopez, Lauren Lamboye, Briana Pierce, Arya Rodriguez-Santiago und Terrell Scarborough, traten ebenfalls kurz in diesem Video auf.Vor dem Aufstellen und Aufziehen von Doliolidkulturen im Labor 1,9 und 3,8 Liter Glaskulturgläser reinigen und sterilisieren, indem Sie sie in die Natriumhydroxid-Kaliumpermanganatlösung eintauchen. Lassen Sie die Gläser über Nacht einweichen. Dann die Gläser in die Natriumbisulfitlösung geben.Lassen Sie die Gläser über Nacht einweichen. Als nächstes spülen Sie die Gläser gründlich mit entionisiertem Wasser. Lassen Sie die Gläser trocknen.Um die Bestandskulturen zu erhalten, verwenden Sie strenge axenische Kulturtechniken. Alle zwei Wochen übertragen 0,5 Milliliter alter seneszenenter Kultur auf 25 Milliliter frische Wachstumsmedien in sterilen 55 Milliliter Glaskulturröhren. Um größere Mengen Anungsraum für die Fütterung von Doliolids vorzubereiten, übertragen Sie vier Milliliter des Phytoplanktons aus axtischen Beständen in 500 Milliliter Kunststoffgewebekulturkolben mit 200 Millilitern Wachstumsmedien, um bei einer bis 50 Verdünnung zu impfen.Inkubieren Sie die Kultur in einem Umwelt-Inkubator oder begehbaren Umweltkammer bei 20 Grad Celsius mit einem 12- bis 12-stündigen Hell-Dunkel-Zyklus unter kühlem weiß beleuchteten Licht von 65 bis 85 Mikroeinsteins pro Quadratmeter. Legen Sie Kulturkolben flach, um die Beleuchtung zu maximieren. Wirbeln Sie die Kultur täglich sanft.Fahren Sie hinaus aufs Meer. Um Doliolids auf dem Festlandsockel zu lokalisieren, setzen Sie das ozeanographische Instrument CTD ein, um Wasserbedingungen zu identifizieren, die dem Vorhandensein von Doliolids durch Profilierung von Wassertemperatur, Salzgehalt und Chlorophyll-A-Fluoreszenz förderlich sind. Bestätigen Sie die Wasserbedingungen, indem Sie Explorativnetze mit speziellen Planktonnetzen durchführen.Alternativ können Sie ein In-situ-Profilierungs-Bildgebungssystem verwenden, um Doliolids zu erkennen. Jetzt betreiben Sie die Winde, um die CTD abzurufen. Die Niskin-Flaschen, die auf der CTD-Rosette montiert waren, sammelten Meerwasser von der Stelle, an der sich Doliolids befinden, und in der Tiefe, die die höchsten Schätzungen von Chlorophyll enthält.Spülen Sie drei 22-Liter-Eimer mit Meerwasser und füllen Sie mit Meerwasser etwas mehr als die Hälfte voll. Füllen Sie das Kabeljau-End vollständig mit Meerwasser und befestigen Sie das Kabeljauende am Netz. Stellen Sie das Netz bereit.Senken und heben Sie das Netz durch die Wassersäule, wobei ein schräger Abschleppwinkel von 15 bis 25 Grad und vertikale Einsatz- und Abrufgeschwindigkeit nicht größer als 15 Meter pro Minute beibehalten werden. Sobald das Netz an Bord ist, übertragen und teilen Sie den Inhalt des Kabeljaus in die Plastikeimer, die jeweils Oberflächenmeerwasser enthalten, das von der Website gesammelt wird. Mit einer Breitbohrglaspipette mischen Sie den Inhalt des Bechers vorsichtig mit der Pipette in vertikalen und horizontalen Bewegungen.Erstellen Sie mit dem Zeigefinger eine Kapillarabsaugung, um Doliolids zu erfassen und zu übertragen. Erfassen Sie die Doliolids aus gemischtem Phytoplankton im Becher. Nach der Zugabe von Doliolids, fügen Rhodomonas Kultur in das Glas zu einer endgültigen Konzentration von etwa fünf mal 10 bis die dritte bis 10 zu den vierten Zellen pro Milliliter.Überprüfen Sie die Farbe des Verdauungstraktes von Doliolids. Die rote Farbe bestimmt, dass die Doliolids aktiv füttern. Um zu verhindern, dass Doliolids an der Luft-Wasser-Schnittstelle gefangen werden, füllen Sie die Gläser vollständig mit ungefiltertem, partikelreichem Meerwasser, um den Kopfraum zu vermeiden.Legen Sie ein Stück Plastikfolie über die Glasöffnung. Vermeiden Sie die Schaffung von Luftblasen, die auch die Tiere beschädigen können. Schrauben Sie die Kappe vorsichtig auf das Glas und invertieren Sie das Glas vorsichtig, um festzustellen, ob Blasen vorhanden sind.Wenn Blasen vorhanden sind, füllen Sie mehr Meerwasser, um sie zu entfernen. Nachdem die Gläser mit dem Deckel wieder versiegeln und wischen Sie das überschüssige Wasser von der Außenseite des Glases. Montieren Sie jedes Glas auf das Planktonrad, indem Sie das Glas auf die mit Gummirohren überzogenen vertikalen Metallstangen und zwischen einer Edelstahlschlauchklemme legen.Stellen Sie sicher, dass die Rückseite des Glases gegen den Gummischlauch gepolstert ist. Stellen Sie die Schraube ein, um die Schlauchklemme um das Glas zu ziehen. Lassen Sie die Gläser bei 0,3 Rpm drehen, um die Doliolids in Suspension zu halten.Nach drei Tagen Gewöhnung an die Laborbedingungen 100 bis 150 Milliliter Kulturwasser aus dem Glas in einen Probenbehälter übertragen und die Algenkonzentration mit einem Coulter-Zähler messen. Basierend auf der Schätzung der Algenkonzentration, fügen Sie genügend Algen hinzu, um die Konzentration im Kulturglas auf 40 bis 95 Mikrogramm Kohlenstoff pro Liter zu erhöhen. Verwenden Sie den Partikelzähler, um die Algenkonzentrationen nach der Fütterung der Doliolids zu überwachen, um die Entscheidung zu bestimmen, wie häufig und wie viel Algen den Kulturen hinzugefügt werden.Halten Sie Phytoplanktonkonzentrationen in den Kulturgläsern zwischen 40 und 95 Mikrogramm Kohlenstoff pro Liter. Doliolids zu kultivieren erfordert, sie durch ihren komplizierten Lebenszyklus zu unterstützen. Entwicklung von Larven und Oozooiden und frühen Krankenschwestern.Sobald mindestens acht Trophozooide auf dem Katapult der Krankenschwester sichtbar sind, überführen Sie mindestens vier Krankenschwestern in ein neues Kultivierungsglas. Sobald die Phorozooide drei Millimeter groß werden, reduzieren Sie die Anzahl der Tiere im Glas. Wenn die Phorozooiden größer als fünf Millimeter werden und Gonozooid-Cluster entwickelt haben, entfernen alle bis auf vier Phorozooide.Dieses Protokoll gibt einen Überblick über einen Dolioletta gegenbauri Sammel- und Anbauansatz. Die Algenabfertigungsraten waren in Konzentrationen von 20 bis 60 Mikrogramm Kohlenstoff pro Liter ähnlich und gingen mit zunehmender Lebensmittelkonzentration zurück. Die Clearance-Raten stiegen proportional gegenüber Temperaturbereichen, die das D.gegenbauri-Wachstum unterstützen.Es wurden Wachstumsraten von 0,1 bis 0,7 Millimeter pro Tag in Abhängigkeit von Temperatur und Nahrungsmittelverfügbarkeit beobachtet. Der Anbau von Doliolids hängt davon ab, dass die ozeanischen Bedingungen erfolgreich nachgeahten werden und den Bedürfnissen der Tiere während ihres komplizierten Lebenszyklus gerecht werden. Folglich ist ein schonender Umgang mit den Tieren während ihrer Gefangennahme, Isolierung und Haltung erforderlich.Lebensmittelkonzentrationen müssen häufig überwacht und angepasst werden. Dies gilt insbesondere in den sich entwickelnden Larven- und Oozooidenlebensstadien. Diese Methode wurde speziell für die Aufzucht kleiner Zooplanktonarten an der Basis des Marinenahrungsnetzes entwickelt.Diese Methode wird beispielsweise wertvoll sein, um Zooplankton-Reaktionen auf den Klimawandel zu untersuchen. Seit ihrer Entwicklung hat diese Technik den Weg für Zooplankton-Ökologen geebnet, um die Labor-basierte Fütterungs-, Wachstums- und Reproduktionsraten von Doliolids zu bestimmen. Zusätzlich ebnete diese Methode den Weg für revolutionäre molekularbasierte Untersuchungen der Doliolid-Diät in der Natur.Ich möchte Sie daran erinnern, dass das Glasreinigungsprotokoll Reagenzien beinhaltet, die Atemreizstoffe sind und in gut belüfteten Bereichen verwendet werden sollten. Die Arbeit auf See kann auch gefährlich sein, also befolgen Sie die Sicherheitsvorschriften des Schiffes.

Research

JoVE Journal

Environment

Cultivation of the Marine Pelagic Tunicate Dolioletta gegenbauri (Uljanin 1884) for Experimental Studies

A Noninvasive Method For In situ Determination of Mating Success in Female American Lobsters (Homarus americanus)

A Noninvasive Method For In situ Determination of Mating Success in Female American Lobsters Homarus americanus

Eine nichtinvasive Methode zur<em&gt; In situ</em&gt; Bestimmung des Gegen Erfolg im Frauen amerikanischen Hummer (<em&gt; Homarus americanus</em&gt;)

Despite being one of the most productive fisheries in the Northwest Atlantic, much remains unknown about the natural reproductive dynamics of American ...

Forschung

Umwelt

A Fish-feeding Laboratory Bioassay to Assess the Antipredatory Activity of Secondary Metabolites from the Tissues of Marine Organisms

Ein Fisch-Fütterung Labor Bioassay die antipredatory Aktivität von Sekundärmetaboliten aus dem Gewebe mariner Organismen beurteilen

Marine chemical ecology is a young discipline, having emerged from the collaboration of natural products chemists and marine ecologists in the 1980s with ...

Clean Sampling and Analysis of River and Estuarine Waters for Trace Metal Studies

Saubere Probenahme und Analyse von River und Estuarine Waters für Spurenmetallforschung

Most of the trace metal concentrations in ambient waters obtained a few decades ago have been considered unreliable owing to the lack of contamination ...

Experimental Protocol for Biodiesel Production with Isolation of Alkenones as Coproducts from Commercial Isochrysis Algal Biomass

Experimental Protocol for Biodiesel Production with Isolation of Alkenones as Coproducts from Commercial Isochrysis Algal Biomass

Versuchsprotokoll für die Biodieselproduktion mit Isolierung von Alkenone als Co-Produkte von der Commercial<em&gt; Isochrysis</em&gt; Algenbiomasse

The need to replace petroleum fuels with alternatives from renewable and more environmentally sustainable sources is of growing importance. ...

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

VACUSIP eine verbesserte Inex Methode für<em&gt; In Situ</em&gt; Messung von partikulären und gelösten Verbindungen, die durch Active Suspension Feeders Verarbeitet

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and ...

Ecotoxicological Method with Marine Bacteria Vibrio anguillarum to Evaluate the Acute Toxicity of Environmental Contaminants

Ecotoxicological Method with Marine Bacteria Vibrio anguillarum to Evaluate the Acute Toxicity of Environmental Contaminants

Ökotoxikologische Methode mit Meeresbakterien<em&gt; Vibrio anguillarum</em&gt; Zur Beurteilung der akuten Toxizität von Umweltschadstoffen

Bacteria are an important component of the ecosystem, and microbial community alterations can have a significant effect on biogeochemical cycling and food ...

Vegetated Treatment Systems for Removing Contaminants Associated with Surface Water Toxicity in Agriculture and Urban Runoff

Vegetierte Behandlungssysteme zur Entfernung von Verunreinigungen, die mit der Oberflächenwasser-Toxizität in der Landwirtschaft und dem städtischen Abfluss verbunden sind

Urban stormwater and agriculture irrigation runoff contain a complex mixture of contaminants that are often toxic to adjacent receiving waters. Runoff may ...

Extraction of Organochlorine Pesticides from Plastic Pellets and Plastic Type Analysis

Extraktion von Organochlor-Pestiziden aus Kunststoff-Pellets und Kunststoff-Typ-Analyse

Plastic resin pellets, categorized as microplastics (&#8804;5 mm in diameter), are small granules that can be unintentionally released to the environment ...

Development of New Methods for Quantifying Fish Density Using Underwater Stereo-video Tools

Entwicklung neuer Methoden zur Quantifizierung der Fisch-Dichte mit Unterwasser-Stereo-Video-Tools

The use of video camera systems in ecological studies of fish continues to gain traction as a viable, non-extractive method of measuring fish lengths and ...

Methods for Image-based Surveys of Benthic Macroinvertebrates and Their Habitat Exemplified by the Drop Camera Survey for the Atlantic Sea Scallop

Methoden zur Image-basierte Umfragen von benthischen Makroinvertebraten und ihren Lebensraum am Beispiel der Drop-Kamera-Umfrage für die Atlantik-Jakobsmuschel

Underwater imaging has long been used in the field of marine ecology but decreasing costs of high-resolution cameras and data storage have made the ...