Name: evaluation of photosynthetic behaviors by simultaneous measurements of leaf reflectance and chlorophyll fluorescence analyses
Uploaded: 2019-08-09T15:00:00
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Nous sommes reconnaissants au Dr Kouki Hikosaka (Université de Tohoku) pour avoir stimulé les discussions, l'aide avec un espace de travail et des instruments pour des expériences. Le travail a été soutenu en partie par KAKENHI [numéros de subvention 18K05592, 18J40098] et la Fondation Naito.

1. Cultivation de plantes Arabidopsis
<ol><li>Tremper les graines d'Arabidopsis thaliana dans de l'eau déionisée stérilisée dans un microtube, et couver pendant 2 jours à 4 oC dans l'obscurité.</li>
	<li>Placer environ quatre des graines imbibées et traitées à froid sur la surface du sol à l'aide d'une micropipette. Incuber les pots plantés dans une chambre de croissance avec une lumière de 16 h (120 photons de mol m-2 s1) et 8 h de période sombre à 22 oC et 20 oC, respectiv...

<ol>
	<li>Xue, J., Su, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Significant+remote+sensing+vegetation+indices:+A+review+of+developments+and+applications.">Significant remote sensing vegetation indices: A review of developments and applications.</a> Journal of Sensors. 1353691, (2017).</li><li>Cotrozzi, L., Townsend, P. A., Pellegrini, E., Nali, C., Couture, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reflectance+spectroscopy:+a+novel+approach+to+better+understand+and+monitor+the+impact+of+air+pollution+on+Mediterranean+plants.">Reflectance spectroscopy: a novel approach to better understand and monitor the impact of air pollution on Mediterranean plants.</a> Environmental Science and Pollution Research. 25 (9), 8249-8267 (2018).</li><li>Han, L., Yang, G., Yang, H., Xu, B., Li, Z., Yang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clustering+Field-Based+Maize+Phenotyping+of+Plant-Height+Growth+and+Canopy+Spectral+Dynamics+Using+a+UAV+Remote-Sensing+Approach.">Clustering Field-Based Maize Phenotyping of Plant-Height Growth and Canopy Spectral Dynamics Using a UAV Remote-Sensing Approach.</a> Frontiers in Plant Science. 9, 1638 (2018).</li><li>Baker, N. 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V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantifying+the+efficiency+of+photoprotection.">Quantifying the efficiency of photoprotection.</a> Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 372 (1730), 20160393 (2017).</li><li>Gamon, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remote+sensing+of+the+xanthophyll+cycle+and+chlorophyll+fluorescence+in+sunflower+leaves+and+canopies.">Remote sensing of the xanthophyll cycle and chlorophyll fluorescence in sunflower leaves and canopies.</a> Oecologia. 85 (1), 1-7 (1990).</li><li>Gamon, J. A., Pe&#241;uelas, J., Field, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+narrow-waveband+spectral+index+that+tracks+diurnal+changes+in+photosynthetic+efficiency.">A narrow-waveband spectral index that tracks diurnal changes in photosynthetic efficiency.</a> Remote Sensing of Environment. 41 (1), 35-44 (1992).</li><li>Rahimzadeh-Bajgiran, P., Munehiro, M., Omasa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relationships+between+the+photochemical+reflectance+index+(PRI)+and+chlorophyll+fluorescence+parameters+and+plant+pigment+indices+at+different+leaf+growth+stages.">Relationships between the photochemical reflectance index (PRI) and chlorophyll fluorescence parameters and plant pigment indices at different leaf growth stages.</a> Photosynthesis Research. 113 (1-3), 261-271 (2012).</li><li>Niyogi, K. K., Grossman, A. 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M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+leaf+CO2+assimilation+and+Photosystem+II+photochemistry+from+chlorophyll+fluorescence+and+the+photochemical+reflectance+index.">Modeling leaf CO2 assimilation and Photosystem II photochemistry from chlorophyll fluorescence and the photochemical reflectance index.</a> Plant, Cell and Environment. 42 (2), 730-739 (2019).</li><li>Brooks, M. D., Sylak-Glassman, E. J., Fleming, G. R., Niyogi, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+thioredoxin-like/&#946;-propeller+protein+maintains+the+efficiency+of+light+harvesting+in+Arabidopsis.">A thioredoxin-like/&#946;-propeller protein maintains the efficiency of light harvesting in Arabidopsis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (29), E2733-E2740 (2013).</li><li>Nilkens, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+slowly+inducible+zeaxanthin-dependent+component+of+non-photochemical+quenching+of+chlorophyll+fluorescence+generated+under+steady-state+conditions+in+Arabidopsis.">Identification of a slowly inducible zeaxanthin-dependent component of non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence generated under steady-state conditions in Arabidopsis.</a> Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics. 1797 (4), 466-475 (2010).</li><li>Davis, G. 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A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+photochemical+reflectance+index+provides+an+optical+indicator+of+spring+photosynthetic+activation+in+evergreen+conifers.">The photochemical reflectance index provides an optical indicator of spring photosynthetic activation in evergreen conifers.</a> New Phytologist. 206 (1), 196-208 (2015).</li><li>Miyake, C., Amako, K., Shiraishi, N., Sugimoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acclimation+of+Tobacco+Leaves+to+High+Light+Intensity+Drives+the+Plastoquinone+Oxidation+System&#8212;Relationship+Among+the+Fraction+of+Open+PSII+Centers,+Non-Photochemical+Quenching+of+Chl+Fluorescence+and+the+Maximum+Quantum+Yield+of+PSII+in+the+Dark.">Acclimation of Tobacco Leaves to High Light Intensity Drives the Plastoquinone Oxidation System&#8212;Relationship Among the Fraction of Open PSII Centers, Non-Photochemical Quenching of Chl Fluorescence and the Maximum Quantum Yield of PSII in the Dark.</a> Plant and Cell Physiology. 50 (4), 730-743 (2009).</li><li>Munekage, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cyclic+electron+flow+around+photosystem+I+is+essential+for+photosynthesis.">Cyclic electron flow around photosystem I is essential for photosynthesis.</a> Nature. 429 (6991), 579-582 (2004).</li><li>Tubuxin, B., Rahimzadeh-Bajgiran, P., Ginnan, Y., Hosoi, F., Omasa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimating+chlorophyll+content+and+photochemical+yield+of+photosystem+II+(&#934;PSII)+using+solar-induced+chlorophyll+fluorescence+measurements+at+different+growing+stages+of+attached+leaves.">Estimating chlorophyll content and photochemical yield of photosystem II (&#934;PSII) using solar-induced chlorophyll fluorescence measurements at different growing stages of attached leaves.</a> Journal of Experimental Botany. 66 (18), 5595-5603 (2015).</li></ol>

Dans cette étude, nous avons obtenu des preuves supplémentaires pour montrer que PRI représente les pigments xanthophyll en mesurant simultanément la fluorescence de la chlorophylle et la réflectoflace des feuilles.
Une lumière halogène, dont les longueurs d'onde sont semblables à la lumière du soleil, a été adaptée pour être utilisée comme source de lumière actinique pour activer la photosynthèse. Nous avons d'abord utilisé une source de lumière LED blanche pour éviter les ...

La réflectofloire des feuilles est utilisée pour détecter à distance les indices de végétation qui reflètent la photosynthèse ou les traits des plantes1,2. L'indice de végétation de différence normalisé (NDVI), qui est basé sur les signaux de réflexion infrarouge, est l'un des indices de végétation les plus connus pour la détection des propriétés liées à la chlorophylle, et il est utilisé dans l'écologie et les sciences agricoles comme un indicateur des réponses environnementales dans les arbres ou les cultures3. Dans les études sur le terrain, bien que de nombreux paramètres (p. ex. indice de chlorophylle (IC), indice de l'eau (WI), etc.) aient été élaborés et utilisés, peu de vérifications détaillées de ce que ces paramètres détectent directement (ou indirectement) ont été effectuées à l'aide de mutants.
L'analyse de la modulation de la chlorophylle par impulsions (PAM) est une méthode efficace pour mesurer les réactions et les processus photosynthétiques impliqués dans le photosystème II (PSII)4. La fluorescence de la chlorophylle peut être détectée avec un appareil photo et utilisée pour le dépistage des mutants de photosynthèse5. Cependant, la détection par caméra de la fluorescence de la chlorophylle nécessite des protocoles complexes tels que le traitement sombre ou les impulsions de saturation de la lumière, qui sont difficiles à mettre en œuvre dans les études sur le terrain.
L'énergie solaire absorbée par les feuilles est principalement consommée par des réactions photosynthétiques. En revanche, l'absorption de l'énergie lumineuse excédentaire peut générer des espèces réactives d'oxygène, ce qui cause des dommages aux molécules photosynthétiques. L'excès d'énergie lumineuse doit être dissipé sous forme de chaleur par des mécanismes d'étanchéité non photochimique (NPQ)6. L'indice de réflectance photochimique (PRI), qui reflète les changements dépendants de la lumière dans les paramètres de réflectance des feuilles, est dérivé de la réflectance à bande étroite à 531 et 570 nm (longueur d'onde de référence)7,8. Il est rapporté pour corrélé avec NPQ dans l'analyse de fluorescence de chlorophylle9. Cependant, puisque nPQ est un paramètre composite qui inclut le cycle de xanthophyll, la tradition d'état, et la photoinhibition, la validation détaillée est exigée pour comprendre ce que le paramètre de PRI mesure. Nous nous sommes concentrés sur le cycle xanthophyll, un système de dissipation thermique impliquant la désépoxidation des pigments xanthophyll (altoxanthine à l'anthéraxanthine et à la zéaxanthine) et un composant principal du NPQ parce que les corrélations entre PRI et la conversion de ces pigments a été rapporté dans les études précédentes8.
De nombreux mutants liés à la photosynthèse ont été isolés et identifiés dans L'Arabidopsis. Le mutant npq1 n'accumule pas de zéaxanthine parce qu'il porte une mutation en alpoxidase altoxidase (VDE), qui catalyse la conversion de la violaxanthine en zéaxanthine10. Pour établir si PRI ne détecte que les changements dans les pigments xanthophyll, nous avons simultanément mesuré pri et fluorescence de chlorophylle dans la même zone de feuille dans npq1 et le type sauvage et puis disséqué NPQ à différentes échelles de temps de relaxation foncée pour extraire la composante xanthophyll-connexe11. Ces mesures simultanées fournissent une technique précieuse pour l'attribution d'indices de végétation. En outre, puisque pri est en corrélation avec la productivité primaire brute (GPP), la capacité d'attribuer PRI précisément à un composant a des applications importantes dans l'écologie12.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Halogen light source</td>
			<td>OptoSigma</td>
			<td>SHLA-150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light quantum meter</td>
			<td>LI-COR</td>
			<td>LI-1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PAM chlorophyll fluorometer</td>
			<td>Walz</td>
			<td>JUNIOR-PAM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PAM controliing software</td>
			<td>Walz</td>
			<td>WinControl-3.27</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reflectance standard</td>
			<td>Labsphere, Inc.</td>
			<td>SRT-99-050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spectral radiometer</td>
			<td>ADS Inc.</td>
			<td>Field Spec3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spectral radiometer controlling software</td>
			<td>ADS Inc.</td>
			<td>RS3</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

evaluation of photosynthetic behaviors by simultaneous measurements of leaf reflectance and chlorophyll fluorescence analyses

Chlorophylle une analyse de fluorescence est largement utilisé pour mesurer les comportements photosynthétiques dans les plantes intactes, et a abouti à la mise au point de nombreux paramètres qui mesurent efficacement la photosynthèse. L'analyse de la réflectoflage des feuilles fournit plusieurs indices de végétation en écologie et en agriculture, y compris l'indice de réflectation photochimique (PRI), qui peut être utilisé comme indicateur de la dissipation de l'énergie thermique pendant la photosynthèse parce qu'il est en corrélation avec non-photochimique (NPQ). Toutefois, puisque le NPQ est un paramètre composite, sa validation est nécessaire pour comprendre la nature du paramètre PRI. Pour obtenir des preuves physiologiques pour l'évaluation du paramètre PRI, nous avons simultanément mesuré la fluorescence de chlorophylle et la réflectance de feuille dans le mutant défectueux de cycle de xanthophyll (npq1) et les usines sauvages-type d'Arabidopsis. En outre, le paramètre qZ, qui reflète probablement le cycle de xanthophyll, a été extrait des résultats de l'analyse de fluorescence de chlorophylle en surveillant la cinétique de relaxation du NPQ après l'arrêt de la lumière. Ces mesures simultanées ont été effectuées à l'aide d'un fluoromètre chlorophylle de modulation d'amplitude d'impulsion (PAM) et d'un radiomètre spectral. Les sondes de fibres des deux instruments ont été placées près l'une de l'autre pour détecter les signaux de la même position de feuille. Une source de lumière externe a été utilisée pour activer la photosynthèse, et les lumières de mesure et la lumière saturée ont été fournies à partir de l'instrument PAM. Ce système expérimental nous a permis de surveiller le PRI dépendant de la lumière dans la plante intacte et a révélé que les changements dépendants de la lumière dans PRI diffèrent considérablement entre le type sauvage et le mutant npq1. En outre, PRI a été fortement corrélé avec qZ, signifiant que qZ reflète le cycle de xanthophyll. Ensemble, ces mesures ont démontré que la mesure simultanée de la réflectation des feuilles et de la fluorescence de la chlorophylle est une approche valide pour l'évaluation des paramètres.

La figure 1 présente un diagramme schématique de l'expérimental mis en place pour mesurer simultanément la fluorescence de la chlorophylle et la réflectoflanisation des feuilles. Les sondes de fibre du PAM et du radiomètre spectral ont été fixées perpendiculairement à la surface de feuille au support de feuille sur le stade fait sur commande d'échantillon, et une lampe halogène a été employée pour l'irradiation actinique de lumière des directi...

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Evaluation of Photosynthetic Behaviors by Simultaneous Measurements of Leaf Reflectance and Chlorophyll Fluorescence Analyses

Nous décrivons une nouvelle approche technique pour étudier les réponses photosynthétiques dans les plantes supérieures impliquant des mesures simultanées de la chlorophylle une fluorescence et une réflectoflace de feuille utilisant un PAM et un radiomètre spectral pour la détection des signaux de la même zone de feuilles en Arabidopsis.

Évaluation des comportements photosynthétiques par des mesures simultanées de la réflectance des feuilles et des analyses de fluorescence de la chlorophylle

Chlorophyll a fluorescence analysis is widely used to measure photosynthetic behaviors in intact plants, and has resulted in the development of many ...

La mesure simultanée de la réflectance des feuilles avec l’analyse de fluorescence de chlorophylle à l’aide du modèle végétal mutant déjà connu facilite l’établissement de nouveaux paramètres de réflectance. La construction de nouveaux paramètres de réflectance des feuilles par notre méthode permet une surveillance en temps réel de l’évolution des comportements des plantes dans des conditions environnementales naturelles. Avant de commencer une expérience mis en place un système de mesure comme le montre ce schéma.Avec un stade d’échantillon, une source lumineuse, un fluoromètre PAM et un radiomètre spectral. Ensuite, fixez une plaque d’acier carrée de 10 cm avec un trou d’un cm de diamètre à l’étape de l’échantillon sur mesure. Et s’adapter à deux sondes minces en fibre étroitement ensemble.Envelopper les sondes de ruban adhésif en plastique. Ensuite, utilisez un support pour couper les sondes enregistrées sur l’étape de l’échantillon. Placez les sondes verticalement jusqu’au stade de l’échantillon.Et fixez un guide lumineux biforked fait de fibres de verre à la source de lumière halogène. Puis effacer l’étape de l’échantillon des deux directions à environ 45 degrés d’angle. Réglage de la source lumineuse de sorte que la lumière illumine uniformément le stade de l’échantillon sans projeter d’ombres.Pour la mesure simultanée de la réflectance gauche et de l’analyse de la florescence chlorophylle mise en place, dans une pièce sombre avec la lumière vert de cellophane placer une plante d’essai au porte-feuilles de l’étape de l’échantillon et toucher la feuille contre le trou de plaque d’acier sur la scène. Après avoir éteint la faible lumière verte, allumez le fluoromètre PAM et effacez l’échantillon de feuilles avec une lumière de mesure. Déplacez l’ajusteur de sorte que l’intensité de la florescence mesure environ 100 et mesure la distance entre la sonde et la feuille.Fixez l’ajusteur en place et enregistrez la valeur de la distance sur l’ajusteur. Éteignez ensuite la lumière de mesure et retirez la plante d’essai. Pour la mesure de l’intensité lumineuse actinique, placez un quantimètre lumineux à la position où la feuille de l’échantillon sera placée.Et irradier la lumière de la source de lumière halogène pour mesurer l’intensité de la source lumineuse. Déterminez quelles positions du cadran source lumineuse génèrent des intensités de 30, 60, 120, 240 et 480 protons micromolaires par mètre carré par seconde. Placez une plaque blanche comme norme réflectante à la position de l’échantillon de feuilles.Et allumez un radiomètre spectral. Ajustez la réflectance spectrale entre 350 et 850 nanomètres. Il n’y a pas de données spectrales pour le moment car il n’y a pas de lumière irradiante.Allumez la lampe halogène pour irradier avec 480 photons micromolaires par mètre carré par seconde. L’intensité d’irradiation la plus élevée dans ce test et ajuster la force de détection du radiomètre pour éviter la saturation. Enregistrez ensuite la réflectance spectrale sous illumination avec 30, 60, 120, 240 et 480 photons micromolaires par mètre carré par seconde.Pour la mesure simultanée de la réflectance des feuilles et de l’analyse de la florescence de la chlorophylle, transférez la plante de la chambre de croissance à la chambre noire avec la même température et humidité. Après une heure, placez une plante Arabidopsis à la position de l’échantillon de feuilles. Et fixer la feuille d’échantillon à la feuille de sorte que la surface de la feuille est perpendiculaire aux sondes de détection.Allumez le fluoromètre PAM et lancez l’enregistrement de la courbe. Cette valeur s’appelle zéro. Allumez la lumière de mesure et attendez environ 30 secondes que la courbe réponde.Cette valeur s’appelait F zéro. Offrez une impulsion saturée de 4000 photons micromolaires par mètre carré par seconde pendant 0,8 seconde à partir du PAM et obtenez la valeur la plus élevée du pic dans la courbe avec une intensité de fluorescence accrue. Cette valeur est appelée Fm.Then utiliser la formule pour calculer le rendement quantique maximum du système photo deux dans l’obscurité.Pour mesurer les comportements photosynthétiques à l’état stable, après avoir enregistré Fm irradier l’échantillon de feuilles avec les photons de 30 micromolaires par mètre carré par seconde. Tout en ralnonciant le radiomètre spectral pour surveiller la réflectance des feuilles. Attendez au moins 20 minutes pour que la réaction photosynthétique atteigne un état stable.Pendant cette période de réaction, l’impulsion de saturation sera fournie à intervalles d’une minute. L’intensité de florescence de l’état stable est appelée Fs.La valeur maximale de florescence atteinte après 20 minutes de lumière pulsée est appelée Fm prime. Enregistrez la réflectance spectrale à ce stade.Pour calculer l’activité de photosynthèse à l’état stable calculer les rendements quantiques du système photo deux qui peuvent être estimés en irradiant avec des impulsions saturées sous la lumière actinique. Estimer le flux d’électrons linéaires à partir du système photo deux centre de réaction. Calculez ensuite l’assaisage non photochimique et calculez l’indice de réflectance photochimique à partir de 531 et 570 nanomètres.Après l’acquisition de Fs et la réflectance des feuilles éteindre la lumière actinique et de fournir une impulsion saturante à intervalles d’une minute pendant la relaxation sombre. La valeur maximale de florescence induite par l’impulsion de saturation sous l’obscurité est appelée Fm double prime. Et enregistrer les données fm double prime à deux et 10 minutes après avoir éteint la lumière actinique.Pour calculer les paramètres de l’assaison non photochimique des connecteurs de relaxation, estimez le qE avec les deux minutes d’adaptation sombre Fm double données de premier choix. Calculez l’assaisons dépendant zanthoxylum, qZ, avec l’adaptation sombre de 10 minutes Fm données double prime. Calculez ensuite l’état inhibiteur de la photo.Comme une prochaine mesure allumer la lumière actinique à 60 photons micromolaires par mètre carré par seconde et répéter la même mesure. Dans cette expérience représentative, des plantes de type sauvage et mutantes d’Arabidopsis ont été comparées. Le changement dans l’indice de réflectance photochimique, PRI, calculé à partir de la réflectance des feuilles, a été tracé par rapport au flux linéaire d’électrons dépendant de la lumière du système photo deux tel qu’estimé par le fluoromètre PAM.Dans cette expérience, le changement dans le PRI a été négativement corrélé avec le flux linéaire d’électrons dans les plantes de type sauvage, mais pas dans les plantes mutantes. qZ qui représente le cycle de xanthophylle a été fractionné des connectics foncés de relaxation de l’assèchement non photochimique et a également été tracé contre le changement dans le PRI. Dans cette analyse, le qZ a également été fortement corrélé avec le changement de PRI pour les deux souches végétales, ce qui implique que le PRI reflète le cycle xanthophylle.Pour la mesure simultanée de la même zone foliique à l’aide de la même source de lumière ou de la même intensité, utilisez la même fibre de détection dans le dispositif de fixation pour positionner la feuille verticalement. La spectroscopie de réflectance a le potentiel d’être utilisée dans l’analyse d’une variété de phénotypes, dans le type sauvage et les plantes mutantes pour élucider les mécanismes moléculaires des plantes.

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