Name: calvarial model of bone augmentation in rabbit for assessment of bone growth and neovascularization in bone substitution materials
Uploaded: 2019-08-13T14:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Calvarial Model of Bone Augmentation in Rabbit for Assessment of Bone Growth and Neovascularization in Bone Substitution Materials at JoVE.com

Los autores están en deuda con Geistlich AG (Wolhusen, CH) y la fundación Osteología (Lucerne, CH) (concesión no 18-049) por su apoyo, así como Con El Global D (Brignais, FR) para el suministro de los tornillos. Un agradecimiento particular va a dr. B. Schaefer de Geistlich. También estamos agradecidos a Eliane Dubois y Claire Herrmann por su excelente procesamiento histológico y sus valiosos consejos. Por último, reconocemos calurosamente a Xavier Belin, Sylvie Roulet y a todo el equipo de Pr Walid Habre, "cirugía experimental Dpt", por su notable asistencia técnica.

De conformidad con los requisitos legales suizos, el protocolo fue aprobado por un comité académico y supervisado por las agencias veterinarias cantonales y federales (autorizaciones no GE/165/16 y GE/100/18).
1. Dispositivos y animales específicos
<ol><li>
Cilindros
	<ol>
<li>Cilindros de máquina con pestañas estabilizadoras laterales de PEEK para tener un diámetro interior de 5 mm, diámetro exterior de 8 mm y una altura de 5 mm (Figura1...

El modelo descrito en este documento es simple y debe desarrollarse con bastante facilidad siempre y cuando se sigan todos los pasos y el equipo sea adecuado. Como el protocolo descrito es un método quirúrgico, todos los pasos parecen críticos y deben seguirse correctamente. Es fundamental ser entrenado para experimentos con animales, especialmente en el manejo de conejos y la anestesia. No dude en pedir ayuda anestesista y veterinaria profesional. Es fundamental insistir en el monitoreo visual diario de los animales ...

El modelo calvarial de aumento óseo fue desarrollado en los años 90 con el objetivo de optimizar el concepto de regeneración ósea guiada (GBR) en el dominio quirúrgico oral y craneofacial. El principio básico de este modelo es cultivar nuevo tejido óseo verticalmente en la parte superior de la parte cortical del cráneo. Para ello, un reactor (por ejemplo, titanio -dome, -cilindro o -jaula) se fija en el cráneo para proteger la regeneración ósea llevada a cabo por un injerto (por ejemplo, hidrogel, sustituto óseo, etc.). Con la ayuda de este modelo, jaulas de titanio o cerámica1,2,3,4,5,6, membranas GBR7,8,9 ,10, factores osteogénicos11,12,13,14,15,16,17, hueso nuevo suplentes12,16,17,18,19,20,21,22,23 , 24 , 25 , 26 , 27 , 28 , 29 o el mecanismo de neovascularización durante el proceso de regeneración ósea30 se evaluaron.
Desde un punto de vista traslacional, el modelo calvarial representa un defecto de una pared que se puede comparar con un defecto de clase IV en la mandíbula31. El objetivo es cultivar hueso nuevo por encima de una zona cortical, sin ningún apoyo lateral de las paredes óseas endógenas. Por lo tanto, el modelo es extremadamente estricto y evalúa el potencial real de la osteoconducción vertical sobre la parte cortical del hueso. Si el modelo descrito en el presente documento se dedica principalmente a la evaluación de la osteoconducción en sustitutos óseos, también se puede evaluar la osteogénesis y/o la osteoinducción, así como la vasculogénesis1,2,3, 4,5,6,7,8,9,10,11,12,13 ,14,15,16,17,18,19,20,21,22 ,23,24,25,26,27,28,29,30.
Esencialmente por razones éticas, prácticas y económicas, el modelo calvarial fue desarrollado en el conejo en el que el metabolismo óseo y la estructura son bastante relevantes en comparación conel humano 32. De las 30 referencias citadas anteriormente, el 80% utilizó el conejo calvarial modelo1,2,3,4,5,6,7,8 ,9,10,11,12,13,14,15,17,22, 23,26,27,28,29,30,33, demostrando así la relevancia de este modelo animal. En 2008, el grupo Busenlechner transfirió el modelo calvarial al cerdo, para permitir la comparación de ocho sustitutos óseos simultáneamente20 (en comparación con dos sustitutos óseos con el conejo). Por otro lado, nuestro grupo transfirió el modelo calvarial de conejo a las ovejas. En resumen, las cúpulas de titanio se colocaron en cráneos de oveja para caracterizar la osteoconducción de un nuevo sustituto óseo impreso en 3D. Estos estudios nos permitieron desarrollar y dominar el modelo calvarial y su análisis16,21.
Los tres últimos estudios citaron16,20,21, junto con varias otras investigaciones12,17,18,19,22, 23,24,26,27,28,29, confirmó el gran potencial del modelo calvarial como cribado y caracterización Modelo. Sin embargo, a pesar de que los resultados obtenidos fueron bastante satisfactorios, también señalaron algunas limitaciones: (1) El uso de cúpulas de titanio, que impidieron la difusión de rayos X y a su vez el uso vivo de micro-CT. Estos no pudieron ser eliminados antes del procesamiento histológico, obligando a los investigadores a incrustar las muestras en resina de poli(metilmetacrilato) (PMMA). Por lo tanto, los análisis resultantes se limitaron en gran medida a la topografía. (2) Altos costos financieros, especialmente debido al costo de los animales, y los costos relacionados con la logística, el mantenimiento y la cirugía de los animales. (3) Dificultades para obtener aprobaciones éticas para animales grandes.
26 mejoró en gran medida el modelo del conejo. Las cúpulas de titanio fueron reemplazadas por cilindros closables que podían llenarse con un volumen constante de material. Cuatro de estos cilindros fueron colocados en cráneos de conejo. Al finalizar, los cilindros podían retirarse para que las biopsias estuvieran libres de metales, introduciendo mucha más flexibilidad en cuanto al procesamiento de muestras. El modelo calvarial de conejo se volvió atractivo para pruebas simultáneas con menores costos, fácil manejo de animales y facilitación del procesamiento de muestras. Aprovechando estos desarrollos recientes, hemos mejorado aún más el modelo reemplazando el titanio por PEEK para producir cilindros, permitiendo así la difusión de rayos X y el uso de microtomografía en animales vivos.
En este artículo, describiremos los procesos de anestesia y cirugía y mostraremos ejemplos de salidas que se pueden obtener utilizando este protocolo, es decir, histología (inmuno), histomorfometría, microtomografía en vivo y ex vivo para evaluar los mecanismos del hueso regeneración y cuantificar la nueva síntesis ósea apoyada por materiales sustitutivos óseos.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Drugs</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrofloxacine Baytril 10%</td>
			<td>Bayer</td>
			<td></td>
			<td>Antibiotic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fentanyl</td>
			<td>Bischel</td>
			<td></td>
			<td>For analgesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketalar 50mg/ml</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td></td>
			<td>Ketamine for anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidohex</td>
			<td>Bichsel</td>
			<td></td>
			<td>Lubricating gel for the eyes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Opsite</td>
			<td>Smith and Nephew</td>
			<td>66004978</td>
			<td>Sprayable dressing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidone iodine 10%, Betadine</td>
			<td>Mundipharma</td>
			<td></td>
			<td>anti-infective agent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propofol 2%</td>
			<td>Braun</td>
			<td>3538710</td>
			<td>For anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rapidocain 2%</td>
			<td>sintetica</td>
			<td></td>
			<td>Local anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ringer-acetate</td>
			<td>Fresenius Kabi</td>
			<td></td>
			<td>Volume compensation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun 2%</td>
			<td>Bayer</td>
			<td></td>
			<td>Xylazin for anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sevoflurane 5%</td>
			<td>Abbvie</td>
			<td></td>
			<td>For anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile saline</td>
			<td>Sintetica</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temgesic</td>
			<td>Reckitt Benckiser</td>
			<td></td>
			<td>Buprenorphine hydrochloride, analgesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thiopental Inresa</td>
			<td>Ospediala</td>
			<td></td>
			<td>For anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylocaine 10% spray</td>
			<td>Astra Zeneca</td>
			<td></td>
			<td>For intubation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fresenius Vial pilot C</td>
			<td>Imexmed</td>
			<td></td>
			<td>Infusion pump</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heated pad</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suction dominant 50</td>
			<td>Medela</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suction tubing Optimus</td>
			<td>Promedical</td>
			<td>80342.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical motor</td>
			<td>Schick dental</td>
			<td>Qube</td>
			<td>Drilling of intramedullary holes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ventilation</td>
			<td>Maquet Servo1</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Material</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cylinders and caps</td>
			<td>Boutyplast</td>
			<td>Customized</td>
			<td>composition: PEEK (poly ether ether ketone)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Manual self-retaining shaft</td>
			<td>GlobalD</td>
			<td>ACT1K</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mobile handle for self-retaining shaft</td>
			<td>GlobalD</td>
			<td>MTM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Self- drilling screws</td>
			<td>GlobalD</td>
			<td>VA1.2KL4</td>
			<td>cross-drive screws composed by Titanium grade5, ISO 5832-3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical tray</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Endotracheal tube Shiley diameter 2,5mm</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>86233</td>
			<td>For intubation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Endotracheal tube Shiley diameter 4,9mm</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>107-35G</td>
			<td>For intubation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethicon prolene 4-0</td>
			<td>Ehticon</td>
			<td>8581H</td>
			<td>Non-resorbable suture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Marcel Blanc</td>
			<td>BD027R</td>
			<td>145 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intubation catheter</td>
			<td>Cook medical</td>
			<td></td>
			<td>Guide for intubation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needlle holder</td>
			<td>Marcel Blanc</td>
			<td>BM008R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needles BD Microlance3</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>300300/304622</td>
			<td>26G; 18G</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Periosteal</td>
			<td>HU-Friedy</td>
			<td>P9X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Round surgical burs</td>
			<td>Patterson</td>
			<td>78000</td>
			<td>0.8 mm in diameter, Drilling of intramedullary holes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td>Swann-Morton</td>
			<td></td>
			<td>n&#176;10 and n&#176;15</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td>Marcel Blanc</td>
			<td>00657</td>
			<td>180 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringes Omnifix</td>
			<td>Braun</td>
			<td>4616057V</td>
			<td>5ml, 10ml and 50ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Venflon G22</td>
			<td>Braun</td>
			<td>42690985-01</td>
			<td>Vasofix safety for the ear iv line</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

calvarial model of bone augmentation in rabbit for assessment of bone growth and neovascularization in bone substitution materials

El principio básico del modelo calvarial de conejo es cultivar nuevo tejido óseo verticalmente en la parte superior de la parte cortical del cráneo. Este modelo permite la evaluación de materiales de sustitución ósea para la regeneración ósea oral y craneofacial en términos de crecimiento óseo y apoyo de neovascularización. Una vez que los animales son anestesiados y ventilados (intubación endotraqueal), cuatro cilindros de cetona de éter de poliéter (PEEK) se atornillan sobre el cráneo, a ambos lados de la mediana y coronal suturas. Se perforan cinco agujeros intramedulares dentro del área ósea delimitada por cada cilindro, lo que permite la afluencia de células de médula ósea. Las muestras de material se colocan en los cilindros que luego se cierran. Finalmente, se sutura el sitio quirúrgico, y los animales se despiertan. El crecimiento óseo puede evaluarse en animales vivos mediante microtomografía. Una vez que los animales son eutanasiados, el crecimiento óseo y la neovascularización pueden evaluarse mediante microtomografía, inmunohistología e inmunofluorescencia. Como la evaluación de un material requiere la máxima estandarización y calibración, el modelo calvarial parece ideal. El acceso es muy fácil, la calibración y la estandarización se facilitan mediante el uso de cilindros definidos y se pueden evaluar cuatro muestras simultáneamente. Además, se puede utilizar una tomografía viva y, en última instancia, se puede prever una gran disminución de animales a eutanasiar.

El modelo descrito en este documento está dedicado a la evaluación de la osteoconducción en sustitutos óseos. También se puede evaluar la osteogénesis y la osteoinducción de los sustitutos óseos (pre-)celularizados o cargados con moléculas bioactivas, así como la vasculogénesis1,2,3,4, 5 , <sup class="xref...

Watch this Scientific Journal Video about Calvarial Model of Bone Augmentation in Rabbit for Assessment of Bone Growth and Neovascularization in Bone Substitution Materials at JoVE.com

Calvarial Model of Bone Augmentation in Rabbit for Assessment of Bone Growth and Neovascularization in Bone Substitution Materials

Aquí presentamos un protocolo quirúrgico en conejos con el objetivo de evaluar materiales de sustitución ósea en términos de capacidades de regeneración ósea. Mediante el uso de cilindros PEEK fijados en cráneos de conejo, osteoconducción, osteoinducción, osteogénesis y vasculogénesis inducidas por los materiales pueden evaluarse ya sea en animales vivos o eutanasiados.

Modelo Calvarial de Aumento Óseo en Conejo para Evaluación del Crecimiento Óseo y Neovascularización en Materiales de Sustitución Ósea

The basic principle of the rabbit calvarial model is to grow new bone tissue vertically on top of the cortical part of the skull. This model allows ...

Aquí presentamos un protocolo quirúrgico para conejos con el objetivo de evaluar los materiales de sustitución ósea en términos de capacidades de regeneración ósea. El principio básico de este modelo calvarial de conejo es crecer nuevo tejido óseo verticalmente en la parte superior de la parte cortical del cráneo. Este modelo permite evaluar los materiales de sustitución ósea para la regeneración ósea oral y craneofacial en términos de soporte de crecimiento óseo y soporte de neovascularización.El modelo es muy significativo para evaluar la regeneración ósea, ya que mide el crecimiento ectópico del nuevo tejido óseo por encima del hueso maduro. En comparación con los modelos tradicionales, en los que el hueso nuevo se regenera para rellenar defectos que se creó artificialmente para finalmente volver a su nivel inicial. Mediante el uso de cilindros grandes fijados en cráneos de conejo, osteoconducción, osteoinducción, osteogénesis y vasculargénesis inducida por los materiales pueden evaluarse en animales vivos o sacrificados.Demostrando el procedimiento estará Laurin Marger, una investigadora asociada de nuestro laboratorio, y yo. Después de sedar a los animales, coloque una cánula intravenosa en la vena marginal del oído y manténgala cerrada hasta que se complete la intubación. Coloque el conejo en posición propensa y mantenga su cabeza en extensión vertical.Anesthetizar la tráquea localmente rociando 10%lidocaína. Deslice un tubo endotraqueal de pequeño diámetro en la tráquea del conejo hasta que se pueda oír el flujo de aire en el tubo. Esto abrirá la laringe y facilitará la inserción del tubo definitivo.A continuación, inserte una guía en el tubo para fijar la posición del tubo en la tráquea. Retire el tubo de diámetro pequeño y deslice el tubo endotraqueal definitivo en la guía. Retire la guía e infle el globo al final del tubo endotraqueal para sellar y bloquear el dispositivo en la tráquea.Fentanilo continuamente profusa para inducir analgesia. De dos a cuatro miligramos por kilogramo de propofol para inducir la anestesia y cuatro mililitros por kilogramo por hora de acetato de timbres para mantener las condiciones isovolumétricas. Ventilar inmediatamente al animal con 3%sevoflurano en oxígeno puro.En primer lugar, coloque el conejo en una almohadilla calentada establecida en 39 grados Celsius en la mesa de cirugía, y coloque la sonda de temperatura rectal. Afeita el cuero cabelludo. Frota la piel con 10% de yodo de provirona para desinfectar el sitio.Luego, cubra al conejo con una cortina quirúrgica estéril y corte un área de acceso del cráneo. Desinfectar el sitio quirúrgico con 10% de yodo de provirona una segunda vez. Para empezar, anestesiar localmente con una inyección subcutánea de lidocaína en el cráneo.Utilice el bisturí para incitar a través de la piel a lo largo de la línea sagital calvarial desde las órbitas hasta la protuberancia occipital externa, asegurándose de que el periosteum esté inciso. Utilice un elevador periosteal para elevar suavemente el periosteo a ambos lados de la incisión. Enjuague el sitio con solución salina estéril.Primero, localice los medios y las suturas coronales en el cráneo. Tenga en cuenta que estas líneas anatómicas forman una cruz. Los cilindros se colocarán en cada uno de los cuadrantes definidos por la cruz, asegurando que el borde del cilindro no esté sobre la sutura.Coloque el primer cilindro en el cuadrante superior izquierdo colocando el dispositivo lo más plano posible. Fije la posición del cilindro con una fuerte presión de la mano y atornille un micro tornillo hasta que se sienta la resistencia. Asegúrese de que el cabezal de tornillo esté al ras con la pestaña del cilindro.Fije la otra pestaña del cilindro de la misma manera para fijar el cilindro firmemente en el cráneo. Asegúrese de que el cilindro esté fijado herméticamente al hueso. A continuación, repita todo este procedimiento para fijar un cilindro en cada uno de los otros tres cuadrantes.Para comenzar, taladre un agujero intermedular bajo riego salino con una rebaba redonda en el hueso en el centro del área circunscrita por el cilindro. Asegúrese de que aparezca sangrado. A continuación, taladre dos orificios intermedulares más a lo largo del eje pasando a través de los dos tornillos de tabulación en los bordes interiores del cilindro.A lo largo del hacha perpendicular, taladre dos orificios intermedulares más en los bordes interiores del cilindro. Repita este proceso de perforación para los otros tres cilindros. A continuación, llene el primer cilindro hasta el borde con la muestra de material.Cierre el cilindro ajustando la tapa. Repita este proceso de llenado para los otros tres cilindros. Cierre la piel por encima de los cilindros con una sutura intermitente no reabsorbible y aplique un apósito pulverizable sobre la herida.Después de esto, detener el suministro de analgesia y anestesia y comprobar la recuperación de la respiración autónoma. Una vez que el animal haya recuperado la respiración autónoma, detenga la ventilación. Mantener al animal bajo oxígeno puro antes de despertar completamente.Inyectar clorhidrato de buprenophine por vía subcutánea. Repita la inyección cada seis horas durante tres días como analgesia postquirúrgica. Deje que el animal despierte completamente antes de transferirlo a su vivienda habitual con agua y alimentación completa.El modelo descrito en este vídeo está dedicado a la evaluación de la osteoconducción, osteoinducción, osteogénesis y neovascularización en sustitutos óseos. Una vez completada la cirugía, el crecimiento óseo puede ser monitoreado en diferentes puntos de tiempo mediante el uso de tomografía ósea en animales vivos. El análisis adicional requiere que los animales sean sacrificados.Después de la eutanasia, las muestras se seccionan y los cilindros se retiran cuidadosamente. Las biopsias se fijan con una solución de 4%formaldehído en PBS. Después de esto, la microtomografía se puede utilizar para evaluar el crecimiento óseo.Las muestras también se pueden procesar para manchas histológicas. El análisis histomorfométrico y las tinciones específicas son posibles de completar el análisis más específicamente. Como este protocolo es un método quirúrgico, todos los pasos son críticos y deben seguirse correctamente.Es importante ser entrenado para experimentos con animales, especialmente en el manejo de conejos y anestesia. Aparte de los métodos descritos, las células se pueden analizar más específicamente mediante el uso de citometría de flujo. La evolución del material, la maduración del tejido óseo y la mecánica también se pueden evaluar mediante el uso de nano sangría, por ejemplo.Con la ayuda de este modelo, se realizaron muchas evaluaciones. Como por ejemplo, para jaulas de titanio o cerámica, membranas GBM, factores osteogénicos, sustituciones neonatales o el mecanismo de neovascularización durante el proceso de regeneración ósea.

Research

Education

JoVE Core

JoVE Journal

Anatomy and Physiology

Bioengineering

Unit 1

Bone Tissue and the Skeletal System

SCIENTISTS IN ACTION

Use of Human Perivascular Stem Cells for Bone Regeneration

El uso de las células estaminales perivasculares para la regeneración ósea

Human perivascular stem cells (PSCs) can be isolated in sufficient numbers from multiple tissues for purposes of skeletal tissue engineering1-3. PSCs are ...

Investigación

Bioingeniería

In situ Compressive Loading and Correlative Noninvasive Imaging of the Bone-periodontal Ligament-tooth Fibrous Joint

In situ Compressive Loading and Correlative Noninvasive Imaging of the Bone-periodontal Ligament-tooth Fibrous Joint

In situ carga de compresión y de imágenes no invasiva correlativa del hueso-ligamento periodontal de dientes fibroso Conjunta

This study demonstrates a novel biomechanics testing protocol. The advantage of this protocol includes the use of an in situ loading device coupled to a ...

An Improved Mechanical Testing Method to Assess Bone-implant Anchorage

Una mejorada mecánica Método de ensayo para evaluar hueso implante Anchorage

Recent advances in material science have led to a substantial increase in the topographical complexity of implant surfaces, both on a micro- and a ...

Visualizing Angiogenesis by Multiphoton Microscopy In Vivo in Genetically Modified 3D-PLGA/nHAp Scaffold for Calvarial Critical Bone Defect Repair

Visualizing Angiogenesis by Multiphoton Microscopy In Vivo in Genetically Modified 3D-PLGA/nHAp Scaffold for Calvarial Critical Bone Defect Repair

Visualización de angiogénesis por microscopía multifotón En Vivo en modificados genéticamente 3D-PLGA/nHAp andamio para Calvarial críticos de la reparación del defecto óseo

The reconstruction of critically sized bone defects remains a serious clinical problem because of poor angiogenesis within tissue-engineered scaffolds ...

An In Vitro Organ Culture Model of the Murine Intervertebral Disc

An In Vitro Organ Culture Model of the Murine Intervertebral Disc

Un<em&gt; In Vitro</em&gt; Órgano Cultura Modelo Murino del disco intervertebral

Intervertebral disc (IVD) degeneration is a significant contributor to low back pain. The IVD is a fibrocartilaginous joint that serves to transmit and ...

Fragility Assessment of Bovine Cortical Bone Using Scratch Tests

Evaluación de la fragilidad del hueso Cortical bovino utilizando pruebas de Scratch

Bone is a complex hierarchical material with five distinct levels of organization. Factors like aging and diseases like osteoporosis increase the ...

Subject-specific Musculoskeletal Model for Studying Bone Strain During Dynamic Motion

Tema-específicas musculoesquelética modelo para estudiar la deformación del hueso durante el movimiento dinámico

Bone stress injuries are common in sports and military trainings. Repetitive large ground impact forces during training could be the cause. It is ...

Biological Compatibility Profile on Biomaterials for Bone Regeneration

Perfil de compatibilidad biológica de Biomateriales para regeneración ósea

Large non-union bone fractures are a significant challenge in orthopedic surgery. Although auto- and allogeneic bone grafts are excellent for healing such ...

Microfluidic Model to Mimic Initial Event of Neovascularization

Modelo microfluídico para imitar el evento inicial de neovascularización

Neovascularization is usually initialized from an existing normal vasculature and the biomechanical microenvironment of endothelial cells (ECs) in the ...

Measuring 3D In-vivo Shoulder Kinematics using Biplanar Videoradiography

Medición de la cinemática del hombro 3D in vivo mediante videorradiografía biplanar

The shoulder is one of the human body's most complex joint systems, with motion occurring through the coordinated actions of four individual joints, ...