Name: using human induced pluripotent stem cells for the generation of tumor antigen-specific t cells
Uploaded: 2019-10-24T13:00:00
Duration: 10 min 57 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Using Human Induced Pluripotent Stem Cells for the Generation of Tumor Antigen-specific T Cells at JoVE.com

Alan B. Hoofring ve Erina H.'ye teşekkür ederiz. O grafik yardım için. Bu araştırma, Ulusal Kanser Enstitüsü (ZIA BC010763) Intramural Araştırma Programı ve Hücre Tabanlı Kanser İmmünoterapisi için Intramural NCI Kanser Moonshot Girişimi tarafından desteklenmiştir.

1. Fare Embriyonik Fibroblastlar (MEF) üzerinde Culturing İnsan iPSCs (hiPSCs)
NOT: HiPSC'leri kültüre almak için alternatif yöntemler de kullanılabilir, ancak bunlarla sınırlı olmamak üzere: jelatin, jelatinimsi protein karışımı, rekombinant laminin 511 veya hiPSC genişlemesinde kullanılan diğer ekstrasellüler matriks ile önceden kaplanmış 6 kuyuluk plakaüzerine tohumlama ve insan pluripotent kök hücre kültürü için özel olarak formüle edilmiş tanımlanmış medya kullanılarak kültürlenmiş.
<ol><li>
MeF'i üçme
	<ol>
<li>Kat 10 cm hücre kültürü Petri çanak 4 mL ile 0.1% jelatin ve kuluçka için 30 dakika 37 °C.</li>
		<li>4 x 106 ışınlanmış mef şişesini hızlıca 37 °C MEF media 'nın 10 mL'sine (DMEM + %10 FBS + 1x penisilin-streptomisin + 1x L-glutamin takviyesi) eritin. Santrifüj 300 x g için 5 dk 4 °C'de. Supernatant aspire ve MEF medya 9 mL hücre pelet resuspend.</li>
		<li>Jelatin kaplı tabağı kuvözden çıkarın. Aspire jelatin ve MEF medya 7 mL ekleyin. Jelatin kaplı tabağa 3 mL MEF süspansiyon (adım 1.1.2'den) geçirgen kaplamalı tabağa. Çanak üzerinde MEF eşit dağılımını sağlamak için çanak yan yana ve önden arkaya kaya. 37 °C'de 8-36 saat kuluçkaya yatırın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
MEF'de hiPSC'yi paslama NOT: Veriler, daha önce18olarak açıklandığı gibi, HLA-A*02:01 bağlamında mart-1 peptidini özellikle tanıyan uzun vadeli kültürlü melanom TIL'den elde edilen MART-1 iPSC kullanılarak oluşturulmuştur.<ol>
<li>Koloniler çapı 0,8 - 1,2 mm arasında olduğunda geçit hiPSCs. Geçişten önce, stereo-mikroskoptaki hiPSC kolonilerini kontrol edin ve 200 μL'lik bir ucun plastik kenarını kullanarak kültürden farklılaşma alanlarını kaldırın.</li>
		<li>Aspire harcanan ortam ve 10 μM ROCK inhibitörü ile desteklenen 10 mL hiPSC ortam (insan ES kültür ortamı [Malzeme Tablosu] + 10 ng/mL insan temel fibroblast büyüme faktörü [hbFGF]) ekleyin.</li>
		<li>Hücre kültürü çanağını bir elinizde tutun ve tek kullanımlık bir hücre geçiş aracını tek bir yönde tüm çanak boyunca yuvarlayın. Tüm silindir bıçağın kültür kabına dokunur ve yuvarlanma hareketi sırasında tek tip basıncı koruyacak kadar yeterli basıncı uygulayın.</li>
		<li>Kültür çanasını 90° döndürün ve 1.2.3 adımını tekrarlayın. Kontrolde görünmesi gereken kolonilerin düzgün kesilmesini görsel olarak doğrulamak için mikroskoptaki plakayı görüntüleyin. 200 μL'lik pipet kullanarak kolonileri nazik mekanik yıkama ile ayırın. NOT: Mekanik yıkama ile kesilmiş kolonilerin ayrılması rulo ile koloniler kesildikten hemen sonra yapılmalıdır, çünkü 3 dakika sonra kesilmiş koloniler çanak yeniden takmaya başlayacak, ve yıkama ile homojen büyüklükte koloniler ayırmak zor olacak.</li>
		<li>10 mL taze hiPSC ortam 10 μM ROCK inhibitörü ile desteklenen MEF (kaplama 8 - 36 saat önce) yeni bir 10 cm çanak üzerine kesilmiş koloniler 600 kümeleri aktarın. 37 °C'de kuluçkaya yatırın. NOT: 600 kümeler yaklaşık 1.0 x 106 MART-1 iPSC temsil eder ve 35. Ancak, beklenen sayılar başlangıç hücre hattı ve kültür koşullarının gücüne bağlı olarak değişir.</li>
		<li>Ertesi gün, aspire harcanan medya ve taze hiPSC medya 10 mL ekleyin. HiPSC büyüme hızına bağlı olarak hiPSC ortamını her 1-2 günde bir değiştirin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. HIPSC'lerle Birlikte Kültür için OP9/DLL1 Hücrelerinin Hazırlanması
<ol><li>OP9 media'da Kültür OP9/DLL1 hücreleri [α-minimum esansiyel orta (α-MEM) + %20 fetal sığır serumu (FBS) + 1x penisilin-streptomisin] 37 °C'de. OP9/DLL1 hücreleri biraraya geldiğinde, aspire ortamı ve 1x magnezyum, kalsiyum ve fenol kırmızı içermeyen fosfat tamponlu salin (PBS) 5 mL ile bir kez yıkayın.</li>
	<li>PBS aspire edin ve %0,05 Tripsin-EDTA 2 mL ekleyin.  37 °C'de 5 dk kuluçka. Daha sonra, 4 mL OP9 ortam ekleyin ve tek hücreli süspansiyon yapmak için pipetleme yaparak hücre tabakasını mekanik olarak ayrıştırın.</li>
	<li>Hücre kümelenmelerini önlemek için hücre süspansiyonunun 100 μm'lik bir süzgeçten 50 mL konik bir tüpe aktarılması. Santrifüj 300 x g için 5 dk 4 °C'de. OP9 medyasının 12 mL'sinde süpernatantı aspire edin ve yeniden askıya alın.</li>
	<li>Altı yeni 10 cm hücre kültürü Petri yemeklerinin her birine 8 mL OP9 ortam ekleyin. Her yeni 10 cm çanak üzerine adım 2.3 OP9/DLL1 hücre süspansiyon Plaka 2 mL. Çanak üzerinde OP9/DLL1 eşit dağılımını sağlamak için çanak yan yana sonra önden arkaya kaya.</li>
	<li>37 °C'de kuluçkaya yatırın. Hücreler birleştiğinde her 2 -3 günde bir geçişi tekrarlayın. NOT: Op9/DLL1 hücrelerinin yeterli dondurulmuş stok yapmak ve her 4-6 haftada yeni bir stok çözülmek önemlidir.</li>
</ol>3. HiPSC'lerin CD8αβ+ Tek Pozitif (SP) T Hücrelerine Vitro Farklılaşması
<ol><li>HiPSC'lerle ortak kültürden bir hafta önce jelatinize OP9/DLL1 yemekleri hazırlayın. %0,1 jelatin çözeltisi hazırlamak için 500 mL PBS'ye oda sıcaklığında 5 mL (RT) doku sınıfı stok jelatin çözeltisi ekleyin.
	<ol>
<li>Coat 3 yeni 10 cm hücre kültürü Petri yemekleri% 0.1 jelatin çanak başına 4 mL ekleyerek.  37 °C'de kuluçka 30 dk.</li>
		<li>Jelatin aspire edin ve her çanağa 8 mL OP9 ortam ekleyin. Op9/DLL1 passage bir confluent çanak (yukarıdaki bölüm 2'de yapıldığı gibi) üç jelatin önceden kaplanmış yemekler.</li>
	</ol></li>
	<li>4 gün sonra, her bir çanak başına toplam 20 mL ortam için jelatin üzerine op9/DLL1'in her 10 cm'lik yemeğine 10 mL OP9 ortam ekleyin.</li>
	<li>7 - 8 gün sonra, OP9/DLL1 uyumlu yemekler (farklılaşma gün 0) üzerinde hiPSC co-kültür başlar.
	<ol>
<li>Aspire MEF üzerinde hiPSCs confluent 10 cm çanak medya harcanan. 10 mL OP9 ortam ekleyin. 1.2.3 ve 1.2.4 adımlarında yapıldığı gibi tek kullanımlık hücre geçiş aracı kullanarak hiPSC kolonilerini kesip ayırın.</li>
		<li>200 μL'lik pipet kullanarak 10 mL taze OP9 media ile 10 cm önceden jelatinize edilmiş OP9/DLL1 çanağı (adım 3.1) üzerine 350 - 600 küme kesilmiş kolonileri aktarın. Kolonilerin eşit dağılımını sağlamak için kültür çanağı yan yana sonra önden arkaya rock. NOT: Alternatif olarak, önceden oluşturulmuş hiPSC embriyoid cisimler (EBs) veya küçük küme süspansiyon kullanılabilir.  Ancak tek tip boyutta hiPSC kümeleri üretmek için tek kullanımlık hücre geçiş aracı veya EB oluşum sistemi kullanımı tercih edilir.</li>
	</ol></li>
	<li>1. günde, aspire medya harcanan ve taze OP9 medya 20 mL ile değiştirin. 1 gün boyunca OP9/DLL1'de birlikte kültürlenmiş hiPSC kümeleri küçük yuvarlak tek katmanlı koloniler olarak görünür (Şekil 1).</li>
	<li>5. günde, harcanan 10 mL'lik ortamı aspire edin ve 10 mL taze OP9 ortam ekleyin. hiPSC kolonileri çok katmanlı karanlık merkezi ile karakterize ilkel mezoderm, farklılaşmaya başlayacaktır.</li>
	<li>9. günde, harcanan 10 mL'lik ortamı aspire edin ve 10 mL taze OP9 ortam ekleyin. Bu noktada, çok katmanlı merkez yapıları kubbe benzeri şekillere dönüşecek ve çevresel ağ benzeri bir alan belirginleşmeye başlayacaktır.</li>
	<li>13. günde hematopoetik ata hücreleri (HPC) hasat edilir (Şekil 1). 13. günde hiPSC kaynaklı yapılar, daha önce insan embriyonik kök hücre kaynaklı hematopoetik ataları içine bildirilen hematopoetik bölgeleri (HZs) temsilcisi, kubbe benzeri alanlardan oluşan bir ağ ile çevrili koyu bir merkezi organoid ile karakterizedir. 21. yıl. NOT: Kubbe benzeri yapıların varlığı, karanlık merkezlerin yokluğunda bile başarılı bir sürecin olduğunu gösterir. HPC'lerin üretilememesi, OP9/DLL1 kalitesinin düşük olması, FBS lotunun kalitesi, OP9/DLL1 üzerine tohumlanmış iPSC kümelerinin biraraya gelmesi (350-600 kümeler en uygun) ve/veya hematopoetik öncülleri üretmek için iPSC hatlarının potensinalindeki farklılıklardan kaynaklanıyor olabilir.<ol>
<li>Aspire medya harcanan ve 1x 1x 1x 1x fenol kırmızı içermeyen Hanks 'dengeli tuz çözeltisi kalsiyum ve magnezyum (HBSS) ile modifiye.</li>
		<li>HBSS'yi aspire edin ve 10 mL HBSS'ye 250°L 5000 Adet/mL kollajenaz IV ekleyin. 37 °C'de 45 dk. Aspire HBSS kollajenaz IV ile inkübatın ve 5 mL PBS ile bir kez yıkayın.</li>
		<li>PBS aspire edin ve %0,25 Tripsin-EDTA 5 mL ekleyin. 37 °C'de 20 dk kuluçkaya yatırın. Daha sonra, 4 mL OP9 ortam ekleyin ve tek hücreli süspansiyon yapmak için pipetleme ile hücre tabakasını ayırın.</li>
		<li>Hücre süspansiyonuna 100 μm'lik bir süzgeçten 50 mL konik bir tüpe aktarın.  Santrifüj 300 x g için 5 dk 4 °C'de. OP9 ortamının 10 mL'sinde süpernatant'ı aspire edin ve yeniden askıya alın.</li>
		<li>Yeni bir jelatinize 10 cm hücre kültürü Petri çanak üzerine plaka hücre süspansiyon (adımlar 3.1.1 ve 3.1.2 bakınız). 37 °C'de 45 dk kuluçkaya yatırın. Daha sonra, nazik pipetleme ile non-yapışık hücreleri toplamak.</li>
		<li>Toplanan hücre süspansiyonunun 100 μm'lik bir süzgeç aracılığıyla 50 mL konik bir tüpe aktarılması.  Santrifüj 300 x g için 5 dk 4 °C'de. 10 mL'lik farklılaşma ortamı [OP9 media 5 ng/mL insan kök hücre faktörü (hSCF), 5 ng/mL insan Flt3 ligand (hFLT3L) ve 5 ng/mL insan interlökin 7 (hIL-7)] ile aspire edin.</li>
		<li>Hücre süspansiyonuna yeni 10 cm OP9/DLL1 konfluent bir çanak üzerine plaka koyun.</li>
	</ol></li>
	<li>16. günde hücreleri geç.
	<ol>
<li>Mekanik olarak yapışmayan hücreleri nazik pipetleme ile ayırın ve 100 μm hücreli süzgeçten filtreleyin. Santrifüj 300 x g için 5 dk 4 °C'de. Supernatant aspire ve 10 mL farklılaştırma medyarematasyon.</li>
		<li>Hücre süspansiyonuna yeni 10 cm OP9/DLL1 konfluent bir çanak üzerine plaka koyun.</li>
	</ol></li>
	<li>Daha sonra her 5-7 günde bir 3.8 adımı tekrarlayarak yapışık olmayan hücreleri geçirmeye devam edin.</li>
	<li>35. günde, CD4+CD8+ çift pozitif (DP) popülasyonu zenginleştirir ve CD8αβ+ SP T hücreleri üretmek için teşvik edin (Şekil 2).
	<ol>
<li>Mekanik olarak yapışmayan hücreleri nazik pipetleme ile ayırın ve hücre kümelerini temizlemek için 100 μm'lik bir hücre süzgecinden geçirin. CD4+ hücre popülasyonu CD4 manyetik boncuk izolasyonu ile üreticinin protokolüne göre zenginleştirin. NOT: CD4 manyetik boncuklar kullanarak mantığı CD4 kaldırmaktır-CD8- DN hücreleri kültürden, bu uyarılma22sonra CD4+CD8+ DP hücrelerinin doğrudan öldürülmesine neden olduğu gösterilmiştir .</li>
		<li>Neubauer hemositometre ve Trypan mavi boya kullanarak canlı CD4 zenginleştirilmiş hücreleri sayın.  OP9 ortamda toplam konsantrasyonda 0,5 x 106 hücre/mL askıya alın. Aliquot 1 mL hücre süspansiyon (0.5 x 106 hücreleri) bir doku kültürü düz alt 24 iyi plaka confluent OP9/DLL1 her kuyuiçine.</li>
		<li>100 IU insan interlökin 2 (hIL-2), 5 ng/mL hIL-7, 500 ng/mL anti-insan CD3 antikor ve 2 μg/mL anti-insan CD28 antikor, sonra kültür 37 °C ekleyin.</li>
		<li>Stimülasyondan sonra 4 - 7.</li>
	</ol></li>
</ol>4. HiPSC Türetilmiş CD8αβ+ SP T Hücrelerinin Antijen Özgüllüğünün Ölçülmesi
NOT: Bu ekspertiz için kullanılacak ADC türü hiPSC türetilmiş T hücrelerinin MHC kısıtlamasına bağlıdır. Burada, T2 hücre hattı kullanılır, Hangi T ve B lenfoblastoid hücre hatlarının bir melez. T2 hücreleri HLA-A*02:0123ifade , HANGI MART1-iPSC türetilmiştir JKF6 hücreleri tarafından tanınan18. Bu T2 hücre hattı RPMI 1640 + %20 FBS + 1x penisilin-streptomisin olarak genişletilebilir ve hücreler 5 x 105 hücre/mL yoğunluğa ulaştığında geçiş yapılır.
<ol><li>Canlı HLA-A*02:01+ T-B hibrid lenfoblastoid T2 hücrelerini Neubauer hemositometre ve Trypan mavi boya kullanarak sayın. 37 °C'de 2 saat boyunca 1 μg/mL MART-1 peptid ile 24 kuyu doku kültür plakası içinde kuluçka APC'leri. NOT: Optimal peptit konsantrasyonu değişkendir, hücre hattı ve antijen özgüllüğü ne bağlı olarak.</li>
	<li>ADC'leri toplayın ve ekstra peptidleri çıkarmak için 10 mL PBS ile 2 kat yıkayın.</li>
	<li>100 IU IL-2 ve 5 ng/mL IL-7 ile OP9 ortamlarında 2 – 5 x 105 hücre/mL'de ADC'leri sayın ve askıya alın. Aliquot 100 μL hücre süspansiyonu (2-5 x 104 hücre) ultra düşük eki U alt 96 iyi plaka veya doğrudan önceden kaplanmış ELISpot plaka içine her kuyuiçine.</li>
	<li>HiPSC türetilmiş CD8αβ+ SP T hücrelerini (insan karşıtı CD3/CD28 antikor stimülasyonundan 1 hafta sonra) bir hücre ayırıcısı kullanarak sıralayın ve OP9 ortamlarında 1x 106 hücre/mL'de 100 IU IL-2 ve 5 ng/mL IL-7 ile askıya alın. Aliquot 100 μL hücre süspansiyonu (1 x 105 hücre) her bir kuyuya ait aparatlara ve kültüre 16 - 20 saat 37 °C'de.</li>
	<li>16 - 20 saat sonra, üreticiprotokolüne göre ELISpot tsay ile sitokin salgı profilini analiz edin(Şekil 4).</li>
</ol>

<ol>
	<li>Brauer, P. M., Singh, J., Xhiku, S., Zuniga-Pflucker, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=T+Cell+Genesis:+In+Vitro+Veritas+Est.">T Cell Genesis: In Vitro Veritas Est.</a> Trends in Immunology. 37 (12), 889-901 (2016).</li><li>Rosenberg, S. A., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adoptive+cell+transfer+as+personalized+immunotherapy+for+human+cancer.">Adoptive cell transfer as personalized immunotherapy for human cancer.</a> Science. 348 (6230), 62-68 (2015).</li><li>Gattinoni, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acquisition+of+full+effector+function+in+vitro+paradoxically+impairs+the+in+vivo+antitumor+efficacy+of+adoptively+transferred+CD8++T+cells.">Acquisition of full effector function in vitro paradoxically impairs the in vivo antitumor efficacy of adoptively transferred CD8+ T cells.</a> Journal of Clinical Investigation. 115 (6), 1616-1626 (2005).</li><li>Rosenberg, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Durable+complete+responses+in+heavily+pretreated+patients+with+metastatic+melanoma+using+T-cell+transfer+immunotherapy.">Durable complete responses in heavily pretreated patients with metastatic melanoma using T-cell transfer immunotherapy.</a> Clinical Cancer Research. 17 (13), 4550-4557 (2011).</li><li>Crompton, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lineage+relationship+of+CD8(+)+T+cell+subsets+is+revealed+by+progressive+changes+in+the+epigenetic+landscape.">Lineage relationship of CD8(+) T cell subsets is revealed by progressive changes in the epigenetic landscape.</a> Cellular and Molecular Immunology. 13 (4), 502-513 (2016).</li><li>Henning, A. N., Klebanoff, C. A., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silencing+stemness+in+T+cell+differentiation.">Silencing stemness in T cell differentiation.</a> Science. 359 (6372), 163-164 (2018).</li><li>Henning, A. N., Roychoudhuri, R., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epigenetic+control+of+CD8(+)+T+cell+differentiation.">Epigenetic control of CD8(+) T cell differentiation.</a> Nature Reviews Immunology. 18 (5), 340-356 (2018).</li><li>Vodnala, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=T+cell+stemness+and+dysfunction+in+tumors+are+triggered+by+a+common+mechanism.">T cell stemness and dysfunction in tumors are triggered by a common mechanism.</a> Science. 363 (6434), (2019).</li><li>Restifo, N. P., Gattinoni, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lineage+relationship+of+effector+and+memory+T+cells.">Lineage relationship of effector and memory T cells.</a> Current Opinion in Immunology. 25 (5), 556-563 (2013).</li><li>Tran, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+immunotherapy+based+on+mutation-specific+CD4++T+cells+in+a+patient+with+epithelial+cancer.">Cancer immunotherapy based on mutation-specific CD4+ T cells in a patient with epithelial cancer.</a> Science. 344 (6184), 641-645 (2014).</li><li>Gattinoni, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Wnt+signaling+arrests+effector+T+cell+differentiation+and+generates+CD8++memory+stem+cells.">Wnt signaling arrests effector T cell differentiation and generates CD8+ memory stem cells.</a> Nature Medicine. 15 (7), 808-813 (2009).</li><li>Gautam, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+transcription+factor+c-Myb+regulates+CD8(+)+T+cell+stemness+and+antitumor+immunity.">The transcription factor c-Myb regulates CD8(+) T cell stemness and antitumor immunity.</a> Nature Immunology. 20 (3), 337-349 (2019).</li><li>Klebanoff, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determinants+of+successful+CD8++T-cell+adoptive+immunotherapy+for+large+established+tumors+in+mice.">Determinants of successful CD8+ T-cell adoptive immunotherapy for large established tumors in mice.</a> Clinical Cancer Research. 17 (16), 5343-5352 (2011).</li><li>Klebanoff, C. A., Gattinoni, L., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sorting+through+subsets:+which+T-cell+populations+mediate+highly+effective+adoptive+immunotherapy.">Sorting through subsets: which T-cell populations mediate highly effective adoptive immunotherapy.</a> Journal of Immunotherapy. 35 (9), 651-660 (2012).</li><li>Crompton, J. G., Clever, D., Vizcardo, R., Rao, M., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reprogramming+antitumor+immunity.">Reprogramming antitumor immunity.</a> Trends in Immunology. 35 (4), 178-185 (2014).</li><li>Crompton, J. G., Rao, M., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Memoirs+of+a+reincarnated+T+cell.">Memoirs of a reincarnated T cell.</a> Cell Stem Cell. 12 (1), 6-8 (2013).</li><li>Kennedy, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=T+lymphocyte+potential+marks+the+emergence+of+definitive+hematopoietic+progenitors+in+human+pluripotent+stem+cell+differentiation+cultures.">T lymphocyte potential marks the emergence of definitive hematopoietic progenitors in human pluripotent stem cell differentiation cultures.</a> Cell Reports. 2 (6), 1722-1735 (2012).</li><li>Vizcardo, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regeneration+of+human+tumor+antigen-specific+T+cells+from+iPSCs+derived+from+mature+CD8(+)+T+cells.">Regeneration of human tumor antigen-specific T cells from iPSCs derived from mature CD8(+) T cells.</a> Cell Stem Cell. 12 (1), 31-36 (2013).</li><li>Nishimura, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+rejuvenated+antigen-specific+T+cells+by+reprogramming+to+pluripotency+and+redifferentiation.">Generation of rejuvenated antigen-specific T cells by reprogramming to pluripotency and redifferentiation.</a> Cell Stem Cell. 12 (1), 114-126 (2013).</li><li>Lo, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunologic+recognition+of+a+shared+p53+mutated+neoantigen+in+a+patient+with+metastatic+colorectal+cancer.">Immunologic recognition of a shared p53 mutated neoantigen in a patient with metastatic colorectal cancer.</a> Cancer Immunology Research. , (2019).</li><li>Timmermans, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+T+cells+from+human+embryonic+stem+cell-derived+hematopoietic+zones.">Generation of T cells from human embryonic stem cell-derived hematopoietic zones.</a> Journal of Immunology. 182 (11), 6879-6888 (2009).</li><li>Maeda, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regeneration+of+CD8alphabeta+T+Cells+from+T-cell-Derived+iPSC+Imparts+Potent+Tumor+Antigen-Specific+Cytotoxicity.">Regeneration of CD8alphabeta T Cells from T-cell-Derived iPSC Imparts Potent Tumor Antigen-Specific Cytotoxicity.</a> Cancer Research. 76 (23), 6839-6850 (2016).</li><li>Salter, R. D., Howell, D. N., Cresswell, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genes+regulating+HLA+class+I+antigen+expression+in+T-B+lymphoblast+hybrids.">Genes regulating HLA class I antigen expression in T-B lymphoblast hybrids.</a> Immunogenetics. 21 (3), 235-246 (1985).</li><li>Snauwaert, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+generation+of+mature,+naive+antigen-specific+CD8(+)+T+cells+with+a+single+T-cell+receptor+by+agonist+selection.">In vitro generation of mature, naive antigen-specific CD8(+) T cells with a single T-cell receptor by agonist selection.</a> Leukemia. 28 (4), 830-841 (2014).</li><li>Takahama, Y., Suzuki, H., Katz, K. S., Grusby, M. J., Singer, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Positive+selection+of+CD4++T+cells+by+TCR+ligation+without+aggregation+even+in+the+absence+of+MHC.">Positive selection of CD4+ T cells by TCR ligation without aggregation even in the absence of MHC.</a> Nature. 371 (6492), 67-70 (1994).</li><li>Seki, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+from+human+terminally+differentiated+circulating+T+cells.">Generation of induced pluripotent stem cells from human terminally differentiated circulating T cells.</a> Cell Stem Cell. 7 (1), 11-14 (2010).</li><li>Vodyanik, M. A., Slukvin, I. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hematoendothelial+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells.">Hematoendothelial differentiation of human embryonic stem cells.</a> Current Protocols in Cell Biology. , (2007).</li><li>Vizcardo, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+Tumor+Antigen-Specific+iPSC-Derived+Thymic+Emigrants+Using+a+3D+Thymic+Culture+System.">Generation of Tumor Antigen-Specific iPSC-Derived Thymic Emigrants Using a 3D Thymic Culture System.</a> Cell Reports. 22 (12), 3175-3190 (2018).</li><li>McNicol, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD8alpha/alpha+homodimers+fail+to+function+as+co-receptor+for+a+CD8-dependent+TCR.">CD8alpha/alpha homodimers fail to function as co-receptor for a CD8-dependent TCR.</a> European Journal of Immunology. 37 (6), 1634-1641 (2007).</li><li>Themeli, M., Riviere, I., Sadelain, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+cell+sources+for+T+cell+engineering+and+adoptive+immunotherapy.">New cell sources for T cell engineering and adoptive immunotherapy.</a> Cell Stem Cell. 16 (4), 357-366 (2015).</li><li>Minagawa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhancing+T+Cell+Receptor+Stability+in+Rejuvenated+iPSC-Derived+T+Cells+Improves+Their+Use+in+Cancer+Immunotherapy.">Enhancing T Cell Receptor Stability in Rejuvenated iPSC-Derived T Cells Improves Their Use in Cancer Immunotherapy.</a> Cell Stem Cell. 23 (6), 850-858 (2018).</li><li>Montel-Hagen, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Organoid-Induced+Differentiation+of+Conventional+T+Cells+from+Human+Pluripotent+Stem+Cells.">Organoid-Induced Differentiation of Conventional T Cells from Human Pluripotent Stem Cells.</a> Cell Stem Cell. 24 (3), 376-389 (2019).</li><li>Takada, K., Kondo, K., Takahama, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+Peptides+That+Promote+Positive+Selection+in+the+Thymus.">Generation of Peptides That Promote Positive Selection in the Thymus.</a> Journal of Immunology. 198 (6), 2215-2222 (2017).</li><li>Takada, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TCR+affinity+for+thymoproteasome-dependent+positively+selecting+peptides+conditions+antigen+responsiveness+in+CD8(+)+T+cells.">TCR affinity for thymoproteasome-dependent positively selecting peptides conditions antigen responsiveness in CD8(+) T cells.</a> Nature Immunology. 16 (10), 1069-1076 (2015).</li><li>Vizcardo, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Three-dimensional+Thymic+Culture+System+to+Generate+Murine+Induced+Pluripotent+Stem+Cell-derived+Tumor+Antigen-specific+Thymic+Emigrants.">A Three-dimensional Thymic Culture System to Generate Murine Induced Pluripotent Stem Cell-derived Tumor Antigen-specific Thymic Emigrants.</a> JoVE. , e58672 (2019).</li></ol>

Yazarların açıklamaları yok.

OP9 murine stromal hücrelerinin ortak kültürü, HSPC'lerden ve pluripotent kök hücrelerden in vitro lenfosit (yani NK, B ve T hücreleri) için iyi kurulmuş bir sistemdir. Çentik sinyalizasyon T soy taahhüdü ikna etmek için gerekli olan ve T hücreüretimiiçin karşılaştırılabilir etkinliği var Notch ligand DLL1 veya DLL4, ektopik ifade ile gerçekleştirilebilir 1 . Bu nedenle, OP9/DLL1 co-kültür sistemi in vitro T hücreleri üretmek için yaygın olarak kullanılan bir yöntem haline gelmiştir.  Ayrıca, bu yöntem kordon kanı, kemik iliği HSPCs ve ESCs de dahil olmak üzere insan hücrelerinin çeşitli türleri ve kaynakları ile kullanım için geçerlidir.  Ancak, bu kaynaklardan T hücrelerinin üretimi ya kaynak hücrelerin yetersiz alınması ya da T hücrelerinin verimsiz farklılaşması ile sınırlıdır1. Ayrıca, bu açık reperton kaynaklarından tek bir TCR rekombinasyonlu bir T hücre ürünü oluşturulamaz. Rejeneratif tıp teknikleri kullanarak, yani indüklenen pluripotent kök hücre (iPSC) teknolojisi, hücre tabanlı terapötik lerde kullanılmak üzere antijene özgü T hücrelerinin büyük sayılar üretmek mümkün olabilir15.
hiPSC'ler kendi kendini yenileme, sınırsız genişleme ve vücuttaki her türlü somatik hücreyi ayırt etme potansiyeline sahip pluripotent ESC'lere benzerler; ancak, klinik uygulamalar için embriyonik kökenli ürünlerin kullanımı çevreleyen etik kaygıları eksikliği. Ayrıca, hiPSCs kişiselleştirilmiş tıp için hücre ürünlerinin geliştirilmesine izin, herhangi bir somatik hücreden üretilebilir. Önceki raporlarda, hiPSCs insan T hücrelerinden tüm periferik mononükleer hücreler, CD3+ hücreleri veya izole sitotoksik T lenfositler (CTLs) bir kaynak olarak18,19,22kullanılarak üretilmiştir, 26- HiPSC'ler Bir T hücre kaynağından (T-iPSCs) oluşturulduğunda, orijinal TCR gen düzenlemesi kalıtsaldır. Bu nedenle, hasta T-iPSC türetilmiş T hücreleri bir hastanın farklı kanser antijenleri hedefleyerek kişiselleştirilmiş ACT tedavisi için bir model sağlayabilir.
T soy hücrelerine insan pluripotent kök hücrelerinin farklılaşması iki adıma ayrılır: hematopoetik ata hücrelerinin üretimi (HPCs)27 ve T soy hücrelerine daha fazla farklılaşma21. Her iki adım da OP9/DLL1 ortak kültür sistemi kullanılarak gerçekleştirilebilir. Daha da önemlisi, OP9/DLL1 besleyici hücrelerinin kalitesi T hücre farklılaşmasının başarısı için çok önemlidir. OP9/DLL1 hücreleri ölümsüzleştirilmiş homojen bir hücre hattı olmadığından, FBS kalitesi ve kültür koşulları hiPSC farklılaşmasını destekleme yeteneğini kaybetmeden genişlemelerini sürdürmek için çok önemlidir. Bu nedenle, hücre farklılaşmasını ve yaşlanmayı önlemek için hücreden hücreye sitoplazmik temas oluşmaya başladığında FBS ve geçiş in çok önceden değerlendirilmesi tavsiye edilir. Dikkate alınması gereken bir nokta hücre-hücre teması faz kontrast ve mikroskop büyütme bağlı olarak arka plan dan ayırt edilemez görünebilir. Deneyimlerimize göre, op9/DLL1 yemeklerinin çoğu geçişe hazır olduğunda %80'i konakıcı görünecektir.
OP9/DLL1 eş-kültür tarafından T-iPSCs oluşturulan refarklıleştirilmiş T soy hücreleri stimülasyon üzerine CD8+ SP T hücreleri üretebilir gösterilmiştir18,19. Ancak, rejenere CD8+ SP T hücreleri doğuştan cd8αα homodimer22elde,28, TCR sinyal için etkisiz bir co-reseptör29.  Ayrıca, bu rejenere CD8+ SP T hücreleri güçlü TCR-bağımsız sitotoksisite göstermiştir, klinik kullanım için bu hücreleri olumsuz hale30. Bu protokol, daha geleneksel fenotip ve geliştirilmiş antijene özgü sitotoksisite ile CD8αβ+ SP T hücreleri oluşturmak için saflaştırılmış CD4+CD8+ DP hücrelerinin uyarılmasını içeren yeni bir yöntem açıklar22. Sekonder TCRα allelik yeniden düzenlenmesinedeniyle antijen özgüllüğü kaybı uzun süreli kültürden sonra DP aşamasında meydana gelmesine rağmen, bu T-iPSCs genom düzenleme ile aşılabilir31.  Deneyimlerimize göre, hiPSC kaynaklı DP hücreleri kültürün 30 - 35. Bu nedenle, gün 35 dp hücrelerinin çoğu antijen özgüllüğünü korumak ve antijene özgü CD8αβ+ SP T hücreleri oluşturmak için kullanılabilir.
Önce insan anti-CD3 ve anti-CD28 stimülasyon gün 35, CD4-CD8- DN hücreleri kültürden kaldırılmalıdır, bu uyarılma sonra CD4+CD8+ DP hücrelerinin doğrudan öldürülmesine neden olduğu gösterilmiştir22. CD4 manyetik boncuk zenginleştirme (adım 3.10) kullanarak dp ve CD4+CD8 için zenginleştirecek- ara tek pozitif (ISS) hücreleri1, biz hiçbir olumsuz etkisi olduğu gösterilmiştir22. Alternatif olarak, akış sitometrisi ile floresan aktive hücre sıralama DP hücreleri izole etmek için yapılabilir. Ancak akış sitometrisinin neden olduğu mekanik stresi önlediği için manyetik boncuk ayrıştırımı tercih edilir.
Aktivasyon aracılı agonist seçimi olmadan insan pluripotent kök hücrelerinden CD8αβ+ SP T hücrelerinin üretimi daha sonra 3D murine stromal hücre kültürü kullanımı ile gösterilmiştir32. Ancak, fizyolojik pozitif seçilim, tcr'nin kendi kendine peptid-MHC kompleksleri ile etkileşimine bağlıdır, bu kompleksler tarafından benzersiz bir şekilde işlenir ve timik kortikal epitel hücreleri tarafından sunulur33. Ayrıca, olgun CD8αβ+ SP T hücrelerinin sonraki fonksiyonel yeteneklerini belirlemek için tcr afinitesi gösterilmiştir34.  Şu anda, bir Notch stromal hücre tabanlı co-kültür sistemi fizyolojik pozitif seçim için gerekli tanımlanmış seçim peptid ve MHC kompleksi sağlayabilir önermek için hiçbir kanıt yoktur.
Daha önce bir murine modelinde tümör antijene özgü T hücre türetilmiş hiPSC'lerden üretilen T soy hücrelerinin tek başına OP9/DLL1 kullanılarak konvansiyonel olgunlaşma deneyimi nin başarısız olduğu bildirilmiştir. Ancak, OP9/DLL1 sistemi tarafından oluşturulan iPSC kaynaklı olgunlaşmamış T hücreleri 3D kültür sisteminde daha fazla fizyolojik timik eğitim ile naif gibi T hücrelerine olgunolabilir 28,35. Bu nedenle, OP9/DLL1 sistemi tarafından oluşturulan iPSC türetilmiş olgunlaşmamış T hücreleri üretmek için burada sunulan protokol, gerçek insan tümör antijen-spesifik post-timik T hücreleri in vivo uzun vadeli kalıcılık yeteneğine oluşturmak için daha fazla girişim için hayati önem taşımaktadır kurulan vaskülarize tümörlerin tedavisinde verimlilik.

Fizyolojik avantajlara ek olarak, T hücreleri birçok potansiyel terapötik uygulamalara sahiptir. T hücrelerinin in vitro üretimi ve genişlemesi hastalık modellemesi ve terapötik doğrulamanın yanı sıra kalıtsal ve edinsel immün yetmezlik durumları için bir tedavi kaynağı (örn. viral immün yetmezlikler ve sekonder lenfodeplesyon kemoterapi veya transplantasyon) ve kanserin ortadan kaldırılması için. Bu ikinci kalite ileri kanser hastalarının tedavisi için benimseyen T hücre transferi (ACT) gelişimine yol açmıştır1.
ACT bir hastanın tümör rezeksiyon oluşur, tümör infiltrasyon lenfositler ayıklama (TILs), TILs ex vivo genişletilmesi, daha sonra hasta içine genişletilmiş hücreleri reinfüzyon2. Metastatik kanserli bazı hastalarda etkili bir tedavi yöntemi olduğu gösterilmiştir.  Ne yazık ki, tüm hastalar bu tedaviye yanıt. Önceki raporlar, aktarılan hücrelerin farklılaşma durumunun3,4,5,6,7,8,9, büyük sayıların kullanımı olduğunu göstermiştir son derece zenginleştirilmiş kanser antijen-spesifik T hücreleri10, ve transfer sonra T hücrelerinin kalıcılığı11,12 tüm daha dayanıklı tepkiler ile ilişkilidir13,14. Bu nedenle, ACT bir anti-tümör yanıtı ortaya çıkarmak için başarısız olduğunda, kısmen kanser antijene özgü T hücrelerinin düşük verim nedeniyle olabilir, verimsiz ex vivo genişleme yorgunluk ve reaktif klonların kaybına yol açan, ya da transfer sonra kalıcılık eksikliği4 . Bu engellerin daha az diferansiye kanser antijenspesifik T hücrelerinin çok sayıda nesil tarafından aşılanabileceği ileri sürülmuştur15,16.
Hematopoetik kök /progenitor hücreleri (HSPCs) in vitro T hücre üretimi için geleneksel bir kaynaktır, bu yöntem tek bir donörden kurtarılabilir hücrelerin az sayıda ile sınırlı olmasına rağmen1. Embriyonik kök hücreler (ESCs) da T hücreleri üretmek için gösterilmiştir ama düşük verimile 17, klinik uygulamalar için verimsiz hale. Ayrıca, T soyu hücreleri erken gelişim evrelerinde T hücre reseptörlerinin (TÇR) stoksetik genetik rekombinasyonunu deneyimlediğinden, daha fazla genomik olmayan saf bir antijene özgü T hücresi popülasyonu oluşturmak için HSPC veya ESC kullanmak mümkün değildir. TCR gen transdüksiyonu gibi modifikasyonlar.
Bu uyarılar üstesinden gelmek için bir yaklaşım in vitro T hücre üretimi için sınırsız bir kaynak sağlayabilir insan kaynaklı pluripotent kök hücrelere (hiPSCs), TILs yeniden programlamaktır. Bu kanser antijene özgü TILs hiPSCs içine yeniden programlanmış ve orijinal T hücre li 18 olarak aynı T hücre reseptörü (TCR) gen rearrangement korur T hücre soyuna yeniden ayırt gösterilmiştir ,19.  Bireysel hasta tümörleri benzersiz mutasyona sahip çünkü bu ayrıntı ACT için önemlidir, ve çok az kanser antijenleri hastalar arasında paylaşıldığı gösterilmiştir20. Bu nedenle, hiPSC türetilmiş T hücrelerinin in vitro nesil için bir kaynak olarak kanser antijene özgü TILs kullanarak metastatik kanserli hastaların kişiselleştirilmiş tedavisi için yeni bir strateji sağlayabilir.
Burada ayrıntılı olarak sunulan op9/DLL1 co-kültür sistemi kullanarak fonksiyonel antijene özgü CD8αβ+ tek pozitif (SP) T hücrelerine hiPSC türetilmiş T soy hücrelerini ayırt etmek için bir protokoldür. Bu yöntem hiPSCs in vitro T hücre farklılaşması için güçlü bir araçtır, hematopoetik ataları, ve embriyonik kök hücreler, yanı sıra rejeneratif tıp ve hücre tabanlı tedaviler de diğer uygulamalar.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr >
			<td >10 cm dish</td>
			<td >Corning, Inc.&#160;</td>
			<td >353003</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-CD3, human</td>
			<td >BD Biosciences</td>
			<td>Cat# 561812, RRID:AB_1089628</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-CD34, human</td>
			<td >BD Biosciences</td>
			<td >Cat# 348791, RRID:AB_400381</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-CD4, human</td>
			<td >Biolegend</td>
			<td>Cat# 344612, RRID:AB_2028479</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-CD43, human</td>
			<td >BD Biosciences</td>
			<td >Cat# 560198, RRID:AB_1645460</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-CD7, human</td>
			<td >BD Biosciences</td>
			<td>Cat# 555361, RRID:AB_395764</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-CD8a, human</td>
			<td >BD Biosciences</td>
			<td>Cat# 555369, RRID:AB_398595</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-CD8b, human</td>
			<td >BD Biosciences</td>
			<td >Cat# 641057, RRID:AB_1645747</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Anti-TCRb, human</td>
			<td >BD Biosciences</td>
			<td >Cat# 555548, RRID:AB_395932</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >CD28 human monoclonal antibody (15E8), pure functional grade</td>
			<td >Miltenyl Biotec</td>
			<td>130-093-375</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >CD3 human monoclonal antibody (OKT3), pure functional grade</td>
			<td >Miltenyl Biotec</td>
			<td>130-093-387</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >CD4 Microbeads, human</td>
			<td >Miltenyl Biotec</td>
			<td >130-045-101</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cell strainer 100 um</td>
			<td >Fisher Scientific</td>
			<td >22-363-549</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td >Gemini</td>
			<td >100-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Flt-3 ligand</td>
			<td >R&#38;D Systems</td>
			<td >427-FL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Gelatin Solution 2%&#160;</td>
			<td>SIGMA-Aldritch</td>
			<td>G1393-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >GlutaMAX (100X)</td>
			<td >Thermo Fisher Scientific</td>
			<td >35050-061</td>
			<td >L-Glutamine supplement</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >HBSS Mg+Ca+ Phenol-Red Free</td>
			<td >Gibco</td>
			<td >14025-092</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Interleukin-2</td>
			<td >R&#38;D Systems</td>
			<td >202-IL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Interleukin-7</td>
			<td >R&#38;D Systems</td>
			<td >407-ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >iTAG MHC Tetramer HLA-A*0201 Mart1 Tetramer -ELAGIGILTV</td>
			<td >MBL</td>
			<td >Cat#TB-0009-2</td>
			<td ></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Mart1-hiPSC</td>
			<td >Vizcardo et al., Cell Stem Cell 2013</td>
			<td >RIKEN-IMS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Melan-A, MART 1 (26-35)</td>
			<td >InnoPep</td>
			<td >3146-0100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >MEM Non-Essential Amino Acids Solution</td>
			<td >Gibco</td>
			<td >11140050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >&#945;MEM powder</td>
			<td >Gibco</td>
			<td >61100061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Mouse Embryonic Fibroblasts (MEF)</td>
			<td >Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>C57BL/6 MEF MITC-TREATED 4M EACH; A34962</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >OP9/N-DLL1</td>
			<td >Riken Bioresource center</td>
			<td >Cat# RCB2927; RRID:CVCL_B220</td>
			<td >OP9/DLL1</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Penicillin/streptomycin</td>
			<td >Thermo Fisher Scientific</td>
			<td >15140-122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Phosphate buffered saline pH 7.4 (1x)</td>
			<td >Thermo Fisher Scientific</td>
			<td >10010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Primate ES Cell Medium</td>
			<td >Reprocell</td>
			<td >RCHEMD001</td>
			<td >Human ESC Culture Media</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Rhok inhibitor (Y-27632 dihydrochloride)</td>
			<td >Tocris</td>
			<td >1254</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >RPMI 1640</td>
			<td >Gibco</td>
			<td >11875093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Stem Cell Factor (SCF)</td>
			<td >R&#38;D Systems</td>
			<td >455-MC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >StemPro</td>
			<td >EZPassage</td>
			<td >23181-010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >T2-tumor</td>
			<td >ATCC</td>
			<td>T2 (174 x CEM.T2) (ATCC&#174; CRL-1992&#8482;)&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red&#160;</td>
			<td >Thermo Fisher Scientific</td>
			<td >25300-062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red&#160;</td>
			<td >Thermo Fisher Scientific</td>
			<td >25200-072</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >U Bottom 96 well plate</td>
			<td >Corning, Inc.&#160;</td>
			<td >3799</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

using human induced pluripotent stem cells for the generation of tumor antigen-specific t cells

Fonksiyonel T hücrelerinin in vitro olarak üretilip genişlemesi çok çeşitli klinik uygulamalara yol açabilir. Böyle bir kullanım ileri kanser hastalarının tedavisi içindir. Son derece zenginleştirilmiş tümör antijenspesifik T hücrelerinin benimseyen T hücre transferi (ACT) bazı hastalarda metastatik kanser ingresyon kalıcı regresyon neden olduğu gösterilmiştir. Ancak, genişleme sırasında, bu hücreler tükenmiş veya senescent olabilir, onların efektör fonksiyonu ve in vivo kalıcılığı sınırlayan. İndüklenen pluripotent kök hücre (iPSC) teknolojisi daha az diferansiye tümör antijenspesifik T hücrelerinin çok sayıda in vitro nesil yol ederek bu engelleri aşabilir. İnsan iPSC (hiPSC) bir T hücresi başlangıç hücresi olarak kullanıldığında orijinal T hücre reseptörü (TCR) genomik yeniden düzenlenmesi korumak lenfositler de dahil olmak üzere somatik hücre, her türlü ayırt etme kapasitesine sahiptir. Bu nedenle, insan tümör antijen-spesifik T hücrelerinin hiPSC'ye yeniden programlanması ve ardından T hücre siline redifferentiation gençleşmiş tümör antijen-spesifik T hücreleri üretme potansiyeline sahiptir. Burada açıklanan OP9/DLL1 co-kültür sistemi kullanarak hiPSC tümör antijene özgü CD8αβ+ tek pozitif (SP) T hücreleri üretmek için bir yöntemdir. Bu yöntem in vitro T hücre soyu üretimi için güçlü bir araçtır ve rejeneratif tıp ve hücre bazlı tedavilerde kullanılmak üzere in vitro türetilmiş T hücrelerinin gelişimini kolaylaştıracaktır.

OP9/DLL1 ile birlikte 13 gün hiPSCs sonra, CD34+CD43+ hematopoetik progenitor hücreleri ortaya çıktı (Şekil 1). HSCF, hFLT3L ve hIL-7 varlığında jelatinize olmayan OP9/DLL1 üzerinde ek bir kültür 22 gün sonra, hematopoetik atalar CD3+CD7+CD4 + CD8+çift pozitif (DP) Tage hücreleri, farklılaşmış çoğunluğu MART-1 epitopuna özgü TCR'yi ifade eder (tetramer) (Şekil 2).
Daha önce CD8+ SP T hücrelerinin CD4+CD8+ DP T hücrelerinden agonist peptid veya antikor güdümlü TCR stimülasyonu 24,25ile TCR sinyali ile indüklenebildiği gösterilmiştir. Bu nedenle, kültür 35 gün, hiPSC türetilmiş CD4+CD8+ DP T hücreleri hIL-7 ve hIL-2 varlığında anti-insan CD3 ve anti-insan CD28 antikorları ile uyarıldı.  Stimülasyondan dört gün sonra, CD3+CD8αβ+ SP hücrelerinin sayısı önemli ölçüde artmış ve MART-1 epitopiçin spesifik kalarak kalıtsal antijen özgüllüklerinin korunmasını doğrular(Şekil 3).
HiPSC türetilmiş CD8αβ+ SP T hücrelerinin fonksiyonel özelliklerini belirlemek için antijene bağımlı aktivasyon ve interferon gama salgıları (IFN-γ) analiz edildi. 1 hafta boyunca anti-insan CD3 ve anti-insan CD28 antikorları ile uyarılmasından sonra, hiPSC kaynaklı CD8αβ+ SP T hücreleri bir hücre ayırıcı kullanılarak izole edildi ve HLA-A*02:01 ile veya 16 için cognate MART1 peptid olmadan ifade T2 hücre hattı ile birlikte kültürlü 16 - 20 saat. ELISpot test, HIPSC kaynaklı CD8αβ+ SP T hücrelerinin MART-1 peptid varlığında kültürlendiğinde CD8αα+ SP T hücrelerine kıyasla daha yüksek miktarda IFN-γ salgıladığını ortaya koymuştur. IFN-γ ekspresyonu sadece T hücreleri ve AAP'ler için null olarak, insan T-iPSC kaynaklı T hücrelerinin antijene özgü ve işlevsel olduğunu göstermektedir(Şekil 4).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59997/59997fig1.jpg"> Şekil 1: HiPSC kaynaklı hematopoetik progenitor hücrelerinin üretimi. (A) OP9/DLL1 co-culture kullanarak hiPSC'lerin hematopoetik soya farklılaşmasının şematik genel bakışı. (B) HiPSC'den türetilmiş yapıların 1 (sol üstte), 3 (sağ üstte), 7 (sol altta) ve 13 (sağ altta) görünümü. Ölçek çubukları = 100 μm. (C) 13. Veriler altı bağımsız deneyi temsil eder (n = 1 - 2). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59997/59997fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59997/59997fig2.jpg"> Şekil 2: Mart1 + CD4+ CD8αβ+ DP T hücrelerine hiPSC farklılaşması. (A) OP9/DLL1 co-culture kullanarak hiPSC kaynaklı hematopoetik soyundan immatür T hücrelerine farklılaşması şeması. (B) 35. günde HIPSC türetilmiş T hücrelerinde CD4 ile CD8α, CD3 vs. CD8β ve MART-1 tetramer ekspresyonunun akış sitometrik analizi. Lenfositler, tek hücreler, PI negatif. Veriler üç bağımsız deneyi temsil eder (n = 3 - 8). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59997/59997fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59997/59997fig3.jpg"> Şekil 3: CD8αβ+ SP T hücre fenotipinin indüksiyonu. CD4 Akış sitometrik analizi- hiPSC türetilmiş T hücreleri 4 gün sonra insan anti-CD3 ve insan anti-CD28 antikor güdümlü stimülasyon. Lenfositler, tek hücreler, PI negatif (n = 4) üzerinde kapılı.   <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59997/59997fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59997/59997fig4.jpg"> Şekil 4: HiPSC türetilmiş CD8αβ+ SP T hücrelerininantijen özgüllüğü. ELISpot'un hiPSC kaynaklı CD8αβ+ SP, CD8αα+ SP ve 20 saat ortak kültürden sonra yapılan toplu T hücrelerinin IFN-γ salgısı MART-1 peptid ile darbeli (veya değil) T2 hücreleri ile. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59997/59997fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Using Human Induced Pluripotent Stem Cells for the Generation of Tumor Antigen-specific T Cells at JoVE.com

Using Human Induced Pluripotent Stem Cells for the Generation of Tumor Antigen-specific T Cells

Bu makalede, OP9/DLL1 co-kültür sistemini kullanarak fonksiyonel tümör antijene özgü indüklenen pluripotent kök hücre türetilmiş CD8αβ+ tek pozitif T hücreleri oluşturmak için bir yöntem açıklanmaktadır.

Tümör Antijene Özgü T Hücrelerinin Üretimi için İnsan Kaynaklı Pluripotent Kök Hücrelerin Kullanılması

The generation and expansion of functional T cells in vitro can lead to a broad range of clinical applications. One such use is for the treatment of ...

OP9-Delta-1 ko-kültür sistemini kullanarak insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı tümör antijene özgü CD8 alfa beta tek pozitif T hücreleri üretmek için bir yöntem salıyoruz. Bu yöntem in vitro T hücre üretimi için güçlü bir araçtır ve rejeneratif tıp ve hücre bazlı tedavilerde kullanılmak üzere in vitro türetilmiş T hücrelerinin gelişimini kolaylaştıracaktır. Ayrıca diğer lenfositlerin üretimi için adapte edilebilir, NK hücreleri gibi.Bu tekniği yaparken, hücre-hücre sitoplazmik temas hücre farklılaşması nı ve yaşlanmayı önlemeye başladığında FBS ve passage OP9-Delta-1 hücrelerinin çoğunu tutarlı bir şekilde önceden değerlendirmek önemlidir. Prosedürü gösteren Dr. Meghan Good, ekibimden cerrahi onkoloji uzmanı. Bir stereo-mikroskop insan iPSC kolonileri kontrol ederek başlayın ve 200 mikrolitrelik pipet ucu plastik kenarı ile kültürden farklılaşma herhangi bir alanda kaldırın.Koloniler çapı 0.8 ila 1.2 milimetreye ulaştığında, insan iPSC'lerini iletir. Harcanan medya aspire ve 10 mikromolar ROCK inhibitörü ile desteklenen insan iPSC medya 10 mililitre ekleyin. Tek kullanımlık bir hücre geçiş aletini tek bir yönde tüm çanak boyunca türün üzerinde türün, tek tip basıncı koruduğundan ve tüm silindir bıçağın kültür kabına dokunduğundan emin olun.Kültür çanağını 90 derece döndürün ve yuvarlanma tekrarlayın. Kolonilerin mikroskopla düzgün kesilmesini görsel olarak doğrulayın. Damalı gibi görünmeliler.Daha sonra, 200 mikrolitrelik pipet ile nazik mekanik yıkama ile kesilmiş koloniler ayırmak. Görsel koloni kümelerinin sayısını tahmin ve rock inhibitörü ile desteklenen taze insan iPSC medya 10 mililitre ile fare embriyonik fibroblastlar yeni bir 10 santimetrelik çanak 350 ve 600 kümeleri arasında transfer. Yemeği bir gecede 37 derecede kuluçkaya yatırın.Ertesi gün, harcanan medya aspirate ve taze insan iPSC medya 10 mililitre ekleyin. Hücre büyüme hızına bağlı olarak, her bir veya iki günde bir ortamı değiştirin. Kültür OP9-Delta-1 hücreleri OP9 medyada 37 santigrat derece.Onlar biraraya ulaştığında, medya aspire, ve 1x magnezyum beş mililitre ile hücreleri yıkamak, kalsiyum, ve fenol kırmızı içermeyen PBS. PBS aspire, 05% tripsin-EDTA iki mililitre ekleyin ve 37 santigrat derece beş dakika boyunca hücreleri kuluçka. Daha sonra, OP9 medya dört mililitre ekleyin ve mekanik pipetleme hücre tabakası ayrıştırMak.Hücre süspansiyonuna 100 mikrometrelik bir hücre süzgecinden 50 mililitrelik konik bir tüpe aktarın ve 5 dakika boyunca 4 santigrat derecede 300 kez santrifüj verin. Supernatant aspire ve OP9 medya 12 mililitre hücreleri resuspend. Altı yeni hücre kültürü yemeğinin her birine sekiz mililitre OP9 ortam ekleyin ve her yemeğin üzerine iki mililitre OP9-delta-1 hücre süspansiyonu plakası koyun.Hücrelerin eşit dağılımını sağlamak için çanak tarafı yan yana ve önden arkaya sallayın. Hücreleri 37 santigrat derecede kuluçkaya yatırın ve hücreler birleştiğinde geçişi tekrarlayın. İnsan iPSC'leri ile ortak kültürden bir hafta önce jelatinize OP9-Delta-1 yemekleri hazırlayın.Üç yeni hücre kültürü yemekleri için% 0.1 jelatin dört mililitre ekleyin ve 37 santigrat derece onları 30 dakika kuluçka. Kuluçkadan sonra jelatini aspire edin ve her çanağa sekiz mililitre OP9 media ekleyin. Op9-Delta-1 hücrelerinden oluşan bir parçayı üç jelatin kaplı tabağa aktarın.Dört gün sonra, her bir hücre yemeğine, her yemek başına toplam 20 mililitre ortam için 10 mililitre OP9 ortam ekleyin. Op9-Delta-1 eşzamanlı yemekler yedi ila sekiz gün hücreleri geçtikten sonra insan iPSC co-kültür başlayın. İnsan iPSCs bir confluent çanak medya aspire ve OP9 medya 10 mililitre ekleyin.Tek kullanımlık bir hücre geçiş aracı kullanarak hücre kolonilerini kesip ayırın ve 10 mililitre taze OP9 ortamiçeren önceden jelatinize edilmiş OP9-Delta-1 yemeğine 350 ila 600 kümekesilmiş koloni aktarın. Kolonilerin eşit dağılımını sağlamak için kültür çanak yan yana ve önden arkaya rock. Ertesi gün, harcanan medya aspirate ve taze OP9 medya 20 mililitre ile değiştirin.Op9-Delta-1'de bir gün boyunca birlikte kültürlenmiş insan iPSC kümeleri küçük, yuvarlak, tek katmanlı koloniler olarak görünmelidir. Beşinci günde, 10 mililitre harcanan medyayı aspire edin ve 10 mililitre taze OP9 medya ekleyin. Koloniler çok katmanlı karanlık bir merkez ile karakterize ilkel mezoderm, farklılaşmaya başlayacaktır.Dokuzuncu günde bu işlemi tekrarlayın, bu noktada çok katmanlı merkez yapıları kubbe benzeri şekillere dönüşecektir. 13. günde hematopoetik ata hücrelerini hasat edin, bu noktada yapılar kubbe benzeri alanlardan oluşan bir ağ la çevrili karanlık bir merkezi organoidden oluşur. Aspire medya, ve kalsiyum ve magnezyum ile 1x fenol kırmızı-free Hanks'balanced tuz çözeltisi beş mililitre ile hücreleri bir kez yıkayın, veya HBSS.Yıkamadan sonra, HBSS 10 mililitre için 5, 000 birim-başına mililitre kollajenaz IV 250 mikrolitre ekleyin. Karışım hücreleri ekleyin ve 45 dakika boyunca 37 santigrat derece onları kuluçka. HBSS-kollajenaz karışımıaspire ve pbs beş mililitre ile hücreleri bir kez yıkayın.PBS ile yıkadıktan sonra, %0,25 tripsin-EDTA'dan beş mililitre ekleyin ve hücreleri 37 derecede 20 dakika kuluçkaya yatırın. Daha sonra, OP9 medya dört mililitre ekleyin ve tek hücreli süspansiyon yapmak için pipetleme hücre tabakası ayrıştırın. Hücre süspansiyonuna 100 mikrometrelik bir süzgeçten 50 mililitrelik konik bir tüpe aktarın ve tüpü 300 kez g ve dört santigrat derecede beş dakika santrifüj edin.Supernatant aspire ve OP9 medya 10 mililitre hücreleri resuspend. Yeni bir jelatinize 10 santimetre hücre kültür çanak üzerinde hücre süspansiyon plaka ve 45 dakika boyunca 37 santigrat derece onları kuluçka. Daha sonra, nazik pipetleme ile yapışık olmayan hücreleri toplayın.Hücre süspansiyonuna bir süzgeç aracılığıyla 50 mililitrelik konik tüpe ve daha önce açıklandığı gibi santrifüje aktarın. Daha sonra, supernatant aspire ve farklılaşma medya 10 mililitre hücreleri resuspend. Yeni bir OP9-Delta-1 confluent çanak üzerine hücre süspansiyon plaka.16. günde hücreleri el yazması talimatlara göre geçirin ve yapışık olmayan hücreleri beş ila yedi günde bir geçirmeye devam edin. 35 günlük farklılaşmadan sonra, CD4-pozitif hücre popülasyonunu üreticinin protokolüne göre CD4 manyetik boncuk izolasyonu ile zenginleştirin. Daha sonra, OP9 medya hücreleri resuspend, ve bir doku kültürü her kuyuiçine hücre süspansiyon plaka, düz alt, confluent OP9-Delta-1 24-iyi plaka.İnsan IL-2 100 uluslararası birimleri, insan IL-7 beş nanogram, anti-insan CD3 antikor 500 nanogram ve anti-insan CD28 antikor iki mikrogram ekleyerek hücreleri uyarmak her kuyu. Dört ila yedi gün sonra, hücreler daha fazla analiz için toplanabilir. İnsan kök hücre faktörü varlığında jelatinize olmayan OP9-Delta-1 kültür sonra, insan FLT3-ligand, ve insan interlökin-7, hematopoetik ataları CD3, CD7, CD4 ve CD8 çift pozitif T soy hücreleri, çoğunluğu MART1tope özgü T hücre reseptörlerini ifade ayırt.CD4, CD8 çift pozitif T hücreleri insan interlökin-7 ve 2 varlığında anti-insan CD3 ve CD28 antikorları ile uyarıldığında, CD3-pozitif CD8 alfa beta tek pozitif hücrelerin sayısı arttı ve MART1 epitop için spesifik kaldı, kalıtsal antijen özgüllüğünün korunmasını doğrulayan. BIR ELISpot testi, MART1 peptid varlığında kültürlü zaman, insan iPSC kaynaklı CD8 alfa beta tek pozitif T hücreleri hem toplu ve CD8 alfa alfa tek pozitif T hücreleri ile karşılaştırıldığında interferon gama yüksek miktarlarda salgılar. T hücreleri ve antijen sunan hücreler için tek başına interferon gama ekspresyonu saptanmadı, bu da insan T-iPSC kaynaklı T hücrelerinin antijene özgü ve fonksiyonel olduğunu gösterdi.Bu yöntemde önemli bir adım CD4-negatif, CD8-negatif çift negatif hücreleri ortadan kaldırmak için CD4 manyetik boncuk zenginleştirme, hangi stimülasyon üzerine çift pozitif hücrelerin doğrudan öldürülmesine neden olabilir. Bu teknik hematopoetik kök hücreler ve embriyonik kök hücreler de dahil olmak üzere insan hücrelerinin çeşitli kaynakları ile kullanılmak üzere geçerlidir. Bu yöntemle oluşturulan iPSC kaynaklı olgunlaşmamış T hücreleri, gelecekteki terapötik kullanım için olgun insan tümörü antijene özgü najene özgü naif benzeri T hücrelerinin üretimi için daha da geliştirilebilir.Bu videoyu izledikten sonra, izleyici OP9-Delta-1 co-kültür sistemini kullanarak insan iPSC kaynaklı CD8 alfa beta tek pozitif T hücreleri oluşturmak için nasıl anlamak gerekir.

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Modeling Osteosarcoma Using Li-Fraumeni Syndrome Patient-derived Induced Pluripotent Stem Cells

Li-Fraumeni sendromu hasta kaynaklı indüklenmiş Pluripotent kök hücreler kullanılarak osteosarkom modelleme

Li-Fraumeni syndrome (LFS) is an autosomal dominant hereditary cancer disorder. Patients with LFS are predisposed to a various type of tumors, including ...

A Three-dimensional Thymic Culture System to Generate Murine Induced Pluripotent Stem Cell-derived Tumor Antigen-specific Thymic Emigrants

Üç boyutlu Timik Kültür Sistemi Murine indüklenen Pluripotent Kök Hücre kaynaklı Tümör Antijen-spesifik Timik Emigrants oluşturmak için

The inheritance of pre-rearranged T cell receptors (TCRs) and their epigenetic rejuvenation make induced pluripotent stem cell (iPSC)-derived T cells a ...

Real Time Detection of In Vitro Tumor Cell Apoptosis Induced by CD8+ T Cells to Study Immune Suppressive Functions of Tumor-infiltrating Myeloid Cells

Real Time Detection of In Vitro Tumor Cell Apoptosis Induced by CD8+ T Cells to Study Immune Suppressive Functions of Tumor-infiltrating Myeloid Cells

Gerçek zamanlı hafiye-in Vitro tümör hücre Apoptosis içinde CD8 tarafından indüklenen+ T hücreleri Myeloid hücrelerin tümör infiltre bağışıklık baskılayıcı işlevlerini çalışmaya

Potentiation of the tumor-killing ability of CD8+ T cells in tumors, along with their efficient tumor infiltration, is a key element of successful ...

Manufacturing Chimeric Antigen Receptor (CAR) T Cells for Adoptive Immunotherapy

Manufacturing Chimeric Antigen Receptor CAR T Cells for Adoptive Immunotherapy

İmal İmmünoterapi için İmkanerik Antijen Reseptör (CAR) T Hücreleri

Adoptive immunotherapy holds promise for the treatment of cancer and infectious disease. We describe a simple approach to transduce primary human T cells ...

Isolation and Expansion of Cytotoxic Cytokine-induced Killer T Cells for Cancer Treatment

Kanser Tedavisi için Sitotoksik Sitokin Kaynaklı Katil T Hücrelerinin İzolasyon ve Genişlemesi

Adoptive cellular immunotherapy focuses on restoring cancer recognition via the immune system and improves effective tumor cell killing. Cytokine-induced ...

Analyzing Tumor and Tissue Distribution of Target Antigen Specific Therapeutic Antibody

Hedef Antijen Spesifik Terapötik Antikor tümör ve doku dağılımının analizi

Monoclonal antibodies are high affinity multifunctional drugs that work by variable independent mechanisms to eliminate cancer cells. Over the last few ...

Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells

Tümör Hücrelerinin Lateral Kuyruk-Damar Enjeksiyonu Sonrasında Akciğer Metastazının Patolojik Analizi

Metastasis, the primary cause of morbidity and mortality for most cancer patients, can be challenging to model preclinically in mice. Few spontaneous ...

Generation of Zebrafish Larval Xenografts and Tumor Behavior Analysis

Zebra Balığı Larva Xenografts ve Tümör Davranış AnaliziNin Üretimi

Zebrafish larval xenografts are being widely used for cancer research to perform in vivo and real-time studies of human cancer. The possibility of rapidly ...

Tumor Transplantation for Assessing the Dynamics of Tumor-Infiltrating CD8+ T Cells in Mice

Tumor Transplantation for Assessing the Dynamics of Tumor-Infiltrating CD8+ T Cells in Mice

Farelerde Tümör Sızan CD8 + T Hücrelerinin Dinamiğini Değerlendirmek için Tümör Transplantasyonu

T cell-mediated immunity plays a crucial role in immune responses against tumors, with cytotoxic T lymphocytes (CTLs) playing the leading role in ...

In Vivo Immunogenicity Screening of Tumor-Derived Extracellular Vesicles by Flow Cytometry of Splenic T Cells

In Vivo Immunogenicity Screening of Tumor-Derived Extracellular Vesicles by Flow Cytometry of Splenic T Cells

İn Vivo Dalak T Hücrelerinin Akım Sitometrisi ile Tümör Kaynaklı Hücre Dışı Veziküllerin İmmünojenite Taraması

Immunogenic cell death of tumors, caused by chemotherapy or irradiation, can trigger tumor-specific T cell responses by releasing danger-associated ...