Name: hybrid microdrive system with recoverable opto-silicon probe and tetrode for dual-site high density recording in freely moving mice
Uploaded: 2019-08-10T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Hybrid Microdrive System with Recoverable Opto-Silicon Probe and Tetrode for Dual-Site High Density Recording in Freely Moving Mice at JoVE.com

Эта работа была частично поддержана Японским обществом содействия научным стипендиям научных исследований (HO), Наделенной стипендией (ТЗ), Программой науки о границах человека (ТЗ), Фондом исследований мозга (ТЗ), Факультетом науки и технологий Приобретение и Приобретение Программа удержания (TK), Фонд исследований мозга и поведения (TK), и Грант исследований Фонда Sumitomo (JY), NARSAD Молодой исследователь исследований Грант (JY). Мы благодарим В. Маркса за ценные замечания и предложения во время подготовки рукописи.

Все методы, описанные здесь, были одобрены Институциональным Комитетом по уходу за животными и использованию (IACUC) Университета Техаса Southwestern Medical Center.
1. Подготовка деталей микроприводного массива
<ol><li>Печать деталей массива микропривода с помощью 3D-принтера с использо?...

Протокол демонстрирует, как построить и имплантировать гибридный массив микропривода, который позволяет записывать нейронные действия из двух областей мозга с помощью независимых регулируемых тетродов и кремния-зонда в свободно мейков. Он также демонстрирует оптогенетические экспе...

Очень важно понять, как нейронная активность поддерживает когнитивные процессы, такие как обучение и память, исследуя, как различные регионы мозга динамически взаимодействуют друг с другом. Для выяснения динамики нейронной активности, лежащей в основе когнитивных задач, крупномасштабная внеклеточнаяэлектрофизиология была проведена у свободно движущихся животных с помощью микроприводных массивов 1,2,3, 4. В последние два десятилетия, несколько типов микроdrive массив арантом были разработаны для имплантации электродов в нескольких областях мозга для крыс5,6,7,8 и мышей9, 10 Лет , 11 Год , 12. Тем не менее, текущие конструкции микропривода, как правило, не позволяют использовать несколько типов зондов, заставляя исследователей выбирать единый тип электрода с конкретными преимуществами и ограничениями. Например, тетроде массивы хорошо работают для густонаселенных областей мозга, таких как дорсальный гиппокамп CA11,13, в то время как кремниевые зонды дают лучший геометрический профиль для изучения анатомических связей14 , 15.
Тетроды и кремниевые зонды часто используются для хронической записи in vivo, и каждый из них имеет свои преимущества и недостатки. Тетроды, как было доказано, имеют значительные преимущества в лучшей изоляции одного блока, чем одиночные электроды16,17, в дополнение к экономической эффективности и механической жесткости. Они также обеспечивают более высокую урожайность однойединицы деятельности в сочетании с микродисками 8,18,19,20. Важно увеличить количество одновременно зарегистрированных нейронов для понимания функции нейронных цепей21. Например, большое количество клеток необходимо для исследования небольших популяций функционально неоднородных типов клеток, таких как связанные с временем22 или вознаграждение кодирования23 ячеек. Гораздо больше ежеклеток требуется для улучшения качества расшифровки последовательностей шипов13,24,25.
Тетроды, однако, имеют недостаток в записи пространственно распределенных клеток, таких как в коре головного мозга или таламус. В отличие от тетродов, кремниевые зонды могут обеспечить пространственное распределение и взаимодействие локальных полевых потенциалов (LFPs) и пики деятельности в рамках локальной структуры14,26. Multi-хвостак кремния зонды дальнейшего увеличения числа записи сайтов и позволяют записи через отдельные или соседние структуры27. Однако такие массивы менее гибки в позиционировании участков электродов по сравнению с тетродами. Кроме того, в зондах высокой плотности требуются сложные алгоритмы сортировки шипов для извлечения информации о потенциалах действия соседних каналов для отражения данных, полученных тетродами28,29,30. Таким образом, общая доходность отдельных единиц часто меньше, чем тетроды. Кроме того, кремниевые зонды являются невыгодными из-за их хрупкости и высокой стоимости. Таким образом, выбор тетродпротив кремниевых зондов зависит от цели записи, которая заключается в том, является ли получение высокой доходности одноъюмносного или пространственного профилирования на сайтах записи приоритетом.
В дополнение к записи нейронной активности, оптогенетические манипуляции стал одним из наиболее мощных инструментов в неврологии, чтобы изучить, как конкретные типы клеток и / или пути способствуют нейронной цепи функции13,31, 32,33. Тем не менее, оптогенетические эксперименты требуют дополнительного рассмотрения в микроdrive массив астратива для присоединения волокна разъем для стимуляции источников света34,35,36. Часто соединение волоконно-оптической требует относительно большой силы, что может привести к механическому сдвигу зонда в головном мозге. Поэтому совместить имплантируемое оптическое волокно с обычными массивами микроприводов не является тривиальной задачей.
По вышеуказанным причинам исследователи должны оптимизировать выбор типа электрода или имплантировать оптическое волокно в зависимости от цели записи. Например тетроды используются для достижения более высокой урожайности единицы в гиппокампе1,13, в то время как кремниевые зонды используются для исследования ламинаров глубины профиля корковых областей, таких как медиальной энторинальной коры (MEC)37. В настоящее время, микродиски для одновременной имплантации тетродов и кремниевых зондов были зарегистрированы для крыс5,11. Тем не менее, это чрезвычайно сложно имплантировать несколько тетрод и кремниевых зондов в мышей из-за веса микродисков, ограниченное пространство на голове мыши, и пространственные требования для проектирования микропривода использовать различные зонды. Хотя можно имплантировать кремниевые зонды без микропривода, эта процедура не позволяет регулировки зонда и снижает скорость успеха восстановления кремниевого зонда12,38. Кроме того, оптогенетические эксперименты требуют дополнительных соображений при проектировании микроприводных массивов. Этот протокол демонстрирует, как построить и имплантировать микроприводный массив для хронической записи у свободно движущихся мышей, что позволяет имплантировать девять независимо регулируемых тетродов и один регулируемый опитро-кремний зонд. Этот массив микроприводов также облегчает оптогенетические эксперименты и восстановление кремниевого зонда.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>#00-90 screw</td>
			<td>J.I. Morris</td>
			<td>#00-90-1/8</td>
			<td>EIB screws</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>#0-80 nut</td>
			<td>Small Parts</td>
			<td>B00DGB7CT2</td>
			<td>brass nut for holding fiber ferrule holder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>#0-80 screw</td>
			<td>Small Parts</td>
			<td>B000FMZ57G</td>
			<td>brass machine screw for probe connector mount, fiber ferrule holder, and shielding cone</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22 Ga polyetheretherketone tubes</td>
			<td>Small Parts</td>
			<td>SLPT-22-24</td>
			<td>for attaching to the shuttle, 0.025 inches inner diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>23 Ga stainless tubing</td>
			<td>Small Parts</td>
			<td>HTX-23R</td>
			<td>for tetrode</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>23 Ga stainless wire</td>
			<td>Small Parts</td>
			<td>HTX-23R-24-10</td>
			<td>for L-shape/support wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26 Ga stainless wire</td>
			<td>Small Parts</td>
			<td>GWX-0200</td>
			<td>for guide-posts</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30 Ga stainless wire</td>
			<td>Small Parts</td>
			<td>HTX-30R</td>
			<td>for tetrode</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-D CAD software package</td>
			<td>Dassault Syst&#232;mes</td>
			<td>SolidWorks 2003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3D printer</td>
			<td>FormLab</td>
			<td>Form2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5.5mil polyimide insulating tubes</td>
			<td>HPC Medical</td>
			<td>72113900001-012</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>aluminum foil tape</td>
			<td>Tyco</td>
			<td>Tyco Adhesives 617022 Aluminum Foil Tape</td>
			<td>for the alternative shielding cone</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>conductive paste</td>
			<td>YSHIELD</td>
			<td>HSF54</td>
			<td>for shielding cone</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>customized screws for silicon-probe microdrive</td>
			<td>AMT</td>
			<td>UNM1.25-HalfMoon</td>
			<td>half-moon stainless screw, 1.5 mm diameter, 300 &#181;m thread pitch</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>customized screws for tetrode microdrive</td>
			<td>AMT</td>
			<td>Yamamoto_0000-160_9mm</td>
			<td>slotted stainless screw, 0.5 mm diameter, 160 &#181;m thread pitch, custom-made to order for our design</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dental acrylic</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td>51459</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dental model resin</td>
			<td>FormLab</td>
			<td>RS-F2-DMBE-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dremel rotary tool</td>
			<td>Dremel</td>
			<td>model 800</td>
			<td>a grinder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>drill bit</td>
			<td>Fine Science Tool</td>
			<td>19007-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electric interface board</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td>EIB-36-Narrow</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>epoxy</td>
			<td>Devcon</td>
			<td>GLU-735.90</td>
			<td>5 minutes epoxy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eye ointment</td>
			<td>Dechra</td>
			<td>Puralube Ophthalmic Ointment</td>
			<td>to prevent mice eyes from drying during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fiber polishing sheet</td>
			<td>Thorlabs</td>
			<td>LFG5P</td>
			<td>for polishing the optical fiber</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fine tweezers</td>
			<td>Protech International</td>
			<td>15-368</td>
			<td>for loading/recovering the silicon probe</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>gold pins</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td>EIB Pins Small</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ground wire</td>
			<td>A-M Systems</td>
			<td>781500</td>
			<td>0.010 inch bare silver wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>headstage preamp</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td>HS-36</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>impedance meter</td>
			<td>BAK electronics</td>
			<td>Model IMP-2</td>
			<td>1 kHz testing frequency</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mineral oil</td>
			<td>ZONA</td>
			<td>36-105</td>
			<td>for lubricating screws and wires</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>optical fiber</td>
			<td>Doric</td>
			<td>MFC_200/260-0.22_50mm_ZF1.25(G)_FLT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recording system</td>
			<td>Neuralynx</td>
			<td>Digital Lynx 4SX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ruby fiber scribe</td>
			<td>Thorlabs</td>
			<td>S90R</td>
			<td>for cleaving the optical fiber</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>silicon grease</td>
			<td>Fine Science Tool</td>
			<td>29051-45</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>silicon probe</td>
			<td>Neuronexus</td>
			<td>A1x32-Edge-5mm-20-177</td>
			<td>Fig. 3, 4A, 4B, 5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>silicon probe</td>
			<td>Neuronexus</td>
			<td>A1x32-6mm-50-177</td>
			<td>Fig. 4C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>silicon probe washing solution</td>
			<td>Alcon</td>
			<td>AL10078844</td>
			<td>contact lens cleaner</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>silicone lubber</td>
			<td>Smooth-On</td>
			<td>Dragon Skin 10 FAST</td>
			<td>for preparation of microdrive mold</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>silver paint</td>
			<td>GC electronic</td>
			<td>22-023</td>
			<td>silver print II coating, used for ground wires</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>skull screw</td>
			<td>Otto Frei</td>
			<td>2647-10AC</td>
			<td>0.8 mm diameter, 0.200 mm thread pitch</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>standard surgical scissors</td>
			<td>ROBOZ</td>
			<td>RS-5880</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stereotaxic apparatus</td>
			<td>Kopf</td>
			<td>Model 942</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>super glue</td>
			<td>Loctite</td>
			<td>LOC230992</td>
			<td>for applying to guide-posts</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>surgical tweezers</td>
			<td>ROBOZ</td>
			<td>RS-5135</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetrode Twister</td>
			<td>Jun Yamamoto</td>
			<td>TT-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tetrode wires</td>
			<td>Sandvik</td>
			<td>PX000004</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

hybrid microdrive system with recoverable opto-silicon probe and tetrode for dual-site high density recording in freely moving mice

Многорегиональные нейронные записи могут предоставить важную информацию для понимания тонковременных взаимодействий между несколькими областями мозга. Тем не менее, обычные конструкции микропривода часто позволяют использовать только один тип электрода для записи из одного или нескольких регионов, ограничивая выход записей одного блока или глубины профиля. Он также часто ограничивает возможность комдота записей с оптогенетическими инструментами для целевой пути и / или типа клеток конкретной деятельности. Представлено здесь гибридный массив микроприводов для свободно движущихся мышей для оптимизации урожайности и описание его изготовления и повторного использования микропривода массива. Текущий дизайн использует девять тетродов и один опто-силиконовый зонд имплантируется в двух различных областях мозга одновременно в свободно движущихся мышей. тетроды и опто-силиконовый зонд независимо регулируются вдоль дорсовентальной оси в головном мозге, чтобы максимизировать выход единицы и колеи. Этот массив микроприводов также включает в себя настройку для света, посредничество оптогенетических манипуляций для изучения региональных или клеточных типов конкретных реакций и функций нейронных цепей дальнего радиуса действия. Кроме того, опто-силиконовый зонд можно безопасно восстановить и повторно использовать после каждого эксперимента. Поскольку массив микроприводов состоит из деталей, напечатанных на 3D-принтере, дизайн микродисков можно легко модифицировать с учетом различных параметров. Первый описан дизайн массива микропривода и как прикрепить оптическое волокно к кремниевому зонду для экспериментов оптогенетики, а затем изготовление тетродерас пучка и имплантации массива в мозг мыши. Запись локальных полевых потенциалов и единицы спайкинга в сочетании с оптогенетической стимуляцией также демонстрирует осуществимость системы микроприводов у свободно движущихся мышей.

Микроприводный массив был построен в течение 5 дней. Хронология подготовки микропривода описана в таблице 2. Используя этот микродрайв, девять тетродов и один кремниевый зонд были имплантированы в гиппокампа CA1 и MEC мыши 21 недели старый/29 г массы тела мужского pOxr1-Cre (C57BL/6 фон)», со...

Watch this Scientific Journal Video about Hybrid Microdrive System with Recoverable Opto-Silicon Probe and Tetrode for Dual-Site High Density Recording in Freely Moving Mice at JoVE.com

Hybrid Microdrive System with Recoverable Opto-Silicon Probe and Tetrode for Dual-Site High Density Recording in Freely Moving Mice

Этот протокол описывает конструкцию гибридного массива микропривода, который позволяет имплантировать девять независимо регулируемых тетродов и один регулируемый опитро-кремний зонд в двух областях мозга в свободно движущихся мышах. Также продемонстрирован метод безопасного восстановления и повторного использования опито-кремниевого зонда для различных целей.

Гибридная система микроdrive с восстанавливаемым Opto-Silicon зондом и Tetrode для двойной-сайта высокой плотности записи в свободно движущихся мышей

Multi-regional neural recordings can provide crucial information to understanding fine-timescale interactions between multiple brain regions. However, ...

Наша гибридная конструкция микродвигателя позволяет экспериментаторам не только записывать из нескольких областей мозга, но и выбирать различные типы электродов для оптимизации урожайности и стабильности. Мы объединили девять тетродов, кремниевый линейный зонд и волоконную оптику, которые регулируются и многоразовые в массиве микродвигателя для экспериментов in vivo со свободно перемещаемыми мышами. Этот метод может быть легко адаптирован к другим крупным животным, таким как крысы или мартыки.Кремниевые зонды чрезвычайно хрупкие. Мы должны быть осторожны при работе с зондами, например, при адаптации оптического волокна и при повороте сборки шаттла в микропривод. Массив микродвигателя состоит из пяти частей.Для подготовки микропривод винт для кремния зонд первый 3D печать пластиковый узор микродвигателя и место ленты вокруг шаблона, чтобы сделать временную стену вокруг шаблона. Налейте жидкий кремниевый гель в узор и удалите пузырьки воздуха с нежной тряской. Когда кремний вылечат, тщательно удалите форму кремния геля из шаблона.Далее используйте роторную мясорубку, чтобы сократить 18 и 9,5 мм длиной 23 калибра нержавеющей стали проволоки трубки и использовать шлифовальный станок, чтобы roughen верхней 2 до 3 мм труб. Нанесите небольшой объем кремниевого масла на пользовательский винт и установите трубки и винт в форму. Налейте зубной акрил в форму и использовать шприц для устранения любых пузырьков воздуха вокруг труб и винта.Когда зубной акрил полностью вылечить удалить микропривод винт из формы и использовать плоскогубцы согнуть 6 мм от одного конца 18 мм проволоки наконечник на 60 градусов угол. Используя поворотный инструмент повернуть микропривод винт, чтобы проверить качество затем установить микропривод винт в корпус массива микродвигателя и повернуть винт, чтобы проверить, может ли он двигаться вверх и вниз плавно. Для подготовки шаттла для кремниевого зонда используйте острые ножницы, чтобы сократить две длины 5 мм PEEK и выровнять трубки по обе стороны от шаттла.Клей трубки к шаттлу с эпоксидной смолой и применить небольшой объем кремниевого масла для руководства должностей. Когда эпоксидная смола высохла, поместите шаттл над направляными столбами тела массива микродвигателя, чтобы проверить качество. Шаттл должен двигаться плавно без чрезмерного трения.Для подготовки опторода используйте резак Руби, чтобы расщепить кусок оптического волокна до 21 мм в длину и измельчить кончик волокна, пока он не плоский и блестящий. Когда кончик будет готов, аккуратно поместите оптическое волокно на передней стороне кремния зонда от 200 до 300 микрометров над верхней части электрода сайтов и временно обеспечить волокна с прозрачной лентой затем клей оптического волокна к основанию кремния зонд с небольшим объемом эпоксидной смолы и позволяют эпоксидной смолы вылечить в течение пяти часов. Чтобы прикрепить шаттл к кремниевому зонду, нанесите небольшой объем эпоксидной смолы в задней части базы кремниевого зонда и аккуратно удерживайте нижнюю часть шаттла против базы кремниевого зонда в течение двух-трех минут, чтобы избежать образования разрыва между шаттлом и базой кремниевого зонда.Когда эпоксидная смола полностью вылечить провести паз шаттла с тонкой пинцетом и использовать микроскоп, чтобы тщательно разместить шаттл труб на направляющий пункт основного тела. Включите винт, чтобы вставить микропривод винт в винт отверстие и вставить кончик L формы трубки в паз головки шаттла заниматься кремния зонд и микропривод винт. Затем вырежьте два винта номер 0 до длины нити 3,5 мм и измельчите кончики для удаления заусенцев.Поместите держатель разъема зонда на корпус массива и вставьте электрический разъем кремниевого зонда в держатель. Вставьте винты номер 0, чтобы удержать держатель разъема зонда. Используйте эпоксидную смолу для обеспечения разъема кремниевого зонда в держателе, заботясь о том, чтобы не приклеить зонд к корпусу массива микродвигателя.Чтобы прикрепить держатель феррула к оптико-кремниевому зонду и корпусу массива микродвигателя, вырежьте два винта номер 0 до длины нити 6 мм и измельчите кончики. Измельчить за пределами двух номер 0 машина винт орехи, чтобы сделать небольшие гайки hex с 2,5 до 3 мм внешних диаметров и вставить номер 0 винт в компонент А держателя. Клей винт головок с эпоксидной смолой.Нанесите небольшой объем кремниевой смазки на компоненты A и B, чтобы уменьшить трение с телом. Используйте обратный пинцет, чтобы временно вставить компонент А в кузов и поместить компонент B на винты компонента A.Thread настроенные орехи на винты и использовать плоскогубцы, чтобы затянуть гайки, чтобы обеспечить держатель ферруля на тело. Вставьте волокно ferrule в паз держателя волокна ferrule заботясь что феррул волокна вставлять 4 до 5mm вне от держателя.Нанесите небольшое количество эпоксидной смолы между феррулом и пазом держателя. Когда эпоксидная откапись вылечить, ослабить орехи и превратить микропривод винт, чтобы проверить шаттл и держатель феррул для плавного движения, то подтвердить, что зонд отзыв полностью втягивается в тело, когда держатель феррулы находится в верхней позиции и челночных труб по-прежнему связаны с направляющими столбами. Чтобы прикрепить щит конуса, закрепите два 3,5 мм число 0 винты с внешней стороны конуса, чтобы держать микродвигатель на месте.Массив микродвигателя может быть настроен в течение пяти дней, если строительство завершено в соответствии со сроками, изложенными в таблице. После корректировки тетрода поведенческая производительность может быть проверена на линейной трассе и в открытом поле. В обоих типах экспериментов мышь может свободно исследовать в течение примерно 30 минут, в то время как электрофизиологические сигналы регистрируются без сильного шума, связанного с движением на протяжении всего сеанса записи.Свет стимуляции может быть выполнена в медиальной энториналь коры, чтобы стимулировать медиальной энторинальной коры слоя 3 нейронов, которые проект CA1 под поля гиппокампа. Спонтанные пики деятельности и локальных полевых потенциалов затем регистрируются из тетродов и кремния зонд, когда мышь спит. В этом репрезентативном эксперименте потенциалы левого поля, записанные в тетродах, продемонстрировали большую рябь, предполагая, что все тетроды были расположены в непосредственной близости от пирамидального клеточного слоя CA1.Свет индуцированных реагировать деятельности в этом анализе были впервые замечены в медиальной энториналь коры следуют мероприятия в рамках CA1 с 13 до 18 миллисекунд задержки. Позаботьтесь, чтобы вставить оптико-силиконовый зонд в корпус микродвигателя в электростатической свободной среде. Защитный конус можно заменить такими материалами, как лист бумаги и лента.Это позволит снизить скорость микродвигателя до 20%Наша конструкция микродвигателя обеспечивает гибкий выбор для эффективного сочетания записывающих электродов для измерения и управления несколькими областями мозга и для исследования динамики и взаимодействия различных структур мозга.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

High-density EEG Recordings of the Freely Moving Mice using Polyimide-based Microelectrode

Высокая плотность ЭЭГ Записи свободно движущихся мышей использованием полиимида основе Микроэлектродные

Electroencephalogram (EEG) indicates the averaged electrical activity of the neuronal populations on a large-scale level. It is widely utilized as a ...

Recording Single Neurons' Action Potentials from Freely Moving Pigeons Across Three Stages of Learning

Запись потенциалов действия отдельных нейронов &#39;свободно перемещаться Голуби на трех этапах обучения

While the subject of learning has attracted immense interest from both behavioral and neural scientists, only relatively few investigators have observed ...

Extracellular Wire Tetrode Recording in Brain of Freely Walking Insects

Внеклеточная провода Тетрод Запись в Мозга Свободно Прогулки Насекомые

Increasing interest in the role of brain activity in insect motor control requires that we be able to monitor neural activity while insects perform ...

Insect-machine Hybrid System: Remote Radio Control of a Freely Flying Beetle (Mercynorrhina torquata)

Insect-machine Hybrid System: Remote Radio Control of a Freely Flying Beetle Mercynorrhina torquata

Насекомое-машина гибридная система: Пульт дистанционного управления Радио свободно Полет Жук (<em&gt; Mercynorrhina torquata</em&gt;)

The rise of radio-enabled digital electronic devices has prompted the use of small wireless neuromuscular recorders and stimulators for studying in-flight ...

Fabrication of High Contact-Density, Flat-Interface Nerve Electrodes for Recording and Stimulation Applications

Изготовление High-Density Контакт, с плоским Интерфейс Нервные электроды для записи и стимуляция приложений

Many attempts have been made to manufacture multi-contact nerve cuff electrodes that are safe, robust and reliable for long term neuroprosthetic ...

Recording EEG in Freely Moving Neonatal Rats Using a Novel Method

Запись ЭЭГ в свободно перемещающихся крысах новорожденных с использованием нового метода

EEG is a useful method to detect electrical activity in the brain. Moreover, it is a widely used diagnostic tool for various neurological conditions, such ...

Noninvasive EEG Recordings from Freely Moving Piglets

Неинвазивный ЭЭГ записи от свободно перемещающихся поросят

The method allows the recording of high-quality electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen. We use a one-channel ...

Multi-Fiber Photometry to Record Neural Activity in Freely-Moving Animals

Мульти-Волокно Фотометрия для записи нейронной активности в свободно движущихся животных

Recording the activity of a group of neurons in a freely-moving animal is a challenging undertaking. Moreover, as the brain is dissected into smaller and ...

Intracerebroventricular Delivery of Gut-Derived Microbial Metabolites in Freely Moving Mice

Интрацеребровентрикулярная доставка кишечных микробных метаболитов у свободно движущихся мышей

The impact of gut microbiota and their metabolites on host physiology and behavior has been extensively investigated in this decade. Numerous studies have ...

Extracellular Electrophysiological Recording in the Motor Cortex of Mice

Multichannel Extracellular Recording in Freely Moving Mice

Advancements in Multichannel Extracellular Recording for Studying Neuronal Activity in Freely Moving Mice (Video) | JoVE

Многоканальная внеклеточная запись у свободно движущихся мышей

The protocol aims to uncover the properties of neuronal firing and network local field potentials (LFPs) in behaving mice carrying out specific tasks by ...