Name: establishment of a severe dry eye model using complete dacryoadenectomy in rabbits
Uploaded: 2020-01-08T13:00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Establishment of a Severe Dry Eye Model Using Complete Dacryoadenectomy in Rabbits at JoVE.com

אנו מכירים את התמיכה הפיננסית מתוך מענק הזדמנויות מחקר בבית הספר לרפואה של אוניברסיטת אבן ברוק ומענק מחקר של תרופות רפואיות, Inc., סיטאוקט, ניו יורק. אנחנו מודים ליקלה מקטרנן. לתמיכה במערכת העריכה

<ol>
	<li>Gillan, W. D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tear+biochemistry:+A+review.">Tear biochemistry: A review.</a> South African Optometrist. 69 (2), 100-106 (2010).</li><li>Conrady, C. D., Joos, Z. P., Patel, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Review:+The+Lacrimal+Gland+and+Its+Role+in+Dry+Eye.">Review: The Lacrimal Gland and Its Role in Dry Eye.</a> Journal of Ophthalmology. 2016, 7542929 (2016).</li><li>Schechter, J. E., Warren, D. W., Mircheff, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+lacrimal+gland+is+a+lacrimal+gland,+but+rodents'+and+rabbits'+are+not+human.">A lacrimal gland is a lacrimal gland, but rodents' and rabbits' are not human.</a> Ocular Surface. 8 (3), 111-134 (2010).</li><li>Shinomiya, K., Ueta, M., Kinoshita, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+dry+eye+mouse+model+produced+by+exorbital+and+intraorbital+lacrimal+gland+excision.">A new dry eye mouse model produced by exorbital and intraorbital lacrimal gland excision.</a> Scientific Reports. 8 (1), 1483 (2018).</li><li>Bhattacharya, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tear+Production+After+Bilateral+Main+Lacrimal+Gland+Resection+in+Rabbits.">Tear Production After Bilateral Main Lacrimal Gland Resection in Rabbits.</a> Investigative Ophthalmology and Visual Science. 56 (13), 7774-7783 (2015).</li><li>Chen, Z. Y., Liang, Q. F., Yu, G. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+a+rabbit+model+for+keratoconjunctivitis+sicca.">Establishment of a rabbit model for keratoconjunctivitis sicca.</a> Cornea. 30 (9), 1024-1029 (2011).</li><li>Li, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+the+mild,+moderate+and+severe+dry+eye+models+using+three+methods+in+rabbits.">Establishment of the mild, moderate and severe dry eye models using three methods in rabbits.</a> BioMed Central Ophthalmology. 13, 50 (2013).</li><li>Honkanen, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+New+Rabbit+Model+of+Chronic+Dry+Eye+Disease+Induced+by+Complete+Surgical+Dacryoadenectomy.">A New Rabbit Model of Chronic Dry Eye Disease Induced by Complete Surgical Dacryoadenectomy.</a> Current Eye Research. , 1-10 (2019).</li><li>Nisha, S., Deepak, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Insight+Into+Ophthalmic+Drug+Delivery+System.">An Insight Into Ophthalmic Drug Delivery System.</a> International Journal of Pharmaceutical Studies and Research. 3 (2), 9-13 (2012).</li><li>Davis, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Anatomy+and+Histology+of+the+Eye+and+Orbit+of+the+Rabbit.">The Anatomy and Histology of the Eye and Orbit of the Rabbit.</a> Transactions of the American Ophthalmological Society. 27, (1929).</li><li>Popesko, P., Rajitova, V., Horak, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+-+Guinea+Pig.">Rabbit - Guinea Pig.</a> A Colour Atlas of the Anatomy of Small Laboratory Animals. 1, (1992).</li><li>Honkanen, R. A., Huang, L., Rigas, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+rabbit+model+of+aqueous-deficient+dry+eye+disease+induced+by+concanavalin+A+injection+into+the+lacrimal+glands:+Application+to+drug+efficacy+studies.">A rabbit model of aqueous-deficient dry eye disease induced by concanavalin A injection into the lacrimal glands: Application to drug efficacy studies.</a> Journal of Visualized Experiments. , e59631 (2019).</li><li>Wei, Y., Asbell, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+core+mechanism+of+dry+eye+disease+is+inflammation.">The core mechanism of dry eye disease is inflammation.</a> Eye &amp; Contact Lens. 40 (4), 248-256 (2014).</li><li>Pflugfelder, S. C., de Paiva, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Pathophysiology+of+Dry+Eye+Disease:+What+We+Know+and+Future+Directions+for+Research.">The Pathophysiology of Dry Eye Disease: What We Know and Future Directions for Research.</a> Ophthalmology. 124 (11S), S4-S13 (2017).</li><li>Gilbard, J. P., Rossi, S. R., Gray, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+rabbit+model+for+keratoconjunctivitis+sicca.">A new rabbit model for keratoconjunctivitis sicca.</a> Investigative Ophthalmology and Visual Science. 28 (2), 225-228 (1987).</li><li>Odaka, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficacy+of+retinol+palmitate+eye+drops+for+dry+eye+in+rabbits+with+lacrimal+gland+resection.">Efficacy of retinol palmitate eye drops for dry eye in rabbits with lacrimal gland resection.</a> Clinical Ophthalmology. 6, 1585-1593 (2012).</li><li>Toshida, H., Nguyen, D. H., Beuerman, R. W., Murakami, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+novel+dry+eye+model:+preganglionic+parasympathetic+denervation+in+rabbit.">Evaluation of novel dry eye model: preganglionic parasympathetic denervation in rabbit.</a> Investigative Ophthalmology and Visual Science. 48 (10), 4468-4475 (2007).</li><li>Burgalassi, S., Panichi, L., Chetoni, P., Saettone, M. F., Boldrini, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+simple+dry+eye+model+in+the+albino+rabbit+and+evaluation+of+some+tear+substitutes.">Development of a simple dry eye model in the albino rabbit and evaluation of some tear substitutes.</a> Ophthalmic Research. 31 (3), 229-235 (1999).</li><li>Xiong, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+rabbit+dry+eye+model+induced+by+topical+medication+of+a+preservative+benzalkonium+chloride.">A rabbit dry eye model induced by topical medication of a preservative benzalkonium chloride.</a> Investigative Ophthalmology and Visual Science. 49 (5), 1850-1856 (2008).</li><li>Shiue, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+modulation+of+fluid+secretion+in+the+pigmented+rabbit+conjunctiva.">Pharmacological modulation of fluid secretion in the pigmented rabbit conjunctiva.</a> Life Science. 66 (7), 105 (2000).</li><li>Li, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+conjunctival+epithelium+transports+fluid,+and+P2Y2(2)+receptor+agonists+stimulate+Cl(-)+and+fluid+secretion.">Rabbit conjunctival epithelium transports fluid, and P2Y2(2) receptor agonists stimulate Cl(-) and fluid secretion.</a> American Journal of Physiology: Cell Physiology. 281 (2), C595-C602 (2001).</li><li>Dartt, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+mucin+and+fluid+secretion+by+conjunctival+epithelial+cells.">Regulation of mucin and fluid secretion by conjunctival epithelial cells.</a> Progress in Retinal and Eye Research. 21 (6), 555-576 (2002).</li></ol>

המחברים לא מצהירים על אינטרסים מתחרים פרט ל-BR שיש לו מעמד השקעות בפרמצבטיקה, Inc. ו-Api Therapeutics, LLC; ו LH, עובד של תרופות מדיקה, Inc. עם מיקום ההון Api Therapeutics, LLC.

DED מסווג לשתי קבוצות עיקריות המבוססות על ההשפעה על יציבות הסרט מדמיע: לקויה מימית (הייצור ירד של הרכיב מימית של הסרט לקרוע; ~ 20% של DED) ו התאדות (התאיידות מוגברת של סרט הדמעות; ~ 50% of DED). כ -30% מהחולים DED להראות ראיות של שניהם (DED מעורב). דלקת היא המנגנון הליבה של הDED שבו חבלות מגוונות שלה להתכנס13,14. שיטת המודלים שלנו מימית לקויה.
כפי שהוזכר קודם לכן, הצעדים הראשונים חשובים ברבייה השיטה שלנו הם הערכה של נקודות בסדר של האנטומיה של בלוטות לקטמאל מסלולית (LGs) של הארנב והימנעות בלבול על ידי מגוון המינוח האנטומי מגוונות ולעיתים. האטלס האנטומי של Popesko et al.11 הוא יסודי מאוד. עבור אלה פחות נוח עם האנטומיה של הארנב, חיתוך של דגימות נמק מספק היכרות קלה עם מבנים אלה ומסייע הסרת הניתוח שלהם ביצורים חיים.
ייעוץ ביקורתי על דיור והסתגלות בעלי חיים ניתן בפרסום הנלווה שלנו12. מאמר זהה גם מציג הערות שימושיות עבור מאמר את הפרמטרים של DED בשימוש בשתי השיטות.
בניגוד לשיטה הקודמת12, זה דורש רמה גבוהה יותר של כישורים כירורגיים בשל המידה ואת האופי הפולשני יותר של הטכניקות הדרושות כדי להסיר את lgs. הסיכון הגדול ביותר במהלך הסעיפים האלה הוא דימום קטסטרופלי הנגרמת על ידי פגיעה בכלי הגדול הנמצאים בקרבת LGs כגון ענפים של עורק הראש. זה נמנע על ידי המחשה כראוי כל LG ושולי שלה בתוך השדה כירורגי. בסופו של דבר, הסרת להיטות הקרום הניגדירוג עלולה להוביל לצניחה של בלוטת הרדאנית, שיכולה לשבש את הערכת הסרט דמעה.
הטיפול צריך להילקח כדי למזער את כמות ההפרעה לחאתה עם הסרת PSLG, היבט הרומן של השיטה שלנו המשפרת את היכולת ומגבירה את חומרת DED. זה באופן מפתיע קל להקים את המטוס לניתוח ולשאת אותו בחזרה הרכס מסלולית מעולה כל עוד המתיחה מוחל על הרקמות. זה מרגיע להיות מסוגל לראות את סימני הקאולטרי מן החיתוך של OSLG; הם מאשרים את ההסרה המלאה של הצינור הראשי הפרשות של בלוטת.
הסרת ILG בשלמותו מציג אתגרים גם כן. לבודד את ראש הבלוטה תחילה, כמו זה החלק הקל ביותר להמחיש. כל הראש של רקמת בלוטת מפריד בקלות מן הרקמות הסובבות; עם זאת, חלק הטיפול חייב לשמש כדי למנוע נזק לסינוס ורידים גדולים, אשר נמצא המדיאלי לראש ILG. הזנב של ILG לאחר מכן ניתן לעקוב בחזרה כפי שהוא עובר מתחת לעצם הזיגובטית. רוב הזנב קל לבודד. עם זאת, ההיבט האחורי ביותר של הזנב יכול להוכיח יותר מאתגר בגלל אנטומיה משתנה וקרבתו לענף בינוני של העורק. ניתוח קפדני צריך לאפשר את כל השוליים של ILG להיראות בבהירות, הקלה ההסרה המוחלטת שלה. החוקר צריך להיות מוכן לשאת את הניתוח יותר גבוה במקרים שבהם הזנב של בלוטת מסתיים תחת canthus לרוחב, כפי שהוסבר בדיון הקודם של האנטומיה של בלוטות לקרימל. של הערה, המחברים מעולם לא הצליחו לזהות חלק כלשהו של OSLG כאשר מבתר את ILG באמצעות חתך הכורארית לאורך הזמן העולם הנחות. למרות שזה יכול להיות אפשרי מבחינה טכנית, כי גישה כירורגית נושאת סיכון גבוה מדי לדימום רציני. מתקרבים OSLG דרך הincisure האחורי מוכיחה הרבה יותר בטוח.
את הצינור הפרשות של ILG ניתן לראות חודר דרך המישור התחתון הנחותים כפי שהוא עובר לתוך הלחמית לבלב. מדי פעם, אוניות קטנים של רקמה הופעת הבלוטות נראים גם כאן וגם ניתן להסיר בזהירות.
זה מאוד עוזר לשמור על סדר של LG כריתה כפי שהוצג כאן. אם ILG הוסר הראשון, הבידוד של OSLG הופך מבחינה טכנית הרבה יותר קשה. הסיבה העיקרית היא כי, לאחר הסרת ILG, OSLG לא ניתן לבצע בקלות ובכך זיהה.
יתרון משמעותי של המודל שלנו הוא שזה יכול להיות "מודולרי". במילים אחרות, את מידת הנגרמת על ידי כריתת דקראיואדדזיס ניתן לכייל כדי לשרת את הצרכים הניסיוניים. לדוגמה, כריתה של כל LGs היה לגרום DED מקסימלי, אבל הכריתת של SLG רק יגרום הצורה המוזרה של DED ו כריתה של ILG רק ייצור מחלה של חומרת ביניים.
הגישה שלנו, אשר מסכם את האירוע הפתופסולוגי הנפרד של ייצור מופחת של הפקת הדמעה מציעה יתרונות נוספים בהשוואה לשיטות שכבר דווחו. בקצרה, אין מודל כירורגי אחר מסולק הייצור דמעה על ידי כל lgsמסלולית 5,6,7,15,16; כולל שימור פארא-פתטי של lgs17, ו דיכוי תרופתי של ייצור מדמיע18,19, עם שני האחרונים שלהם ההשפעות שלהם מחוץ ליעד כמו confounders משמעותיים. לבסוף, מודל זה ממזער את ההטיה תלויי החוקר העיקרי, כלומר הניתוח השלם של LGs, מאז הטכניקה כירורגית מעניקה הדמיה מלאה שלהם; זה מסייע על ידי העובדה כי אין הומוקיפאון, מלבד הקאולטרי, נדרש.
החוקר צריך להיות מכיר כי כריתה מלאה של כל LGs מסלולית אינו מייצר היעדרות מוחלטת של דמעות, ו, למשל, מבחן דמעה הערכים של שיימר מתקרב לאפס לא צפוי. זאת בשל העובדה כי יש תמיד מקורות אחרים של נוזל דמעה כמו אביזר lgs של wolfring ו קראוס ופלזמה דליפת מכלי לחטיגאל20,21,22. מנקודת מבט ניסיונית, יש לראות את זה כהיבט חיובי של השיטה כפי שהיא שומרת על המשטח העינית; המושלם לחלוטין הגינון לגמרי להרוס את הקרנית שלילת התועלת של המודל. בנוסף, בהתגלמות הנוכחית שלה, מודל זה מציע הזדמנות מצוינת ללמוד מנגנונים פיצוי כאלה והובלת נוזלים על פני התאים הקטנים האלה.
לסיכום, המוצגים כאן הם הפרטים של השיטה הרומן הצדדי של גרימת מימית לקויה המכיל את עצמו לחקר הפיזיולוגיה דמעה, הפתוגנזה של DED וחקר הסוכנים הטיפוליים שפותחו עבור אינדיקציה זו.

דמעות נדרשות להגנה על המשטח העינית ולשמירה על התכונות האופטיות של הקרנית. הם מורכבים משלוש שכבות: ציפויים פנימיים של ריריות, מרכיב מימית בינוני, ושכבת-על ליפיד1. שכבת ריריות מופק בעיקר בתאי גביע של לחמית, המרכיב המים בעיקר בבלוטות לקטמל (lgs), ואת שכבת השומנים בעיקר בבלוטות מייבואן1,2. LGs מסלולית הם המקור העיקרי של מרכיב מימית של דמעות עבור רבים של חלבונים המגנים על פני השטח מפני התקפה חיידקית3. מחלות פני השטח מתגלים כאשר ייצור הדמעה מימית יורדת מתחת לרמה קריטית, לשלול את משטחי האפיתל של העין של המרכיב מימית והמרכיבים המכריע של הקרע כולל גורמי גדילה, lysozyme, ו lactoferrin. במקרים של ייצור דמעה ירידה על ידי ה-LGs, רקמות הלחמית והקרניות עוברות עיבודים כדי לפצות על הסביבה השונה.
הבנת התרומה של רכיב הדמעה נגזר LGs מסלולית ואת מנגנוני הפיצוי של המשטח העינית כאשר זה חסר משפיע על הערכתנו של הפיזיולוגיה ואת פתופסולוגיה של הקטע הקדמי של העין,, באופן רחב יותר, של בריאות ומחלות בעולם כולו. הגישה הניסיונית לסוגיות אלה מחייבת דגם בעל חיים אינפורמטיבי. כתוצאה מכך, מספר קבוצות ניסו לפתח דגמי בעלי חיים שבהם מוסרים LGs מסלולית, ובכך מקלה על הערכת התפקיד של דמעות בבריאות העינית. מודל אחד כזה דווח לאחרונה עבור העכבר4. הארנב מציע, עם זאת, יתרונות שונים רבים על פני דגמי מכרסמים כולל מבנים דומים אנטומיים היסטולוגיים של LG, ואולי יותר חשוב, גודל דומה ופני שטח של רקמות קרנית ולחאל בהשוואה עמיתיהם האנושיים שלהם3.
יצירת מחלת עין יבשה לקויה מימית (DED) על ידי כריתת כירורגית של רקמת LG בארנבים הוא לא חדש. דיווחים רבים מתארים כריתה של רקמות LG עם הצלחה משתנה המתבטא בשינויים משתנים בייצור הדמעה הנמדדת על ידי מבחן הדמעה של שיאירמר5,6,7,8. הבנה יסודית של האנטומיה הרלוונטית של הארנב והבהירות לגבי המינוח האנטומי מסייעת רבות לשחזר את השיטה. סקירה יסודית של שניהם מסופקת להלן.
אנטומיה של בלוטות הלקמאל
הארנב יש שני LGs מסלולית: את הנחותים יותר LG (ILG) ואת מעולה יותר LG (SLG; איור 1). ILG משתרע לאורך ההיבט הנחות והאחורי של השפה הסלולית. למעט גודל משתנה, החלק הקדמי של ILG יש מראה בולבוסי אחיד למדי, כי ניתן לראות כפרוטוברוליות בעור מתחת לגלובוס (איור 2). בשל מראהו האופייני ביחס לשאר הבלוטה, הוא נקרא "ראש" של ה-ILG. חלק מהראש גולש סביב ושוכב על פני השטח החיצוני של העצם הזיגובטית. זה משמש ציון דרך שימושי על אולטרסאונד ביורוביסקופיה להנחות זריקות לתוך ILG. שארית הראש שוכנת במסלול. מדיום יותר9
בשל המראה האופייני של החלק הנותר של ILG, שהוא ארוך ורזה, קטע זה נקרא "זנב". הזנב רץ לאורך השפה האורביטל נחות, מראש ILG אל השפה מסלולית שבו היא מסתיימת עם אנטומיה משתנה על השוליים הנחותים והאחוריים (איור 3א). הזנב טמון עמוק (המדיאלי) אל עצם הזיגובטית הופרדו מתוכן מסלולית על ידי הלהקה לרוב עבור רוב הקורס שלה עד שהוא מגיע הקצה האחורי של המסלול שבו הוא שוב משתרע על פני השטח החיצוני של העצם הזיגובטית. ה-ILG מקבל את אספקת הדם שלו מענפים של העורק הראשי.
ל-SLG יש שני רכיבים אנלוגיים לבני האדם. אחד הוא palpebral מעולה LG (PSLG), אשר שוכנת העפעף העליון האחורי לצלחת tarsal. הוא מופיע בולבוסי בטבע ויש לו פתחים שונים ומרובים שסוחטים נוזלי דמעה מימית שניתן לראות בקלות רבה יותר כאשר מכוסים ב-2% פלואורואסעין (איור 3ב).
השני הוא מסלול מעולה LG (OSLG), המתגוררים במצב המדיאלי במסלול מעולה (איור 3ג). בשל מיקומו ליד קו האמצע של הגולגולת, זה היה בלתי אפשרי לזהות את זה בהצלחה באמצעות גישות כירורגית חיצוניות מהמסלול הזמני או הנחות. בדוגמאות נמק טרי או במקרים כירורגיים, בלוטה זו יכולה להיות מיושמת דרך incisure האחורי הממוקם במשטח של הגולגולת כאשר הלחץ המדיאלי עדין מוחל על הגלובוס. צניחה של רקמת הבלוטות הזה יכול להיות מתועד עם ביואורוסקופיה אולטרסאונד.
PSLG ו-OSLG הם מבנים רציפים. OSLG הוא מבנה tubuloכתשיים אשר האדריכלות ductal שלה לתוך צינור הפרשות הראשי. צינור זה עובר תחת הרכס מסלולית ופועל ברקמות המכסה העליון מסתיימת PSLG. לאורך צינור הפרשות, רקמת הבלוטות העקבית עם התיאורים המקוריים של דיוויס זוהה10 (איור 3ד).
הערה על טרמינולוגיה
תיאורים אנטומיים מצוינים ומקיפים משתמשים גם במינוח משתנה. אנטומיה מסלולית קלאסי ידי דיוויס מגדירה רק LG העליון והתחתון10. עם זאת, התיאור שלו של LG העליון מפרט בבירור את החלקים מוגדרים במפורש כאן כמו PSLG ו-OSLG, בעוד התיאור של LG התחתון פרטים את החלקים מוגדרים כאן כראש זנב של ILG. אטלס אנטומי לאחרונה ויסודית יותר11 מגדיר את הרקמות האלה כמו בלוטת הזיגובטית ואביזר LG. המונח "lacrimal בלוטת" משמש כאן כדי להוות PSLG הנ ל ו OSLG. מינוח זה מתאים יותר לשחזר שיטה זו ללא בלבול מופרז.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>acepromazine, Aceproinj</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Dublin, OH</td>
			<td>NDC11695-0079-8</td>
			<td>0.1ml/kg subcutaneously injection for rabbit sedation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>anesthesia vaporizer</td>
			<td>VetEquip, Pleasanton, CA</td>
			<td>Item # 911103</td>
			<td>Protocol 4.8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>animal restraining bag</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Dublin, OH</td>
			<td>Jorvet J0170</td>
			<td>Use appropriately sized bag.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bupivacaine, 0.5%</td>
			<td>Hospira Inc, Lake Forest IL</td>
			<td>NDC: 0409-1162-02</td>
			<td>Mixed 50:50 with 2% lidocaine with 1:100,000 epinephrine for infiltration of incision sites, protocol 5.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>buprenorphine</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Dublin, OH</td>
			<td></td>
			<td>0.01 mg/kg, for postprocedural care, 6.1.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cautery unit, high-temperature, battery-powered</td>
			<td>Medline Industries Inc, Northfield, IL</td>
			<td>REF ESCT001</td>
			<td>Keep on hand in case of bleeding, protocol 2.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>clipper, Wahl Mini Arco</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Dublin, OH</td>
			<td>No. 022573</td>
			<td>Cordless shears for fur removal, protocol 4.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Colorado needle</td>
			<td>Stryker Craniomaxillofacial, Kalamazoo, MI</td>
			<td>N103A</td>
			<td>Use with electrosurgical unit to make incisions, protocol 5.1 &#38; 5.3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electrosurgical unit with monopolar cautery plate</td>
			<td>Valleylab, Boulder, CO</td>
			<td>Force FXc</td>
			<td>Use with electrosurgical unit to make incisions, protocol 5.1 &#38; 5.3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fluorescein, Ak-Fluor 10%</td>
			<td>AKRON, Lake Forest, IL</td>
			<td>NDC17478-253</td>
			<td>Dilute to 0.2% with PBS to measure TBUT, measurement of dry eye parameters, protocol 3.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>foceps, curved dressing</td>
			<td>Bausch and Lomb (Storz), Bridgewater, NJ</td>
			<td>Storz E1406</td>
			<td>delicate serrated dressing forceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>forceps, 0.3</td>
			<td>Bausch and Lomb (Storz), Bridgewater, NJ</td>
			<td>ET6319</td>
			<td>For removal of nictating membrane, protocol 2.5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>forceps, Bishop Harmon</td>
			<td>Bausch and Lomb (Storz), Bridgewater, NJ</td>
			<td>E1500-C</td>
			<td>Use toothed forceps for dacryoadenectomy, protocol 5.1 &#38; 5.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hair remover lotion, Nair</td>
			<td>Widely available</td>
			<td>Softening Baby oil</td>
			<td>Dipilitory cream for sensitive skin, protocol 4.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isoflurane</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Dublin, OH</td>
			<td>29405</td>
			<td>Possible alternative sedation, protocol 4.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter, Terumo Surflo ETFE 24-gauge</td>
			<td>Terumo, Tokyo, Japan; available from Fisher Sci., VWR, McKesson, etc.</td>
			<td>SR-OX2419CA</td>
			<td>25-gauge for smaller rabbits; protocol 4.6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ketamine</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Dublin, OH</td>
			<td>NDC 11695-0701-1; NADA 200-055</td>
			<td>15 mg/kg, protocol 4.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ketoprofen</td>
			<td>Hospira, Inc., Lake Forest, IL</td>
			<td></td>
			<td>3 mg/kg, for postprocedural care, 6.1.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>laryngeal mask airway</td>
			<td>Docsinnovent Ltd, London, UK</td>
			<td>Vgel R3</td>
			<td>Protocol 4.8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lid speculum, wire</td>
			<td>Bausch and Lomb (Storz), Bridgewater, NJ</td>
			<td>Barraquer SUH01</td>
			<td>For removal of nictating membrane, protocol 2.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lidocaine 2% with epinephrine 1:100,000; 50:50 mixture</td>
			<td>Hospira Inc, Lake Forest IL</td>
			<td>NDC 0409-3182-02</td>
			<td>Pre-treat before removal of nictating membranes, protocol 2.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lidocaine, preservative-free</td>
			<td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td>
			<td>L5647</td>
			<td>1% in PBS for anesthesia agent, for application to eye, protocol 2.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>micropipette</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>Research Plus 100 uL</td>
			<td>For application of preservative-free lidocaine to eye, protocol 2.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>micropipette tips</td>
			<td>World Wide Medical Products</td>
			<td>41071052</td>
			<td>For application of preservative-free lidocaine to eye, protocol 2.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>monitoring device, multi-parameter</td>
			<td>SurgiVet, Waukesha, WI</td>
			<td>V9201</td>
			<td>For monitoring of vitals, protocol 4.9</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>needle, 26-gauge</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>REF 305115</td>
			<td>For injection of lidocaine/epinephrine, protocol 2.3 &#38; 2.5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>needle, 30-gauge</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>REF 305106</td>
			<td>For infiltration of incision sites; syringe and needle size are not critical, protocol 5.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>osmolarity tips</td>
			<td>TearLab Corp., San Diego, CA</td>
			<td>#100003 REV R</td>
			<td>Measure tear osmolarity measurement of dry eye parameters, protocol 3.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>osmometer, TearLab</td>
			<td>TearLab Corp., San Diego, CA</td>
			<td>Model#200000W REV A</td>
			<td>Measure tear osmolarity, measurement of dry eye parameters, protocol 3.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>povidone-iodine solution</td>
			<td>Medline Industries Inc, Northfield, IL</td>
			<td>PVP Prep Solution, NDC: 53329-939-04, REF MDS 093944</td>
			<td>To maintain sterile field, protocol 4.11</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rabbit, New Zealand White</td>
			<td>Charles River Labs, Waltham, MA (NZW)</td>
			<td>2-3 kg</td>
			<td>Research animals</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rose bengal stain</td>
			<td>Amcon Laboratories Inc., St. Louis, MO</td>
			<td>NDC51801-004-40</td>
			<td>1% in PBS, for staining the ocular surface, measurement of dry eye parameters, protocol 3.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>saline, normal</td>
			<td>B. Braun Medical, Irvine, CA</td>
			<td>REF R5200-01</td>
			<td>For postprocedural care, protocol 6.1.3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Schirmer Tear Test strips</td>
			<td>Eaglevision, Katena products. Denville, NJ</td>
			<td>AX13613</td>
			<td>Measure tear production, measurement of dry eye parameters, protocol 3.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>scissors, Vannas</td>
			<td>McKesson Medical-Surgical, San Francisco, CA</td>
			<td>Miltex 2-130</td>
			<td>Capsulotomy scissors for dacryoadenectomy, protocol 5.1 &#38; 5.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>scissors, Westcott tenotomy</td>
			<td>McKesson Medical-Surgical, San Francisco, CA</td>
			<td>Miltex 18-1480</td>
			<td>For removal of nictating membrane, protocol 2.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sedation gas mask</td>
			<td>DRE Veterinary, Louisville, KY</td>
			<td>#1381</td>
			<td>Possible alternative sedation, protocol 4.7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>surgical marking pen</td>
			<td>Medical Action Industries, Arden, ND</td>
			<td>REF 115</td>
			<td>Protocol 4.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sutures, 5-0 Mersilene</td>
			<td>Ethicon US, LLC</td>
			<td></td>
			<td>Ethylene terephthalate sutures, used for deep connective tissue closure, protocol 5.3.11</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sutures, Vicryl 6-0</td>
			<td>Ethicon US, LLC</td>
			<td></td>
			<td>Polyglactin 910 sutures, used for superficial muscle and skin closure, protocol 5.3.11</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>syringe, 1 cc</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>ref 309659</td>
			<td>For injection of lidocaine/epinephrine, protocol 2.3 &#38; 2.5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>syringe, 5 cc</td>
			<td>BD, Franklin Lakes, NJ</td>
			<td>REF 309603</td>
			<td>For infiltration of incision sites; syringe and needle size are not critical, protocol 5.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tissue forceps, 0.8mm Graefe</td>
			<td>Roboz Surgical Store, Gaithersburg, MD</td>
			<td>RS-5150</td>
			<td>Curved Weck forceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>topical antibiotic ointment (neomycin, polymyxin, bacitracin, and hydrocortisone)</td>
			<td>Bausch and Lomb, Tampa, FL</td>
			<td>NDC 24208-785-55</td>
			<td>Applied after removal of nictating membrane, protocol 2.8, and for postprocedural care, protocol 6.1.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ultrasound gel</td>
			<td>Parker Laboratories, Inc., Fairfield, NJ</td>
			<td>Aquasonic 100</td>
			<td>To ensure electrical contact with monopolar cautery plate, protocol 4.5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>xylazine</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Dublin, OH</td>
			<td>NADA: 139-236</td>
			<td>1 mg/kg, protocol 4.7</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

establishment of a severe dry eye model using complete dacryoadenectomy in rabbits

מחלת עיניים יבשות (DED) היא מחלה מורכבת עם מספר הסימפטומים ותסמינים משתנה, לאחר דלקת פני השטח העינית כצעד פתופסקולוגי מפתח שלה. למרות ההתקדמות שלנו בהבנת הפערים החשובים, נותרו פערי ידע משמעותיים. ההתקדמות מוגבלת בחלקו בשל העדר מודלים אינפורמטיביים של בעלי חיים. המחברים דיווחו לאחרונה על שיטה של המושרה על ידי הזרקת כל בלוטת האורביטל מסלולית (LG) רקמות עם לקטין concanavalin A. כאן, אנו מדווחים על מודל הרומן של מימית-לקויה מבוסס על הניתוח הכירורגי של כל LG מסלולית (דקקטומיה) רקמות. שתי השיטות משתמשות בארנבים בשל הדמיון שלהם לעיני האדם במונחים של הגודל והמבנה של המשטח העינית. שבוע לאחר הסרת הקרום nictitating, LG מעולה המסלול הוסר בניתוח תחת הרדמה, ואחריו הסרת של lg palpebral מעולה, ולבסוף הסרת lg נחותים. דקקטומיה הנגרמת על ידי מ הפחתת מבחני הזמן ומבחן הדמעה של שיימר, והגדילה באופן משמעותי את מכתים הדמעות ורוז בנגלי. . שנמשך לפחות 8 שבועות לא היו סיבוכים ובעלי חיים שסבל את ההליך היטב. הטכניקה יכולה להיות שולט יחסית בקלות על ידי אלה עם ניסיון כירורגי נאותה והערכה של אנטומיה הארנבים הרלוונטיים. מאז מודל זה מסכם את התכונות של האדם מימית לקויה, הוא מתאים למחקרים של הומאוסטזיס משטח עינית, DED, ו therapeutics המועמד.

שיטת הניתוח המלא המתואר כאן בוצעה על 8 בעלי חיים. זה דורש מידה מתונה. של כישורים כירורגיים זמן כירורגי ממוצעים כ 2.2 h עבור ניתוחים דו-צדדיים, למעט הסרת קרום nictitating, אשר נעשה בנפרד ונדרש < 10 דקות. לא היו הרוגים או סיבוכים הפנים והארנב לא נדרש כל סיוע הומוסטטי מלבד הקאולטרי צנוע.
הגישה הכירורגית שלנו בהצלחה. התוצאה הייתה יבשה בכל העיניים זה אושר על ידי פאנל של סמנים קליניים ומעבדתיים של DED (שולחן 1). במהלך 8 שבועות של התבוננות, ממוצע TBUT היה מדוכא על ידי יותר מ 75% של רמות preאופרטיבית (p < 0.0001 עבור כל נקודות הזמן). באופן דומה, ירד מבחן הדמעות של שיימר על-ידי כ-50%, שנותר במשך שמונה שבועות של התבוננות; היא לא הראתה מגמה להחלמה במהלך תקופת הטיפול. באופן שלאחר מכן, מסוסמלי הדמעות הראו עלייה של 10% בעקביות עם DED, מתמשכת לפחות 8 שבועות פוסט-שבועיים. רוז בנגלי כתמים של הקרנית גם גדל ולא הראה סימנים של התאוששות במהלך 8 שבועות של מעקב (איור 8). כל העיניים במהלך הניתוח המלא דקריואדריזיס הראה הפחתה מסומנת מספרים תא גביע ושינויי אפיתל עקבי עם עין יבשה (הרושם לחלב ציטולוגיה).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig1.jpg"> איור 1: אנטומיה של בלוטת הארנב (עין ימין). בלוטת הביות האורולית (OSLG) מורכבת מאזור מסלולית גדול יותר ומרכיב palpebral קטן יותר. גדול יותר לקטמאל בלוטת (ILG) מורכבת של הקדמי/ראש וחלקים האחורי/זנב. צירי הקואורדינטות מציגים את המינוח המשמש עבור כל תיאורי הכיוון המשמשים בטקסט. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig1alarge.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig2.jpg"> איור 2: מיקום ראש ה-ILG. מבט לרוחב של הפנים הנכונות לאחר הסרת פרווה. הבליטה במתאר העור (מסומן על ידי חצים עבים) נחות למסלול הקדמי מציין את המיקום של הראש של ILG שנמצא על פני השטח החיצוני של העצם הזיגובטית במיקום זה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig2alarge.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig3.jpg"> איור 3: בלוטות האורביטל לקטמל. (A) הימנית הנחותה לקטון (ilg) לאחר הצביעת עם הצבע הכחול אוונס מראה את הקירבה הקרובה של הזנב של ilg (החץ האדום) רק האמצעי לעצם הזיגומה (שחור חץ) ונחות לגלובוס. (ב) הפקת התוצרת של בלוטת הpalpebral העליונה (PSLG). תמונות זמן קפיצה שצולמו לאחר יישום אקטואלי של 2% fluorescein. נוזל מימית הנובע PSLG מדלל את הצבע הכהה בהתחלה כחול או שחור הופך אותו ירוק צהוב בהיר (בדומה בדיקות Seאידל). (ג) מיקום של slg מסלולית (oslg) בגולגולת ארנב, שוכב קרוב לקו האמצע של הגולגולת (קו מנוקד) בתוך incisure האחורי (החץ). צבע כחול אוונס הוזרק לתוך OSLG ו palpebral מעולה lacrimal בלוטת. (ד) סעיף היסטולוגיה דרך צינור הפרשות הראשי של oslg מוקף כמות קטנה של רקמת הבלוטות (חץ) הוא נראה זה החוצה החתך החוצה ויטראז עם המטאוקסילין וצבעים אאוזין נלקח דרך ההיבט האחורי (הזמני) של העפעף הימני העליון. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig4.jpg"> איור 4: הכנה לאתר כירורגי. (א) פאנל שמאליעליון: הסרת פרווה ארוכה עם מזמרה. כל שרידי פרווה עדינה מוסרים לאחר מכן עם קרם הרגעה קל. הפאנל הימני העליון: מראה סופי בעקבות הסרת פרווה מלאה המאפשרת סימון כירורגי באיכות גבוהה אולטרסאונד של ILG להתבצע. (ב) סימנים כירורגיים מתאימים של האזור הימני הפריביטל מוצגים; בדוגמה זו, את החתכים כדי להסיר את OSLG ו ILG המחוברים ליצור חתך אחד ארוך שנארית. מיקומו של הincisure האחורי מצוין על ידי סימן hash קטן על החתך באתר החיתוך (חץ). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig5.jpg"> איור 5: הסרת OSLG. (א) אתרים כירורגיים חדרו עם הרדמה באמצעות שילוב 50:50 של 2% לידוקאין עם 1:100,000 אפינפרין ו 0.5% bupi, אשר מוזרק לתוך המכסה העליון לאורך קווי החתך כדי למזער את חוסר הנוחות במהלך ההליך. (ב) המחט מיקרודיסקציה קולורדו משמש כדי לסמן את העור ואת שכבות שטחיות לאורך אתרי החתך מראש ניתוח כירורגי. המתיחה עדינה על פני הפצע מוחל על מנת ליצור את מישור החיתוך. כוויות באתר קטן (חץ) נעשו עם מחט קולורדו בנקודות מרוחקות לאורך קו החתך כדי לסייע באופן אופטימלי ליישר את הרקמות במהלך סגירת הפצע. (ג) oslg נחשף לאחר רקמות על גבי incisure האחורי גויסו (חץ). . הקפסולה של הבלוטה הייתה משובשת Oslg יכול להיות צניחת על ידי החלת הלחץ המדיאלי הגלובוס הקלה על הסרתו. (ד) מלקחיים משמשים כדי לעסוק oslg ובעדינות להסיר אותו ממיקומה העמוק בתוך המסלול דרך incisure האחורי. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig6.jpg"> איור 6: הסרת הבלוטה הpalpebral מעולה (PSLG) וצינור הפרשות. (א) בעקבות העפעף העליון, החלק הביולבוסי של PSLG הוא מעורב עם מלקחיים לגזור את טרסוס באמצעות מספריים. המתיחה להחיל PSLG עם מלקחיים הוא קריטי לשמירה על המטוס הכירורגי. (ב) את הניתוח של PSLG ואת צינור האוורור העיקרי הוא נשא הראשי לכיוון הרים מסלולית באמצעות חיתוך חדה המתיחה רציפה על בלוטת ורקמות הדביק כדי לשמור על המטוס הכירורגי המתאים. הניתוח אמור להימשך עד לנקודה שבה OSLG הוסר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig7.jpg"> איור 7: הסרת ה-ILG. (א) העור והשריר השטחית הינם שטחיים עד שהמטוס הנוגע לעצם הזיגואלי או לחלק השטרירי של שריר המלעס מגיע. ראש ILG בדרך כלל ברור בבירור כמו בליטה קטנה ממוקם תחת לימבוס הקדמי. (ב) הקפסולה הסיבית של ilg היא בעלת מספריים החושפים את ilg. לאחר הקפסולה היא משובשת, חלקים עמוקים יותר של בלוטת ניתן להסיר בקלות. (ג) החלק החיצוני ביותר של הראש ilg אשר שוכנת על עצם הזיגוטיות נחשף והשתקף בהמתנה מראה את עצם הזיגומה הבסיסית. (ד) החתך של מחיצת האורביטל לאורך החישוק הנחות חושף את הזנב של ilg. (ה) ענף של עורק הראש החיצוני מאכיל את הזנב של ilg (החץ). (ו) מראה בעקבות סגירת העור של חתכים לאחר השלמת הניתוח דקרייואדאז. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig7large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60126/60126fig8.jpg"> איור 8: כתמים בנגלי רוז של משטח הקרנית. צילום חיצוני מראה כתמים בולטים, הבולטים ביותר על רביע האף. כל העיניים שעברו כריתת דקריאדזיס מלאה פיתח שינויים דומים שהיו ברור על ידי שבוע אחד לאחר הניתוח והמשיך לפחות 6 שבועות. של הערה, רפלקס האור מן הפלאש טבעת מראה עיוות מפני השטח העינית יבש להפגין כיצד העין היבשה יכולה להשפיע לרעה על הראייה. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60126/60126fig8large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td></td>
			<td colspan="2">דקריוקטומיה</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td colspan="2">פירושו ± SEM; n = 16 עיניים</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>בסיסית</td>
			<td>שבוע 2</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">משבר לפרק זמן, שעון</td>
			<td rowspan="2">60.0 ± 0.0</td>
			<td>4.5 ± 1.2</td>
		</tr>
<tr>
<td>0.0001 <</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">דמעות של קריעה, מוזם</td>
			<td rowspan="2">291.2 ± 3.7</td>
			<td>315.3 ± 5.5</td>
		</tr>
<tr>
<td>p = 0.001</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">מבחן הדמעות של שמימר</td>
			<td rowspan="2">18.3 ± 1.3</td>
			<td>10.5 ± 1.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>p = 0.0006</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">רוז בנגל, תוצאות משנות האפס</td>
			<td rowspan="2">0.0 ± 0.0</td>
			<td>4.28 ± 0.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>0.0001 <</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="3">מופעל לעומת בסיס: דקריטומיה : tbut p < 0.0001; לקרוע, p < 0.001; מבחן קריעה של שמימר, פי < 0.0006); ורדים בנגל.</td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 1: העין היבשה פרמטרים על שבוע הפוסט-פעיל 2.

Watch this Scientific Journal Video about Establishment of a Severe Dry Eye Model Using Complete Dacryoadenectomy in Rabbits at JoVE.com

Establishment of a Severe Dry Eye Model Using Complete Dacryoadenectomy in Rabbits

הגישה הרומן מוצגת כדי לגרום כרונית מחלת עיניים יבשות בארנבים על ידי הסרת בניתוח כל בלוטות מסלולית לקטמאל. שיטה זו, ברורה מאלה שדווחו בעבר, מייצרת מודל יציבה, מובחנות של עין יבשה לקויה מימית מתאים היטב לחקור את הפיזיולוגיה של הקרע ו פתופסיולוגיה therapeutics עינית.

הקמת מודל העין יבש קשה באמצעות השלמת דקרייוקטומיה בארנבונים

Dry eye disease (DED) is a complex disease with multiple etiologies and variable symptoms, having ocular surface inflammation as its key pathophysiologic ...

השיטה הבטוחה שלנו, לשחזור עבור dacryoadenectomy מלא ארנבים יוצר מצב עקבי של עין יבשה לקויה מים כי הוא שימושי לחקר פיזיולוגיה של המחלה ואת היעילות של התערבויות טיפוליות. הסרת בלוטות lacrimal מסלולית ו palpebral מעולה משפר באופן משמעותי את העקביות והחומרה של העין היבשה המושרה, ומגביל את השינויים פיצוי בייצור קרע לרקמות פני השטח העין. רקמות בלוטת הדמעות שוכב בתוך הנספח תא מסלולית למבנה כלי דם גדול.היכרות עם האנטומיה תסייע בהסרת סיוע רב ותסייע במניעת סיבוכים כירורגיים. הסרת מערכת בלוטת הדמעות היא טכניקה מורכבת למדי מעורבים מיקומי חתך מרובים ומישורים כירורגיים, אשר הפגינו בצורה הטובה ביותר חזותית. התחל בהסרה דו-צדדית של הממברנה הניקטית.השתמשו במיקרופיגט כדי למרוח 25 מיקרוליטרים של לידוקאין ללא חומרים משמרים על העין, ולהכניס ספקולום מכסה בין העפעפיים. תפסו את הממברנה הניקטית בשיאה עם מדפים של 0.3 ומושך אותה מעל משטח הקרנית. לאחר מכן, להזריק כ 0.3 מיליליטר של 1% לידוקאין עם אחד עד 100, 000 אפינפרין לתוך החלל subconjuctival, באמצעות מחט מד 26.זה יהיה bleb בגודל צנוע מעל קרום nictitating. הסר את ספקולום החוט ולחכות כחמש דקות עבור לידוקאין ואפינפרין להיכנס לתוקף. בינתיים, לבצע את אותו הליך על העין השנייה.כאשר מוכן, להחליף את ספקולום חוט, לתפוס ולהרחיב את קרום nictitating על פני הקרנית עם המדפים, לחתוך את הממברנה בבסיסו עם מספריים tenotomy. הסר את ספקולום החוטים והצב משחה אנטיביוטית אקטואלית על פני הקרנית. כדי להסיר את בלוטת lacrimal מעולה מסלולית, או OSLG, לחדור לאתרי החתך עם תערובת של 50 עד 50 של 2% לידוקאין ואחד עד 100, 000 אפינפרין עם 0.5%Bupivacaine.לאחר מכן, השתמש במחט קולורדו המחוברת ליחידה אלקטרוכירורגית כדי לבצע את החתכים בעור לאורך הסימונים הכירורגיים. הגדרות אופייניות הן בין 10 ל -15 יחידות הן לחתוך קרישה, אבל יכול להשתנות, בהתאם לתגובה הקלינית. החל מתח מנוגד על פני חתך העור כדי להפריד את הרקמות ולחשוף את סיבי השריר הקדמיים הבסיסיים.לאחר מכן, להחיל לחץ המדיאלי על העולם כדי לסייע הדמיה של OSLG, אשר נתפסת רקמה בולטת ממוקם רק מדיאלי או עמוק על סיבי השריר frontoscutularis. במידת הצורך, להעביר את סיבי השריר לצד כדי לחשוף את החתך הבסיסי, ולהשתמש מטס שיניים עם מספריים capsulotomy לסגת בעדינות לחתוך את הקפסולה הסיבית מעל OSLG. באמצעות מדפים, לתפוס את רקמת בלוטת OSLG בעדינות למשוך אותו דרך החתך מעולה באמצעות טכניקה יד מעל היד.חותכים להקות סיביים קטנים עם מספריים capsulotomy כדי לשחרר את הבלוטה ממקומו במסלול. כאשר הבלוטה הוסרה, להשתמש צריבה נדיבה עם המחט קולורדו כדי ליצור char רקמות, חיתוך הבלוטה בתוך החתך עמוק ככל האפשר. זה ישמש מאוחר יותר כציון דרך מאשר במהלך הסרת בלוטת הדמעות מעולה palpebral, או PSLG.כדי להסיר את PSLG, אוורט העפעף העליון עם מוליך כותנה, אשר יהפוך את הקצה בולבוסי של PSLG גלוי. לעסוק PSLG עם מטח שיניים ולמשוך אותו מפני השטח עפעף תוך שימוש מספריים capsulotomy לחתוך סביב הבסיס שלה להפריד אותו מן tarsus הבסיסית. שליטה דימום מתון עם צרבת מונופול.החל מתיחה רציפה על מישור הרקמה המופרדת עבור ניתוח, אשר יאפשר את צינור הפרשה העיקרי של בלוטת lacrimal מעולה, או SLG, גם כן. כדי לכרות את בלוטת הדמעות הנחותה הגדולה יותר, או ILG, השתמש במחט המיקרו-דיסקט של קולורדו כדי לחמוס ולהפריד את העור, את שריר הדיכאון של הפלפרה הנחותה, את החלק הזיגומטי או השפתיים של השריר הזיגומטי ואת שריר הסביקים. לשמור על יתן עם צרבת מונופולארית.כאשר החתך נישא עמוק יותר דרך סימון העור, חפש את ההברקה של מישור fascial מעל העצם זיגומטי או חלק שטחי של שריר המעסה. בשלב זה, לשמור על מישור הרקמה לשאת אותו מעולה לכיוון שפת המסלול. לזהות ולהסית את הקפסולה המקיפה את ILG, ולאחר מכן לזהות את רקמת השיזוף של ILG.רק החלק האחורי של ראש ILG יהיה גלוי, אבל זה יכול להיות במעקב מתווך כפי שהוא עובר מתחת לקשת זיגומטי ומעברים לתוך הזנב. השתמש מספריים tenotomy לחתוך את מחיצת מסלולית לאורך השפה הנחותה, חושף את החלק האחורי יותר של זנב ILG. לאחר זיהום מישור הרקמה, להאריך את הניתוח האחורי לאורך כל קו החתך.יש להיעזר בזהירות רבה כדי לא לפגוע באספקת הדם שמקבל ה-ILG מסניפי העורק הראשי. לאחר איל"ג כולו נחשף, להסיר אותו. אם הזנב מסתיים תחת התותב האחורי, ראה את כתב היד לכיווני כריתה.בשל גודלו הגדול, זה יכול להיות עדיף לחתוך את הבלוטה לחצי ולהסיר את הראש בנפרד מהזנב. לאחר שהבלוטות הוסרו, סגור את מישור רקמת החיבור העמוק עם תפרים אתילן טרפתלאט מופרעים מרובים 5-0. לאחר מכן, לסגור את השרירים השטחיים ואת העור עם ריצה 6-0 polyglactim 910 תפר באמצעות 0.3 מלקחיים רקמה נהג מחט.גישה כירורגית זו שימשה בהצלחה כדי לגרום למחלת עיניים יבשה, אשר אושרה עם פאנל של סמנים קליניים ומעבדה. במהלך שמונת השבועות של התצפית, זמן ההתפרקות הממוצע של דמעה דוכא על ידי יותר מ-75% מהרמות שלפני הניתוח. באופן דומה, בדיקת הדמעות של שירמר ירדה בכ-50% והדמעה עלתה ב-10% וזה עולה בקנה אחד עם מחלת עיניים יבשה.כריתה כירורגית מלאה היא הקלה ביותר אם בלוטת lacrimal מסלולית מעולה מוסר הראשון. חשוב לחשוף את כל שולי רקמת בלוטת הדמעות לחלוטין.

Research

JoVE Journal

Medicine

Mouse Complete Stasis Model of Inferior Vena Cava Thrombosis

עכבר דגם השלם הקיפאון של פקקת נחותים הווריד הנבוב

Venous thromboembolism (VTE) includes both deep vein thrombosis (DVT) and pulmonary embolism (PE).  In the United States (U.S.), the high morbidity and ...

A Contusion Model of Severe Spinal Cord Injury in Rats

דגם חבורה של פגיעה בחוט השדרה חמורה בחולדות

The translational potential of novel treatments should be investigated in severe spinal cord injury (SCI) contusion models. A detailed methodology is ...

A Step by Step Protocol for Subretinal Surgery in Rabbits

צעד אחר פרוטוקול שלב לכירורגיה subretinal בארנבונים

Age related macular degeneration (AMD), retinitis pigmentosa, and other RPE related diseases are the most common causes for irreversible loss of vision in ...

Puncture-Induced Iris Neovascularization as a Mouse Model of Rubeosis Iridis

ניקוב-Induced כורוידאלית איריס כמודל העכבר של Rubeosis Iridis

We describe a model of puncture-induced iris neovascularization as a general model for noninvasive evaluation of angiogenesis. The model is also relevant ...

Intense Pulsed Light for the Treatment of Dry Eye Owing to Meibomian Gland Dysfunction

אינטנסיבי פעמו אור לטיפול של עין יבשה בשל תפקוד לקוי של בלוטת Meibomian

Dry eye disease (DED) is an increasingly common condition and one of the most common complaints of patients. The vast majority of DED is caused by the ...

Severe Burn Injury in a Swine Model for Clinical Dressing Assessment

כוויות חמורות פציעה במודל החזירים להערכה קלינית ההלבשה

Wound healing is a dynamic repair process and is the most complex biological process in human life. In response to burn injury, alterations in biological ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

Contractility איזומטרי מדידה של עורק מצע המעי העליון העכבר באמצעות חוט Myography

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

מודל ארנב של מחלה מימית לקויה עין יבש הנגרמת על ידי Concanavalin זריקה לתוך בלוטות לקטמאל: יישום ללימודי יעילות הסמים

Dry eye disease (DED), a multifactorial inflammatory disease of the ocular surface, affects 1 in 6 humans worldwide with staggering implications for ...

A Porcine Corneal Endothelial Organ Culture Model Using Split Corneal Buttons

מודל של הקרנית של הקרניות הפותל באמצעות לחצני הקרנית מפוצלת

Experimental research on corneal endothelial cells is associated with several difficulties. Human donor corneas are scarce and rarely available for ...

Establishment of a Mouse Severe Acute Pancreatitis Model using Retrograde Injection of Sodium Taurocholate into the Biliopancreatic Duct

הקמת מודל דלקת לבלב חריפה חמורה עכבר באמצעות הזרקה מדרדרת של נתרן Taurocholate לתוך צינור ביליופנקראטי

The prevalence of acute pancreatitis (AP), especially severe acute pancreatitis (SAP), is increasing in younger age groups annually. However, there is a ...