Name: a preclinical model to assess brain recovery after acute stroke in rats
Uploaded: 2019-11-06T13:00:00
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Ce travail a été soutenu par la National Natural Science Foundation of China (81603315, 81603316), le plan de recherche et développement clé de la province du Jiangxi en Chine (20171ACH80001), des projets de coopération industrielle et académique dans les collèges et universités de la province du Fujian en Chine (2018Y41010011).

La procédure et l'utilisation de sujets animaux ont été approuvées par l'Institut national de la santé pour les soins et l'utilisation d'animaux de laboratoire. Ce protocole est spécifiquement ajusté pour les essais de l'occlusion/reperfusion d'artère cérébrale moyenne (MCAO/R) et de la fonction sensorimotrice.
1. Conception expérimentale et regroupement
<ol><li>Utilisez un modèle de rat MCAO/R pour dépister une méthode de modèle ischémique de cerveau de rat avec des dommages...

<ol>
	<li>Kong, L. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neutralization+of+chemokine-like+factor+1,+a+novel+C-C+chemokine,+protects+against+focal+cerebral+ischemia+by+inhibiting+neutrophil+infiltration+via+MAPK+pathways+in+rats.">Neutralization of chemokine-like factor 1, a novel C-C chemokine, protects against focal cerebral ischemia by inhibiting neutrophil infiltration via MAPK pathways in rats.</a> Journal of Neuroinflammation. 11, 112 (2014).</li><li>Jiang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroprotective+effects+of+bilobalide+on+cerebral+ischemia+and+reperfusion+injury+are+associated+with+inhibition+of+pro-inflammatory+mediator+production+and+down-regulation+of+JNK1/2+and+p38+MAPK+activation.">Neuroprotective effects of bilobalide on cerebral ischemia and reperfusion injury are associated with inhibition of pro-inflammatory mediator production and down-regulation of JNK1/2 and p38 MAPK activation.</a> Journal of Neuroinflammation. 11, 167 (2014).</li><li>Thomas, A., Detilleux, J., Flecknell, P., Sandersen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+Stroke+Therapy+Academic+Industry+Roundtable+(STAIR)+Guidelines+on+Peri-Anesthesia+Care+for+Rat+Models+of+Stroke:+A+Meta-Analysis+Comparing+the+Years+2005+and+2015.">Impact of Stroke Therapy Academic Industry Roundtable (STAIR) Guidelines on Peri-Anesthesia Care for Rat Models of Stroke: A Meta-Analysis Comparing the Years 2005 and 2015.</a> PLoS One. 12, e0170243 (2017).</li><li>Kumar, A., Aakriti, V., Gupta, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+on+animal+models+of+stroke:+An+update.">A review on animal models of stroke: An update.</a> Brain Research Bulletin. 122, 35-44 (2016).</li><li>Tong, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+enhanced+model+of+middle+cerebral+artery+occlusion+in+nonhuman+primates+using+an+endovascular+trapping+technique.">An enhanced model of middle cerebral artery occlusion in nonhuman primates using an endovascular trapping technique.</a> AJNR Am. Journal of Neuroradiology. 36, 2354-2359 (2015).</li><li>Li, F., Omae, T., Fisher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spontaneous+hyperthermia+and+its+mechanism+in+the+intraluminal+suture+middle+cerebral+artery+occlusion+model+of+rats.">Spontaneous hyperthermia and its mechanism in the intraluminal suture middle cerebral artery occlusion model of rats.</a> Stroke. 30, 2464-2470 (1999).</li><li>Herson, P. S., Traystman, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+stroke:+translational+potential+at+present+and+in+2050.">Animal models of stroke: translational potential at present and in 2050.</a> Future Neurology. 9, 541-551 (2014).</li><li>Abrah&#225;m, H., Somogyv&#225;ri-Vigh, A., Maderdrut, J. L., Vigh, S., Arimura, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Filament+size+influences+temperature+changes+and+brain+damage+following+middle+cerebral+artery+occlusion+in+rats.">Filament size influences temperature changes and brain damage following middle cerebral artery occlusion in rats.</a> Exp. Brain Res. 142, 131-138 (2002).</li><li>Sun, M. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coumarin+derivatives+protect+against+ischemic+brain+injury+in+rats.">Coumarin derivatives protect against ischemic brain injury in rats.</a> European Journal of Medicinal Chemistry. 67, 39-53 (2013).</li><li>Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversible+middle+cerebral+artery+occlusion+without+craniectomy+in+rats.">Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.</a> Stroke. 20, 84-91 (1989).</li><li>Smith, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implantation+site+and+lesion+topology+determine+efficacy+of+a+human+neural+stem+cell+line+in+a+rat+model+of+chronic+stroke.">Implantation site and lesion topology determine efficacy of a human neural stem cell line in a rat model of chronic stroke.</a> Stem Cell. 30, 785-796 (2012).</li><li>Zhang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protective+effects+of+Forsythia+suspense+extract+with+antioxidant+and+anti-inflammatory+properties+in+a+model+of+rotenone+induced+neurotoxicity.">Protective effects of Forsythia suspense extract with antioxidant and anti-inflammatory properties in a model of rotenone induced neurotoxicity.</a> Neurotoxicology. 52, 72-83 (2016).</li><li>Milani, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Poly-arginine+peptides+reduce+infarct+volume+in+a+permanent+middle+cerebral+artery+rat+stroke+model.">Poly-arginine peptides reduce infarct volume in a permanent middle cerebral artery rat stroke model.</a> BMC Neuroscience. 17, 19 (2016).</li><li>DeGraba, T. J., Ostrow, P., Hanson, S., Grotta, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+performance,+histologic+damage,+and+calcium+influx+in+rats+treated+with+NBQX+after+focal+ischemia.">Motor performance, histologic damage, and calcium influx in rats treated with NBQX after focal ischemia.</a> Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 14, 262-268 (1994).</li><li>Liu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validation+of+a+preclinical+animal+model+to+assess+brain+recovery+after+acute+stroke.">Validation of a preclinical animal model to assess brain recovery after acute stroke.</a> European Journal of Pharmacology. 835, 75-81 (2018).</li><li>Zuo, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IMM-H004+prevents+toxicity+induced+by+delayed+treatment+of+tPA+in+a+rat+model+of+focal+cerebral+ischemia+involving+PKA-and+PI3K-dependent+Akt+activation.">IMM-H004 prevents toxicity induced by delayed treatment of tPA in a rat model of focal cerebral ischemia involving PKA-and PI3K-dependent Akt activation.</a> European Journal of Neuroscience. 39, 2107-2118 (2014).</li><li>Yang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=L-3-n-butylphthalide+Promotes+Neurogenesis+and+Neuroplasticity+in+Cerebral+Ischemic+Rats.">L-3-n-butylphthalide Promotes Neurogenesis and Neuroplasticity in Cerebral Ischemic Rats.</a> CNS Neuroscience &amp; Therapeutics. 21, 733-741 (2015).</li></ol>

Beaucoup de modèles établissant des méthodes et des indicateurs comportementaux qui sont bien utilisés dans l'ischémie cérébrale aigue peuvent ne pas avoir des changements significatifs dans les étapes de rétablissement et de séquela de l'ischémie de cerveau16,17. Cependant, le nombre de patients présentant le cerveau ischémique dans les étapes de rétablissement et de séquençament est le plus grand. Il est essentiel de choisir un modèle animal a...

L'ischémie cérébrale est divisée en trois étapes avec différents indicateurs post-AVC : le stade aigu (dans une semaine), le stade de récupération (1 semaine à 6 mois) et le stade des séquelles (plus de 6 mois). Actuellement, la plupart des études se concentrent sur le stade aigu de l'ischémie cérébrale en raison de son effet significatif et des modèles de recherche multi-relatifs1,2,3. Cependant, les étapes de rétablissement et de séquelatif de l'ischémie de cerveau ne peuvent pas être ignorées en raison de leur complication à long terme des incapacités. Par conséquent, le but de cette étude est d'explorer un modèle animal stable, fiable et relativement simple pour rechercher les étapes de récupération et de séquela de l'ischémie cérébrale.
Parmi les nombreux modèles expérimentaux d'ischémie cérébrale, nous utilisons l'occlusion cérébrale moyenne d'artère (MCAO) par l'insertion de boulon de fil dans l'artère cérébrale moyenne droite (MCA). Ce modèle est similaire à l'AVC humain, qui peut produire de plus grands volumes d'infarctus, entraîner de nombreux troubles du comportement liés à l'AVC, et peut permettre la réperfusion sanguine (R) en supprimant le boulon de fil4,5,6. MCAO/R est également considéré comme le modèle animal standard de l'ischémie cérébrale7. En outre, la gravité de la lésion cérébrale dépend du diamètre et de la longueur d'insertion du boulon de fil, de la durée de l'ischémie cérébrale, et du poids animal (de plus grands rats ont de plus grands cerveaux et des vaisseaux cérébraux plus épais)8. Par conséquent, en changeant le type de boulon de fil, le temps d'infarctus, et le poids de rat, un modèle approprié peut être trouvé pour les étapes de récupération et de séquela de l'ischémie de cerveau chez les rats de MCAO/R. Pour valider le modèle de rat, nous avons effectué une étude d'un jour, 35 jours, 60 jours, et 90 jours du modèle MCAO/R utilisant des expériences de coloration et de fonction sensorimotrice de TTC (un essai bilatéral d'asymétrie, un essai de grille-marche, un essai de rotarod et un essai de corde de levage).

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Anatomical Microscope</td>
			<td>Leica (Germany)</td>
			<td>S8</td>
			<td>Microscopic operating instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blade</td>
			<td>Gellette</td>
			<td>/</td>
			<td>Cutting brain sections</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Constant Temperature Shaking Bed</td>
			<td>Taicang Experimental Equipment Factory</td>
			<td>THZ-C</td>
			<td>To keep the brain sections stained evenly and at a constant temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Camera</td>
			<td>Canon</td>
			<td>700D</td>
			<td>For taking pictures of TTC staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electric Shaver</td>
			<td>Shanghai Yuyan Scientific Instruments Co., Ltd.</td>
			<td>3000#</td>
			<td>Removal of hair from the neck of rats</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps Hamostatic</td>
			<td>Shanghai Medical device Co., Ltd.</td>
			<td>14 cm</td>
			<td>Using for brain removing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Image Pro Plus Software</td>
			<td>Media Cybernetics Inc.</td>
			<td>6.0</td>
			<td>Analyze the infarct volume</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>RWD Life Science</td>
			<td>217170702</td>
			<td>Anesthetic gas</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microforceps</td>
			<td>Shanghai Jinzhong Medical Devices Co., Ltd.</td>
			<td>10 cm</td>
			<td>Vascular micromanipulation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microshear</td>
			<td>Shanghai Jinzhong Medical Devices Co., Ltd.</td>
			<td>10 cm</td>
			<td>Vascular micromanipulation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ophthalmic Forceps</td>
			<td>Shanghai Jinzhong Medical Devices Co., Ltd.</td>
			<td>10 cm</td>
			<td>Auxiliary skin and muscle anatomy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pphthalmic Scissors</td>
			<td>Shanghai Jinzhong Medical Devices Co., Ltd.</td>
			<td>10 cm</td>
			<td>Using for cutting the skin of neck</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat Brain Slice Mold</td>
			<td>Shanghai Yuyan Scientific Instruments Co., Ltd.</td>
			<td>400 g</td>
			<td>For standard, uniform cutting of brain tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat Rotating Bar Fatigue Apparatus</td>
			<td>Anhui Zhenghua Biological Instrument and Equipment Co., Ltd.</td>
			<td>ZH-300B</td>
			<td>To test the sensorimotor function</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Animal Anaesthesia Machine</td>
			<td>Shanghai Yuyan Scientific Instruments Co., Ltd.</td>
			<td>ABM3000</td>
			<td>A gas anesthetic machine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Animal Thermostat</td>
			<td>Beijing Damida Technology Co., Ltd.</td>
			<td>DM.7-YLS-20A</td>
			<td>To maintain animal body temperature constant during operation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissors</td>
			<td>Shanghai Medical device Co., Ltd.</td>
			<td>16 cm</td>
			<td>Using for decapitate and brain removing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture</td>
			<td>Shanghai Jinhuan Medical Devices Co., Ltd.</td>
			<td>4-0 / 5-0</td>
			<td>Using for skin and muscle sutures / Using for vascular ligations</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thread Bolt</td>
			<td>Beijing Cinontech Co. Ltd.</td>
			<td>2636/2838/3040/3043-A4</td>
			<td>Blockage of the middle cerebral artery in rats</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-triphenyl-2H-tetrazolium chloride (TTC)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>LOT#BCBP3272V</td>
			<td>Brain section staining reagent</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a preclinical model to assess brain recovery after acute stroke in rats

Le but de cette étude était d'établir et de valider un modèle d'ischémie de cerveau animal dans les étapes de rétablissement et de séquela. Un modèle moyen d'occlusion/reperfusion d'artère cérébrale (MCAO/R) chez les rats mâles de Sprague-Dawley a été choisi. En modifiant le poids du rat (260-330 g), le type de boulon de fil (2636/2838/3040/3043) et le temps d'infarctus du cerveau (2-3 h), un score plus élevé de Longa, un volume d'infarctus plus grand et un plus grand rapport de succès de modèle ont été examinés en utilisant le score de Longa et la coloration de TTC. L'état optimal du modèle (300 g, 3040 boulon s'il enfilé, 3 h de temps infarctus du cerveau) a été acquis et utilisé au cours d'une période d'observation de 1 à 90 jours après la reperfusion par l'évaluation des fonctions sensorimotrices et du volume infarctus. À ces conditions, l'essai bilatéral d'asymétrie a eu une différence significative de 1 à 90 jours, et l'essai de grille-marche a eu une différence significative de 1 à 60 jours ; les deux différences pourraient être un test fonctionnel sensorimoteur approprié. Ainsi, l'état le plus approprié d'un nouveau modèle de rat dans les étapes de récupération et de séquençament de l'ischémie de cerveau a été trouvé : 300 g rats qui ont subi MCAO avec un boulon de fil 3040 pour un infarctus de cerveau de 3 h et puis reperfusé. Les essais fonctionnels sensorimoteurs appropriés étaient un essai bilatéral d'asymétrie et un essai de grille-marche.

En utilisant la procédure susmentionnée pour un modèle MCAO/R avec le score de Longa et la coloration TTC, différents traitements de poids moyen (275/300/320 g), types de boulons (2636/2838/3040/3043; Tableau 1) et des temps ischémiques (2-3 h) et 1 jour de réperfusion ont été employés pour dépister le modèle optimal d'ischémie de cerveau chez les rats. Les paramètres de modèle de 300 g de poids, 3040 boulon de fil, et le temps d'infarctus de cerveau de 3 h ...

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A Preclinical Model to Assess Brain Recovery After Acute Stroke in Rats

Le but de cette étude est d'établir et de valider un modèle animal pour la recherche dans les étapes de récupération et de séquençament de l'ischémie cérébrale en testant l'infarctus du cerveau et la fonction sensorimotrice après l'occlusion/reperfusion d'artère cérébrale moyenne (MCAO/R) après 1-90 jours chez les rats.

Un modèle préclinique pour évaluer le rétablissement du cerveau après un AVC aigu chez les rats

The purpose of this study was to establish and validate an animal brain ischemia model in the recovery and sequela stages. A middle cerebral artery ...

Cette étude utilise un modèle animal établi pour rechercher la récupération et les stades des séquelles de l’ischémie cérébrale. Les principaux avantages de cette technique sont qu’elle est stable, fiable et relativement simple. Commencez par placer un rat anesthésié sur une table de fixation chirurgicale.Tout au long de la chirurgie, maintenir la température corporelle du rat à 37 degrés Celsius dans un thermostat pour petits animaux. Connectez la bouche au masque de la machine d’anesthésie et confirmez l’anesthésie profonde par manque de tension d’extrémité, réflexes cornéens et douleur. Fixez les membres du rat à la table d’opération à l’aide de bandages en papier.À l’aide d’un rasoir électrique, retirer le manteau cervical et stériliser le cou avec 75 % d’alcool. Utilisez des ciseaux ophtalmiques pour couper de deux à trois centimètres le long de la forme longitudinale centrale du cou. Et puis avec des forceps ophtalmiques, séparez le muscle sous-cutané.Utilisez rétracteur maison pour exposer pleinement le champ de vision. Il faut prendre soin de présenter une technique aseptique appropriée pour toutes les interventions chirurgicales de survie. La technique illustrée plus tard dans la vidéo doit être pratiquée tout au long de la procédure.Utilisez les micro forceps pour isoler l’artère carotide commune, l’artère carotide externe et l’artère carotide interne. Travailler au microscope, utiliser 8-0 sutures pour ligate l’artère carotide commune avec le noeud dur, artère carotide externe loin de l’extrémité de coeur avec le noeud dur, artère carotide interne avec le noeud lâche et puis pour aligner l’artère carotide externe près de l’extrémité de coeur. À l’aide de micro ciseaux, couper une petite ouverture dans l’artère carotide externe et insérer délicatement un boulon de fil.Ligate la suture de l’artère carotide externe qui est mince et lâche noeud et couper l’artère carotide externe. Desserrez le nœud lâche de l’artère carotide interne et continuez à insérer le boulon de fil au début de l’artère cérébrale moyenne marquée de la suture et coupez le boulon de fil exposé. Après le temps ischémique est atteint après deux à trois heures, fixer la fracture de l’artère carotide externe à l’aide de micro forceps et retirer doucement le boulon de fil avec un autre micro forceps.Après avoir complètement retiré l’extrémité avant du boulon de fil de l’artère carotide interne, ligate l’artère carotide externe qui a été bordée de 8-0 suture, puis retirer le boulon de fil complètement. Après avoir desserré l’artère carotide commune, tamponnez environ 50 000 unités de poudre de sodium à la pénicilline à la surface de la plaie pour prévenir l’infection. Utilisez quatre sutures pour suturer les muscles et la peau sous-cutanés.Après avoir remis le rat à la cage, utilisez une seringue d’un millilitre pour donner environ 0,2 millilitres d’eau au rat par voie orale pour prévenir la déshydratation postopératoire. Choisissez les animaux en fonction du score le plus long pour les études de coloration TTC ou de moteur sensoriel. Après avoir incubé le cerveau isolé pour la coloration TTC à moins 20 degrés Celsius de 30 minutes, placez-le dans un moule pré-refroidi de tranche de cerveau de rat.À l’aide d’une lame pré-refroidie, couper le cerveau en six sections consécutives de deux millimètres d’épaisseur. Tacher les sections avec 2% de TTC dans une plaque de culture de six puits et incuber pendant 30 à 60 minutes à 37 degrés Celsius tout en secouant. Toutes les 10 minutes, retournez les sections jusqu’à ce que l’ischémie cérébrale et les zones non affectées soient visiblement blanches et rouges.Tapissez les tranches de cerveau verticalement sur le carton noir afin de l’arrière à l’avant du cerveau à l’aide d’une règle pour s’assurer que la longueur totale de chaque ligne est la même et prendre des photos. Importez la photo et sélectionnez les tranches de cerveau. Sélectionnez le premier plan noir et tapez Alt Delete pour remplir la couleur d’arrière-plan, puis contrôlez D pour désélectionner.Enfin, enregistrez l’image sur le bureau. Pour analyser le volume infarctus, ouvrez d’abord le logiciel et importez la photo. Pour modifier les défauts, ajustez la luminosité avec l’outil d’amélioration du contraste de sorte que l’arrière-plan soit noir.Dans le filtre, utilisez l’outil médian pour supprimer les faits saillants. Pour calculer la zone normale gauche du cerveau, sélectionnez la couleur à l’aide de la segmentation et ajustez la valeur de H, S et moi pour séparer les tranches cérébrales du fond noir. Retour à compter la taille et cliquez sur compter.Cliquez sur les objets divisés en modifier pour séparer le cerveau de la ligne médiane qui distinguera automatiquement les zones cérébrales gauche et droite. Pour calculer la bonne zone cérébrale infarctuse, importez l’image, ajustez l’arrière-plan et supprimez les faits saillants comme cela a été fait précédemment. Sélectionnez la taille de comptage et cliquez sur dessiner l’outil d’objets de fusion dans modifier.Sélectionnez manuellement la zone ischémique et cliquez sur le nombre pour calculer la zone ischémique. Pour calculer la bonne zone saine du cerveau, importez d’abord l’image, ajustez l’arrière-plan et supprimez les faits saillants comme cela a été fait précédemment. Sélectionnez la couleur à l’aide de la segmentation et ajustez la valeur de H, S et moi pour séparer les tranches saines du cerveau du fond noir.Retournez pour compter la taille et cliquez sur compter pour calculer cette zone. Cliquez sur les objets divisés en modifier pour séparer le cerveau de la ligne médiane qui distinguera automatiquement les zones cérébrales gauche et droite. Prenez les rats choisis pour des études sensorielles de moteur et pour l’essai bilatéral d’assymétrie et enveloppez le ruban de papier sur la partie saphenous de chaque griffe avant trois fois utilisant la pression égale.Pour chaque rat, enregistrez avec la caméra le nombre de fois que chaque griffe avant entre en contact et retire la bande dans les cinq minutes, y compris les temps de patte non affectés et affectés. Répétez l’emballage et l’enregistrement après 30 minutes, puis calculez les valeurs. Pour l’essai de marche de grille, placez le rat au centre d’une plate-forme élevée de surface de grille avec des ouvertures de 2,5 centimètres carrés.Poussez légèrement les hanches du rat pour l’encourager à traverser la surface. À l’aide de la caméra, enregistrez le nombre de défauts de pied commis par les membres affectés à droite et à gauche et le nombre total d’étapes en une minute avec la caméra. Pour l’essai de tige de rotor, installez l’appareil rotatif de fatigue de barre de rat à une vitesse de 13 RPM sur une période de cinq minutes utilisant le logiciel de support.Démarrez le programme informatique et placez le rat sur les anneaux de la tige du rotor en même temps. Terminez l’essai si le rat tombe de l’anneau ou après cinq minutes et enregistrez le temps de rotation. Laisser reposer le rat pendant 30 minutes, puis répéter le test deux fois de plus et choisir la valeur maximale comme dernier temps rotatif.Pour l’essai de corde de levage, placez l’instrument de corde de levage sur un bureau. Faites saisir la corde par le rat avec ses membres antérieurs et laissez-la pendre. Enregistrez le temps de pendaison et calculez les scores.Quand les dommages ischémiques de cerveau induits par l’occlusion et la reperfusion cérébrales moyennes d’artère ont été étudiés, le boulon de fil de poids de 300 grammes 3040 et le temps infarctus cérébral de trois heures se sont avérés être les plus appropriés avec le plus grand infarctus cérébral, le score le plus long, et le plus grand rapport de succès de modèle. Ceci a été sensiblement amélioré comparé au traitement conventionnel du poids de 275 grammes, du boulon de fil de 2636 et du temps infarctus de cerveau de deux heures. Pour étudier l’état de rétablissement de l’ischémie cérébrale, la coloration de TTC a été exécutée et elle a indiqué le volume infarctus et rétrécissant à 23.4%le premier jour après occlusion et reperfusion d’artère cérébrale moyenne, 19.6%le 35ème jour, 16.1%le 60ème et 15.7% le 90ème.Après une journée d’occlusion et de reperfusion de l’artère cérébrale moyenne, le biais sensoriel du moteur dans le test bilatéral d’assymétrie, les temps d’erreur de marche de grille dans l’essai de marche de grille et le score de corde de levage dans l’essai de corde de levage sont tous augmentés tandis que le temps de tige de rotor dans l’essai de tige de rotor a diminué indiquant l’importance de ces essais en étudiant l’ischémie aiguë de cerveau. Seulement le biais sensoriel de moteur a maintenu de grands désordres fonctionnels avec une manière temps-dépendante après 35, 60 et 90 jours d’occlusion et de reperfusion cérébrales moyennes d’artère. Pour l’essai de marche de grille, il y avait des différences significatives des temps d’erreur de marche de grille pendant 35 et 60 jours.Ces résultats ont indiqué que ces deux tests pourraient être appropriés pour tester la récupération chez les rats. Afin d’assurer le succès, l’action doit être douce et l’opération doit être régulière. D’autres tests comportementaux tels que la détection de la démarche peuvent également convenir à ce modèle.Le développement de ce modèle pourrait ouvrir la voie aux chercheurs pour explorer l’ischémie cérébrale aux stades de la récupération et des séquelles.

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An In Vivo Assessment of Blood-Brain Barrier Disruption in a Rat Model of Ischemic Stroke

An In Vivo Assessment of Blood-Brain Barrier Disruption in a Rat Model of Ischemic Stroke

Une évaluation In Vivo de la perturbation de la barrière hémato - encéphalique dans un modèle de Rat d’accident vasculaire cérébral ischémique

Ischemic stroke leads to vasogenic cerebral edema and subsequent primary brain injury, which is mediated through destruction of the blood-brain barrier ...

A Fibrin-Enriched and tPA-Sensitive Photothrombotic Stroke Model

Un modèle d’AVC photothrombotique enrichi en fibrine et sensible au tPA

An ideal thromboembolic stroke model requires certain properties, including relatively simple surgical procedures with low mortality, a consistent ...

A Rat Model of EcoHIV Brain Infection

Un modèle de rat d’infection cérébrale EcoHIV

It has been well studied that the EcoHIV infected mouse model is of significant utility in investigating HIV associated neurological complications. ...

Motor Dual-Tasks for Gait Analysis and Evaluation in Post-Stroke Patients

Double tâche motrice pour l’analyse et l’évaluation de la marche chez les patients post-AVC

Eighteen stroke patients were recruited for this study involving the evaluation of cognition and walking ability and multitask gait analysis. Multitask ...

Dural Stimulation and Periorbital von Frey Testing in Mice As a Preclinical Model of Headache

Stimulation durale et test de von Frey périorbitaire chez la souris en tant que modèle préclinique de maux de tête

The cranial meninges, comprised of the dura mater, arachnoid, and pia mater, are thought to primarily serve structural functions for the nervous system.  ...

A Model for Encephalomyosynangiosis Treatment after Middle Cerebral Artery Occlusion-Induced Stroke in Mice

Un modèle pour le traitement de l’encéphalomyosynangiose après un accident vasculaire cérébral induit par l’occlusion de l’artère cérébrale moyenne chez la souris

There is no effective treatment available for most patients suffering with ischemic stroke, making development of novel therapeutics imperative. The ...