Name: stereotaxic surgery for implantation of microelectrode arrays in the common marmoset (callithrix jacchus)
Uploaded: 2019-09-29T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset Callithrix jacchus at JoVE.com

Forfatterne vil gjerne takke Bernardo Luiz for teknisk assistanse med filming og redigering. Dette arbeidet ble støttet av Santos Dumont Institutt (ISD), brasiliansk utdanningsdepartementet (MEC) og Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (KAPPER).

Animal eksperimenter ble utført i samsvar med National Institutes of Health guide for omsorg og bruk av laboratorium dyr og godkjent av Santos Dumont Institutt etikk Committee (protokoll 02/2015AAS).
1. kirurgi forberedelse
<ol><li>Fest hver elektrode rekke til en elektrode holder som er kompatibel med den stereotaxic rammen som skal brukes.</li>
	<li>Koble en elektrode holder til stereotaxic micromanipulator og sett en microwire til de interaural koordinatene. Gjenta dette for ekstra elekt...

<ol>
	<li>Okano, H., Hikishima, K., Iriki, A., Sasaki, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+common+marmoset+as+a+novel+animal+model+system+for+biomedical+and+neuroscience+research+applications.">The common marmoset as a novel animal model system for biomedical and neuroscience research applications.</a> Seminars in Fetal and Neonatal Medicine. 17 (6), 336-340 (2012).</li><li>Harris, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolutionary+genetics+and+implications+of+small+size+and+twinning+in+callitrichine+primates.">Evolutionary genetics and implications of small size and twinning in callitrichine primates.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (4), 1467-1472 (2014).</li><li>Kishi, N., Sato, K., Sasaki, E., Okano, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Common+marmoset+as+a+new+model+animal+for+neuroscience+research+and+genome+editing+technology.">Common marmoset as a new model animal for neuroscience research and genome editing technology.</a> Development, Growth &amp; Differentiation. 56 (1), 53-62 (2014).</li><li>Sasaki, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prospects+for+genetically+modified+non-human+primate+models,+including+the+common+marmoset.">Prospects for genetically modified non-human primate models, including the common marmoset.</a> Neuroscience Research. 93, 110-115 (2015).</li><li>Sasaki, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+transgenic+non-human+primates+with+germline+transmission.">Generation of transgenic non-human primates with germline transmission.</a> Nature. 459 (7246), 523-527 (2009).</li><li>Sasaki, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Creating+Genetically+Modified+Marmosets.">Creating Genetically Modified Marmosets.</a> The Common Marmoset in Captivity and Biomedical Research. , 335-353 (2019).</li><li>Sato, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+a+Nonhuman+Primate+Model+of+Severe+Combined+Immunodeficiency+Using+Highly+Efficient+Genome+Editing.">Generation of a Nonhuman Primate Model of Severe Combined Immunodeficiency Using Highly Efficient Genome Editing.</a> Cell Stem Cell. 19 (1), 127-138 (2016).</li><li>Sato, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resequencing+of+the+common+marmoset+genome+improves+genome+assemblies+and+gene-coding+sequence+analysis.">Resequencing of the common marmoset genome improves genome assemblies and gene-coding sequence analysis.</a> Scientific Reports. 5, 16894 (2015).</li><li>Chaplin, T. A., Yu, H. H., Soares, J. G. M., Gattass, R., Rosa, M. G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Conserved+Pattern+of+Differential+Expansion+of+Cortical+Areas+in+Simian+Primates.">A Conserved Pattern of Differential Expansion of Cortical Areas in Simian Primates.</a> Journal of Neuroscience. 33 (38), 15120-15125 (2013).</li><li>Mitchell, J. F., Leopold, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+marmoset+monkey+as+a+model+for+visual+neuroscience.">The marmoset monkey as a model for visual neuroscience.</a> Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).</li><li>Brok, H. P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-human+primate+models+of+multiple+sclerosis:+Non-human+primate+models+of+MS.">Non-human primate models of multiple sclerosis: Non-human primate models of MS.</a> Immunological Reviews. 183 (1), 173-185 (2001).</li><li>Santana, M. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+Cord+Stimulation+Alleviates+Motor+Deficits+in+a+Primate+Model+of+Parkinson's+disease.">Spinal Cord Stimulation Alleviates Motor Deficits in a Primate Model of Parkinson's disease.</a> Neuron. 84 (4), 716-722 (2014).</li><li>MacDougall, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optogenetic+manipulation+of+neural+circuits+in+awake+marmosets.">Optogenetic manipulation of neural circuits in awake marmosets.</a> Journal of Neurophysiology. 116 (3), 1286-1294 (2016).</li><li>Wakabayashi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+stereotaxic+recording+system+for+awake+marmosets+(Callithrix+jacchus).">Development of stereotaxic recording system for awake marmosets (Callithrix jacchus).</a> Neuroscience Research. 135, 37-45 (2018).</li><li>Johnston, K. D., Barker, K., Schaeffer, L., Schaeffer, D., Everling, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+for+chair+restraint+and+training+of+the+common+marmoset+on+oculomotor+tasks.">Methods for chair restraint and training of the common marmoset on oculomotor tasks.</a> Journal of Neurophysiology. 119 (5), 1636-1646 (2018).</li><li>Sedaghat-Nejad, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+training+of+marmosets+and+electrophysiological+recording+from+the+cerebellum.">Behavioral training of marmosets and electrophysiological recording from the cerebellum.</a> Journal of Neurophysiology. , (2019).</li><li>Kringelbach, M. L., Owen, S. L., Aziz, T. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deep-brain+stimulation.">Deep-brain stimulation.</a> Future Neurology. 2 (6), 633-646 (2007).</li><li>Talakoub, O., Gomez Palacio Schjetnan, A., Valiante, T. A., Popovic, M. R., Hoffman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Closed-Loop+Interruption+of+Hippocampal+Ripples+through+Fornix+Stimulation+in+the+Non-Human+Primate.">Closed-Loop Interruption of Hippocampal Ripples through Fornix Stimulation in the Non-Human Primate.</a> Brain Stimulation. 9 (6), 911-918 (2016).</li><li>Oddo, M., Hutchinson, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Understanding+and+monitoring+brain+injury:+the+role+of+cerebral+microdialysis.">Understanding and monitoring brain injury: the role of cerebral microdialysis.</a> Intensive Care Medicine. 44 (11), 1945-1948 (2018).</li><li>Metz, G. A., Whishaw, I. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+and+subcortical+lesions+impair+skilled+walking+in+the+ladder+rung+walking+test:+a+new+task+to+evaluate+fore-+and+hindlimb+stepping,+placing,+and+co-ordination.">Cortical and subcortical lesions impair skilled walking in the ladder rung walking test: a new task to evaluate fore- and hindlimb stepping, placing, and co-ordination.</a> Journal of Neuroscience Methods. 115 (2), 169-179 (2002).</li><li>Gradinaru, V., Mogri, M., Thompson, K. R., Henderson, J. M., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+Deconstruction+of+Parkinsonian+Neural+Circuitry.">Optical Deconstruction of Parkinsonian Neural Circuitry.</a> Science. 324, 354-359 (2009).</li><li>Hammer, D. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Longitudinal+vascular+dynamics+following+cranial+window+and+electrode+implantation+measured+with+speckle+variance+optical+coherence+angiography.">Longitudinal vascular dynamics following cranial window and electrode implantation measured with speckle variance optical coherence angiography.</a> Biomedical Optics Express. 5 (8), 2823-2836 (2014).</li><li>Komatsu, M., Kaneko, T., Okano, H., Ichinohe, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+Implantation+of+Whole-cortical+Electrocorticographic+Array+in+the+Common+Marmoset.">Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset.</a> Journal of Visualized Experiments. (144), (2019).</li><li>Oliveira, L. M. O., Dimitrov, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Surgical Techniques for Chronic Implantation of Microwire Arrays in Rodents and Primates. , (2008).</li><li>Santana, M. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+Cord+Stimulation+Alleviates+Motor+Deficits+in+a+Primate+Model+of+Parkinson's+disease.">Spinal Cord Stimulation Alleviates Motor Deficits in a Primate Model of Parkinson's disease.</a> Neuron. 84 (4), 716-722 (2014).</li><li>Santana, M., Palm&#233;r, T., Simpl&#237;cio, H., Fuentes, R., Petersson, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+long-term+motor+deficits+in+the+6-OHDA+model+of+Parkinson's+disease+in+the+common+marmoset.">Characterization of long-term motor deficits in the 6-OHDA model of Parkinson's disease in the common marmoset.</a> Behavioural Brain Research. 290, 90-101 (2015).</li><li>Misra, S., Koshy, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+practice+of+sedation+with+inhalational+anaesthetics+in+the+intensive+care+unit+with+the+AnaConDa+device.">A review of the practice of sedation with inhalational anaesthetics in the intensive care unit with the AnaConDa device.</a> Indian Journal of Anaesthesia. 56 (6), 518-523 (2012).</li><li>Freire, M. A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distribution+and+Morphology+of+Calcium-Binding+Proteins+Immunoreactive+Neurons+following+Chronic+Tungsten+Multielectrode+Implants.">Distribution and Morphology of Calcium-Binding Proteins Immunoreactive Neurons following Chronic Tungsten Multielectrode Implants.</a> PLOS ONE. 10 (6), 0130354 (2015).</li><li>Budoff, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Astrocytic+Response+to+Acutely-+and+Chronically+Implanted+Microelectrode+Arrays+in+the+Marmoset+(Callithrix+jacchus)+Brain.">Astrocytic Response to Acutely- and Chronically Implanted Microelectrode Arrays in the Marmoset (Callithrix jacchus) Brain.</a> Brain Sciences. 9 (2), 19 (2019).</li><li>Dzirasa, K., Fuentes, R., Kumar, S., Potes, J. M., Nicolelis, M. A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+in+vivo+multi-circuit+neurophysiological+recordings+in+mice.">Chronic in vivo multi-circuit neurophysiological recordings in mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 195 (1), 36-46 (2011).</li><li>Nicolelis, M. A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic,+multisite,+multielectrode+recordings+in+macaque+monkeys.">Chronic, multisite, multielectrode recordings in macaque monkeys.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 100 (19), 11041-11046 (2003).</li><li>Lehew, G., Nicolelis, M. A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> State-of-the-Art Microwire Array Design for Chronic Neural Recordings in Behaving Animals. , (2008).</li><li>Paxinos, G., Watson, C., Petrides, M., Rosa, M., Tokuno, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Marmoset Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2012).</li><li>Brown, M. J., Pearson, P. T., Tomson, F. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guidelines+for+animal+surgery+in+research+and+teaching.">Guidelines for animal surgery in research and teaching.</a> American Journal of Veterinary Research. 54 (9), 1544-1559 (1993).</li><li>Flecknell, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anaesthesia+of+Animals+for+Biomedical+Research.">Anaesthesia of Animals for Biomedical Research.</a> British Journal of Anaesthesia. 71 (6), 885-894 (1993).</li><li>Kurihara, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Surgical+Procedure+for+the+Administration+of+Drugs+to+the+Inner+Ear+in+a+Non-Human+Primate+Common+Marmoset+(Callithrix+jacchus).">A Surgical Procedure for the Administration of Drugs to the Inner Ear in a Non-Human Primate Common Marmoset (Callithrix jacchus).</a> Journal of Visualized Experiments. (132), (2018).</li><li>Boer, R. A., de Vries, A. M. O., Louwerse, A. L., Sterck, E. H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+behavioral+context+of+visual+displays+in+common+marmosets+(Callithrix+jacchus).">The behavioral context of visual displays in common marmosets (Callithrix jacchus).</a> American Journal of Primatology. 75 (11), 1084-1095 (2013).</li><li>Kudo, C., Nozari, A., Moskowitz, M. A., Ayata, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+impact+of+anesthetics+and+hyperoxia+on+cortical+spreading+depression.">The impact of anesthetics and hyperoxia on cortical spreading depression.</a> Experimental Neurology. 212 (1), 201-206 (2008).</li><li>Ghomashchi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+low-cost,+open-source,+wireless+electrophysiology+system.">A low-cost, open-source, wireless electrophysiology system.</a> 2014 36th Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society. , 3138-3141 (2014).</li><li>Fu, T. M., Hong, G., Viveros, R. D., Zhou, T., Lieber, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Highly+scalable+multichannel+mesh+electronics+for+stable+chronic+brain+electrophysiology.">Highly scalable multichannel mesh electronics for stable chronic brain electrophysiology.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (47), 10046-10055 (2017).</li></ol>

Dette arbeidet gir en detaljert beskrivelse av prosedyrene som er involvert i implantation av microelectrode innspillingen arrays i marmoset hjernen. Den samme protokollen kan lett brukes når implanting elektroder, enten hjemmelaget eller kommersielt tilgjengelig, i andre små primater. I tillegg kan det lett tilpasses andre eksperimentelle ender som krever presis målretting av hjernens strukturer. Derfor er denne protokollen målbevisst om stereotaxic koordinater og skallen bore teknikker, fordi de er de aspektene som...

Felles silkeape (Callithrix jacchus) er stadig anerkjennelse som en viktig modell organisme i mange felt av forskning, inkludert nevrovitenskap. Disse nye verden primater representerer en viktig komplementær dyr modell til både gnagere og andre ikke-menneskelige primater (NHPs), for eksempel rhesus macaque. Like Red, disse dyrene er liten, lett å manipulere, og relativt økonomisk å omsorg for og rase1,2,3,4, idet sammenlignet med større NHPs. Videre har disse dyrene en tilbøyelighet for samarbeid og høy fekunditet i forhold til andre NHPs1,2,3. En annen fordel marmoset har over mange andre primater er at moderne molekylærbiologi verktøy3,4,5,6,7 og et sekvensielt Genova2 ,3,4,5,8 har blitt brukt til å genetisk modifisere dem. Begge banke-inne dyrene benytter lentivirus5, og banke-ut dyrene benytter zinc-finger Nukleaser (zfner) og transkripsjon aktivator-like effektor NUKLEASER (TALENS)7, ha gitt levedyktig grunnleggeren dyrene.
En fordel i forhold til gnagere er at silkeape, som primater, er phylogenetically nærmere mennesker3,5,6,9,10,11. Like Human, silkeape er dagaktive dyrene det avhenger av en høylig bebygget synlig system å guide mange av deres opptreden10. Videre silkeape utstillingen atferdsdata kompleksitet, inkludert et bredt spekter av sosial atferd som bruk av ulike vocalizations3, slik at forskerne å ta opp spørsmål som ikke er mulig i andre arter. Fra et neuroscientific perspektiv, silkeape har lissencephaly hjerner, i motsetning til de mer vanlig brukte rhesus macaque9. Videre har silkeape et sentralt nervesystem som ligner på mennesker, inkludert en mer høyt utviklet prefrontal cortex9. Sammen, alle disse egenskapene posisjon silkeape som en verdifull modell for å studere hjernens funksjon i helse og sykdom.
En vanlig metode for å studere hjernens funksjon innebærer implanting elektroder på anatomisk spesifikke steder ved hjelp av stereotaxic nevrokirurgi. Dette gjør det mulig for kroniske innspilling av Neural aktivitet i ulike målområder i våken og fritt oppfører dyrene12,13. Stereotaxic nevrokirurgi er en uunnværlig teknikk som brukes i mange forsknings linjer, da det gir presis målretting av nevroanatomi regioner. Sammenlignet med macaque og gnagere litteratur, er det færre publiserte studier som beskriver stereotaxic nevrokirurgi spesifikke for marmoset, og de har en tendens til å gi sparsom detalj av trinnene som er involvert i operasjonen. Videre, de med større detalj i hovedsak fokusere på prosedyrer for elektrofysiologi innspilling i Head-behersket dyr14,15,16,17.
For å lette bredere adopsjon av silkeape som en modell organisme i nevrovitenskap forskning, den nåværende metoden definerer konkrete skritt nødvendig for en vellykket stereotaxic nevrokirurgi i denne arten. I tillegg til implantation av innspillingen arrays, som beskrevet i denne metoden, kan den samme teknikken tilpasses mange andre eksperimentelle ender, inkludert implantation av stimulerende elektroder for behandling av sykdommer18 eller causally kjøring krets atferd19; av førings kanyler for ekstraksjon og kvantifisering av nevrotransmittere20, injeksjoner av reagenser, inkludert de for inducing sykdoms modeller12 eller for krets sporing studier15; ablasjon av diskrete vevs regioner21; implantation av optrodes for optogenetic studier22; implantation av optiske Vinduer for kortikale mikroskopisk analyse23; og implantation av electrocorticographic (ECoG) arrays24. Dermed er det overordnede målet med denne prosedyren å skissere de kirurgiske trinnene som er involvert i implantation av microelectrode arrays for kroniske elektrofysiologisk innspillinger i fritt oppfører silkeape.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Equipments</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>683 Small Animal Ventilator</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>55-0000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anesthesia Assembly</td>
			<td>BRASMED</td>
			<td>COLIBRI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Barber Clippers</td>
			<td>Mundial</td>
			<td>HC-SERIES</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental Drill</td>
			<td>Norgen</td>
			<td>B07-201-M1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Homeothermic Heating Pad and Monitor</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>50-7212</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Marmoset Stereotaxic Frame</td>
			<td>Narishige Scientific Instrument Lab</td>
			<td>SR-6C-HT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Patient Monitor and Pulse Oximeter</td>
			<td>Bionet Co., Ltd</td>
			<td>BM3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic Micromanipulator</td>
			<td>Narishige Scientific Instrument Lab</td>
			<td>SM-15R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Microscope</td>
			<td>Opto</td>
			<td>SM PLUS IBZ</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Instruments</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Allis tissue forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>36-2275</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alm Retractor, rounded point, 4x4 teeth</td>
			<td>Rhosse</td>
			<td>RH11078</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Angled McPherson Forceps</td>
			<td>Oftalmologiabr</td>
			<td>11301A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Surgial Scissors</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>72-8422</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Tissue Forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>47-1186</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Delicate Dissection forceps</td>
			<td>WPI</td>
			<td>WP5015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental Drill Bit</td>
			<td>Microdont</td>
			<td>ISO.806.314.001.524.010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Essring Tissue Forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>19-2460</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FG 1/4 Dental Drill Bit</td>
			<td>Microdont</td>
			<td>ISO.700.314.001.006.005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halsey Needle Holder</td>
			<td>WPI</td>
			<td>15926-G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halstead Mosquito forceps</td>
			<td>WPI</td>
			<td>503724-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostatic Forceps, Straight</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>17-1260</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jewler Forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>66-7436</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>McPherson-Vannas Optathalmic microscissor, 3 mm point</td>
			<td>Argos Instrumental</td>
			<td>ARGOS-4004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pereosteal Raspatory</td>
			<td>Golgran</td>
			<td>38-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpal Handle</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>72-8354</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screwdrivers</td>
			<td>Eurotool</td>
			<td>SCR-830.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodering Iron</td>
			<td>Hikari</td>
			<td>21K006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissor</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>72-8400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Toothed forceps</td>
			<td>WPI</td>
			<td>501266-G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposables/Single Use</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 ml sterile syringe with 26 G needle</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>7898283812785</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>130 cm x 140 cm surgical field, presterilized</td>
			<td>ProtDesc</td>
			<td>7898467276344</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24G Needle, presterilized</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>7898283812846</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 cm x 50 cm surgical field, presterilized</td>
			<td>Esterili-med</td>
			<td>110100236</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton Tipped Probes, Presterilized</td>
			<td>Jiangsu Suyun Medical Materials Co. LTD</td>
			<td>23007</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton tipped Qutips</td>
			<td>Higie Topp</td>
			<td>7898095296063</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrode Array</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Home made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Endotracheal tube without cuff, internal diameter 2.0 mm, outer diameter 2.9 mm</td>
			<td>Solidor</td>
			<td>7898913077201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tinned copper wire, 0.15 mm diameter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>M1.4x3 Stainless steel screws</td>
			<td>USMICROSCREW</td>
			<td>M14-30M-SS-P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medical Tape</td>
			<td>Missner</td>
			<td>7896544910102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nylon surgical sutures</td>
			<td>Shalon</td>
			<td>N540CTI25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpal Blade, presterilized</td>
			<td>AdvantiVe</td>
			<td>1037</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>solder</td>
			<td>Kester</td>
			<td>SN63PB37</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Saline 0.9%</td>
			<td>Isofarma</td>
			<td>7898361700041</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Surgical Gloves</td>
			<td>Maxitex</td>
			<td>7898949349051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Surgical Gown</td>
			<td>ProtDesc</td>
			<td>7898467281208</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gauze, 15 cm x 26 cm presterilized</td>
			<td>H&#233;ika</td>
			<td>7898488470315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gelfoam</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drugs/Chemicals</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.25mg/ml Atropine</td>
			<td>Isofarma</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% Lidocaine Spray</td>
			<td>Produtos Qu&#237;micos Farmac&#234;uticos Ltda.</td>
			<td>7896676405644</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2.5% Enrofloxacino veterinary antibiotic</td>
			<td>Chemitec</td>
			<td>0137-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexametasona Veterinary Anti inflammatory</td>
			<td>MSD</td>
			<td>R06177091A-00-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrogen Peroxide</td>
			<td>Farmax</td>
			<td>7896902211537</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflourane</td>
			<td>BioChimico</td>
			<td>7897406113068</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jet Acrylic polymerization solution</td>
			<td>Artigos Odontol&#243;gicos Cl&#225;ssico</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jet Auto Polymerizing Acrylic</td>
			<td>Artigos Odontol&#243;gicos Cl&#225;ssico</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine 10%</td>
			<td>Syntec</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine and Phenylephrine 1.8 ml local anesthetic</td>
			<td>SS White</td>
			<td>7892525041049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidone-Iodine solutiom</td>
			<td>Farmax</td>
			<td>7896902234093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Riohex 2% surgical Soap</td>
			<td>Rioqu&#237;mica</td>
			<td>7897780209418</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silver Paint</td>
			<td>SPI Supplies</td>
			<td>05002-AB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tramadol chloride 50 mg/ml</td>
			<td>Uni&#227;o Qu&#237;mica</td>
			<td>7896006245452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Refresh gel (polyacrylic acid)</td>
			<td>Allergan</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

stereotaxic surgery for implantation of microelectrode arrays in the common marmoset (callithrix jacchus)

Silkeape (Callithrix jacchus) er små ikke-menneskelige primater som blir stadig mer populært i biomedisinsk og prekliniske forskning, inkludert Neurosciences. Phylogenetically, disse dyrene er mange nøyere å human enn Red. De viser også kompleks atferd, inkludert et bredt spekter av vocalizations og sosiale interaksjoner. Her beskrives en effektiv stereotaxic nevrokirurgisk prosedyre for implantation av opptak elektrode matriser i felles marmoset. Denne protokollen likeledes detaljene det pre-og postoperativ skritt av dyr bekymre det er krevde å med hell utføre slik en kirurgi. Til slutt, denne protokollen viser et eksempel på lokale feltet potensial og pigg aktivitet innspillinger i en fritt oppfører marmoset 1 uke etter kirurgisk inngrep. Samlet sett gir denne metoden en mulighet til å studere hjernens funksjon i våken og fritt oppfører silkeape. Den samme protokollen kan lett brukes av forskere som arbeider med andre små primater. I tillegg kan den enkelt endres slik at andre studier krever implantater, slik som stimulerende elektroder, microinjections, implantation av optrodes eller guide kanyler, eller ablasjon av diskrete vev regioner.

Formålet med denne studien var å beskrive en stereotaxic nevrokirurgisk prosedyre for implantation av microelectrode arrays for elektrofysiologisk innspillinger i felles marmoset. En typisk kirurgi (fra anestesi induksjon til anestesi utvinning) vil vare i ca 5 − 7 timer, avhengig av antall arrays implantert. Her ble to matriser symmetrisk implantert, en i hver hjerne halvkule. Hver matrise inneholdt 32 rustfritt stål microwires arrangert i sju bunter rettet mot flere strukturer av basal ganglia-corticothalamic kret...

Watch this Scientific Journal Video about Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset Callithrix jacchus at JoVE.com

Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset Callithrix jacchus

Dette arbeidet presenterer en protokoll for å utføre en stereotaxic, nevrokirurgisk implantation av microelectrode arrays i felles marmoset. Denne metoden muliggjør elektrofysiologisk opptak i fritt oppførte dyr, men kan lett tilpasses andre lignende nevrokirurgisk inngrep i denne arten (f. eks, kanyle for legemiddel administrasjon eller elektroder for hjerne stimulering).

Stereotaxic kirurgi for implantation av Microelectrode arrays i Common Marmoset (Callithrix jacchus)

Marmosets (Callithrix jacchus) are small non-human primates that are gaining popularity in biomedical and preclinical research, including the ...

Det overordnede målet med denne prosedyren er å skissere de kirurgiske trinnene som er involvert i implantasjonen av mikroelektrodarrayer for kronisk elektrofysiologiske opptak i fritt oppfører seg marmoseter. Marmosets er små primater som i økende grad blir brukt i nevrovitenskap forskning. Disse dyrene deler mange av de praktiske og logistiske fordelene med gnagere.Deres tilbøyelighet til twinning og høy fecundity i ung alder betyr klar tilgang til store og genetisk lignende kohorter. I tillegg gjør deres lille kroppsstørrelse dem enkle og relativt billige å ta vare på. Som primater har marmoset et sentralnervesystem som ligner mye mer på et menneske enn en gnager.Dette inkluderer en høyt utviklet prefrontal cortex og visuelt system. En fordel som marmosets har over mange andre arter av primater imidlertid, er fremdriften gjort i genetisk modifisere dem. Med et dypt sekvensert genom og suksess som genererer grunnlegger knock-in og knock-out dyr, er det klart at marmoset er klar til å bli en kraftig modell for å studere hjernefunksjon i helse og sykdom.En vanlig metode for studier av hjernefunksjon innebærer implantering av elektroder på anatomisk spesifikke steder. Dette gjør at man kronisk kan registrere nevrale aktiviteten i forskjellige målområder i våkne og fritt oppfører seg dyr. Før operasjonen bestemmer intraoral null koordinat for alle implantater og guider.For å gjøre dette, fest hver elektrodematrise som skal implanteres til en elektrodeholder og sett en mikroledning til intraoral null. Det er her ørestengene møtes. Gjenta dette for de ekstra elektrodematrisene og holderne, om nødvendig.I tillegg gjentar du dette med en 24 gauge nål på samme måte festet til en stereotaksisk probeholder. For elektrofysiologiske arrayer bør en jordledning loddes til alle andre skruer som skal brukes. Til slutt organisere og sterilisere alle instrumenter, utstyr og disponibel som forberedelse til kirurgisk prosedyre.På operasjonsdagen forsikrer dyret ikke har spist i seks timer før du begynner anestesi. Atropin og ketamin vil bli brukt til å indusere anestesi ved sekvensielle, intramuskulære injeksjoner. Deretter barberer dyrene hodet ved hjelp av barber clippers.Det er viktig å intubere dyret under operasjonen. Vår foretrukne metode innebærer å feste et elastisk bånd til det kirurgiske bordet som vi setter inn bak dyrenes hjørnetenner mens det er i liggende stilling. Vi bruker deretter en bomullstippet sonde for å tørke marmosetens tunge og gripe den i den ene hånden.Dette gjør det mulig for en tekniker å åpne munnen og luftveiene med bare én hånd. Etter at du har satt inn endotrakealrøret, fester du det til anestesienheten med den kunstige ventilatoren satt til 40 åndedrag per minutt. Fest røret og monteringen med tape etter behov.Med marmoset nå i utsatt posisjon fikse dyrets hode inn i stereotoksisk ramme. For å gjøre dette, først, sett spissen av høyre ørestang inn i dyrets høyre hørkanal. Etterfulgt av venstre ørestang inn i venstre hørbar kanal.Deretter må hodet jevnes slik at det horisontale planet er parallelt med rammen, mens det fremre / bakre flyet er sentrert. Dette oppnås ved først å sentrere dyrets hode ved hjelp av ørestangenmålinger sikret på like avstander. Etter dette settes munnstykket inn i dyrets munn, og justeres til det berører dyrets palett, mens orbitalbarene bare berører den nedre marginen av orbitalbenet.Som det horisontale planet er definert som flyet passerer gjennom den nedre marginen av orbital bein og sentrum av ekstern auditiv medius, bør man sørge for at den nedre overflaten av orbital bein er nå horisontalt justert med midten av ørestengene før du fortsetter. Under prosedyren er det viktig å opprettholde alle vitale tegn. Dermed bør man koble et bærbart pulsoksymeter til marmosetens hånd for å sikre at hjertefrekvens og oksygenmetning er innenfor de akseptable områdene.I tillegg vil en rektal temperatursonde koblet til en hjemmeormær varmepute satt for 37 grader celsius, og teipet til halen, sikre at marmosetens kroppstemperatur ikke påvirkes negativt av anestesi. Det siste preoperative trinnet er å rengjøre og desinfisere dyrets barberte hode med klorhexidin og jod, før du dekker dyret med et sterilisert kirurgisk felt. Utfør et snitt i midtlinjen i hodebunnen etter å ha brukt et lokalt smertestillende på dette stedet.For å forberede overflaten av skallen, må du først forsiktig løsne den timelige muskelen fra kraniet. Dette gjøres ved å kutte fossa på det er innsetting i skallen med en skalpell. Deretter bør den temporale muskelen forsiktig skilles fra kraniet ved hjelp av en periosteal raspatory.Fortsetter med periosteal raspatory fjerne periosteum fra alle eksponerte kraniet ved skraping. Deretter markerer du plasseringen av kraniotomien ved å lage grunne burr hull i beinoverflaten og bore ut omkretsen av kraniotomien. Bor seks til åtte skruehull etter behov, inn i kraniet og implanter skruene.På dette tidspunktet, vind bakken ledninger loddet til en gitt skrue rundt den tilstøtende usolgte skruen. Fjern beinet i midten av kraniotomien ved hjelp av McPherson-tang. Mens hjernen og dura mater er avdekket holde dem hydrert med steril saltvann.For å fjerne dura mater, bør en 25 eller 26 gauge nål bøyes på ca 90 grader for å lette punktering og løfte overflaten av dura mater bort fra hjernens overflate. På dette punktet brukes mikrosaks til å avgiftsdirektoratet dura mater. Fest elektrodene til stereotaksisk mikromanipulator og plasser den, slik at elektroden er på de ønskede fremre / bakre og mediale / laterale koordinatene.Senk nå spissen av elektroden til den berører overflaten av hjernen. Sett langsomt matrisen inn i hjernen, til den når de ønskede dorsal / ventral koordinatene. Tilsett en dråpe sølvmaling mellom jordledningen og hver skrue for å sikre en elektrisk tilkobling.Fest elektroden til skallen ved å påføre tannakryl på den eksponerte skallen, en skrue og elektrodematrisen. Gjenta denne implantasjonsprosedyren med eventuelle ekstra arrayer. Til slutt, ved hjelp av tannakol, lag en solid hodehette rundt det laterale omfanget av arrayene og helt i tilfelle jordledningene og eventuelle eksponerte hodeskaller eller skruer.Om nødvendig kan man sette inn en støttestang i hodehetten og forsegle den på plass med tannakryl. Etter etableringen av hodehetten sutur huden hvis muskel eller bein vev er utsatt. En antiseptisk løsning bør også påføres såret på dette tidspunktet.Med operasjonen fullført er det på tide å begynne utvinning. Slå først av isoflurantilførselen, men ikke oksygenet, og fjern dyret fra stereotoksisk rammen. Plasser dyret på varmesiden, med oksygenet opprettholdt gjennom endotrakealrøret.Når det første tegn på nevrogene reflekser som strupehodespasmer begynner, fjern endotrakealrøret. Oksygen skal nå leveres med en maske til dyret presenterer klare tegn på bedøvelsesgjenoppretting, for eksempel beskyttende reflekser, postural tone og forsøk på å ambulere. Marmoset skal være plassert individuelt, og igjen for å komme seg i et rent bur og plass i 24 til 48 timer, før du går tilbake til sitt hjem bur.Implanterte dyr bør være plassert i separate bur. Det er viktig å observere dyret i minst en time etter operasjonen for å se etter tegn på nød og spesielt ukoordinerte bevegelser. Antibiotika og smertestillende midler og antiinflammatoriske legemidler bør administreres i dagene etter operasjonen for å kontrollere smerte og forhindre infeksjon.Ved vellykkede operasjoner bør dyret gjenopprettes helt innen tre til fem dager. Vi anbefaler elektrofysiologiske opptaksøkter begynner minst en uke etter operasjonen. I begynnelsen av hver opptaksøkt bedøver dyret lett ved hjelp av isofluran og koble elektrodearraykontakten til et nevrale opptakssystem.Plasser dyret inne i det eksperimentelle kammeret og vent på full bedøvelsesgjenoppretting før du begynner opptakene. Etter en vellykket operasjon, Det er mulig å registrere pigger og lokale feltet potensialer fra implanterte elektroder over flere uker. Til slutt en endelig bekreftelse på at elektrode arrays ble vellykket implantert inn i målstrukturer bør preformed post-mortem.Nissl fargede seksjoner som inneholder elektrospor kan brukes til å bestemme posisjonen til hver implanterte mikrotråd. Kroniske elektrofysiologiske opptak i våkne oppfører dyr er kraftige teknikker som brukes i mange linjer med nevrovitenskap forskning. Som den vanlige marmoset tilbyr mange fordeler over historisk populære modeller, er hensikten med denne videoen, å hjelpe andre nevrologer vedta den vanlige marmoset for sin forskning.I tillegg til implantasjon av kroniske opptakselektroder, som beskrevet i denne videoen, kan den samme stereotoksiske kirurgiprotokollen tilpasses mange andre eksperimentelle ender, inkludert implantasjon av stimulerende elektroder, guide kanyler og mikroinjeksjoner. Når du tilpasser denne protokollen for en av de nevnte teknikkene, vil kirurgen hovedsakelig endre boreprosedyren for å samsvare med størrelsen på ønsket implantat. I tillegg er bakken prosedyren ikke nødvendig for mange av disse teknikkene og kan dermed utelates.Uavhengig av det eksperimentelle målet, etter å ha sett denne videoen bør du ha en forståelse av hvordan du kan utføre stereotaksisk nevrokirurgi i den vanlige marmoseten.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset (Callithrix jacchus)

Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience

Gnagere Stereotaxic kirurgi og Animal Welfare Outcome Forbedringer for Behavioral Neuroscience

Stereotaxic surgery for the implantation of cannulae into specific brain regions has for many decades been a very successful experimental technique to ...

Stereotaxic Surgery for Excitotoxic Lesion of Specific Brain Areas in the Adult Rat

Stereotaxic Kirurgi for Excitotoxic lesjon i spesifikke hjerneområder i Adult Rat

Many behavioral functions in mammals, including rodents and humans, are mediated principally by discrete brain regions. A common method for discerning the ...

Stereotaxic Infusion of Oligomeric Amyloid-beta into the Mouse Hippocampus

Stereotaksisk Infusjon av Oligomeric amyloid-beta i musen Hippocampus

Alzheimer&#8217;s disease is a neurodegenerative disease affecting the aging population. A key neuropathological feature of the disease is the ...

Microelectrode Guided Implantation of Electrodes into the Subthalamic Nucleus of Rats for Long-term Deep Brain Stimulation

Microelectrode Guidet Implantasjon av elektroder inn subthalamic Nucleus av Rats for Long-term dyp hjernestimulering

Deep brain stimulation (DBS) is a widely used and effective therapy for several neurologic disorders, such as idiopathic Parkinson&#8217;s disease, ...

Stereotaxic Surgery for Genetic Manipulation in Striatal Cells of Neonatal Mouse Brains

Stereotaxic kirurgi for genetisk manipulasjon i Striatal celler Neonatal musen hjerner

Many genes are expressed in embryonic brains, and some of them are continuously expressed in the brain after birth. For such persistently expressed genes, ...

Adaptation of Microelectrode Array Technology for the Study of Anesthesia-induced Neurotoxicity in the Intact Piglet Brain

Tilpasning av Microelectrode Array teknologi for studier av anestesi-indusert nevrotoksisitet i intakt Piglet hjernen

Every year, millions of children undergo anesthesia for a multitude of procedures. However, studies in both animals and humans have called into question ...

Recording and Modulation of Epileptiform Activity in Rodent Brain Slices Coupled to Microelectrode Arrays

Opptak og modulering Epileptiform aktivitet i gnager hjernen skiver koplet til Microelectrode matriser

Temporal lobe epilepsy (TLE) is the most common partial complex epileptic syndrome and the least responsive to medications. Deep brain stimulation (DBS) ...

Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset

Kronisk implantering av hele-kortikale Electrocorticographic matrise i den vanlige Marmoset

Electrocorticography (ECoG) allows the monitoring of electrical field potentials from the cerebral cortex with high spatiotemporal resolution. Recent ...

Chronic Implantation of Multiple Flexible Polymer Electrode Arrays

Kronisk implantation av flere fleksible polymer elektrode rekker

Simultaneous recordings from large populations of individual neurons across distributed brain regions over months to years will enable new avenues of ...