Name: stereotaxic surgery for implantation of microelectrode arrays in the common marmoset (callithrix jacchus)
Uploaded: 2019-09-29T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset Callithrix jacchus at JoVE.com

Os autores gostariam de agradecer a Bernardo Luiz pela assistência técnica com a filmagem e edição. Este trabalho foi apoiado pelo Instituto Santos Dumont (ISD), pelo Ministério da educação (MEC) e pela coordenação de aperfeiçoamento de pessoal de nível superior (CAPES).

Experimentos com animais foram realizados de acordo com o guia nacional de saúde para o cuidado e uso de animais de laboratório e aprovados pelo Comitê de ética do Instituto Santos Dumont (protocolo 02/2015AAS).
1. preparação da cirurgia
<ol><li>Fixe cada matriz de eletrodo a um suporte de eletrodo compatível com o quadro estereotódico a ser usado.</li>
	<li>Conecte um suporte do elétrodo ao micromanipulador Stereotaxic e ajuste um Microwire às coordenadas interaural. Repita isto p...

<ol>
	<li>Okano, H., Hikishima, K., Iriki, A., Sasaki, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+common+marmoset+as+a+novel+animal+model+system+for+biomedical+and+neuroscience+research+applications.">The common marmoset as a novel animal model system for biomedical and neuroscience research applications.</a> Seminars in Fetal and Neonatal Medicine. 17 (6), 336-340 (2012).</li><li>Harris, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolutionary+genetics+and+implications+of+small+size+and+twinning+in+callitrichine+primates.">Evolutionary genetics and implications of small size and twinning in callitrichine primates.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (4), 1467-1472 (2014).</li><li>Kishi, N., Sato, K., Sasaki, E., Okano, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Common+marmoset+as+a+new+model+animal+for+neuroscience+research+and+genome+editing+technology.">Common marmoset as a new model animal for neuroscience research and genome editing technology.</a> Development, Growth &amp; Differentiation. 56 (1), 53-62 (2014).</li><li>Sasaki, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prospects+for+genetically+modified+non-human+primate+models,+including+the+common+marmoset.">Prospects for genetically modified non-human primate models, including the common marmoset.</a> Neuroscience Research. 93, 110-115 (2015).</li><li>Sasaki, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+transgenic+non-human+primates+with+germline+transmission.">Generation of transgenic non-human primates with germline transmission.</a> Nature. 459 (7246), 523-527 (2009).</li><li>Sasaki, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Creating+Genetically+Modified+Marmosets.">Creating Genetically Modified Marmosets.</a> The Common Marmoset in Captivity and Biomedical Research. , 335-353 (2019).</li><li>Sato, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+a+Nonhuman+Primate+Model+of+Severe+Combined+Immunodeficiency+Using+Highly+Efficient+Genome+Editing.">Generation of a Nonhuman Primate Model of Severe Combined Immunodeficiency Using Highly Efficient Genome Editing.</a> Cell Stem Cell. 19 (1), 127-138 (2016).</li><li>Sato, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resequencing+of+the+common+marmoset+genome+improves+genome+assemblies+and+gene-coding+sequence+analysis.">Resequencing of the common marmoset genome improves genome assemblies and gene-coding sequence analysis.</a> Scientific Reports. 5, 16894 (2015).</li><li>Chaplin, T. A., Yu, H. H., Soares, J. G. M., Gattass, R., Rosa, M. G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Conserved+Pattern+of+Differential+Expansion+of+Cortical+Areas+in+Simian+Primates.">A Conserved Pattern of Differential Expansion of Cortical Areas in Simian Primates.</a> Journal of Neuroscience. 33 (38), 15120-15125 (2013).</li><li>Mitchell, J. F., Leopold, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+marmoset+monkey+as+a+model+for+visual+neuroscience.">The marmoset monkey as a model for visual neuroscience.</a> Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).</li><li>Brok, H. P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-human+primate+models+of+multiple+sclerosis:+Non-human+primate+models+of+MS.">Non-human primate models of multiple sclerosis: Non-human primate models of MS.</a> Immunological Reviews. 183 (1), 173-185 (2001).</li><li>Santana, M. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+Cord+Stimulation+Alleviates+Motor+Deficits+in+a+Primate+Model+of+Parkinson's+disease.">Spinal Cord Stimulation Alleviates Motor Deficits in a Primate Model of Parkinson's disease.</a> Neuron. 84 (4), 716-722 (2014).</li><li>MacDougall, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optogenetic+manipulation+of+neural+circuits+in+awake+marmosets.">Optogenetic manipulation of neural circuits in awake marmosets.</a> Journal of Neurophysiology. 116 (3), 1286-1294 (2016).</li><li>Wakabayashi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+stereotaxic+recording+system+for+awake+marmosets+(Callithrix+jacchus).">Development of stereotaxic recording system for awake marmosets (Callithrix jacchus).</a> Neuroscience Research. 135, 37-45 (2018).</li><li>Johnston, K. D., Barker, K., Schaeffer, L., Schaeffer, D., Everling, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+for+chair+restraint+and+training+of+the+common+marmoset+on+oculomotor+tasks.">Methods for chair restraint and training of the common marmoset on oculomotor tasks.</a> Journal of Neurophysiology. 119 (5), 1636-1646 (2018).</li><li>Sedaghat-Nejad, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+training+of+marmosets+and+electrophysiological+recording+from+the+cerebellum.">Behavioral training of marmosets and electrophysiological recording from the cerebellum.</a> Journal of Neurophysiology. , (2019).</li><li>Kringelbach, M. L., Owen, S. L., Aziz, T. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deep-brain+stimulation.">Deep-brain stimulation.</a> Future Neurology. 2 (6), 633-646 (2007).</li><li>Talakoub, O., Gomez Palacio Schjetnan, A., Valiante, T. A., Popovic, M. R., Hoffman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Closed-Loop+Interruption+of+Hippocampal+Ripples+through+Fornix+Stimulation+in+the+Non-Human+Primate.">Closed-Loop Interruption of Hippocampal Ripples through Fornix Stimulation in the Non-Human Primate.</a> Brain Stimulation. 9 (6), 911-918 (2016).</li><li>Oddo, M., Hutchinson, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Understanding+and+monitoring+brain+injury:+the+role+of+cerebral+microdialysis.">Understanding and monitoring brain injury: the role of cerebral microdialysis.</a> Intensive Care Medicine. 44 (11), 1945-1948 (2018).</li><li>Metz, G. A., Whishaw, I. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+and+subcortical+lesions+impair+skilled+walking+in+the+ladder+rung+walking+test:+a+new+task+to+evaluate+fore-+and+hindlimb+stepping,+placing,+and+co-ordination.">Cortical and subcortical lesions impair skilled walking in the ladder rung walking test: a new task to evaluate fore- and hindlimb stepping, placing, and co-ordination.</a> Journal of Neuroscience Methods. 115 (2), 169-179 (2002).</li><li>Gradinaru, V., Mogri, M., Thompson, K. R., Henderson, J. M., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+Deconstruction+of+Parkinsonian+Neural+Circuitry.">Optical Deconstruction of Parkinsonian Neural Circuitry.</a> Science. 324, 354-359 (2009).</li><li>Hammer, D. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Longitudinal+vascular+dynamics+following+cranial+window+and+electrode+implantation+measured+with+speckle+variance+optical+coherence+angiography.">Longitudinal vascular dynamics following cranial window and electrode implantation measured with speckle variance optical coherence angiography.</a> Biomedical Optics Express. 5 (8), 2823-2836 (2014).</li><li>Komatsu, M., Kaneko, T., Okano, H., Ichinohe, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+Implantation+of+Whole-cortical+Electrocorticographic+Array+in+the+Common+Marmoset.">Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset.</a> Journal of Visualized Experiments. (144), (2019).</li><li>Oliveira, L. M. O., Dimitrov, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Surgical Techniques for Chronic Implantation of Microwire Arrays in Rodents and Primates. , (2008).</li><li>Santana, M. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+Cord+Stimulation+Alleviates+Motor+Deficits+in+a+Primate+Model+of+Parkinson's+disease.">Spinal Cord Stimulation Alleviates Motor Deficits in a Primate Model of Parkinson's disease.</a> Neuron. 84 (4), 716-722 (2014).</li><li>Santana, M., Palm&#233;r, T., Simpl&#237;cio, H., Fuentes, R., Petersson, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+long-term+motor+deficits+in+the+6-OHDA+model+of+Parkinson's+disease+in+the+common+marmoset.">Characterization of long-term motor deficits in the 6-OHDA model of Parkinson's disease in the common marmoset.</a> Behavioural Brain Research. 290, 90-101 (2015).</li><li>Misra, S., Koshy, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+practice+of+sedation+with+inhalational+anaesthetics+in+the+intensive+care+unit+with+the+AnaConDa+device.">A review of the practice of sedation with inhalational anaesthetics in the intensive care unit with the AnaConDa device.</a> Indian Journal of Anaesthesia. 56 (6), 518-523 (2012).</li><li>Freire, M. A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distribution+and+Morphology+of+Calcium-Binding+Proteins+Immunoreactive+Neurons+following+Chronic+Tungsten+Multielectrode+Implants.">Distribution and Morphology of Calcium-Binding Proteins Immunoreactive Neurons following Chronic Tungsten Multielectrode Implants.</a> PLOS ONE. 10 (6), 0130354 (2015).</li><li>Budoff, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Astrocytic+Response+to+Acutely-+and+Chronically+Implanted+Microelectrode+Arrays+in+the+Marmoset+(Callithrix+jacchus)+Brain.">Astrocytic Response to Acutely- and Chronically Implanted Microelectrode Arrays in the Marmoset (Callithrix jacchus) Brain.</a> Brain Sciences. 9 (2), 19 (2019).</li><li>Dzirasa, K., Fuentes, R., Kumar, S., Potes, J. M., Nicolelis, M. A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+in+vivo+multi-circuit+neurophysiological+recordings+in+mice.">Chronic in vivo multi-circuit neurophysiological recordings in mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 195 (1), 36-46 (2011).</li><li>Nicolelis, M. A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic,+multisite,+multielectrode+recordings+in+macaque+monkeys.">Chronic, multisite, multielectrode recordings in macaque monkeys.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 100 (19), 11041-11046 (2003).</li><li>Lehew, G., Nicolelis, M. A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> State-of-the-Art Microwire Array Design for Chronic Neural Recordings in Behaving Animals. , (2008).</li><li>Paxinos, G., Watson, C., Petrides, M., Rosa, M., Tokuno, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Marmoset Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2012).</li><li>Brown, M. J., Pearson, P. T., Tomson, F. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guidelines+for+animal+surgery+in+research+and+teaching.">Guidelines for animal surgery in research and teaching.</a> American Journal of Veterinary Research. 54 (9), 1544-1559 (1993).</li><li>Flecknell, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anaesthesia+of+Animals+for+Biomedical+Research.">Anaesthesia of Animals for Biomedical Research.</a> British Journal of Anaesthesia. 71 (6), 885-894 (1993).</li><li>Kurihara, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Surgical+Procedure+for+the+Administration+of+Drugs+to+the+Inner+Ear+in+a+Non-Human+Primate+Common+Marmoset+(Callithrix+jacchus).">A Surgical Procedure for the Administration of Drugs to the Inner Ear in a Non-Human Primate Common Marmoset (Callithrix jacchus).</a> Journal of Visualized Experiments. (132), (2018).</li><li>Boer, R. A., de Vries, A. M. O., Louwerse, A. L., Sterck, E. H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+behavioral+context+of+visual+displays+in+common+marmosets+(Callithrix+jacchus).">The behavioral context of visual displays in common marmosets (Callithrix jacchus).</a> American Journal of Primatology. 75 (11), 1084-1095 (2013).</li><li>Kudo, C., Nozari, A., Moskowitz, M. A., Ayata, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+impact+of+anesthetics+and+hyperoxia+on+cortical+spreading+depression.">The impact of anesthetics and hyperoxia on cortical spreading depression.</a> Experimental Neurology. 212 (1), 201-206 (2008).</li><li>Ghomashchi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+low-cost,+open-source,+wireless+electrophysiology+system.">A low-cost, open-source, wireless electrophysiology system.</a> 2014 36th Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society. , 3138-3141 (2014).</li><li>Fu, T. M., Hong, G., Viveros, R. D., Zhou, T., Lieber, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Highly+scalable+multichannel+mesh+electronics+for+stable+chronic+brain+electrophysiology.">Highly scalable multichannel mesh electronics for stable chronic brain electrophysiology.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (47), 10046-10055 (2017).</li></ol>

Este trabalho fornece uma descrição detalhada dos procedimentos envolvidos na implantação de matrizes de gravação de microeletrodos no cérebro de marmoset. Este mesmo protocolo pode ser prontamente utilizado na implantação de eletrodos, sejam eles caseiros ou comercialmente disponíveis, em outros pequenos primatas. Adicionalmente, pode facilmente ser adaptado para outras extremidades experimentais que exigem a segmentação precisa de estruturas do cérebro. Portanto, este protocolo é propositadamente vago em ...

Os saguis comuns (Callithrix jacchus) estão ganhando o reconhecimento como um organismo modelo importante em muitos campos da pesquisa, incluindo a neurociência. Estes primatas do novo mundo representam um importante modelo animal complementar para os roedores e outros primatas não humanos (NHPs), como o macaque rhesus. Como roedores, estes animais são pequenos, fáceis de manipular, e relativamente econômicos para cuidar e raça1,2,3,4, emcomparação com nhps maior. Além disso, estes animais têm uma propensão para geminação e alta fecundidade em relação a outros nhps1,2,3. Outra vantagem que o marmoset tem sobre muitos outros primatas é que as modernas ferramentas de biologia molecular3,4,5,6,7 e um genoma seqüenciado2 ,3,4,5,8 foram usados para modificá-los geneticamente. Ambos os animais Knock-in usando Lentivirus5, e knock-out animais usando nucleases de zinco-dedo (ZFNs) e transcrição ativador-como nucleases EFETORAS (Talens)7, produziram animais fundadores viáveis.
Uma vantagem em relação aos roedores é que os saguões, como primatas, são filogeneticamente mais próximos dos humanos3,5,6,9,10,11. Como os seres humanos, os saguis são animais diurnos que dependem de um sistema visual altamente desenvolvido para orientar muito do seu comportamento10. Além disso, os saguis exibem complexidade comportamental, incluindo uma ampla gama de comportamentos sociais, como o uso de diferentes vocalizações3, permitindo que os pesquisadores endereçam questões não possíveis em outras espécies. De uma perspectiva neurocientífica, os saguis têm lissencefalia cérebros, ao contrário do mais comumente usado Rhesus macaque9. Além disso, os saguis têm um sistema nervoso central similar aos seres humanos, incluindo um córtex pré-frontal mais altamente desenvolvido9. Juntas, todas essas características posicionam os saguis como um modelo valioso para estudar a função cerebral na saúde e na doença.
Um método comum para estudar a função cerebral envolve a implantação de eletrodos em locais anatomicamente específicos por meio de neurocirurgia estereotaxica. Isso permite a gravação cronical da atividade neural em diferentes áreas-alvo em animais acordados e de comportamento livre12,13. A neurocirurgia estereotómica é uma técnica indispensável usada em muitas linhas de pesquisa, pois permite direcionamento preciso de regiões neuroanatômicas. Comparado à literatura do macaque e do roedor, há poucos estudos publicados que descrevem a neurocirurgia Stereotaxic específica ao marmoset, e tendem a fornecer o detalhe escasso das etapas envolvidas na cirurgia. Além disso, aqueles com maior detalhe concentram-se principalmente nos procedimentos para a gravação de eletrofisiologia em animais de cabeça restrita14,15,16,17.
A fim de facilitar a adoção mais ampla de saguis como modelo de organismo na pesquisa em neurociência, o presente método define etapas específicas necessárias para uma neurocirurgia estereotóica bem-sucedida nesta espécie. Além da implantação de matrizes de gravação, conforme detalhado no presente método, a mesma técnica pode ser adaptada para muitas outras extremidades experimentais, incluindo a implantação de eletrodos estimulantes para o tratamento de doenças18 ou condução causalmente comportamento do circuito19; implantação de cânulas guia para extração e quantificação de neurotransmissores20, injeções de reagentes, incluindo aquelas para indução de modelos de doenças12 ou para os estudos de traçado de circuitos15; ablação de regiões discretas do tecido21; implantação de optrodes para estudos optogenéticos22; implantação de janelas ópticas para análise microscópica cortical23; e implantação de matrizes eletrocorticográficas (ECoG)24. Assim, o objetivo geral deste procedimento é delinear as etapas cirúrgicas envolvidas na implantação de matrizes de microeletrodos para gravações eletrofisiológicas crônicas em marmosets de comportamento livre.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Equipments</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>683 Small Animal Ventilator</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>55-0000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anesthesia Assembly</td>
			<td>BRASMED</td>
			<td>COLIBRI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Barber Clippers</td>
			<td>Mundial</td>
			<td>HC-SERIES</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental Drill</td>
			<td>Norgen</td>
			<td>B07-201-M1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Homeothermic Heating Pad and Monitor</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>50-7212</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Marmoset Stereotaxic Frame</td>
			<td>Narishige Scientific Instrument Lab</td>
			<td>SR-6C-HT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Patient Monitor and Pulse Oximeter</td>
			<td>Bionet Co., Ltd</td>
			<td>BM3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic Micromanipulator</td>
			<td>Narishige Scientific Instrument Lab</td>
			<td>SM-15R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Microscope</td>
			<td>Opto</td>
			<td>SM PLUS IBZ</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Instruments</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Allis tissue forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>36-2275</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alm Retractor, rounded point, 4x4 teeth</td>
			<td>Rhosse</td>
			<td>RH11078</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Angled McPherson Forceps</td>
			<td>Oftalmologiabr</td>
			<td>11301A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Surgial Scissors</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>72-8422</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Tissue Forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>47-1186</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Delicate Dissection forceps</td>
			<td>WPI</td>
			<td>WP5015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental Drill Bit</td>
			<td>Microdont</td>
			<td>ISO.806.314.001.524.010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Essring Tissue Forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>19-2460</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FG 1/4 Dental Drill Bit</td>
			<td>Microdont</td>
			<td>ISO.700.314.001.006.005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halsey Needle Holder</td>
			<td>WPI</td>
			<td>15926-G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halstead Mosquito forceps</td>
			<td>WPI</td>
			<td>503724-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostatic Forceps, Straight</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>17-1260</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jewler Forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>66-7436</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>McPherson-Vannas Optathalmic microscissor, 3 mm point</td>
			<td>Argos Instrumental</td>
			<td>ARGOS-4004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pereosteal Raspatory</td>
			<td>Golgran</td>
			<td>38-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpal Handle</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>72-8354</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screwdrivers</td>
			<td>Eurotool</td>
			<td>SCR-830.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodering Iron</td>
			<td>Hikari</td>
			<td>21K006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissor</td>
			<td>Harvard Apparatus, Inc.</td>
			<td>72-8400</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Toothed forceps</td>
			<td>WPI</td>
			<td>501266-G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposables/Single Use</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 ml sterile syringe with 26 G needle</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>7898283812785</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>130 cm x 140 cm surgical field, presterilized</td>
			<td>ProtDesc</td>
			<td>7898467276344</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24G Needle, presterilized</td>
			<td>Descarpack</td>
			<td>7898283812846</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 cm x 50 cm surgical field, presterilized</td>
			<td>Esterili-med</td>
			<td>110100236</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton Tipped Probes, Presterilized</td>
			<td>Jiangsu Suyun Medical Materials Co. LTD</td>
			<td>23007</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton tipped Qutips</td>
			<td>Higie Topp</td>
			<td>7898095296063</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrode Array</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Home made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Endotracheal tube without cuff, internal diameter 2.0 mm, outer diameter 2.9 mm</td>
			<td>Solidor</td>
			<td>7898913077201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tinned copper wire, 0.15 mm diameter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>M1.4x3 Stainless steel screws</td>
			<td>USMICROSCREW</td>
			<td>M14-30M-SS-P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medical Tape</td>
			<td>Missner</td>
			<td>7896544910102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nylon surgical sutures</td>
			<td>Shalon</td>
			<td>N540CTI25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpal Blade, presterilized</td>
			<td>AdvantiVe</td>
			<td>1037</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>solder</td>
			<td>Kester</td>
			<td>SN63PB37</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Saline 0.9%</td>
			<td>Isofarma</td>
			<td>7898361700041</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Surgical Gloves</td>
			<td>Maxitex</td>
			<td>7898949349051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Surgical Gown</td>
			<td>ProtDesc</td>
			<td>7898467281208</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gauze, 15 cm x 26 cm presterilized</td>
			<td>H&#233;ika</td>
			<td>7898488470315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gelfoam</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drugs/Chemicals</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.25mg/ml Atropine</td>
			<td>Isofarma</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% Lidocaine Spray</td>
			<td>Produtos Qu&#237;micos Farmac&#234;uticos Ltda.</td>
			<td>7896676405644</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2.5% Enrofloxacino veterinary antibiotic</td>
			<td>Chemitec</td>
			<td>0137-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexametasona Veterinary Anti inflammatory</td>
			<td>MSD</td>
			<td>R06177091A-00-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrogen Peroxide</td>
			<td>Farmax</td>
			<td>7896902211537</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflourane</td>
			<td>BioChimico</td>
			<td>7897406113068</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jet Acrylic polymerization solution</td>
			<td>Artigos Odontol&#243;gicos Cl&#225;ssico</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jet Auto Polymerizing Acrylic</td>
			<td>Artigos Odontol&#243;gicos Cl&#225;ssico</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine 10%</td>
			<td>Syntec</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine and Phenylephrine 1.8 ml local anesthetic</td>
			<td>SS White</td>
			<td>7892525041049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidone-Iodine solutiom</td>
			<td>Farmax</td>
			<td>7896902234093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Riohex 2% surgical Soap</td>
			<td>Rioqu&#237;mica</td>
			<td>7897780209418</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silver Paint</td>
			<td>SPI Supplies</td>
			<td>05002-AB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tramadol chloride 50 mg/ml</td>
			<td>Uni&#227;o Qu&#237;mica</td>
			<td>7896006245452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Refresh gel (polyacrylic acid)</td>
			<td>Allergan</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

stereotaxic surgery for implantation of microelectrode arrays in the common marmoset (callithrix jacchus)

Marmosets (Callithrix jacchus) são pequenos primatas não-humanos que estão ganhando popularidade em pesquisas biomédicas e pré-clínicas, incluindo as neurociências. Phylogenetically, estes animais são muito mais perto dos seres humanos do que roedores. Eles também exibem comportamentos complexos, incluindo uma ampla gama de vocalizações e interações sociais. Aqui, um procedimento Neurosurgical Stereotaxic eficaz para a implantação de matrizes do elétrodo da gravação no marmoset comum é descrito. Este protocolo igualmente detalha as etapas pre-e postoperative do cuidado animal que são exigidos executar com sucesso tal cirurgia. Finalmente, este protocolo mostra um exemplo do potencial local do campo e das gravações da atividade do ponto em um marmoset de comportamento livre 1 semana após o procedimento cirúrgico. Globalmente, este método oferece uma oportunidade para estudar a função cerebral em marmosets acordados e livremente comportando. O mesmo protocolo pode ser prontamente utilizado por pesquisadores que trabalham com outros pequenos primatas. Além disso, pode ser facilmente modificada para permitir outros estudos que necessitem de implantes, como estimulação de eletrodos, microinjeções, implante de optrodes ou cânulas de guia, ou ablação de regiões discretas de tecido.

A finalidade deste estudo era descrever um procedimento Neurosurgical Stereotaxic para a implantação de matrizes do microelétrodo para gravações eletrofisiológicos no marmoset comum. Uma cirurgia típica (da indução anestésica à recuperação da anestesia) durará aproximadamente 5 − 7 h, dependendo do número de matrizes implantadas. Aqui, duas matrizes foram implantadas simetricamente, uma em cada hemisfério cerebral. Cada matriz continha 32 microfios de aço inoxidável dispostos em sete feixes visando v?...

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Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset Callithrix jacchus

Este trabalho apresenta um protocolo para realizar um implante estereotódico e neurocirúrgico de matrizes de microeletrodos no marmoset comum. Este método permite especificamente gravações electrofisiológicas em animais de comportamento livre, mas pode ser facilmente adaptado a qualquer outra intervenção neurocirúrgica semelhante nesta espécie (por exemplo, cânula para a administração de medicamentos ou eletrodos para estimulação cerebral).

Cirurgia estereotástrica para implante de matrizes de microeletrodos no Marmoset comum (Callithrix jacchus)

Marmosets (Callithrix jacchus) are small non-human primates that are gaining popularity in biomedical and preclinical research, including the ...

O objetivo geral deste procedimento é delinear as etapas cirúrgicas envolvidas na implantação de matrizes de microeletrodos para registro eletrofisiológico crônico em saguis de comportamento livre. Saguis são pequenos primatas que estão sendo cada vez mais usados em pesquisas de neurociência. Esses animais compartilham muitas das vantagens práticas e logísticas dos roedores.Sua propensão para a twinning e alta fecundidade em idades jovens significa acesso pronto a coortes grandes e geneticamente semelhantes. Além disso, seu pequeno tamanho corporal os torna fáceis e relativamente baratos de se cuidar. Como primatas, o sagui tem um sistema nervoso central que é muito mais semelhante a um humano do que o de um roedor.Isso inclui um córtex pré-frontal altamente desenvolvido e sistema visual. Uma vantagem que os saguis têm sobre muitas outras espécies de primatas, no entanto, é o progresso feito em modificá-los geneticamente. Com um genoma profundamente sequenciado e sucesso gerando animais fundadores, é claro que o sagui está pronto para se tornar um modelo poderoso para estudar a função cerebral em saúde e doença.Um método comum para a função cerebral de estudo envolve a implantação de eletrodos em locais anatomicamente específicos. Isso permite que se regise cronicamente a atividade neural em diferentes áreas alvo em animais acordados e livremente comportados. Antes da cirurgia, determine a coordenada intraoral zero para todos os implantes e guias.Para isso, conecte cada matriz de eletrodos que será implantado em um suporte de eletrodo e coloque um micro fio no zero intraoral. É aqui que as barras de ouvido se encontram. Repita isso para as matrizes e suportes adicionais de eletrodos, se necessário.Além disso, repita isso com uma agulha de calibre 24 igualmente ligada a um suporte de sonda estereotaxic. Para matrizes eletrofisiológicas, um fio moído deve ser soldado para todos os outros parafusos que serão usados. Por fim, organize e esterilize todos os instrumentos, equipamentos e descartáveis na preparação para o procedimento cirúrgico.No dia da cirurgia, assegurem que o animal não come há seis horas antes do início da anestesia. Atropina e cetamina serão usadas para induzir anestesia por injeções intramusculares sequenciais. Em seguida, raspe a cabeça dos animais usando cortadores de barbeiro.É importante entubar o animal durante a cirurgia. Nosso método preferido envolve anexar uma faixa elástica à mesa cirúrgica que inserimos atrás dos caninos animais enquanto está em uma posição supina. Em seguida, usamos uma sonda de ponta de algodão para limpar a língua do sagui e agarrá-la em uma mão.Isso permite que um técnico abra a boca e as vias aéreas com apenas uma mão. Depois de inserir o tubo endotraqueal, conecte-o ao conjunto de anestesia com o ventilador artificial definido para 40 respirações por minuto. Fixar o tubo e o conjunto com fita adesiva, conforme necessário.Com o sagui agora em posição propensa fixe a cabeça do animal no quadro estereotaxista. Para isso, primeiro, insira a ponta da barra de ouvido direita no canal auditivo direito do animal. Seguido pela barra de ouvido esquerda no canal auditivo esquerdo.Em seguida, a cabeça deve ser nivelada de forma que o plano horizontal esteja paralelo com o quadro, enquanto o plano anterior/posterior está centrado. Isso é conseguido primeiro centralizando a cabeça do animal usando as medidas da barra de ouvido presas a distâncias iguais. Depois disso, a parte da boca é inserida na boca do animal, e ajustada até tocar a paleta do animal, enquanto as barras orbitais estão apenas tocando a margem inferior do osso orbital.Como o plano horizontal é definido como o plano passando pela margem inferior do osso orbital e o centro do medius auditivo externo, deve-se certificar-se de que a superfície inferior do osso orbital está agora horizontalmente alinhada com o centro das barras de ouvido antes de prosseguir. Durante o procedimento, é importante manter todos os sinais vitais. Assim, deve-se conectar um oxímetro de pulso portátil à mão do sagui para garantir que a frequência cardíaca e a saturação de oxigênio estejam dentro das faixas aceitáveis.Além disso, uma sonda de temperatura retal conectada a uma almofada de aquecimento homeotérmico fixada para 37 graus centígrados e colada na cauda, garantirá que a temperatura corporal do sagui não seja afetada negativamente pela anestesia. O passo final pré-operatório é limpar e desinfetar a cabeça raspada do animal com clorexidina e iodo, antes de cobrir o animal com um campo cirúrgico esterilizado. Realize uma incisão na linha média do couro cabeludo depois de aplicar um analgésico local neste local.Para preparar a superfície do crânio, primeiro, desprende cuidadosamente o músculo temporal do crânio. Isso é feito cortando a fossa em sua inserção no crânio com um bisturi. Depois disso, o músculo temporal deve ser suavemente separado do crânio, utilizando um raspatório periosteal.Continuando com o raspatório periosteal remova o periosteum de todo o crânio exposto raspando. Em seguida, marque a localização da craniotomia criando buracos rasos na superfície óssea e perfurando o perímetro da craniotomia. Faça de seis a oito orifícios de parafuso, conforme necessário, no crânio e implante os parafusos.Neste momento, enrole os fios de terra soldados a um determinado parafuso ao redor do parafuso adjacente não queimado. Remova o osso no centro da craniotomia usando fórceps McPherson. Enquanto o cérebro e dura mater são descobertos mantê-los hidratados com soro fisiológico estéril.Para remover a dura-máter, uma agulha de calibre 25 ou 26 deve ser dobrada a aproximadamente 90 graus para facilitar a pontuação e levantar a superfície da dura-se mater para longe da superfície do cérebro. Neste ponto, micro tesouras são usadas para extir esse consumo da dura-maternidade. Conecte os eletrodos ao micromanipulador estereotaxico e posicione-o, de modo que o eletrodo esteja nas coordenadas anterior/posteriores desejadas e medial/lateral.Agora, abaixe a ponta do eletrodo até tocar a superfície do cérebro. Insira lentamente a matriz no cérebro, até atingir as coordenadas dorsais/ventral desejadas. Adicione uma gota de tinta prateada entre o fio moído e cada parafuso para garantir uma conexão elétrica.Fixar o eletrodo no crânio aplicando acrílico dentário no crânio exposto, um parafuso e a matriz de eletrodos. Repita este procedimento de implantação com quaisquer matrizes adicionais. Finalmente, usando acrílico dental, faça uma tampa de cabeça resistente ao redor da extensão lateral das matrizes e completamente no caso dos fios de terra e de qualquer crânio ou parafusos expostos.Se necessário, pode-se inserir uma barra de apoio na tampa da cabeça e selá-la no lugar com acrílico dental. Após a criação da tampa da cabeça suturar a pele se o músculo ou tecido ósseo for exposto. Uma solução antisséptica também deve ser aplicada à ferida neste momento.Com a cirurgia concluída é hora de começar a recuperação. Primeiro, desligue o suprimento isoflurane, mas não o oxigênio, e remova o animal do quadro estereotaxico. Coloque o animal na página de aquecimento, com o oxigênio mantido através do tubo endotraqueal.Quando o primeiro sinal de reflexos neurogênicos, como espasmos laríngeos, remova o tubo endotraqueal. O oxigênio deve agora ser fornecido com uma máscara até que o animal apresente sinais claros de recuperação anestésico, como reflexos protetores, tom postural e tentativas de ambulação. O sagui deve ser alojado individualmente, e deixado para se recuperar em uma gaiola limpa e espaço por 24 a 48 horas, antes de retornar à sua gaiola.Animais implantados devem ser alojados em gaiolas separadas. É importante observar o animal por pelo menos uma hora após a cirurgia para observar sinais de angústia e, especificamente, movimentos descoordenados. Antibióticos e analgésicos e anti-inflamatórios devem ser administrados nos dias seguintes à cirurgia para controlar a dor e prevenir a infecção.Em cirurgias bem sucedidas, o animal deve ser completamente recuperado dentro de três a cinco dias. Recomendamos que as sessões de gravação eletrofisiológica comecem pelo menos uma semana após a cirurgia. No início de cada sessão de gravação anestesia levemente o animal usando isoflurane e conecte o conector de matrizes de eletrodos a um sistema de gravação neural.Coloque o animal dentro da câmara experimental e aguarde a recuperação completa do anestésico antes de iniciar as gravações. Após uma cirurgia bem sucedida, é possível registrar picos e potenciais de campo locais dos eletrodos implantados ao longo de várias semanas. Em última análise, uma confirmação final de que as matrizes de eletrodos foram implantadas com sucesso nas estruturas alvo deve ser pré-formada após a morte.Seções manchadas de nissl contendo trilhos eletro podem ser usadas para determinar a posição de cada micro fio implantado. Gravações eletrofisiológicas crônicas em animais de comportamento acordado são técnicas poderosas usadas em muitas linhas de pesquisa em neurociência. Como o sagui comum oferece muitas vantagens sobre modelos historicamente populares, o objetivo deste vídeo, é ajudar outros neurocientistas a adotar o sagui comum para sua pesquisa.Além da implantação de eletrodos de gravação crônica, conforme detalhado neste vídeo, o mesmo protocolo de cirurgia estereotaxic pode ser adaptado para muitas outras extremidades experimentais, incluindo implantação de eletrodos estimulantes, cânulas guia e microinjeções. Ao adaptar este protocolo para uma das técnicas mencionadas, o cirurgião modificará principalmente o procedimento de perfuração para se adequar ao tamanho do implante desejado. Além disso, o procedimento de solo não é necessário para muitas dessas técnicas e pode, portanto, ser omitido.Independentemente do objetivo experimental, depois de assistir a este vídeo você deve ter um entendimento sobre como realizar com sucesso neurocirurgia estereotaxica no sagui comum.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Stereotaxic Surgery for Implantation of Microelectrode Arrays in the Common Marmoset (Callithrix jacchus)

Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience

Cirurgia estereotáxica de roedores e animais Melhorias Resultado do Bem-Estar de Neurociência Comportamental

Stereotaxic surgery for the implantation of cannulae into specific brain regions has for many decades been a very successful experimental technique to ...

Neurociência

Stereotaxic Surgery for Excitotoxic Lesion of Specific Brain Areas in the Adult Rat

Cirurgia estereotáxica para lesão excitotóxica de áreas específicas do cérebro do rato adulto

Many behavioral functions in mammals, including rodents and humans, are mediated principally by discrete brain regions. A common method for discerning the ...

Stereotaxic Infusion of Oligomeric Amyloid-beta into the Mouse Hippocampus

Infusão estereotáxica de oligomica beta-amilóide no ratinho Hippocampus

Alzheimer&#8217;s disease is a neurodegenerative disease affecting the aging population. A key neuropathological feature of the disease is the ...

Microelectrode Guided Implantation of Electrodes into the Subthalamic Nucleus of Rats for Long-term Deep Brain Stimulation

Microeletrodos guiada implantação de eletrodos no subtalâmica Núcleo de Ratos por longo prazo Estimulação Profunda do Cérebro

Deep brain stimulation (DBS) is a widely used and effective therapy for several neurologic disorders, such as idiopathic Parkinson&#8217;s disease, ...

Stereotaxic Surgery for Genetic Manipulation in Striatal Cells of Neonatal Mouse Brains

Cirurgia estereotáxica para manipulação genética em células estriadas de cérebro de rato Neonatal

Many genes are expressed in embryonic brains, and some of them are continuously expressed in the brain after birth. For such persistently expressed genes, ...

Adaptation of Microelectrode Array Technology for the Study of Anesthesia-induced Neurotoxicity in the Intact Piglet Brain

Adaptação da tecnologia de matriz de microeletrodos para o estudo de neurotoxicidade induzida por anestesia no cérebro intacto Leitão

Every year, millions of children undergo anesthesia for a multitude of procedures. However, studies in both animals and humans have called into question ...

Recording and Modulation of Epileptiform Activity in Rodent Brain Slices Coupled to Microelectrode Arrays

Gravação e modulação da atividade epileptiforme em fatias de cérebro de roedor acoplado para matrizes de microeletrodos

Temporal lobe epilepsy (TLE) is the most common partial complex epileptic syndrome and the least responsive to medications. Deep brain stimulation (DBS) ...

Chronic Implantation of Whole-cortical Electrocorticographic Array in the Common Marmoset

Crônica implantação de matriz Electrocorticographic todo-cortical no sagui comum

Electrocorticography (ECoG) allows the monitoring of electrical field potentials from the cerebral cortex with high spatiotemporal resolution. Recent ...

Chronic Implantation of Multiple Flexible Polymer Electrode Arrays

Implante crônico de matrizes flexíveis múltiplas do elétrodo do polímero

Simultaneous recordings from large populations of individual neurons across distributed brain regions over months to years will enable new avenues of ...