Name: implantation and monitoring by pet/ct of an orthotopic model of human pleural mesothelioma in athymic mice
Uploaded: 2019-12-21T10:00:00
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Esta investigación fue financiada por Ligue Genevoise contre le Cancer (a V.S.-B.) y por el Centro de Imágenes Biomédicas (CIBM) de las Universidades y Hospitales de Ginebra y Lausana (a D.J.C., O.B. y S.G.).

Todos los procedimientos descritos a continuación fueron aprobados por el comité institucional de cuidado y uso de animales y por la oficina estatal de veterinarios de Ginebra, Suiza (Autorización GE/106/16). La línea de células MPM H2052/484 fue establecida y caracterizada en nuestro laboratorio como se detalla en el artículo de Colin DJ y et al.23. Brevemente, la línea celular H2052/484 se estableció a partir de un tumor torácico obtenido después de una inyección intrapleural de célu...

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	<li>Grishman, E., Cohen, S., Salomon, M. I., Churg, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Renal+lesions+in+acute+rheumatic+fever.">Renal lesions in acute rheumatic fever.</a> The American Journal of Pathology. 51 (6), 1045-1061 (1967).</li><li>Mossman, B. T., Gee, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Asbestos-related+diseases.">Asbestos-related diseases.</a> The New England Journal of Medicine. 320 (26), 1721-1730 (1989).</li><li>Pass, H. 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J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+Model+of+Human+Malignant+Mesothelioma+in+Athymic+Mice.">Experimental Model of Human Malignant Mesothelioma in Athymic Mice.</a> The International Journal of Molecular Sciences. 19 (7), (2018).</li><li>Fueger, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+animal+handling+on+the+results+of+18F-FDG+PET+studies+in+mice.">Impact of animal handling on the results of 18F-FDG PET studies in mice.</a> The Journal of Nuclear Medicine. 47 (6), 999-1006 (2006).</li><li>Devaud, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissues+in+different+anatomical+sites+can+sculpt+and+vary+the+tumor+microenvironment+to+affect+responses+to+therapy.">Tissues in different anatomical sites can sculpt and vary the tumor microenvironment to affect responses to therapy.</a> Molecular Therapy. 22 (1), 18-27 (2014).</li><li>Beliz&#225;rio, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunodeficient+mouse+models:+An+overview.">Immunodeficient mouse models: An overview.</a> The Open Immunology Journal. 2, 79-85 (2009).</li><li>Jackaman, C., Yeoh, T. L., Acuil, M. L., Gardner, J. K., Nelson, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Murine+mesothelioma+induces+locally-proliferating+IL-10(+)TNF-alpha(+)CD206(-)CX3CR1(+)+M3+macrophages+that+can+be+selectively+depleted+by+chemotherapy+or+immunotherapy.">Murine mesothelioma induces locally-proliferating IL-10(+)TNF-alpha(+)CD206(-)CX3CR1(+) M3 macrophages that can be selectively depleted by chemotherapy or immunotherapy.</a> Oncoimmunology. 5 (6), 1173299 (2016).</li><li>James, M. L., Gambhir, S. 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Este artículo describe un modelo ortotópico original de células MPM H2052/484 inyectadas en la cavidad pleural de ratones atímicos y un método de monitoreo por imágenes PET/CT de animales pequeños. Este modelo se puede implementar con habilidades moderadas de manejo de animales y cirugía y muestra una muy buena tasa de desarrollo. Permite una gran ventana experimental de unas 10 semanas en ratones no tratados y la detección longitudinal no invasiva de tumores tan pronto como 2 semanas después de la inyección.<...

El mesotelioma pleural maligno (MPM) es un cáncer asociado con mayor frecuencia a la exposición a fibras de amianto1,2,3. Aunque el amianto ha sido prohibido en la mayoría de los países occidentales4,5,6, la incidencia de MPM sigue aumentando7,8. Recientemente, la exposición de ratones a nanotubos de carbono sugiere que pueden resultar en un riesgo significativo para la salud en los seres humanos9,10. Los datos sugieren que la exposición a estos productos puede inducir inflamación crónica y cambios moleculares (por ejemplo, pérdida de vías supresoras tumorales) que subyacen a la progresión al mesotelioma maligno. Actualmente, los nanotubos de carbono multipared son uno de los productos más importantes de la nanotecnología y se incorporan cada vez más en diversos productos como compuestos, materiales de almacenamiento de energía, medicina, electrónica y materiales de remediación ambiental.
EL MPM es un cáncer con mal pronóstico, y la mayoría de los pacientes mueren dentro de los dos años posteriores al diagnóstico debido a una eficacia limitada de las modalidades de tratamiento actuales11. La elección del tratamiento para mpM depende de la etapa del cáncer. Para la mayoría de los MPM en estadio temprano (etapa 1 y posiblemente algunos tumores en estadio 2 o 3), el enfoque clínico es una terapia multimodal que incluye la resección quirúrgica de los tumores, asociada a la radioterapia y la quimioterapia12. Se indica una quimioterapia combinada con cisplatino y pemetrexed para el tratamiento de la mayoría de los pacientes diagnosticados con enfermedad invasiva localmente avanzada, que no es susceptible de resección quirúrgica, o que de otro modo no son candidatos a la cirugía curativa13,14. Por lo tanto, es urgente desarrollar tratamientos más eficaces para los pacientes con MPM. Sin embargo, hay pocos modelos animales in vivo validados que reflejen la relevancia clínica de MPM. Se han desarrollado varios modelos murianos MPM, pero la mayoría de ellos no recapitulan fielmente los aspectos complejos del microambiente tumoral MPM15,16,17,18. El uso de MPM inducido por amianto en ratones, modelos de ratón MPM genéticamente diseñados o modelos de trasplante singéneo de líneas celulares MPM murinas están limitados por diferencias fenotípicas y funcionales fundamentales y, en consecuencia, traducen mal nuevos descubrimientos a la clínica. Otros modelos de MPM murinos preclínicos se basan principalmente en xenoinjertos subcutáneos o peritoneales de líneas celulares humanas en ratones inmunodeficientes. Si bien estos modelos son fáciles de controlar y proporcionan datos fundamentales, el microambiente de estos xenoinjertos no es tan comparable a los tumores humanos que deterioran el poder traslacional de la mayoría de estos estudios preclínicos17,19. Por el contrario, los xenoinjertos ortotópicos reflejan mejor el comportamiento tumoral del paciente y la respuesta al tratamiento, ya que están rodeados de un microambiente similar al que se encuentra en el sitio original del tumor16.
La toma de imágenes moleculares por [18F]FDG-PET/CT es el método de elección para monitorear longitudinalmente la progresión de la enfermedad en pacientes con MPM20,21. Por lo tanto, recurrir a este método de imagen no invasiva promueve en gran medida la traducción de estudios preclínicos a ensayos clínicos16,22. Además, ayuda a reducir el número requerido de animales, ya que cada animal representa su propio control a lo largo del tiempo.
En este artículo, presentamos un modelo MPM de xenoinjerto ortotópico fiable obtenido después de la inyección de la línea celular MPM humana H2052/484 en la cavidad pleural de ratones atímicos. Junto con la imagen [18F]FDG-PET/CT, este modelo es un método valioso y reproducible para estudiar los efectos funcionales y mecanicistas de las nuevas estrategias de diagnóstico y tratamientos para MPM humano.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-mice bed</td>
			<td>Minerve</td>
			<td></td>
			<td>bed for mice imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Athymic Nude-Foxn1n nu/nu</td>
			<td>Envigo, Huntingdon, UK</td>
			<td>6907F</td>
			<td>immunodeficient mouse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine</td>
			<td>Mundipharma Medical Company, CH</td>
			<td>111131</td>
			<td>polyvidone iodine solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#39;s Phosphate-Buffered Saline (DPBS)</td>
			<td>ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA</td>
			<td>14190094</td>
			<td>Buffer for cell culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>PAA Laboratories, Pasching, Austria</td>
			<td>A15-101</td>
			<td>cell culture medium supplement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin syringes</td>
			<td>BD Biosciences, San Jose, CA, USA</td>
			<td>324826</td>
			<td>syringe for cell injection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/Streptomycin</td>
			<td>ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA</td>
			<td>15140122</td>
			<td>antibiotics for cell culture medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI 1640</td>
			<td>ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA</td>
			<td>61870010</td>
			<td>basal cell culture medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temgesic (Buprenorphin 0.3 mg/mL)</td>
			<td>Alloga SA, CH</td>
			<td>700320</td>
			<td>opioid analgesic product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triumph PET/SPECT/CT</td>
			<td>Trifoil, Chatsworth, CA, USA</td>
			<td></td>
			<td>imaging equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin</td>
			<td>ThermoFisher Scientific, Waltham, MA, USA</td>
			<td>25050014</td>
			<td>enzymatic cell dissociation buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Virkon S 2%</td>
			<td>Milian, Vernier, CH</td>
			<td>972472</td>
			<td>disinfectant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vivoquant</td>
			<td>Invicro, Boston, MA, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

implantation and monitoring by pet/ct of an orthotopic model of human pleural mesothelioma in athymic mice

El mesotelioma pleural maligno (MPM) es un tumor raro y agresivo que surge en el mesotelio que cubre los pulmones, el corazón y la cavidad torácica. El desarrollo de MPM se asocia principalmente con el amianto. Los tratamientos proporcionan sólo una supervivencia modesta, ya que el promedio de supervivencia media es de 9 a 18 meses desde el momento del diagnóstico. Por lo tanto, deben identificarse tratamientos más eficaces. La mayoría de los datos que describen nuevas dianas terapéuticas se obtuvieron de experimentos in vitro y deben validarse en modelos preclínicos in vivo fiables. Este artículo describe uno de estos modelos ortotópicos MPM fiables obtenidos después de la inyección de una línea celular MPM humana H2052/484 en la cavidad pleural de ratones atímicos inmunodeficientes. El trasplante en el sitio ortotópico permite estudiar la progresión del tumor en el entorno natural in vivo. La radiografía molecular de tomografía por emisión de positrones/tomografía computarizada (PET/CT) utilizando la radiosonda clínica [18F]-2-fluoro-2-deoxy-D-glucose ([18F]FDG) es el método de diagnóstico de elección para examinar a pacientes con MPM. En consecuencia, se utilizó [18F]FDG-PET/CT para monitorear longitudinalmente la progresión de la enfermedad del modelo ortotópico H2052/484. Esta técnica tiene un alto potencial 3R(Reduce el número de animales, Refine para disminuir el dolor y la incomodidad, y Replace experimentación con animales con alternativas) ya que el desarrollo del tumor puede ser monitoreado de forma no invasiva y el número de animales requeridos podría reducirse significativamente.
Este modelo muestra una alta tasa de desarrollo, un rápido crecimiento tumoral, es rentable y permite una rápida traducción clínica. Mediante el uso de este modelo de MPM de xenoinjerto ortotópico, los investigadores pueden evaluar las respuestas biológicas de un modelo MPM fiable después de intervenciones terapéuticas.

El modelo ortotópico H2052/484 Los modelos de MPM ortotópicos por inyección intratorácica de células cancerosas cultivadas, especialmente células H2052/484 son relativamente fáciles de configurar. Los diferentes pasos descritos anteriormente sólo requieren un conocimiento modesto del cultivo celular y los pasos de la cirugía son accesibles para los experimentadores de animales moderadamente entrenados. Los ratones y células desnudas deben manipularse en condiciones estériles para maximizar ...

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Implantation and Monitoring by PET/CT of an Orthotopic Model of Human Pleural Mesothelioma in Athymic Mice

Este artículo describe la generación de un modelo de ratón ortotópico de mesotelioma pleural humano mediante la implantación de células de mesotelioma H2052/484 en la cavidad pleural de ratones atímicos inmunocomprometidos. El monitoreo longitudinal del desarrollo de tumores intrapleurales se evaluó mediante tomografía multimodal no invasiva [18F]-2-fluoro-2-deoxy-D-glucose positron emission tomography and computed tomography.

Implantación y monitorización por PET/CT de un modelo ortotópico de mesotelioma pleural humano en ratones atímicos

Malignant pleural mesothelioma (MPM) is a rare and aggressive tumor arising in the mesothelium that covers the lungs, the heart, and the thoracic cavity. ...

Este método puede ayudar a responder preguntas clave relacionadas con el desarrollo, tratamiento y diagnóstico del mesotelioma pleural humano. La principal ventaja de este modelo ortotópico preclípico fiable es que replica la progresión de la enfermedad humana y la patología en un microambiente cercano al que se encuentra en pacientes con mesotelioma pleural. Por lo tanto, este modelo invaluable es de gran importancia y el uso de imágenes moleculares no invasivas permite la monitorización longitudinal en línea con el concepto de tres R.Antes de empezar, prepare el sistema de anestesia y el área quirúrgica en una campana de flujo laminar pulverizando todas las superficies con desinfectante. Coloque las jaulas SPF microaisladas en la capucha de flujo desinfectado. Coloque una almohadilla de calentamiento, solución povidona-yodo jeringa Hamilton calibre 30, instrumentos de cirugía de gasa y algodón y micropipetas y puntas en la campana de flujo laminar.Una vez que el ratón está correctamente anestesiado inyectar por vía subcutánea 0,05 miligramos por kilogramo de Buprinorphine para el alivio postoperatorio de la bandeja. A continuación, coloque el ratón en su lado derecho en la parte superior de la almohadilla de calentamiento y limpie el área quirúrgica con solución de povidona-yodo y haga una incisión de 5 milímetros de la piel. Limpiar la grasa circundante y los músculos con tijeras contundentes para exponer las costillas.Homogeneice la suspensión celular y cargue 50 microlitros en la jeringa Hamilton asegurándose de evitar burbujas de aire. Limpie la aguja con 70% de alcohol antes de cada inyección. Inyectar lentamente las células en la cavidad pleural entre las costillas sexta y séptima que sostienen la aguja en un ángulo de 30 grados y de dos a tres milímetros debajo de los músculos intercostales.Mantenga la aguja justo debajo de las costillas para evitar que se inyecte en los pulmones. Debe ser visible a través de los músculos. Cuando haya terminado, cierre la herida con tres o cuatro suturas absorbibles y guárdelo en un ambiente caliente hasta que se despierte.Al realizar la implantación es muy importante colocar correctamente la aguja para limitar la profundidad de la penetración de la aguja. Utilice una almohadilla de calentamiento de la cámara de calentamiento, o lámpara infrarroja para precalentar a los ratones a 30 grados celsius durante 30 minutos antes de la inyección de fluor-18(FDG)Usando una calculadora de dosis preparar tres a cuatro dosis de megabecquerel de fluor-18(FDG)en 150 a 200 microlitros de solución salina en jeringas de insulina 1 mililitro. Asegúrese de registrar todos los tiempos de las inyecciones de mediciones de dosis de radiactividad, y las exploraciones por PET para calcular los valores de absorción estándar o SUV.Pesar los ratones y luego inyectar por vía intravenosa el fluor-18(FDG)Después de la inyección dejar a los ratones despiertos en condiciones cálidas durante 45 minutos. A continuación, cargue los ratones en la cama del escáner, transfiera la cama a un escáner y someta a los animales a una tomografía computarizada centrada en los pulmones. Mueva la cama al subsistema PET inserte la adquisición una hora después de la inyección de fluor-18(FDG) durante una duración de 15 minutos.Luego retire los ratones de la cámara de imágenes y permita que se recuperen en su jaula manteniéndolos en un área dedicada a la caries radiactiva. Antes del análisis de imágenes, reconstruya las tomografías computarizadas y las tomografías por emisión de imágenes como se describe en el manuscrito. Calibre las imágenes escaneando un cilindro fantasma y registre automáticamente los escaneos de acuerdo con la solución de software incorporada.Para analizar las imágenes, cargue los datos ct como referencia haciendo clic en el icono de datos abiertos. A continuación, cargue los datos PET como entrada haciendo clic en el icono de anexar datos. Ajuste la escala de color para que CT y PET contrasten las imágenes para la inspección visual.Seleccione la herramienta ROI 3D en el menú desplegable, haga clic en Agregar ROI y asigne un nombre a los pulmones del archivo. Haga clic en los algoritmos de segmentación y el umbral de vecindad y, a continuación, defina la entrada como fondo e imagen como ref. Introduzca min y max según los valores de densidad pulmonar del ratón.Inspeccione los pulmones renderizados en 3D haciendo clic en el icono VTK. A continuación, haga clic en el icono Mostrar tabla y recupere el volumen de la tabla generada. Para analizar el fluor-18 (FDG) en los tumores, convierta las imágenes PET a SUV seleccionando la aritmética en el menú desplegable.Seleccione la multiplicidad escalar y, a continuación, utilice NP uno como seleccionado y establezca el becquerel por mililitro en factor SUV como escalar. Por último, seleccione la herramienta ROI 3D en el menú desplegable y haga clic en Agregar ROI y asigne un nombre a los tumores de archivo. Haga clic en el modo de pintura 3D y la desmarcación de esfera sólo 2D y ajuste el tamaño de la forma para rodear los tumores.Haga clic en el icono de la tabla de la demostración y recupere el valor máximo suV de la tabla generada. Las representaciones 3D de las tomografías computarizadas ofrecen una visión general de la localización del tumor MPM y permiten el cálculo de los volúmenes pulmonares. Las mediciones del volumen pulmonar disminuyen significativamente con el tiempo después de la inyección de tumores intraplurales.La tomografía por emisión de estado de la enfermedad proporciona información valiosa sobre el estado metabólico de los tumores MPM. Los tumores se distinguieron dos semanas después del injerto y la absorción de fluor-18 (FDG) se cuantificó mediante la extracción de SUV que se correlacionaron positivamente con el número de días después de la inyección. Además, los volúmenes pulmonares y la fluor-18 (FDG) se correlacionan entre sí con una R cuadrada de 0,6 que apoya la fuerza de estas mediciones para monitorear el desarrollo de tumores ortotópicos MPM.Siguiendo este procedimiento se pueden realizar otros métodos como la histología, la inmunohistoquímica y la citometría de flujo para responder a cuestiones ortobiológicas como el estado de proliferación y la característica fenotípica de los tumores y del microambiente. Para concluir, estas técnicas preclínicas allanan el camino para que los investigadores exploren una nueva estrategia diagnóstica y de tratamiento del mesotelioma pleural. Además, el uso de imágenes moleculares justifica una rápida traducción de los nuevos hallazgos a la clínica.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

An Orthotopic Model of Serous Ovarian Cancer in Immunocompetent Mice for in vivo Tumor Imaging and Monitoring of Tumor Immune Responses

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Un modelo ortotópico de cáncer de ovario seroso en ratones inmunocompetentes para In vivo Imágenes y seguimiento de tumores de las respuestas inmunitarias del tumor

Background: Ovarian cancer is generally diagnosed at an advanced stage where the case/fatality ratio is high and thus remains the most lethal of all ...

Investigación

Inmunología e Infección

Comprehensive &amp; Cost Effective Laboratory Monitoring of HIV/AIDS: an African Role Model

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Supervisión efectiva de laboratorio integral y costo del VIH / SIDA: un modelo a seguir de África

We present the video about assisting anti-retroviral therapy (ART) by an apt laboratory service - representing a South-African role model for economical ...

Induction of Graft-versus-host Disease and In Vivo T Cell Monitoring Using an MHC-matched Murine Model

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La inducción de la enfermedad de injerto contra huésped y<em&gt; En Vivo</em&gt; T Monitoreo Celular Utilizando un modelo murino MHC de concordancia

Graft-versus-host disease (GVHD) is the limiting barrier to the broad use of bone marrow transplant as a curative therapy for a variety of hematological ...

Recurrent Herpetic Stromal Keratitis in Mice, a Model for Studying Human HSK

Queratitis herpética estromal recurrente en ratones, un modelo para el estudio HSK Humanos

Herpetic eye disease, termed herpetic stromal keratitis (HSK), is a potentially blinding infection of the cornea that results in over 300,000 clinical ...

An In vitro Model to Study Heterogeneity of Human Macrophage Differentiation and Polarization

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Un<em&gt; In vitro</em&gt; Modelo para estudiar la heterogeneidad de diferenciación de los macrófagos humanos y polarización

Monocyte-derived macrophages represent an important cell type of the innate immune system. Mouse models studying macrophage biology suffer from the ...

Optimized Protocols for Mycobacterium leprae Strain Management: Frozen Stock Preservation and Maintenance in Athymic Nude Mice

Optimized Protocols for Mycobacterium leprae Strain Management: Frozen Stock Preservation and Maintenance in Athymic Nude Mice

Protocolos optimizados para<em&gt; Mycobacterium leprae</em&gt; Gestión Strain: Congelado Stock Conservación y Mantenimiento en ratones desnudos atímicos

Leprosy, caused by Mycobacterium leprae, is an important infectious disease that is still endemic in many countries around the world, including Brazil. ...

A Semi-automated Approach to Preparing Antibody Cocktails for Immunophenotypic Analysis of Human Peripheral Blood

Un enfoque semi-automatizado de preparación de cócteles de anticuerpos para el Análisis Inmunofenotípicos de la sangre periférica humana

Immunophenotyping of peripheral blood by flow cytometry determines changes in the frequency and activation status of peripheral leukocytes during disease ...

Murine Lymphocyte Labeling by 64Cu-Antibody Receptor Targeting for In Vivo Cell Trafficking by PET/CT

Murine Lymphocyte Labeling by 64Cu-Antibody Receptor Targeting for In Vivo  Cell Trafficking by PET/CT

Murina de linfocitos Etiquetado por<sup&gt; 64</sup&gt; Cu-Anticuerpo objetivo de receptores de<em&gt; En Vivo</em&gt; Tráfico de células mediante PET / CT

This protocol illustrates the production of 64Cu and the chelator conjugation/radiolabeling of a monoclonal antibody (mAb) followed by murine lymphocyte ...

Analysis of Lymphocyte Extravasation Using an In Vitro Model of the Human Blood-brain Barrier

Analysis of Lymphocyte Extravasation Using an In Vitro Model of the Human Blood-brain Barrier

Análisis de linfocitos extravasación El uso de una<em&gt; In Vitro</em&gt; Modelo de la barrera sangre-cerebro humano

Lymphocyte extravasation into the central nervous system (CNS) is critical for immune surveillance. Disease-related alterations of lymphocyte ...

An IL-8 Transiently Transgenized Mouse Model for the In Vivo Long-term Monitoring of Inflammatory Responses

An IL-8 Transiently Transgenized Mouse Model for the In Vivo Long-term Monitoring of Inflammatory Responses

Un modelo de ratón IL-8 transgénicamente transgéni-<em&gt; In Vivo</em&gt; Monitoreo a Largo Plazo de las Respuestas Inflamatorias

Airway inflammation is often associated with bacterial infections and represents a major determinant of lung disease. The in vivo determination of the ...