Name: imaging and analysis of tissue orientation and growth dynamics in the developing drosophila epithelia during pupal stages
Uploaded: 2020-06-02T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Imaging and Analysis of Tissue Orientation and Growth Dynamics in the Developing Drosophila Epithelia During Pupal Stages at JoVE.com

Wir danken den Mitgliedern des Labors von Martin-Blanco für die hilfreichen Diskussionen. Wir danken auch Nic Tapon (The Crick Institute, London, UK), dem Bloomington Stock Center (University of Indiana, USA) und FlyBase (für Drosophila Gen Anmerkung). Federica Mangione wurde von einem JAE-CSIC Predoctoral Fellowship unterstützt. Finanziert wurde das Labor von Martén-Blanco aus dem Programa Estatal de Fomento de la Investigacion Cientéfica y Técnica de Excelencia (BFU2014-57019-P und BFU2017-82876-P) und der Fundacion Ramén Areces.

HINWEIS: Dieses Protokoll ist in fünf Schritte unterteilt: (1) Inszenierung der Welpen, (2) Vorbereitung der Pupae für die Bildgebung, (3) Live-Bildgebung der wachsenden Bauchepithelie, (4) Generierung genetischer Mosaike, (5) Datenverarbeitung und -analyse (einschließlich Abschnitten, die beschreiben, wie die Zellorientierungsdynamik anhand von Zellknotenumrissen und Wachstumsdynamik enthoben wird).
1. Inszenierung von Drosophila-Welpen vor der Bildgebung
<ol><li>Kulturfliegen d...

<ol>
	<li>Gillespie, P. G., Muller, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanotransduction+by+hair+cells:+models,+molecules,+and+mechanisms.">Mechanotransduction by hair cells: models, molecules, and mechanisms.</a> Cell. 139, 33-44 (2009).</li><li>Deans, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+balance+of+form+and+function:+planar+polarity+and+development+of+the+vestibular+maculae.">A balance of form and function: planar polarity and development of the vestibular maculae.</a> Seminars in Cellular and Developmental Biology. 24, 490-498 (2013).</li><li>Stell, W. 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A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+dynamics+underlying+oriented+growth+of+the+Drosophila+wing+imaginal+disc.">Cell dynamics underlying oriented growth of the Drosophila wing imaginal disc.</a> Development. 144, 4406-4421 (2017).</li><li>Williams-Masson, E. M., Malik, A. N., Hardin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+actin-mediated+two-step+mechanism+is+required+for+ventral+enclosure+of+the+C.+elegans+hypodermis.">An actin-mediated two-step mechanism is required for ventral enclosure of the C. elegans hypodermis.</a> Development. 124, 2889-2901 (1997).</li><li>Ferguson, M. 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Die Langfristige Ordnung ist ein wesentliches Merkmal der meisten funktionellen physiologischen Einheiten. Bei der Morphogenese wird Ordnung durch die Integration komplexer Instruktionen erreicht, die mit hoher zeitlicher und räumlicher Präzision umgesetzt werden. Mehrere und mehrstufige Konsprossen sind in stereotype Gewebeanordnungen integriert.
Polarität und Richtung sind entscheidend für eine geordnete räumliche Anordnung während der Entwicklung. Polarität impliziert Symmetriebruch ...

Um ihre Rolle zu erfüllen, verlassen sich Epithelgewebe voll und ganz auf die räumliche Organisation ihrer zellulären Komponenten. In den meisten Epithelien werden Zellen nicht nur gegeneinander gepackt, um eine präzise Kopfsteinpflasterschicht zu schaffen, sondern sie orientieren sich relativ zu den Körperachsen.
Die funktionelle Bedeutung einer präzisen Gewebeorganisation wird bei sensorischen Epithelien wie dem Wirbeltier-Innenohr und der Netzhaut deutlich. Im ersten Fall richten sich Haar- und Stützzellen in eine bestimmte axiale Richtung aus, um mechanische Eingänge wie Schall und Bewegung1,2effizient zu erkennen. In ähnlicher Weise ist die räumliche Organisation der Photorezeptorzellen unerlässlich, um optimale optische Eigenschaften durch die Netzhaut zu erreichen3. Die räumliche Kontrolle der Zellposition und -orientierung ist daher von besonderer Bedeutung für die richtige physiologische Funktion.
Drosophila ist ein holometabolous Insekt, das eine vollständige Transformation seiner Larvenkörperstrukturen durch Metamorphose durchläuft, was zu seinem erwachsenen Gewebe führt. Die Drosophila Pupa ist ein ausgezeichnetes Modell für die nichtinvasive Live-Bildgebung einer Vielzahl von dynamischen Ereignissen, einschließlich Entwicklungszellmigration4, Zellteilung und Wachstumsdynamik5, Muskelkontraktion6, Zelltod7, Wundreparatur8und Zellorientierung9. Bei der erwachsenen Drosophilaweist das äußere Epithel einen hohen Ordnungsgrad auf. Dies ist leicht an der Anordnung von Trichomen (d.h. Zellvorsprüngen, die aus einzelnen Epithelzellen stammen) und sensorischen Borsten auf der gesamten Körperoberfläche der Fliege10zu beobachten. Tatsächlich sind Trichome in parallelen Reihen ausgerichtet, die den Luftstrom11leiten. Die Morphogenese der adulten Epithelie und die geordnete Anordnung der einzelnen Zellen beginnt während der Embryogenese und kulminiert in pupalen Stadien. Während in Embryonen Zellteilungen, Intercalationen und Formänderungen alle verringern Gewebeordnung12,13, wird dies in späteren Stadien der Entwicklung, vor allem in Pupal-Stadien, wenn die Fliege nähert Reife9.
Die immobile Drosophila pupa bietet ein ideales System zur Bewertung von Zellform- und Orientierungsänderungen. Die pupalabdominale Epidermis bietet besondere Vorteile. Während die Vorläufer des erwachsenen Kopfes, Thorax, Genitalien und Anhängsel wachsen und aus Larvenstadien gemustert werden, beginnen die Histoblasten, die in die Larvenepidermis integriert sind, erst bei der Verpuptaration zu wachsen und zu differenzieren14. Diese Funktion ermöglicht die Verfolgung aller räumlich-zeitlichen Ereignisse, die an der Etablierung der Gewebeordnung in ihrer Gesamtheit beteiligt sind9.
Histoblasten werden während der embryonalen Entwicklung an kontralateralen Positionen in jedem mutmaßlichen Bauchsegment spezifiziert. Die dorsale Abdominalepidermis des Erwachsenen leitet sich von dorsolater lokalisierten Histoblastnestern ab, die an den vorderen und hinteren Fächern15,16vorhanden sind. Wenn sich Histoblasten ausdehnen und die Larvenepithelzellen (LECs) ersetzen, verschmelzen die kontralateralen Nester an der dorsalen Mittellinie und bilden ein Konfluentblatt17,18,19,20.
Diese Arbeit beschreibt 1) eine Methodik zur Zerlegung, Montage und langfristigen Live-Bildgebung der Drosophila-Pupae und 2) Analysemethoden, um die Dynamik der zellulären Orientierung und des Wachstums bei hoher raumzeitlicher Auflösung zu untersuchen. Hier wird ein detailliertes Protokoll zur Verfügung gestellt, das alle erforderlichen Schritte von der ersten Pupae-Vorbereitung (d.h. Inszenierung und Bildgebung) bis hin zur Extraktion und Quantifizierung von Richtungs- und Orientierungsmerkmalen abdeckt. Wir beschreiben auch, wie lokale Gewebeeigenschaften aus der Analyse von Zellklonen ableiten. Alle beschriebenen Schritte sind minimalinvasiv und ermöglichen langfristige Live-Analysen. Die hier beschriebenen Methoden können leicht angepasst und auf andere Entwicklungsstadien, Gewebe oder Modellorganismen angewendet werden.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Analysis Software</td>
			<td>-</td>
			<td>ImageJ</td>
			<td>Analyzing data</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drosophila</td>
			<td>Atpa::GFP</td>
			<td>-</td>
			<td>Strains employed for data collection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drosophila</td>
			<td>hsflp1.22;FRT40A/FRT40A Ubi.RFP.nls</td>
			<td>-</td>
			<td>Strains employed for data collection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont 5 Forceps</td>
			<td>FST</td>
			<td>11251-20</td>
			<td>1.5 mm diameter for dissection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Bottom Plates</td>
			<td>Mat Tek</td>
			<td>P35G-0.170-14-C</td>
			<td>Mounting pupae for data collection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halocarbon Oil 27</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>9002-83-9</td>
			<td>mounting pupae</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted Confocal microscope</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>LSM700</td>
			<td>Data collection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>DFC365FX</td>
			<td>Visualization of the pupae during dissection</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

imaging and analysis of tissue orientation and growth dynamics in the developing drosophila epithelia during pupal stages

Innerhalb mehrzelliger Organismen weisen reife Gewebe und Organe hohe Ordnungsgrade in den räumlichen Anordnungen ihrer Konstituentenzellen auf. Ein bemerkenswertes Beispiel ist die sensorische Epithelie, bei der Zellen der gleichen oder unterschiedlichen Identitäten über die Zell-Zell-Adhäsion zusammengeführt werden, die hochorganisierte planare Muster zeigt. Zellen richten sich in der gleichen Richtung aneinander aus und zeigen über große Entfernungen eine äquivalente Polarität an. Diese Organisation der reifen Epithelie wird im Laufe der Morphogenese etabliert. Um zu verstehen, wie die planare Anordnung der reifen Epithelie erreicht wird, ist es entscheidend, die Zellorientierung und Wachstumsdynamik mit hoher raumzeitlicher Genauigkeit während der Entwicklung in vivo zu verfolgen. Robuste Analysetools sind auch unerlässlich, um lokale zu globale Übergänge zu identifizieren und zu charakterisieren. Die Drosophila-Pupa ist ein ideales System zur Bewertung orientierter Zellformveränderungen, die der epitheliaalen Morphogenese zugrunde liegen. Das pupal entwickelnde Epithel bildet die äußere Oberfläche des unbeweglichen Körpers und ermöglicht eine langfristige Bildgebung intakter Tiere. Das hier beschriebene Protokoll wurde entwickelt, um Zellverhalten sowohl auf globaler als auch auf lokaler Ebene in der pupalen Abdominalepidermis zu abbilden und zu analysieren, während es wächst. Die beschriebene Methodik kann leicht an die Abbildung von Zellverhalten in anderen Entwicklungsstadien, Geweben, subzellulären Strukturen oder Modellorganismen angepasst werden.

Das oben beschriebene Protokoll umfasst die Vorbereitung von Drosophila-Pupae für die langfristige Live-Bildgebung und die Verfahren zur Analyse der Zellorientierung und Wachstumsdynamik der Abdominalepidermis. Durch die Anwendung dieser Methode ist es möglich, hochauflösende Filme der sich entwickelnden Pupae für Zeiträume von bis zu 48 h ohne signifikante Photobleichung oder Phototoxizität zu erzeugen. Schnappschüsse, die die Abdominalepidermis (z.B. Histoblasten und LEC...

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Imaging and Analysis of Tissue Orientation and Growth Dynamics in the Developing Drosophila Epithelia During Pupal Stages

Dieses Protokoll ist für die Bildgebung und Analyse der Dynamik der Zellorientierung und des Gewebewachstums in der Drosophila-Bauchepithelie konzipiert, während die Fruchtfliege einer Metamorphose unterzogen wird. Die hier beschriebene Methodik kann auf die Untersuchung verschiedener Entwicklungsstadien, Gewebe und subzellulärer Strukturen in Drosophila oder anderen Modellorganismen angewendet werden.

Bildgebung und Analyse der Gewebeorientierung und Wachstumsdynamik in der Entwicklung drosophila Epithelia während der Pupal-Stadien

Within multicellular organisms, mature tissues and organs display high degrees of order in the spatial arrangements of their constituent cells. A ...

Innerhalb mehrzelliger Organismen zeigt Gewebe in ihrer räumlichen Ausrichtung hohe Grade weiter an. Zellen richten aus und zeigen einen Schwerpunktbereich über große Entfernungen im Verlauf der Morphogenese an. Um zu verstehen, wie die planaren Anordnungen von Epithelien während der Entwicklung erreicht werden, ist es entscheidend, die Ausrichtungen und Wachstumsdynamiken der Zelle mit hoher räumlicher zeitlicher Treue in vivo zu verfolgen.Das beschriebene Protokoll wurde entwickelt, um Zellverhalten auf globaler und lokaler Ebene in der drosophila pupal epidermis abzubilden und zu analysieren. Diese Methode könnte Einblicke in verschiedene Theorie der Forschung, Zellbiologie, Morphogenese und planare Polarität bieten und kann auf die Analyse anderer Gewebe, Strukturen und Modelle angewendet werden. Alle Schritte können nach einiger Übung einfach ausgeführt werden.Sie verlangen Präzision. Die Visualisierung dieses Protokolls trägt dazu bei, in kürzerer Zeit optimale Ergebnisse zu erzielen. Die Pupal-Sektion ist komplex.Zunächst verwenden Sie einen befeuchteten Pinsel, um inszenierte weiße Pre-Pupae in eine frische Plastikflasche zu übertragen und sie dort so lange wie nötig bei 25 Grad Celsius aufzubewahren. Dann entfernen Sie jede Pupae von der Wand der Durchstechflasche mit Hilfe von Zangen. Kleben Sie die ventrale Seite jeder Pupa auf einem Glasschlitten, der mit doppelseitigem Klebeband bedeckt ist.Tippen Sie vorsichtig auf die Kopfspiracles und die dorsale Oberfläche der Pupa mit den Spitzen der Zange, um die Haftung des Pupal-Gehäuses auf dem Band zu gewährleisten. Beginnen Sie mit der Zerlegung unter einem Stereomikroskop, indem Sie das Operculum mit der Zange sanft aus dem Puparium entfernen. Legen Sie eine Spitze der Zange in eine flache zwischen dem Pupalgehäuse und der Pupa-Oberfläche durch die Operkuläre Öffnung.Reißen Sie das Gehäuse seitlich in einer oder mehreren Schaukeln von Kopf zu Schwanz, um zu vermeiden, dass die Pupa eingeklemmt wird. Falten Sie das rissige Pupal-Gehäuse an die Seiten zurück, während Sie weiter zum hinteren Ende gehen. Entfernen Sie die Pupa aus dem geöffneten Pupal-Gehäuse, indem Sie die Zange vorsichtig unter das Tier einsetzen und sanft nach oben ziehen.Der Pupa klebt an der Spitze der Zange. Halten Sie die Pupa vorsichtig an der ventralen Seite, und übertragen Sie die Pupa auf eine Glasbodenschale auf einem kleinen Tropfen gasdurchlässigem Halocarbonöl. Rollen Sie ein Stück nasses Gewebepapier an den Rändern der Schale und decken Sie die Schale, um feuchtigkeit zu halten.Richten Sie die Pupa über den Öltropfen auf den Glasbodenschalen entsprechend der Domäne und dem zu bewertenden Prozess aus. Für langfristige Live-Bildgebung der frühen Expansion der Dorsalnester, dorsal seitlich orientieren die Pupa. Um ihre späte Expansion und Gewebeumgestaltung abzubilden, orientieren Sie die Pupa dorsal.Übertragen Sie die Glasbodenschale mit den montierten Welpen auf die Mikroskopstufe und konzentrieren Sie sich mit durchlichten Licht auf die Oberfläche des Bauchbereichs. Um eine mitotische Rekombination einzusetzen, um genetische Mosaike im Bauchepithel zu induzieren, bereiten Sie jungfräuliche Weibchen vor, die eine Hitzeschock-induzierbare Flipase, eine FRT-Stelle an einem bestimmten genomischen Ort und einen erkennbaren zellulären Marker distal zur FRT-Stelle tragen. Bereiten Sie mutierte Männchen vor, die eine FRT-Stelle am entsprechenden genomischen Standort tragen.Kreuzen Sie mehrere Weibchen und Männchen in einem Drei-zu-ein-Verhältnis in einer Plastikflasche bei 25 Grad Celsius für vier bis fünf Tage. Um somatische Klone in den Histoblasten zu erzeugen, führen Sie eine Hitzeschockbehandlung im dritten Larvenstadium der Nachkommenschaft des Kreuzes durch, indem Sie die Plastikfläschchen, die die Tiere in einem Wasserbad bei 37 Grad Celsius enthalten, 45 Minuten bis eine Stunde lang untertauchen. Verwenden Sie in der Bild-J-Software die maximale Intensitätsprojektionsfunktion, um die Z-Stack-Slices zu schützen, die durch konfokale Mikroskopie in 2D erfasst werden.Die Nester haben eine charakteristische Form, die sie in einem planaren Koordinatensystem nach links und dorsal nach oben ausrichtet. Um mit dieser Analyse optimale Ergebnisse zu erzielen, muss das Eingangsbild mit hoher Auflösung erfasst werden. Um qualitative Orientierungswerte an lokalen Zellkanten zu erhalten, klicken Sie auf das Plug-In-Menü und wählen Sie die Option Ausrichtung J-Verteilung.Legen Sie das Gaußsche Fenstersigma auf ein Pixel, den kubischen Spline auf Gradient, die minimale Koherenz auf 20 Prozent und die minimale Energie auf ein Prozent fest. Verwenden Sie die Farbvermessungsoption des Plug-Ins. Legen Sie Farbton auf Ausrichtung, Sättigung auf Koherenz und Helligkeit für das Eingabebild fest.Diese Farbe kodiert Zellenkantenausrichtungen relativ zum festgelegten planaren Koordinatensystem. Verwenden Sie anschließend im Plug-In-Menü die Option Ausrichtung J, um zelluläre Ausrichtungen und die Ausrichtung der Zelle zu der Zellausrichtung zu quantifizieren. Generieren Sie kleine, benachbarte, nicht überlappende Bereiche mit gleichem Gewicht von etwa 20 Mikrometern mal 20 Mikrometern innerhalb des von den Histoblasten belegten Bereichs.Das Pressing-Measure berechnet die vorherrschende lokale Ausrichtung und Koherenz aus den ROIs. In dieser Studie ist die verwendete Methodik in der Lage, hochauflösende Filme der sich entwickelnden Pupae für Zeiträume von bis zu 48 Stunden ohne signifikante Fotobleiche oder Fototoxizität zu erzeugen. Beispiele für Wilde-Klone, die durch das Fehlen von RFP NLS und ihren Zwillingsflecken 26 Stunden nach der Pupariumbildung gekennzeichnet sind, werden hier gezeigt.Die Klone haben sich entlang der Segmentgrenzen gestreckt. Zwillingsklone parallel oder parallel angeordnet. Die Morphologie eines Wild-Typ-Klons nach 26 Stunden und 47 Stunden nach der Pupariumbildung zeigt in beiden Stadien eine komplexe Grenzmorphologie.Box- und Schnurrhaare für geometrische Parameter bei 26 Stunden und 47 Stunden nach der Pupariumbildung zeigen, dass die durchschnittliche Fläche und der Umfang in diesem Zeitfenster signifikant angestiegen sind. Die Orientierung des Klons wurde während der Erweiterung und des Umbaus aufrechterhalten. Formparameter bei 26 Stunden und 47 Stunden nach der Pupariumbildung zeigen die Rauheit, Rundheit und Zirkularität kaum verändert in den wilden Typ Klone.Achten Sie darauf, die Pupa nicht zu beschädigen, sonst wird es innerhalb weniger Stunden sterben, Auswirkungen auf Live-Bildgebung. Für dieses Protokoll ist kein Sartusreagenz oder -instrument erforderlich. Vermeiden Sie es, sich beim Sezieren zu kneifen.Durch die Anwendung dieser Methoden möglich, hochauflösende Filme für lange Zeiträume mit verschiedenen Imagine-Techniken zu generieren. Focal zu Photonen oder Spinnen Vonscheiben. Chloralanalyse kann verwendet werden, um nicht-autonome Reaktionen zu erforschen, da zufällige Zellen bei der Identifizierung von Kreuzgesprächen oder Zellkommunikationsmechanismen erleichtern.Diese Methoden können leicht angepasst werden, um eine vollständige Palette von morphogenetischen Phänomenen zu studieren, einschließlich der Koordination der epidermalen, muskulösen und Neuroentwicklung während der Metamorphose.

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Imaging and Analysis of Tissue Orientation and Growth Dynamics in the Developing Drosophila Epithelia During Pupal Stages

Live-imaging of the Drosophila Pupal Eye

Live-imaging of the Drosophila Pupal Eye

Live-Bilder aus dem<em&gt; Drosophila</em&gt; Pupal Augen

Inherent processes of Drosophila pupal development can shift and distort the eye epithelium in ways that make individual cell behavior difficult to track ...

Forschung

Entwicklungsbiologie

Assaying Blood Cell Populations of the Drosophila melanogaster Larva

Assaying Blood Cell Populations of the Drosophila melanogaster Larva

Untersuchung von Blut Zellpopulationen des<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Larva

In vertebrates, hematopoiesis is regulated by inductive microenvironments (niches). Likewise, in the invertebrate model organism&#160;Drosophila ...

Live Imaging of Mouse Secondary Palate Fusion

Live Imaging der Maus Sekundärer Gaumen Fusion

The fusion of the secondary palatal shelves to form the intact secondary palate is a key process in mammalian development and its disruption can lead to ...

Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains

Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains

Dissektion, Immunofluorescent Färbung der Pilz Körper und Photorezeptor Neuronen im Gehirn Erwachsener Taufliege melanogaster

Nervous system development involves a sequential series of events that are coordinated by several signaling pathways and regulatory networks. Many of the ...

Methods for Imaging Intracellular pH of the Follicle Stem Cell Lineage in Live Drosophila Ovarian Tissue

Methods for Imaging Intracellular pH of the Follicle Stem Cell Lineage in Live Drosophila Ovarian Tissue

Methoden für Imaging intrazellulären pH der Follikel Stem Cell Linie in Live Drosophila Eierstockgewebe

Changes in intracellular pH (pHi) play important roles in the regulation of many cellular functions, including metabolism, proliferation, and ...

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

Dissection and Staining of Drosophila Pupal Ovaries

Präparation und Färbung von Drosophila Pupal Eierstöcke

Unlike adult Drosophila ovaries, pupal ovaries are relatively difficult to access and examine due to their small size, translucence, and encasing within a ...

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

In Vivo Imaging of Muscle-tendon Morphogenesis in Drosophila Pupae

In Vivo Bildgebung der Muskel-Sehnen-Morphogenese in Drosophila Puppen

Muscles together with tendons and the skeleton enable animals including humans to move their body parts. Muscle morphogenesis is highly conserved from ...

Preparing Developing Peripheral Olfactory Tissue for Molecular and Immunohistochemical Analysis in Drosophila

Preparing Developing Peripheral Olfactory Tissue for Molecular and Immunohistochemical Analysis in Drosophila

Vorbereitung, Entwicklung von peripheren olfaktorische Gewebe für Molekulare und immunhistochemische Analysen in Drosophila

The olfactory system of Drosophila is a widely used system in developmental neurobiology, systems neuroscience, as well as neurophysiology, behavior, and ...

Analysis of Actomyosin Dynamics at Local Cellular and Tissue Scales Using Time-lapse Movies of Cultured Drosophila Egg Chambers

Analysis of Actomyosin Dynamics at Local Cellular and Tissue Scales Using Time-lapse Movies of Cultured Drosophila Egg Chambers

Analyse der Actomyosin-Dynamik bei lokalen Zellstoff- und Gewebeskalen mit Zeitraffer-Filmen von kultivierten Drosophila-Eierkammern

Drosophila immature eggs are called egg chambers, and their structure resembles primitive organs that undergo morphological changes from a round to an ...

Dissection of the Drosophila Pupal Retina for Immunohistochemistry, Western Analysis, and RNA Isolation

Dissection of the Drosophila Pupal Retina for Immunohistochemistry, Western Analysis, and RNA Isolation

Dissektion der Drosophila Pupal Netzhaut Immunohistochemistry, westlichen Analyse und RNA-Isolation

The Drosophila pupal retina provides an excellent model system for the study of morphogenetic processes during development. In this paper, we present a ...