Name: cochlear surface preparation in the adult mouse
Uploaded: 2019-11-06T16:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Surface Preparation in the Adult Mouse at JoVE.com

Açıklanan araştırma projesi, Ulusal Sağırlık ve Diğer İletişim Bozuklukları Enstitüsü, Ulusal Sağlık Enstitüleri'nden Hibe R01 DC009222 tarafından desteklenmiştir. Bu çalışma, Hibe C06 RR014516 tarafından desteklenen yenilenmiş alanda MUSC'deki WR Binası'nda gerçekleştirilmiştir. Hayvanlar, Ulusal Araştırma Kaynakları Merkezi'nin Ekstramural Araştırma Tesisleri Programı'ndan C06 RR015455 hibe ile desteklenen MUSC CRI hayvan tesislerinde barındı. Yazarlar değerli yorumları için Dr. Jochen Schacht'a ve el yazmasının okunması için Andra Talaska'ya teşekkür eder.

10-12 haftalık erkek erişkin CBA/J fareleri ve 6-8 haftalık C57BL/6J fareleri içeren tüm araştırma protokolleri Güney Carolina Tıp Üniversitesi'ndeki (MUSC) Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır. Hayvan bakımı MUSC'deki Laboratuvar Hayvan Kaynakları Bölümü'nün gözetimi altındaydı.
NOT: Aşağıda sunulan işlemler için fareler intraperitoneal enjeksiyonlar yoluyla ketamin (100 mg/kg) ve ksilazin (10 mg/kg) ile an...

<ol>
	<li>Muller, M., von Hunerbein, K., Hoidis, S., Smolders, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+physiological+place-frequency+map+of+the+cochlea+in+the+CBA/J+mouse.">A physiological place-frequency map of the cochlea in the CBA/J mouse.</a> Hearing Research. 202 (1-2), 63-73 (2005).</li><li>Viberg, A., Canlon, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+guide+to+plotting+a+cochleogram.">The guide to plotting a cochleogram.</a> Hearing Research. 197 (1-10), (2004).</li><li>Sha, S. H., Schacht, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Emerging+therapeutic+interventions+against+noise-induced+hearing+loss.">Emerging therapeutic interventions against noise-induced hearing loss.</a> Expert Opinion on Investigational Drugs. 26 (1), 85-96 (2017).</li><li>Kujawa, S. G., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adding+insult+to+injury:+cochlear+nerve+degeneration+after+"temporary"+noise-induced+hearing+loss.">Adding insult to injury: cochlear nerve degeneration after "temporary" noise-induced hearing loss.</a> Journal of Neuroscience. 29 (45), 14077-14085 (2009).</li><li>Chen, F. Q., Zheng, H. W., Hill, K., Sha, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Traumatic+Noise+Activates+Rho-Family+GTPases+through+Transient+Cellular+Energy+Depletion.">Traumatic Noise Activates Rho-Family GTPases through Transient Cellular Energy Depletion.</a> Journal of Neuroscience. 32 (36), 12421-12430 (2012).</li><li>Hill, K., Yuan, H., Wang, X., Sha, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noise-Induced+Loss+of+Hair+Cells+and+Cochlear+Synaptopathy+Are+Mediated+by+the+Activation+of+AMPK.">Noise-Induced Loss of Hair Cells and Cochlear Synaptopathy Are Mediated by the Activation of AMPK.</a> Journal of Neuroscience. 36 (28), 7497-7510 (2016).</li><li>Xiong, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibition+of+Histone+Methyltransferase+G9a+Attenuates+Noise-Induced+Cochlear+Synaptopathy+and+Hearing+Loss.">Inhibition of Histone Methyltransferase G9a Attenuates Noise-Induced Cochlear Synaptopathy and Hearing Loss.</a> Journal of Association for Research in Otolaryngology. 20 (3), 217-232 (2019).</li><li>Yuan, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Autophagy+attenuates+noise-induced+hearing+loss+by+reducing+oxidative+stress.">Autophagy attenuates noise-induced hearing loss by reducing oxidative stress.</a> Antioxidant &amp; Redox Signaling. 22 (15), 1308-1324 (2015).</li><li>Wang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mitochondrial+Calcium+Transporters+Mediate+Sensitivity+to+Noise-Induced+Losses+of+Hair+Cells+and+Cochlear+Synapses.">Mitochondrial Calcium Transporters Mediate Sensitivity to Noise-Induced Losses of Hair Cells and Cochlear Synapses.</a> Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, 469 (2018).</li><li>Bohne, B. A., Harding, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Processing+and+analyzing+the+mouse+temporal+bone+to+identify+gross,+cellular+and+subcellular+pathology.">Processing and analyzing the mouse temporal bone to identify gross, cellular and subcellular pathology.</a> Hearing Research. 109 (1-2), 34-45 (1997).</li><li>Jiang, H., Sha, S. H., Forge, A., Schacht, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Caspase-independent+pathways+of+hair+cell+death+induced+by+kanamycin+in+vivo.">Caspase-independent pathways of hair cell death induced by kanamycin in vivo.</a> Cell Death &amp; Differentiation. 13 (1), 20-30 (2006).</li><li>Johnsson, L. G., Hawkins, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+and+neural+degeneration+with+aging,+as+seen+in+microdissections+of+the+human+inner+ear.">Sensory and neural degeneration with aging, as seen in microdissections of the human inner ear.</a> Annals of Otology, Rhinology, and Laryngology. 81 (2), 179-193 (1972).</li><li>Wan, G., Gomez-Casati, M. E., Gigliello, A. R., Liberman, M. C., Corfas, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurotrophin-3+regulates+ribbon+synapse+density+in+the+cochlea+and+induces+synapse+regeneration+after+acoustic+trauma.">Neurotrophin-3 regulates ribbon synapse density in the cochlea and induces synapse regeneration after acoustic trauma.</a> Elife. 3, (2014).</li><li>Wang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeting+HDAC+with+a+novel+inhibitor+effectively+reverses+paclitaxel+resistance+in+non-small+cell+lung+cancer+via+multiple+mechanisms.">Targeting HDAC with a novel inhibitor effectively reverses paclitaxel resistance in non-small cell lung cancer via multiple mechanisms.</a> Cell Death &amp; Disease. 7, 2063 (2016).</li><li>Weber, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+cell-cycle+reentry+and+cell+death+after+acute+inactivation+of+the+retinoblastoma+gene+product+in+postnatal+cochlear+hair+cells.">Rapid cell-cycle reentry and cell death after acute inactivation of the retinoblastoma gene product in postnatal cochlear hair cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (2), 781-785 (2008).</li><li>Engstr&#246;m, H., Ades, H. W., Andersson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Structural pattern of the organ of Corti: a systematic mapping of sensory cells and neural elements. , (1966).</li><li>Hawkins, J. E., Linthicum, F. H., Johnsson, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+and+vestibular+lesions+in+capsular+otosclerosis+as+seen+in+microdissection.">Cochlear and vestibular lesions in capsular otosclerosis as seen in microdissection.</a> Annals of Otology, Rhinology, and Laryngology Supplement. 87, 1-40 (1978).</li><li>. MassEyeAndEar.org Available from: <a target="_blank" href="https://www.masseyeandear.org/research/otolaryngology/eaton-peabody-laboratories">https://www.masseyeandear.org/research/otolaryngology/eaton-peabody-laboratories</a> (2019)</li><li>Montgomery, S. C., Cox, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole+Mount+Dissection+and+Immunofluorescence+of+the+Adult+Mouse+Cochlea.">Whole Mount Dissection and Immunofluorescence of the Adult Mouse Cochlea.</a> Journal of Visualized Experiments. (107), (2016).</li><li>. Corning Cell Culture Surfaces Available from: <a target="_blank" href="https://www.corning.com/catalog/cls/documents/brochures/CLS-C-DL-006.pdf">https://www.corning.com/catalog/cls/documents/brochures/CLS-C-DL-006.pdf</a> (2019)</li><li>Nouvian, R., Beutner, D., Parsons, T. D., Moser, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+and+function+of+the+hair+cell+ribbon+synapse.">Structure and function of the hair cell ribbon synapse.</a> The Journal of Membrane Biology. 209 (2-3), 153-165 (2006).</li><li>Atturo, F., Barbara, M., Rask-Andersen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+anatomy+of+the+'hook'+region+of+the+human+cochlea+and+how+it+relates+to+cochlear+implantation.">On the anatomy of the 'hook' region of the human cochlea and how it relates to cochlear implantation.</a> Audiology and Neurootology. 19 (6), 378-385 (2014).</li><li>Kim, N., Steele, C. R., Puria, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+importance+of+the+hook+region+of+the+cochlea+for+bone-conduction+hearing.">The importance of the hook region of the cochlea for bone-conduction hearing.</a> Biophysical Journal. 107 (1), 233-241 (2014).</li><li>Zheng, H. W., Chen, J., Sha, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Receptor-interacting+protein+kinases+modulate+noise-induced+sensory+hair+cell+death.">Receptor-interacting protein kinases modulate noise-induced sensory hair cell death.</a> Cell Death &amp; Disease. 5, 1262 (2014).</li><li>Brown, L. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage-Mediated+Glial+Cell+Elimination+in+the+Postnatal+Mouse+Cochlea.">Macrophage-Mediated Glial Cell Elimination in the Postnatal Mouse Cochlea.</a> Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 407 (2017).</li></ol>

Immünetiketleme ile birlikte tam montaj yüzey preparatlarının koklear mikrodizise, iç kulak patolojileri ve moleküler mekanizmaların araştırılması için temel bir araç tır. Bu modifiye yetişkin fare koklear diseksiyon yöntemi hücre ve doku yapıştırıcı kullanarak bu zor prosedürü basitleştirir.
Bu modifiye koklear yüzey hazırlama yöntemi nispeten kolay ve erişilebilir olmasına rağmen, yine de yeterlilik elde etmek için uygulama gerektirir. Doğru kesimyapmak için...

Koklea ses in algılanmasına adanmıştır ve işitmeden sorumludur. Koklear kanal kemik labirent bir spiral şeklinde sarılır ve işitsel duyusal son organ tutar, Corti organı (OC). OC baziler membran üzerinde, koklear epitel oluşturan, yaklaşık bir uzunluğu ile 5.7 mm yetişkin CBA / CaJ fareler de uncoiled1,2. OC tonotopik baz ve apeks düşük frekanslarda tespit yüksek frekansları ile organize olduğundan, koklear epitel genellikle analitik karşılaştırmalar için üç bölüme ayrılır: apikal, orta ve bazal düşük karşılık gelen döner, orta ve yüksek frekans algılama, sırasıyla. Destekleyen hücreler dizisine ek olarak, OC, medial olarak bulunan bir iç saç hücresi (IHC) sırası ve koklear spirale göre yanal olarak bulunan üç sıra dış saç hücrelerinden (OhC) oluşur.
Doğru işitsel işleme koklea duyusal saç hücrelerinin bütünlüğüne bağlıdır. Duyusal saç hücrelerinin hasar veya kaybı, aşırı gürültüye maruz kalma, ototoksik ilaçların kullanımı, bakteriyel veya viral kulak enfeksiyonları, kafa yaralanmaları ve yaşlanma gibi çok sayıda etiyolojisi neden olduğu kazanılmış işitme kaybı, ortak bir patolojik özelliğidir süreç3. Ayrıca, bütünlük ve iç saç hücresi fonksiyonu / işitsel sinir sinapsları hafif hakaret ler tarafından bozulabilir4. Moleküler ve genetik bilginin mevcudiyeti ve genlerin nakavt ve nakavt teknikleri ile manipüle edilebisi ile, fareler işitme biliminde yaygın olarak kullanılmaktadır. Yetişkin fare koklea küçük ve koklear epitel teknik olarak zor mikrodiskes ile sonuçlanan kemikli bir kapsül ile çevrili olmasına rağmen, immünetiketleme veya immünohistokimya ile birlikte epitel yüzey preparatları ve konfokal görüntüler geniş kollear patolojilerin araştırılması için kullanılmıştır, şerit sinaps ve saç hücrelerinin kayıpları da dahil olmak üzere, duyusal saç hücrelerinde protein düzeylerinde değişiklikler ve destekleyici hücreler, ve saç hücresi rejenerasyonu. Koklear yüzey preparatları da muhabir genlerin ekspresyon deseni belirlemek için kullanılmıştır (yani, GFP) ve başarılı transdüksiyon onaylamak ve transdükse hücre tiplerini belirlemek. Bu teknikler daha önce yetişkin CBA / J fareler5,6,7,8,9kullanarak gürültü kaynaklı işitme kaybı altında yatan moleküler mekanizmaların çalışması için kullanılmıştır.
Her bölümde üç dış saç hücresi (OHC) ve bir iç saç hücresi (IHC) içeren kokleanın küçük kesitkısımlarını elde etmek için parafin kesitleri veya kriyokesitler kullanarak immünohistokimyanın aksine, koklear yüzey preparatları duyusal saç hücreleri ve şerit sinapsları sayma ve duyusal saç hücrelerinin belirli fonksiyonel frekanslara karşılık gelen immünetiketleme için OC tüm uzunluğu görselleştirme. Tablo 1 Muller1 ve Viberg ve Canlon1,2çalışmalara göre yetişkin CBA / J fare koklear spiral uzunluğu boyunca mesafe bir fonksiyonu olarak işitme frekansları haritalama gösterir . Koklear yüzey preparatları koklear patolojilerin araştırılmasında yaygın olarak kullanılmıştır4,5,6,7,8,9,10 ,11,12,13,14,15. Tüm montaj koklear diseksiyon yöntemi aslında hans Engstrom tarafından 196616yılında düzenlenmiş bir kitapta tanımlanmıştır. Bu teknik daha sonra rafine edilmiş ve işitme bilimi bilim adamları bir dizi tarafından literatürde açıklandığı gibi türlerin çeşitli adapte10,11,12,13, 15,17 ve Eaton-Peabody Laboratuvarları tarafından Massachusetts Göz ve Kulak18. Son zamanlarda, başka bir koklear diseksiyon yöntemi Montgomery ve ark.19tarafından bildirilmiştir. Kokleanın mikrodiseksiyonu koklear yüzey preparatları için önemli ve kritik bir adımdır. Ancak, fare kokleae diseksiyon teknik bir sorundur ve önemli bir uygulama gerektirir. Burada, yetişkin fare kokleae kullanılmak üzere değiştirilmiş bir koklear yüzey hazırlama yöntemi sunulmaktadır. Bu yöntem, kochlear epitel parçalarını immünetiketleme için 10 mm yuvarlak kapaklara yapıştırmak için hücre ve doku yapıştırıcısının (yani Cell-Tak) kireçlenmeyi ve kullanımını gerektirir. Hücre ve doku yapıştırıcıyaygın immünohistokimya20için kullanılmaktadır. Bu modifiye koklear mikrodisesiksiyon yöntemi daha önce bildirilen18göre nispeten basittir18 ,19.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>10-mm Rund Coverslips</td>
			<td>Microscopy products for science and industry</td>
			<td>260367</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor 488 Goat Anti-mouse IgG2</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-21131</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor 488 Phalloidin</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A12379</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor 594 Goat Anti-mouse IgG1</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A-21125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor 594 Goat Anti-rabbit IgG (H+L)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A11012</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carboard Micro Slide Trays</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-587-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell-Tak</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>354240</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning Petri Dishes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>353004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>62247</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont #5 Forceps</td>
			<td>FST fine science tools</td>
			<td>11251-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA Disodium Salt</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>E5134</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluoro-gel with Tris Buffer</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>17985-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Four-well Cell Culture Dishes</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>627170</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat Anti-myosin VIIa Antibody</td>
			<td>Proteus Biosciences</td>
			<td>25-6790</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope Slides</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-544-7</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Anti-CtBP2 Antibody</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>#612044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Anti-Glu2R Antibody</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>MAB397</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Normal Goat Serum</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>31872</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>441244</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP665-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td>VWR</td>
			<td>100491-038</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>X100-500ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vannas Spring Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>15001-08</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cochlear surface preparation in the adult mouse

Kokleada işitsel işleme mekanosensory saç hücrelerinin bütünlüğüne bağlıdır. Bir ömür boyunca, işitme kaybı aşırı gürültüye maruz kalma gibi çok sayıda etiyolojisi elde edilebilir, ototoksik ilaçların kullanımı, bakteriyel veya viral kulak enfeksiyonları, kafa yaralanmaları, ve yaşlanma süreci. Duyusal saç hücrelerinin kaybı edinilmiş işitme kaybı çeşitlerinin ortak bir patolojik özelliğidir. Ayrıca, iç saç hücre sinaps hafif hakaretler tarafından zarar görebilir. Bu nedenle, koklear epitelin yüzey preparatları, immünetiketleme teknikleri ve konfokal görüntülerle birlikte, şerit sinapsları ve duyusal saç hücrelerinin kayıpları da dahil olmak üzere koklear patolojilerin araştırılması nda çok yararlı bir araçtır, saç hücrelerinde ve destekleyici hücrelerde protein düzeylerinde değişiklikler, saç hücresi yenilenmesi, ve rapor gen ekspresyonunun belirlenmesi (yani, GFP) başarılı transdüksiyon doğrulama ve transdükse hücre tiplerinin belirlenmesi için. Koklea, iç kulakta kemikli spiral şekilli bir yapı, işitsel duyu salkım organı tutar, Corti organı (OC). Duyusal saç hücreleri ve OC çevreleyen destek hücreleri koklear kanal ve basiler membran üzerinde dinlenme, baz ve apeks düşük frekanslı meydana gelen yüksek frekanslı algılama ile tonotopik bir şekilde düzenlenen bulunur. Moleküler ve genetik bilginin kullanılabilirliği ve nakavt ve nakavt teknikleri ile genleri manipüle etme yeteneği ile, fareler yaygın işitme bilimi de dahil olmak üzere biyolojik araştırmalarda kullanılmıştır. Ancak, yetişkin fare koklea miniscule, ve koklear epitel kemikli bir labirent içinde kapsüllenmiş, mikrodisesit zor hale. Diseksiyon teknikleri birçok laboratuvarda geliştirilmiş ve kullanılmış olsa da, hücre ve doku yapıştırıcısı kullanan bu modifiye mikrodisesiyöntemi daha kolay ve kullanışlıdır. Kireçlenmeden sonra her türlü yetişkin fare kokleasında kullanılabilir.

Kollear epitelin yüzey preparatları, immünetiketleme ve konfokal görüntüleme ile birlikte, kollear patolojilerin araştırılmasında, şerit sinapslarının, duyusal saç hücrelerinin sayısallaştırılması, duyusal saç hücrelerinde protein ekspresyonu5,6,7,8. Yüzey preparatları için yetişkin fare koklealarının diseksiyonu basit olmasa da, yeni mezun öğrenciler 10-15 kulakla...

Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Surface Preparation in the Adult Mouse at JoVE.com

Cochlear Surface Preparation in the Adult Mouse

Bu makalede, yetişkin fare kokleae immünohistokimya için 10 mm yuvarlak kapak fişleri koklear epitel parçaları yapıştırmak için bir hücre ve doku yapıştırıcı kullanımı ve kireçlenme gerektiren değiştirilmiş bir koklear yüzey hazırlama yöntemi sunar.

Yetişkin Farede Koklear Yüzey Hazırlama

Auditory processing in the cochlea depends on the integrity of the mechanosensory hair cells. Over a lifetime, hearing loss can be acquired from numerous ...

Koklear yüzey preparatları immünohistokimya ve konfokal görüntüleme kullanarak Corti organının tüm lens görselleştirme sağlar. Bu geniş ilgi belirli koklear patolojilerin araştırılması için kullanılmıştır. Koklear mikrodiseksiyon yöntemini değiştireceğiz.Bu tekniğin en büyük avantajı, birden fazla yıkama adımı sırasında doku kaybını önlerken immünetiketleme işlemi için koklear epitel in 10 milimetre lik yuvarlak kapaklara yapışmasidir. Buna ek olarak koklear patolojiler, koklear yüzey hazırlama da değerlendirme ekspresyonu ve saç hücre rejenerasyonu için kullanılabilir. Bu teknik için temel mikroskop becerileri gereklidir ve yöntemin görsel gösterimi her adımın doğru şekilde gerçekleştirilmesini sağlamaya yardımcı olabilir.Prosedürü gösteren Qiaojun Fang, benim laboratuvar bir yüksek lisans öğrencisi olacaktır. Temporal kemik çıkarma için, hemen post-mortem kafatası kemik ortaya çıkarmak için ön deri çekin ve kafatasının orta hattı boyunca ileri arka açıdan kemik kesmek için makas kullanın. Başparmak ve işaret parmağını kullanmadan önce beyin dokusunu çıkarmak için pratisyen hekimler kullanın ve üç aylık veya daha büyük farelerden zamansal kemikleri elle çıkarın.Kemikleri bir diseksiyon mikroskobu altında taze buz soğuk% 4 PFA ve PBS içeren 30 milimetre çapında Petri çanak içine yerleştirin ve oval pencereden stapes kaldırın. Beş numaralı forsepsile yuvarlak pencere zarını delin ve kokleanın doruk larına küçük bir delik açmak için taze %4 PFA içeren bir mililitreşşile bağlı 27 kalibrelik bir iğne kullanın. Çözelti tepedeki küçük delikten yıkana kadar yuvarlak ve oval pencereler aracılığıyla kokleayı yavaşça ve yavaşça fiksatif bir çözümle perfitleyin.Daha sonra iki perfüzyon kokleae'yi şişe başına 10 mililitre lik %4'lük PFA içeren tek tek 20 mililitrelik sintillasyon şişelerine aktarın ve numuneleri oda sıcaklığında iki saat boyunca hafifçe çalkalayın ve ardından bir rotatörde dört santigrat derecede geceleme işlemini takip edin. Ertesi sabah kokleayı yıkama başına taze PBS ile üç beş dakikalık yıkar ile yıkayın. Son yıkamadan sonra, her şişeye %4 EDTA'dan 20 mililitre ekleyin ve numuneleri 48 saat boyunca dört derece santigrat derecede hafif bir ajitasyonla döndürün.Kuluçka sonunda, numunelerin elastikiyetini değerlendirmek için her kokleanın kemikli vestibüler kısmına forceplerle dokunun. Kemikler sert yerine elastik ise, koklea dekalcified edilmiştir. Her numune için EDTA'yı taze PBS ile değiştirin.Koklear epitelin mikrodiseksiyonu için temporal kemiğin vestibüler kısmını forsepslerle tutarak ve apikal dönüşü 45 derecelik açıyla kesmek için neşter kullanın. Vestibüler kısımdan kokleayı ayırmak için yuvarlak pencere ile oval pencere arasındaki soluk çizgi boyunca dikey olarak kesin ve koklear kısmı alt ve orta kısıma doğru çeviren koklear kısmı Petri kabının tepesine doğru çevirin. Bu konumdan, apikal bölüm kaldırıldı sonuna doğru orta dönüş kemikkapsül ve lateral duvar kesilmiş ve bazal ve kanca bölgelerinden tamamen orta kısmını ayırmak için kesme ye devam.Çanak altına doğru yönlendirilmiş bazal ve kanca kısmı basilar membran site ile yerleştirerek, dikey medialis kaldırmak için kanca bölgeden medialis kesip ve kanca kısmını ayırmak için bazal ve kanca bölgeleri kesti. Doku bozulmasını önlemek için, bazal dönüş ve kanca bölge ayırmadan önce kanca bölgeden medialis kesti. Orta dönüş kemikkapsül ve lateral duvar dokusunun nispeten büyük bölümlerini kesip ve Petri kabının alt kemik kapsül ve lateral duvar hizalamak için forceps ile lateral duvar tutarak, baziler membran tarafında bu dokuları kesti.Daha sonra, duyusal saç hücresi yüzeyi yan yönlendirmek ve kemik kapsülü ve lateral duvarın geri kalanını kırpmak için örnek düzleştirmek. Sonra tamamen orta bölge ayırmak ve kemik kapsülü kaldırmak için tektorial membran kaldırmak için forceps kullanın, lateral duvar dokusu, ve sadece gösterildiği gibi kalan döner tektorial bölgeleri. Koklear dönüşlerin tamamı incelendiğinde, 0,5 mikrolitre hücre ve doku yapıştırıcısını bir yuvarlak 10 milimetrelik kapak lının ortasına yayın ve yapıştırıcının oda sıcaklığında 3-5 dakika kurumasını bekleyin.Kurutulmuş kapakları Petri kabına yerleştirin ve her duyusal epitel örneğinin dört parçasını da bir kapak içine yerleştirin. Daha sonra her örtünün bir kenarını kavramak için forseps kullanın ve numuneleri immünetiketleme için dört kuyulu bir hücre kültür yemeğinin ayrı kuyularına aktarın. Yüzey koklear sinaps preparatlarının immünetiketlemesi için, her duyusal epiteli her bir taze PBS'de beş dakika boyunca üç kez yıkayın ve ardından her numunenin iki mililitre 2%2 iyonik olmayan yüzey aktif madde ile bir rotatörde oda sıcaklığında 30 dakika boyunca tedavi edin.Kuluçka sonunda, her kuyudan sürfaktan çözeltisi aspire ve oda sıcaklığında nazik ajitasyon ile rotator üzerinde bir saat boyunca kuyu başına bloklama çözeltisi 100 mikrolitre ile herhangi bir nonspesifik bağlama blok. Engelleme kuluçka sonunda, 37 santigrat derece ışıktan korunan 24 saat boyunca ilgi birincil antikorların 100 mikrolitre ile etiketleme den önce nazik ajitasyon altında gösterildiği gibi PBS ile üç kez örnekleri yıkayın. Ertesi gün, numuneleri taze PBS ve yıkama başına hafif ajitasyon ile üç kez yıkayın ve numuneleri ışıktan korunan 37 santigrat derecede iki saat boyunca uygun ikincil antikorlardan 100 mikrolitre ile etiketleyin.Kuluçka sonunda, numuneleri her bir kapak kapağını tek tek cam mikroskop slaytlarına yerleştirmeden önce yıkama başına taze PBS'de üç beş dakikalık yıkama ile yıkayın. Daha sonra, her coverslip'in ortasına uygun bir montaj ortamının sekiz mikrolitresini dikkatlice ekleyin ve her numunenin üzerine 10 milimetrelik bir kapak daha takmak için forceps kullanın. Sonra net oje ile her coverslip sandviç kenarları mühür, bir karton slayt klasörüne örnekleri yerleştirin ve dört derece santigrat slaytlar saklayın.Yüzey preparatları için yetişkin fare koklealarının diseksiyonu basit olmasa da, teknikte yeni olan araştırmacılar 10-15 kulakla pratik yaptıktan sonra yöntemi öğrenebilmelidir. Tedavi edilmeyen 10-12 haftalık CBAJ farelerin CTBP2 ve GluA2 ile yüzey preparatlarının immünetiketlemesi, hem presinaptik şeritlerin hem de postsinaptik terminallerin sırasıyla iç saç hücre çekirdeklerinin altında yer alan ve fonksiyonel sinapsları gösteren yan yana olduğunu göstermektedir. Miyozin 7A için immünetiketleme ve phalloidin ve DAPI ile karşı boyama dış saç hücreleri ve iç saç hücreleri ve çekirdekleri de dahil olmak üzere duyusal saç hücrelerinin varlığını ortaya koymaktadır.Miyozin 7A için immünetiketleme ve phalloidin ile karşı boyama hücre ve doku yapıştırıcısı kullanımı ile veya olmadan immünoreaktivite veya tekdüzelik hiçbir fark gösterir. Buna ek olarak, tedavi edilmeyen altı ila sekiz haftalık C57 siyah 6 farelerden yüzey preparatlarının taramaelektron mikroskobu, numunenin üç sıra içinde dış saç hücrelerinin iyi organize edilmiş V şeklinde bir stereosilya sını göstermektedir. Çözelti tepedeki küçük delikten yıkana kadar koklearı yuvarlak ve oval pencerelerden hafifçe ve yavaşça sabitleştirici solüsyonla doldurmayı unutmayın.Kanca bölgesini bazal dönüşten ayırmadan önce, medialis'in kaldırılmasını kolaylaştırmak için medialis'i kanca bölgesinden kesmeye özen.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Tissue Preparation and Immunostaining of Mouse Sensory Nerve Fibers Innervating Skin and Limb Bones

Deri ve Kol ve bacak kemikleri innerve Fare Duyusal Sinir Lif doku hazırlanması ve immün

Detection and primary processing of physical, chemical and thermal sensory stimuli by peripheral sensory nerve fibers is key to sensory perception in ...

Time-lapse Imaging of Neuroblast Migration in Acute Slices of the Adult Mouse Forebrain

Yetişkin Fare önbeyin akut dilimleri içinde Neuroblast Göç Time-lapse Görüntüleme

There is a substantial body of evidence indicating that new functional neurons are constitutively generated from an endogenous pool of neural stem cells ...

An In-vitro Preparation of Isolated Enteric Neurons and Glia from the Myenteric Plexus of the Adult Mouse

An In-vitro Preparation of Isolated Enteric Neurons and Glia from the Myenteric Plexus of the Adult Mouse

Bir<em&gt; In-vitro</emYetişkin Mouse myenterik Pleksus izole edilen enterik Nöronlar ve Glia bir&gt; hazırlanması

The enteric nervous system is a vast network of neurons and glia running the length of the gastrointestinal tract that functionally controls ...

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

Bir<em&gt; İn Vitro</emKas afferentlerin tahrik Properties incelenmesi için&gt; Yetişkin Fare kas-sinir Hazırlık

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional ...

Long-term Time Lapse Imaging of Mouse Cochlear Explants

Fare Koklear Eksplantlarından uzun vadeli Time Lapse Görüntüleme

Here we present a method for long-term time-lapse imaging of live embryonic mouse cochlear explants. The developmental program responsible for building ...

Whole Mount Dissection and Immunofluorescence of the Adult Mouse Cochlea

Tüm Dağı Diseksiyon ve Yetişkin Fare Kohlea immünofloresan

The organ of Corti, housed in the cochlea of the inner ear, contains mechanosensory hair cells and surrounding supporting cells which are organized in a ...

Preparation of Primary Mixed Glial Cultures from Adult Mouse Spinal Cord Tissue

Yetişkin Fare Omurilik Doku İlköğretim Karışık glial Kültürler hazırlanması

It has been well-accepted that spinal cord glial responses contribute significantly to the development of neuropathic pain. Tremendous information ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

Basit Bir adım Yetişkin Tüm montaj Hazırlama Diseksiyon Protokolü<em&gt; Drosophila</em&gt; Brain

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...

Preparation of Horizontal Slices of Adult Mouse Retina for Electrophysiological Studies

Elektrofizyolojik Çalışmalar Yetişkin Fare Retina Yatay Dilimleri hazırlanması

Vertical slice preparations are well established to study circuitry and signal transmission in the adult mammalian retina. The plane of sectioning in ...

Investigating Mammalian Axon Regeneration: In Vivo Electroporation of Adult Mouse Dorsal Root Ganglion

Investigating Mammalian Axon Regeneration: In Vivo Electroporation of Adult Mouse Dorsal Root Ganglion

Soruşturma memeli Axon rejenerasyon: Vivo Elektroporasyon yetişkin fare Dorsal kök gangliyon

Electroporation is an essential non-viral gene transfection approach to introduce DNA plasmids or small RNA molecules into cells. A sensory neuron in the ...