Name: rapid fabrication of custom microfluidic devices for research and educational applications
Uploaded: 2019-11-20T13:00:00
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Les travaux de ce manuscrit ont été soutenus en partie par la National Science Foundation (NSF) (Grant No. CBET-1553826) (et supplément DE ROA associé) et les National Institutes of Health (NIH) (Grant No. R35GM124935) à J.Z., et le fonds de la Faculté de visite Notre Dame Melchor à F.O. Nous tenons à remercier Jenna Sjoerdsma et Basar Bilgiçer d'avoir fourni des cellules de mammifères et des protocoles de culture et Fabio Sacco pour leur aide avec des chiffres supplémentaires.

1. Conception
<ol><li>Identifiez une application pour les appareils et dressez la liste des composants de canal/chambre qui seront nécessaires. REMARQUE : Tous les appareils nécessiteront des canaux d'entrée et de sortie. Les appareils utilisés pour la microscopie nécessiteront une chambre d'imagerie. Les périphériques plus complexes nécessiteront des canaux et des chambres situés en plusieurs couches.</li>
	<li>Commencez par dessiner à la main chaque couche, en tenant compte de la façon dont la fonctionn...

<ol>
	<li>Xia, Y., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SOFT+LITHOGRAPHY.">SOFT LITHOGRAPHY.</a> Annual Review of Materials Science. 28 (1), 153-184 (1998).</li><li>Beebe, D. J., Mensing, G. A., Walker, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physics+and+Applications+of+Microfluidics+in+Biology.">Physics and Applications of Microfluidics in Biology.</a> Annual Review of Biomedical Engineering. 4 (1), 261-286 (2002).</li><li>Whitesides, G. M., Ostuni, E., Takayama, S., Jiang, X., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Soft+Lithography+in+Biology+and+Biochemistry.">Soft Lithography in Biology and Biochemistry.</a> Annual Review of Biomedical Engineering. 3 (1), 335-373 (2001).</li><li>Sackmann, E. K., Fulton, A. L., Beebe, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+present+and+future+role+of+microfluidics+in+biomedical+research.">The present and future role of microfluidics in biomedical research.</a> Nature. 507 (7491), 181-189 (2014).</li><li>Berthier, E., Young, E. W. K., Beebe, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineers+are+from+PDMS-land,+Biologists+are+from+Polystyrenia.">Engineers are from PDMS-land, Biologists are from Polystyrenia.</a> Lab on a Chip. 12 (7), 1224 (2012).</li><li>Zhang, B., Korolj, A., Lai, B. F. L., Radisic, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advances+in+organ-on-a-chip+engineering.">Advances in organ-on-a-chip engineering.</a> Nature Reviews Materials. 3 (8), 257-278 (2018).</li><li>Bartholomeusz, D. A., Boutte, R. W., Andrade, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Xurography:+rapid+prototyping+of+microstructures+using+a+cutting+plotter.">Xurography: rapid prototyping of microstructures using a cutting plotter.</a> Journal of Microelectromechanical Systems. 14 (6), 1364-1374 (2005).</li><li>Mart&#237;nez-Hern&#225;ndez, K. J., Rovira-Figueroa, N. D., Ontiveros, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Implementation and Assessment of Student-Made Microfluidic Devices in the General Chemistry Laboratory. , (2016).</li><li>Levis, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microfluidics+on+the+fly:+Inexpensive+rapid+fabrication+of+thermally+laminated+microfluidic+devices+for+live+imaging+and+multimodal+perturbations+of+multicellular+systems.">Microfluidics on the fly: Inexpensive rapid fabrication of thermally laminated microfluidic devices for live imaging and multimodal perturbations of multicellular systems.</a> Biomicrofluidics. 13 (2), 024111 (2019).</li><li>Subramaniam, A., Sethuraman, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+18+-+Biomedical+Applications+of+Nondegradable+Polymers.">Chapter 18 - Biomedical Applications of Nondegradable Polymers.</a> Natural and Synthetic Biomedical Polymers. , 301-308 (2014).</li><li>Yuen, P. K., Goral, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low-cost+rapid+prototyping+of+flexible+microfluidic+devices+using+a+desktop+digital+craft+cutter.">Low-cost rapid prototyping of flexible microfluidic devices using a desktop digital craft cutter.</a> Lab Chip. 10 (3), 384-387 (2010).</li><li>Oya, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surface+Characteristics+of+Polyethylene+Terephthalate+(PET)+Film+Exposed+to+Active+Oxygen+Species+Generated+via+Ultraviolet+(UV)+Lights+Irradiation+in+High+and+Low+Humidity+Conditions.">Surface Characteristics of Polyethylene Terephthalate (PET) Film Exposed to Active Oxygen Species Generated via Ultraviolet (UV) Lights Irradiation in High and Low Humidity Conditions.</a> Journal of Photopolymer Science and Technology. 27 (3), 409-414 (2014).</li><li>Narciso, C. E., Contento, N. M., Storey, T. J., Hoelzle, D. J., Zartman, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Release+of+Applied+Mechanical+Loading+Stimulates+Intercellular+Calcium+Waves+in+Drosophila+Wing+Discs.">Release of Applied Mechanical Loading Stimulates Intercellular Calcium Waves in Drosophila Wing Discs.</a> Biophysical Journal. 113 (2), 491-501 (2017).</li><li>Suh, Y. K., Kang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Review+on+Mixing+in+Microfluidics.">A Review on Mixing in Microfluidics.</a> Micromachines. 1 (3), 82-111 (2010).</li><li>Jahn, A., Vreeland, W. N., Gaitan, M., Locascio, L. 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Alors que la microfluidique est de plus en plus présente dans la boîte à outils des laboratoires du monde entier, le rythme d'adoption a été décevant, étant donné le potentiel de son impact positif16. Le faible coût et l'efficacité élevée de la fabrication d'appareils microfluidiques sont essentiels pour accélérer l'adoption de cette technologie dans le laboratoire de recherche moyen. La méthode décrite ici utilise plusieurs couches de film pour créer des dispositifs en deux et tr...

La microfluidique permet le contrôle des fluides à petite échelle, avec des volumes allant de microlitres (1 x 10-6 L) à picoliters (1 x 10-12 L). Ce contrôle a été rendu possible en partie grâce à l'application de techniques de microfabrication empruntées à l'industrie des microprocesseurs1. L'utilisation de micro-réseaux de canaux et de chambres permet à l'utilisateur de profiter des phénomènes physiques distincts caractéristiques des petites dimensions. Par exemple, à l'échelle du micromètre, les fluides peuvent être manipulés à l'aide d'écoulement laminaire, où les forces visqueuses dominent les forces inertielles. En conséquence, le transport diffusif devient la caractéristique principale de la microfluidique, et peut être étudié quantitativement et expérimentalement. Ces systèmes peuvent être correctement compris en utilisant les lois de Fick, la théorie du mouvement Brownian, l'équation de la chaleur, et / ou les équations Navier-Stokes, qui sont des dérivés importants dans les domaines de la mécanique des fluides et des phénomènes de transport2.
Étant donné que de nombreux groupes des sciences biologiques étudient des systèmes complexes au niveau microscopique, on pensait à l'origine que les dispositifs microfluidiques auraient un impact immédiat et significatif sur les applications de recherche en biologie2,3. Cela est dû au fait que la diffusion est dominante dans le transport de petites molécules à travers les membranes ou à l'intérieur d'une cellule, et que les dimensions des cellules et des micro-organismes correspondent parfaitement aux systèmes et dispositifs de sous-millimètres. Par conséquent, il y avait un potentiel important pour améliorer la façon dont l'expérimentation cellulaire et moléculaire est menée. Cependant, l'adoption massive de technologies microfluidiques par les biologistes a pris du retard par rapport aux attentes4. L'absence de transfert de technologie peut être une raison simple pour laquelle il n'y a pas de transfert de technologie. La conception et la fabrication d'appareils personnalisés sont restées juste en dehors des capacités de la plupart des groupes de recherche biologique, ce qui les rend dépendants de l'expertise et des installations externes. Le manque de familiarité avec les applications potentielles, le coût et le temps requis pour la conception-itération sont également des obstacles importants pour les nouveaux adoptants. Il est probable que ces obstacles ont eu pour effet de perturber l'innovation et d'empêcher l'application généralisée de la microfluidique pour relever les défis dans les sciences biologiques.
Un exemple : depuis la fin des années 1990, la photolithographie douce est la méthode de choix pour la fabrication d'appareils microfluidiques. Le PDMS (polydimethylsiloxane, un polymère organique à base de silicone) est un matériau largement utilisé en raison de ses propriétés physiques, telles que la transparence, la déformation et la biocompatibilité5. La technique a connu un grand succès, avec lab-on-a-chip et organ-on-a-chip dispositifs continuellement en cours de développement sur cette plate-forme6. La plupart des groupes travaillant sur ces technologies, cependant, se trouvent dans les départements d'ingénierie ou ont des liens étroits avec eux4. La lithographie nécessite généralement des salles blanches pour la fabrication de moules et d'équipements de collage spécialisés. Pour de nombreux groupes, cela rend les périphériques PDMS standard moins qu'idéal en raison de leurs coûts d'investissement et de temps de plomb, en particulier lorsqu'il est nécessaire d'apporter des modifications de conception répétées. En outre, la technologie est pour la plupart inaccessible au biologiste moyen et aux étudiants qui n'ont pas accès à des laboratoires d'ingénierie spécialisés. Il a été proposé que pour que les dispositifs microfluidiques soient largement adoptés, ils doivent imiter certaines des qualités des matériaux couramment utilisés par les biologistes. Par exemple, le polystyrène utilisé pour la culture cellulaire et les bioessais est peu coûteux, jetable et propice à la production de masse. En revanche, la fabrication industrielle de microfluidiques à base de PDMS n'a jamais été réalisée en raison de sa douceur mécanique, de l'instabilité du traitement de surface et de la perméabilité des gaz5. En raison de ces limitations, et dans le but de résoudre les défis techniques à l'aide d'appareils personnalisés construits "en interne", nous décrivons une méthode alternative qui utilise la xurographie7,8,9 protocoles et laminage thermique. Cette méthode peut être adoptée avec peu de capital et d'investissement en temps.
Les PETL sont fabriqués à l'aide de film de polyéthylène téréphtalate (PET), recouvert de l'acétate thermoadhésif-vinyle (EVA). Les deux matériaux sont largement utilisés dans les produits de consommation, sont biocompatibles et sont facilement disponibles à un coût minimal10. Le film PET/EVA peut être obtenu sous forme de sachets ou de rouleaux laminants. À l'aide d'un coupe-artisanat contrôlé par ordinateur que l'on trouve couramment dans les magasins d'amateurs ou d'artisanat, les canaux sont découpés dans une seule feuille de film pour définir l'architecture de l'appareil11. Les canaux sont ensuite scellés en appliquant des couches supplémentaires de film (ou de verre) qui sont collées à l'aide d'un laminateur thermique(bureau)( Figure 1A). Des pare-chocs en vinyle perforés et autoadhésifs sont ajoutés pour faciliter l'accès aux canaux. Les temps de fabrication varient de 5 à 15 min, ce qui permet une itération rapide de la conception. Tous les équipements et matériaux utilisés pour fabriquer les PETL sont commercialement accessibles et abordables (coût de départ de 350 USD, contre des milliers d'USD pour la lithographie). Par conséquent, les PETL constituent une solution novatrice à deux problèmes principaux posés par la microfluidique conventionnelle : l'abordabilité et l'efficacité du temps (voir la comparaison PDMS/PETL dans les tableaux complémentaires 1, 2).
En plus de donner aux chercheurs la possibilité de concevoir et de fabriquer leurs propres appareils, les PETL peuvent être facilement adoptés en classe parce qu'ils sont simples et intuitifs à utiliser. Les PETLpeuvent peuvent être inclus dans les programmes d'études secondaires et collégiales8, où ils sont utilisés pour aider les élèves à mieux comprendre les concepts physiques, chimiques et biologiques, comme la diffusion, le flux laminaire, le micromélange, la synthèse des nanoparticules, la formation de gradients et la chimiotaxie.
Dans ce travail, nous illustrons le flux de travail global pour la fabrication de puces PETLs modèle avec différents niveaux de complexité. Le premier dispositif est utilisé pour faciliter l'imagerie des cellules et des micro-organes dans une petite chambre. Le deuxième dispositif, plus complexe se compose de plusieurs couches et matériaux, et est utilisé pour la recherche en mécanobiologie9. Enfin, nous avons construit un dispositif qui affiche plusieurs concepts de dynamique des fluides (mise au point hydrodynamique, flux laminaire, transport diffusif et micromixage) à des fins éducatives. Le flux de travail et les conceptions d'appareils présentés ici peuvent être facilement adaptés à un large éventail de fins dans les milieux de recherche et de classe.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Biopsy punch (1mm)</td>
			<td>Miltex</td>
			<td>33-31AA</td>
			<td>Optional, replaces rotary tool set up</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt needles</td>
			<td>Janel, Inc.</td>
			<td>JEN JG18-0.5X-90</td>
			<td>Remove plastic and attach to Tygon tubing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslips</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td>24 x 60 mm are preferred</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cutting Mat and blades</td>
			<td>Silhouette America or Nicapa</td>
			<td>www.silhouetteamerica.com/shop/blades-and-mats</td>
			<td>Re-use/Disposables</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Double-sided tape</td>
			<td>Scotch/3M</td>
			<td>667</td>
			<td>Small amounts, any width or brand</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PEEK tubing</td>
			<td>IDEX/any</td>
			<td>1581L</td>
			<td>Different configurations available. Consider using Tygon tubing intead, if not already using PEEK</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PET/EVA thermal laminate film</td>
			<td>Scotch/3M &#38; Transcendia</td>
			<td>TP3854-200,TP5854-100 &#38; transcendia.com/products/trans-kote-pet</td>
			<td>3 - 6 mil (mil = 1/1000 inch) laminating pouches or rolls.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC film - Cling Wrap</td>
			<td>Glad / Any</td>
			<td></td>
			<td>Food wrapping</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rotary tool-drill</td>
			<td>Dremel/Any</td>
			<td>200-121 or other</td>
			<td>1/32 and 3/64&#34; drill bits from Dremel recommended</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber Roller</td>
			<td>Speedball</td>
			<td>4126</td>
			<td>To facilitate adhesion, any brand will work</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors &#38; tweezers</td>
			<td>Any</td>
			<td>Fiskars-Inch-Titanium-Softgrip-Scissors |Cole-Parmer&#160;&#8211;# UX-07387-12</td>
			<td>Quality brands are recommended</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silhouette CAMEO Craft cutter</td>
			<td>Silhouette America</td>
			<td>www.silhouetteamerica.com/shop/cameo/SILHOUETTE-CAMEO-3-4T</td>
			<td>Preferred craft cutter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silhouette Studio software</td>
			<td>Silhouette America</td>
			<td>www.silhouetteamerica.com/software</td>
			<td>Controls the craft cutter and provides drawing tools (free download MAC and PC)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe Pump</td>
			<td>Harvard Apparatus or New Era</td>
			<td>70-4504 or NE-300</td>
			<td>Pumps are ideal, pipettes or burettes can be used.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringes</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td>1-3mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermal laminator</td>
			<td>Scotch/3M</td>
			<td>TL906</td>
			<td>Standard home/office model</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tygon tubing (E-3603)</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>EW-06407-70</td>
			<td>Use with blunt needle tips</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vinyl furniture bumpers</td>
			<td>DerBlue/3M/ Everbilt</td>
			<td>Clear, self-adhesive (6 x 2 mm and 8 x 3 mm)</td>
			<td>Round bumpers are recommended</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

rapid fabrication of custom microfluidic devices for research and educational applications

Les dispositifs microfluidiques permettent la manipulation de fluides, de particules, de cellules, d'organes ou d'organismes de taille micrométrique dans des canaux allant des échelles nanométriques aux échelles submillimétriques. L'augmentation rapide de l'utilisation de cette technologie dans les sciences biologiques a incité un besoin de méthodes accessibles à un large éventail de groupes de recherche. Les normes de fabrication actuelles, telles que la liaison PDMS, exigent des techniques lithographiques et de liaison coûteuses et longues. Une alternative viable est l'utilisation d'équipements et de matériaux qui sont facilement abordables, nécessitent une expertise minimale et permettent l'itération rapide des conceptions. Dans ce travail, nous décrivons un protocole pour la conception et la production de PET-laminates (PETLs), des dispositifs microfluidiques qui sont peu coûteux, faciles à fabriquer, et consomment beaucoup moins de temps à générer que d'autres approches de la technologie microfluidique. Ils se composent de feuilles de film thermiquement collées, dans lesquelles les canaux et autres caractéristiques sont définies à l'aide d'un coupeur d'artisanat. Les PETL résolvent des défis techniques spécifiques au terrain tout en réduisant considérablement les obstacles à l'adoption. Cette approche facilite l'accessibilité des dispositifs microfluidiques dans les milieux de la recherche et de l'éducation, offrant ainsi une plate-forme fiable pour de nouvelles méthodes de recherche.

En plus d'un coût faible et d'une itération rapide, la technologie PETL peut être facilement personnalisée pour résoudre des défis spécifiques. Tout d'abord, nous décrivons un dispositif simple composé d'un bordereau de verre, d'une couche de chambre, d'une couche de canal et d'une couche d'esperon/sortie (Figure 2). Ce dispositif a été conçu pour faciliter l'imagerie des cellules et des micro-organes sous flux constant. Le milieu de culture est réapprovisionné à faible débit...

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Rapid Fabrication of Custom Microfluidic Devices for Research and Educational Applications

Ici, nous présentons un protocole pour concevoir et fabriquer des dispositifs microfluidiques personnalisés avec un minimum d'investissement financier et de temps. L'objectif est de faciliter l'adoption de technologies microfluidiques dans les laboratoires de recherche biomédicale et les milieux éducatifs.

Fabrication rapide d'appareils microfluidiques personnalisés pour la recherche et les applications éducatives

Microfluidic devices allow for the manipulation of fluids, particles, cells, micro-sized organs or organisms in channels ranging from the nano to ...

Cette méthode de fabrication de puces microfluidiques est à la fois peu coûteuse et simple à mettre en œuvre. N’importe quel laboratoire de recherche peut produire ces microfluidiques à l’interne. Et les conceptions de l’appareil peuvent être itérées en quelques minutes.Le principal avantage de cette technique est son efficacité. C’est-à-dire, n’importe quel laboratoire peut faire leurs propres dispositifs microfluidiques personnalisés à l’interne rapidement et facilement. Après la superposition à la main de chaque couche de l’appareil, dessiner les dessins finaux pour les couches sur un ordinateur, en utilisant n’importe quel logiciel qui permet de tracer des lignes et des formes.Obtenez une capture d’écran de la conception dessinée et importez chaque couche dans un programme logiciel Craft Cutter. Créez un nouveau document et déposez le fichier d’image sur le tapis affiché. Pour tracer la conception, sélectionnez l’icône de trace et sélectionnez complètement les dessins importés.Sélectionnez l’option de contour de l’aperçu des traces et ajustez les paramètres du seuil et de l’échelle au besoin, jusqu’à ce que la trace jaune corresponde à la conception. Sélectionnez la trace dans le menu trace. Les canaux seront affichés comme un contour rouge.Pour dimensioner l’appareil, sélectionnez la conception tracée et utilisez la grille fournie par le logiciel pour modifier la largeur et la longueur des canaux et des chambres. De petites lignes peuvent être tracées temporairement pour mesurer les dimensions de l’appareil. Une fois que l’appareil a été correctement dimensionné, utilisez l’outil de dessin pour dessiner un carré de la même forme et de la même taille sur chaque couche de l’appareil.Ensuite, dessinez un cercle sur les ports d’entrée et de sortie de la conception. Puis copier-coller, à la fois l’original et les cercles. Et effacer les canaux de l’appareil sous-jacent.Organisation de toutes les couches à couper sur le tapis affiché. Pour couper les couches, en portant des gants, placez un seul film PET-EVA d’une épaisseur préférée sur le tapis de coupe adhésif. Avec le côté adhésif opaque face vers le haut, et le côté brillant en plastique face vers le bas.Aplatissez le film contre le tapis, en enlevant tout l’air qui pourrait avoir été piégé. Et cliquez sur tapis de charge sur le coupeur. Ouvrez l’onglet envoyer et sélectionnez un paramètre de coupe.Puis cliquez sur envoyer. Pour aligner le matériau pour la coupe, placez le tapis de coupe à côté d’une surface propre, et utilisez une paire de pinces ou de spatule pour transférer chaque couche du dispositif microfluidique du tapis coupé sur la surface propre afin, en fonction de leur position de haut en bas dans l’appareil. Ensuite, couper trois par 10 millimètres morceaux d’un ruban adhésif à double face, et superposer les couches un par un, en commençant par la couche inférieure.Puis en ajoutant un petit morceau de ruban adhésif à chaque coin entre les couches. Lorsque toutes les couches ont été placées, inspectez l’appareil. Il doit y avoir au moins un côté EVA mat entre chacune des couches.Et aucune EVA ne doit être exposée. Pour laminer l’appareil, après avoir allumer le laminateur, réglez l’instrument au réglage d’épaisseur désiré. Et faire fonctionner l’appareil à travers des rouleaux de laminage.Récupérez ensuite l’appareil laminé. Pour créer les ports d’entrée et de sortie, utilisez un outil rotatif et une perceuse de 1/37 pouce pour couper un petit trou à travers le centre d’un pare-chocs de meubles. Ensuite, utilisez de petites pinces à épiler pour dégager l’orifice de tout débris.Et alignez soigneusement les pare-chocs avec les ports de sortie d’entrée sur l’appareil. Pour tester l’appareil entièrement assemblé, utilisez des tubes de laboratoire pour attacher l’appareil à un connecteur en plastique. Et rincer l’appareil avec une solution appropriée.À l’aide de cet appareil, le milieu de culture cellulaire peut être échangé pendant l’imagerie, ce qui permet le maintien de conditions de croissance idéales et l’introduction contrôlée de stimuli chimiques en temps réel. C’est également vrai pour l’imagerie des micro-organes ex vibo. Le dispositif de pédale a également été employé avec succès pour accomplir l’essai de compression des micro organes de Drosophila.En raison de leur facilité de fabrication, les dispositifs de pédale peuvent également être utilisés dans les milieux éducatifs. Par exemple, à la mise au point hydrodynamique visuelle et la diffusion. Les pédales peuvent être utilisées pour des démonstrations en classe ou pour des expériences qui nécessitent le contrôle environnemental précis de l’échantillon.Comme tester un médicament ou introduire un traitement tout en limitant. En utilisant comme dispositif de pédale pour sonder les propriétés mécaniques d’un disque imaginal d’aile en développement chez les mouches des fruits, nous avons constaté que la rigidité des tissus diminue au cours des périodes de développement étudiées.

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