Name: a layered mounting method for extended time-lapse confocal microscopy of whole zebrafish embryos
Uploaded: 2020-01-14T12:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Layered Mounting Method for Extended Time-Lapse Confocal Microscopy of Whole Zebrafish Embryos at JoVE.com

トランスジェニックな魚の贈り物に対してアルバート・パンとアルント・ジークマンに感謝します。国立遺伝学研究所の川上浩一氏に感謝します。 また、ファティマ・マーチャントとキャスリーン・ガジェフスキの共焦点顕微鏡検査への支援、写真のトレーシー・テリオー
この研究は、国立衛生研究所環境衛生研究所(助成金番号P30ES023512および契約番号HHSN273201500010C)からの助成金によって支援されました。SUは、ケック計算癌生物学プログラム(湾岸コンソーシアムCPRIT助成金RP140113)とヒュー・ロイとリリー・エンダウメント基金のフェローシップによって支援されました。J-Å Gはロバート・A・ウェルチ財団(E-0004)の支援を受けています。

ここで発表された動物の仕事は、ヒューストン大学とインディアナ大学の制度的動物ケアと使用委員会(IACUC)によって承認されました。
1. 魚の夫
注: 脊椎動物モデルの操作には、IACUC 承認プロトコルが必要です。これは、関連する国内および国際的なガイドラインに従って行われるべきです。
<ol><li>以前に出版された文献9で説明さ...

<ol>
	<li>Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stages+of+embryonic+development+of+the+zebrafish.">Stages of embryonic development of the zebrafish.</a> Developmental Dynamics. 203 (3), 253-310 (1995).</li><li>Kaufmann, A., Mickoleit, M., Weber, M., Huisken, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multilayer+mounting+enables+long-term+imaging+of+zebrafish+development+in+a+light+sheet+microscope.">Multilayer mounting enables long-term imaging of zebrafish development in a light sheet microscope.</a> Development. 139 (17), 3242-3247 (2012).</li><li>Schmid, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-speed+panoramic+light-sheet+microscopy+reveals+global+endodermal+cell+dynamics.">High-speed panoramic light-sheet microscopy reveals global endodermal cell dynamics.</a> Nature Communications. 4, 2207 (2013).</li><li>Megason, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+toto+imaging+of+embryogenesis+with+confocal+time-lapse+microscopy.">In toto imaging of embryogenesis with confocal time-lapse microscopy.</a> Methods in Molecular Biology. 546, 317-332 (2009).</li><li>Masselink, W., Wong, J. C., Liu, B., Fu, J., Currie, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low-cost+silicone+imaging+casts+for+zebrafish+embryos+and+larvae.">Low-cost silicone imaging casts for zebrafish embryos and larvae.</a> Zebrafish. 11 (1), 26-31 (2014).</li><li>Wittbrodt, J. N., Liebel, U., Gehrig, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+orientation+tools+for+automated+zebrafish+screening+assays+using+desktop+3D+printing.">Generation of orientation tools for automated zebrafish screening assays using desktop 3D printing.</a> BMC Biotechnology. 14, 36 (2014).</li><li>Weijts, B., Tkachenko, E., Traver, D., Groisman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Four-Well+Dish+for+High-Resolution+Longitudinal+Imaging+of+the+Tail+and+Posterior+Trunk+of+Larval+Zebrafish.">A Four-Well Dish for High-Resolution Longitudinal Imaging of the Tail and Posterior Trunk of Larval Zebrafish.</a> Zebrafish. 14 (5), 489-491 (2017).</li><li>Hirsinger, E., Steventon, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Versatile+Mounting+Method+for+Long+Term+Imaging+of+Zebrafish+Development.">A Versatile Mounting Method for Long Term Imaging of Zebrafish Development.</a> Journal of Visualized Experiment. (119), (2017).</li><li>Avdesh, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regular+care+and+maintenance+of+a+zebrafish+(Danio+rerio)+laboratory:+an+introduction.">Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction.</a> Journal of Visualized Experiment. (69), e4196 (2012).</li><li>McCollum, C. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryonic+exposure+to+sodium+arsenite+perturbs+vascular+development+in+zebrafish.">Embryonic exposure to sodium arsenite perturbs vascular development in zebrafish.</a> Aquatic Toxicology. 152, 152-163 (2014).</li><li>Pan, Y. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zebrabow:+multispectral+cell+labeling+for+cell+tracing+and+lineage+analysis+in+zebrafish.">Zebrabow: multispectral cell labeling for cell tracing and lineage analysis in zebrafish.</a> Development. 140 (13), 2835-2846 (2013).</li><li>Asakawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+dissection+of+neural+circuits+by+Tol2+transposon-mediated+Gal4+gene+and+enhancer+trapping+in+zebrafish.">Genetic dissection of neural circuits by Tol2 transposon-mediated Gal4 gene and enhancer trapping in zebrafish.</a> Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 105 (4), 1255-1260 (2008).</li><li>Nagayoshi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insertional+mutagenesis+by+the+Tol2+transposon-mediated+enhancer+trap+approach+generated+mutations+in+two+developmental+genes:+tcf7+and+synembryn-like.">Insertional mutagenesis by the Tol2 transposon-mediated enhancer trap approach generated mutations in two developmental genes: tcf7 and synembryn-like.</a> Development. 135 (1), 159-169 (2008).</li><li>Huang, W. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+use+of+MS-222+(tricaine)+and+isoflurane+extends+anesthesia+time+and+minimizes+cardiac+rhythm+side+effects+in+adult+zebrafish.">Combined use of MS-222 (tricaine) and isoflurane extends anesthesia time and minimizes cardiac rhythm side effects in adult zebrafish.</a> Zebrafish. 7 (3), 297-304 (2010).</li><li>Craig, M. P., Gilday, S. D., Hove, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dose-dependent+effects+of+chemical+immobilization+on+the+heart+rate+of+embryonic+zebrafish.">Dose-dependent effects of chemical immobilization on the heart rate of embryonic zebrafish.</a> Laboratory Animal (NY). 35 (9), 41-47 (2006).</li><li>Swinburne, I. A., Mosaliganti, K. R., Green, A. A., Megason, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+Long-Term+Imaging+of+Embryos+with+Genetically+Encoded+alpha-Bungarotoxin.">Improved Long-Term Imaging of Embryos with Genetically Encoded alpha-Bungarotoxin.</a> PLoS One. 10 (8), 0134005 (2015).</li></ol>

ここでは、ゼブラフィッシュ胚全体の延長タイムラプス共焦点顕微鏡検査の取り付け方法について説明する。取り付け方法の最も重要なステップは、無制限のゼブラフィッシュ胚の成長を可能にするアガロースの最適な濃度を特定すると同時に、共焦点イメージングのために胚を完全に固定された位置に保つことです。アガロースの最適濃度は非常に狭いため、この値は、溶液の調製中にア?...

ゼブラフィッシュは長い間発達生物学のモデル生物であり、顕微鏡検査は胚発生を可視化する主要な方法である。発達研究のためにゼブラフィッシュ胚を使用する利点は、小さなサイズ、光学的明瞭さ、急速な発達、および成虫魚の高い胎児性を含む。特定の組織または細胞で蛍光を発現するトランスジェニックゼブラフィッシュラインの生成は、より大きな脊椎動物では不可能な方法で組織の発達を直接可視化することを可能にした。タイムラプス顕微鏡と組み合わせることで、組織現像の詳細とダイナミクスを容易に研究することができる。
ゼブラフィッシュのイメージングの難しさは、胚が実質的に長くなるということです。胚は、寿命の最初の3日以内にその長さを4回延長します。また、初期胚の体は柔らかく、成長が制限されると歪みやすくなります。しかし、共焦点顕微鏡を行うには、胚を固定化する必要があります。胚を共焦点タイムラプスイメージングの固定位置に保つために、定期的に麻酔を行い、0.3~1%の低溶融アガロースに取り付けます。これは、胚の動きを制限しながら、一定期間のイメージング中にいくつかの成長を可能にするという利点を有する。胚の一部はこのように効率的に画像化することができる。しかし、この方法を長期間胚全体のイメージングに用いる場合、アガロースによる成長制限により歪みが見られる。したがって、他の取り付け方法が必要です。カウフマンたちは、無濃度のアガロースまたはメチルセルロース2を含むフッ素化エチレンプロピレン(FEP)チューブに胚を取り付けることにより、選択的プレーン照明顕微鏡(SPIM)などの光シート顕微鏡用ゼブラフィッシュ胚の代替実装について説明した。この技術は、時間の経過とともに胚発生の優れた可視化を生成します。Schmid et al. は、1 回のイメージング セッションで複数の胚の可視化を提供する光シート顕微鏡3用FEBチューブ中のアガロース内の最大6個の胚の取り付けについて説明する。金型は、より多くの数の胚4を効率的に取り付けるために胚アレイを作成するために使用されてきました。Masselkinkららは、ゼブラフィッシュ胚を異なる段階で配置できるシリコン鋳造物を作るために使用できる3Dプリントプラスチック金型を構築しており、共焦点イメージング5を含むイメージングのための一定の位置への取り付けを可能にする。3Dプリンティングはまた、96ウェルフォーマット6でゼブラフィッシュ胚の一貫した位置のための金型を作るために使用されています。一部の金型は特定のステージに合わせてカスタマイズされており、長期間無制限に成長できない場合がありますが、他の金型はより柔軟です。最近、Weijtsらゼブラフィッシュ胚の生イメージングのための4ウェル皿のデザインと製作を発表しました7.この料理では、麻酔をかけた魚の胚の尾と幹をカバーガラスのすぐ上に取り付けた透明なシリコーン屋根の下に手動で配置し、ポケットを形成します。胚は、0.4%アガロースを添加することによって、この位置に固定される。この取り付けにより、胚の約2mmの後部(幹および尾部)のイメージングが可能であり、ウェルごとに最大12個の胚を取り付けることができるように、この方法は複数のサンプルのイメージングを可能にする。同様に、ヒルシンガーとスティーブントンは最近、魚の頭部をアガロースに取り付け、尾部を自由に成長させる方法を提示し、この方法はまた、胚8の幹および尾部領域のイメージングを効率的に容易にする。
この記事では、無制限の成長を可能にしながら胚の動きを制限するゼブラフィッシュ胚の層状取り付け方法について説明します。この取り付け方法の利点は、任意の反転顕微鏡を用いてイメージングするための様々な段階の胚を取り付ける低コスト、迅速かつ容易な方法である。取り付けは胚の発達の間に全身(頭部、幹および尾)の長期のイメージ投射を可能にする。この方法の使いやすさを示すために、全胚血管、神経および筋肉の発達をトランスジェニック魚に画像化した。セッションあたり2つの胚は、3Dの2つの波長で、組織発達の映画をレンダリングするために55時間連続してタイムラプス顕微鏡によって画像化された。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Low melting agarose</td>
			<td>Sigma-Aldrich, MO</td>
			<td>A9414</td>
			<td>Store dissolved solution at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>35 mm glass bottom dishes with No. 0 coverslip and 10 mm diameter of glass bottom</td>
			<td>MatTek Corporation, MA</td>
			<td>P35GCOL-0-10-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tricaine (MS-222)</td>
			<td>Sigma-Aldrich, MO</td>
			<td>E10521</td>
			<td>Store dissolved solution at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N-phenylthiourea (PTU)</td>
			<td>Sigma-Aldrich, MO</td>
			<td>P7629</td>
			<td>Store dissolved solution at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro cover glass 22x22 mm</td>
			<td>VWR</td>
			<td>48366 067</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leica DMi8 fluorescence microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LAS X software</td>
			<td>Leica</td>
			<td>NA</td>
			<td>Microscope software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMC4500 digital microscope camera</td>
			<td>Leica</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nikon A1S confocal microscope</td>
			<td>Nikon Instruments Inc.</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nikon NIS AR Version 4.40</td>
			<td>Nikon Instruments Inc.</td>
			<td>NA</td>
			<td>Microscope software</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a layered mounting method for extended time-lapse confocal microscopy of whole zebrafish embryos

発達のダイナミクスは、特定の組織または細胞において蛍光を発現する生きているトランスジェニックゼブラフィッシュ胚の共焦点タイムラプス顕微鏡法に続くことができる。全胚のイメージングの難しさは、ゼブラフィッシュ胚が実質的に長くなるということです。0.3~1%低溶融アガロースに定期的に取り付けられると、アガロースは成長制限を課し、軟胚体の歪みにつながります。しかし、共焦点タイムラプス顕微鏡を行うには、胚を固定化する必要があります。この記事では、無制限の成長を可能にしながら胚の運動性を制限するゼブラフィッシュ胚の層状取り付け方法について説明します。取り付けは、異なる濃度でアガロースの層で行われる。この方法のユーザビリティを実証するために、全胚血管、神経および筋肉の発達を55時間連続してトランスジェニック魚に画像化した。この取り付け方法は、金型や特殊装置の要件なしに、反転顕微鏡を使用してゼブラフィッシュ胚全体を簡単かつ低コストでイメージングするために使用できます。

取り付け方法の開発 この研究の主な目的は、ゼブラフィッシュ開発のタイムラプスイメージングのための低コストの取り付け技術を長期間開発することでした。層状取り付け方法は、その動きを制限しながら、脆弱なゼブラフィッシュ胚体の完全な成長を可能にするために開発されました。層1のアガロース濃度が高すぎると、胚が歪んで湾曲します(図2)。</stro...

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A Layered Mounting Method for Extended Time-Lapse Confocal Microscopy of Whole Zebrafish Embryos

この記事では、長時間経過共焦点顕微鏡用に脆弱なゼブラフィッシュ胚を取り付ける方法について説明する。この低コストの方法は、任意の反転顕微鏡でイメージングするための通常のガラス底顕微鏡用皿を使用して簡単に行うことができます。取り付けは、異なる濃度でアガロースの層で行われる。

ゼブラフィッシュ胚全体の延長タイムラプス共焦点顕微鏡法の層状取り付け法

Dynamics of development can be followed by confocal time-lapse microscopy of live transgenic zebrafish embryos expressing fluorescence in specific tissues ...

我々は、脆弱なゼブラフィッシュ胚の無制限の成長を可能にし、同時に完全に固定された位置にそれらを維持するタイムラプスイメージングのための取り付け方法を開発しました。この取り付け方法は、高速、簡単、安価であり、それは任意の逆顕微鏡上のラボイメージングのために働きます。我々は、生きているゼブラフィッシュ胚のイメージングのためのこの方法を開発したが、それは他の小さな水生動物モデルのイメージングのために変更することができる。まずは、成虫のゼブラフィッシュを繁殖させることから始めます。午後には、魚を1対2の雄と雌の比率で繁殖タンクに入れる。次に、胚培地中に1%低溶融アガロースのストック溶液を調製し、電子レンジで加熱して溶解する。アガロース溶液を1.5ミリリットルチューブにアリコートする。蒸留水で4%トリケーヌのストック溶液を作り、アガロースとトリケーヌを摂氏4度で貯蔵します。トリケーヌは有毒であり、計量し、ヒュームフードで準備する必要があります。交配後、ペトリ皿でE3のゼブラフィッシュ胚を収穫し、取り付ける前に約28時間摂氏26.5度でインキュベートします。0.02%トリカインで胚を麻酔し、コリオンを優しくつかんで引き離して胚を放出させることで顕微鏡下でデコールニオンする。取り付ける直前に、アガロース溶液を摂氏65度に加熱し、胚が熱によって害を受けないように約30°Cに冷却し、アガロース溶液にトリカインを加えます。カバーグラス底面がゼロの35ミリメートルガラス底皿を使用してください。ガラスピペットまたはマイクロピペットで皿の底に向かって側面の1つを持つデコリオネート胚をそっと置き、残りのE3をマイクロピペットで慎重に取り除きます。最初のアガロース溶液を皿の底に取り付けられたカバーグラスによって作成された小さな井戸に加えて、アガロースが小さな井戸を覆うがオーバーフローしないことを確認するために胚を覆う。カバーグラスで小さな井戸を覆い、2つのカバーグラスの間に胚を持つ狭いアガロースで満たされた空間を作成します。カバーグラスの上に1%アガロース溶液の層を置き、カバーグラスを固めるのと同じ位置に保ちます。その後、皿の残りの部分を0.02%トリカインを含むE3で満たし、システムを水分補給します。層1の最適なアガロース濃度を同定するには、アガロースの濃度を増加させるに胚を取り付け、タイムラプスイメージングを行い、胚の歪みおよび運動性を最小限に抑える濃度を同定し、その結果に基づいてより細かい濃度範囲を試験する。このプロトコルの最も重要なステップは、層1に対するアガロースの最適濃度を特定することです。0.030%0.032%など、異なるナノ濃度のアガロースをテストします。最適な濃度を見つけるために。胚のタイムラプスイメージングを行うために、インキュベーターを摂氏28.5度に設定した顕微鏡ステージを使用し、最大55時間画像を使用します。同時に複数の胚を画像化するには、いくつかの皿を保持し、胚が水平に配置されるように皿を1つずつ回転させるステージアダプタを使用します。低倍率の目的を選択し、接眼レンズを使用して胚を見つけ、最後に皿を回転させることによって水平に整列させる。ソフトウェアで胚の位置を記録し、データを自動保存するためのファイル名を作成します。ピンホールのサイズ、スキャン速度、画像サイズ、ズームを設定します。次に、画像と蛍光チャネルを撮影するための高倍率を選択します。各チャンネルに対して、レーザーパワーと検出器の高電圧を調整し、飽和を避け、写真の漂白を制限しながら、可能な限り最高のダイナミックレンジを収集するようにしてください。次に、10Xの目的で胚全体を画像化するには、ソフトウェア内の大きな画像キャプチャ設定を設定して、いくつかの視野を画像化し、胚の位置を調整して、この大きな画像領域内に収まることを確認します。原稿の指示に従って Z スタックをキャプチャするための設定を行います。長期のタイムラプスイメージング中に複数の胚の焦点を維持するために、自動フォーカスを使用し、各胚の個々のオフセットレベルを調整して参照面に焦点を当てます。その後、顕微鏡ソフトウェアにタイムラプスパラメータを設定し、1時間間隔で55時間の画像を作成します。各サイクルで、2 つの胚データセットを順番にキャプチャし、データを自動的に保存します。顕微鏡ソフトウェアを使用して画像を処理します。複数の胚が画像化された場合は、イメージングの場所に基づいてデータセットを分割して、各胚に対して独立したファイルを作成します。最大強度投影または同様のツールを使用して、3D 時間データセットを 2D 時間データセットに変換します。最後に、AVI として保存し、再生速度が毎秒 5 フレームの場合は 200 ミリ秒間隔の圧縮なしオプションを選択して、ムービーファイルを作成します。この層状取り付け方法は、ゼブラフィッシュ胚を成長させながら、同じ動きを制限しながらイメージングすることを可能にする。アガロース濃度が高すぎると、胚が歪んでしまいます。しかし、それが低すぎると、タイムラプス顕微鏡の間に視野から移動します。最適なアガロース濃度は、胚全体のRFPを発現する0.028〜0.034%の生きたトランスジェラフィッシュと血管構造の内皮細胞中のGFPの間で55時間イメージングされ、その間に間皮間血管が発芽し、腸管および頭部血管凝縮が発症し、尾頭静脈叢が拡張して発生することが判明した。GFPおよび運動ニューロンを発現する胚を、運動ニューロンの発達を視覚化するために画像化した。運動ニューロン軸索は、腹側神経管から、胚の腹側に向かって、スマイトの上に芽を出す。セグメント間血管の位置に関連した運動ニューロン軸索の背部発芽の共発達は、より高い倍率を用いて画像化された。これにより、神経管から発芽する側腹軸索と裏軸索の細かい細部を可視化することが可能になりました。スマイト数が増加するにつれて、スマイトの長さと幅も広がります。このプロセスは、筋肉中のGFPを発現するトランスジェニック胚を用いて画像化した。アガロースの最適濃度は非常に狭いため、アガロースのストック溶液を調製する際の測定の小さな変動に非常に敏感であり、アガロース溶液の新しいバッチごとに再定義する必要があります。画像のサイズと解像度、スキャン速度、ズーム、高電圧検出器、レーザーパワーなどのイメージングパラメータを慎重に設定して、実験間の一貫性を確保し、長期間のタイムラプスイメージング中に光毒性や光の漂白の可能性を低減することが重要です。この遺伝子導入ゼブラフィッシュ胚に対するこの取り付け方法を用いて、生物全体の拡張タイムラプスイメージングを行い、異なる組織がどのように一緒に発達するかを視覚化することができます。

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Capturing Tissue Repair in Zebrafish Larvae with Time-lapse Brightfield Stereomicroscopy

タイムラプス明実体顕微鏡でゼブラフィッシュ幼虫における組織修復をキャプチャ

The zebrafish larval tail fin is ideal for studying tissue regeneration due to the simple architecture of the larval fin-fold, which comprises of two ...

Analyzing In Vivo Cell Migration using Cell Transplantations and Time-lapse Imaging in Zebrafish Embryos

Analyzing In Vivo Cell Migration using Cell Transplantations and Time-lapse Imaging in Zebrafish Embryos

分析<em&gt;インビボ</emゼブラフィッシュ胚における細胞移植とタイムラプスイメージングを使用して&gt;細胞移動

Cell migration is key to many physiological and pathological conditions, including cancer metastasis. The cellular and molecular bases of cell migration ...

Analysis of Zebrafish Kidney Development with Time-lapse Imaging Using a Dissecting Microscope Equipped for Optical Sectioning

解剖顕微鏡を使用したタイムラプスイメージングとゼブラフィッシュ腎臓の開発の分析は、光学切片のための装備します

In order to understand organogenesis, the spatial and temporal alterations that occur during development of tissues need to be recorded. The method ...

A Submerged Filter Paper Sandwich for Long-term Ex Ovo Time-lapse Imaging of Early Chick Embryos

A Submerged Filter Paper Sandwich for Long-term Ex Ovo Time-lapse Imaging of Early Chick Embryos

長期用水中フィルターペーパーサンドイッチ<em&gt;例OVO</emニワトリ初期胚の&gt;タイムラプスイメージング

Due to its availability, low cost, flat geometry, and transparency, the ex ovo chick embryo has become a major vertebrate animal model for the study of ...

An Ex Vivo Method for Time-Lapse Imaging of Cultured Rat Mesenteric Microvascular Networks

An Ex Vivo Method for Time-Lapse Imaging of Cultured Rat Mesenteric Microvascular Networks

アン<em&gt; ex vivoで</em&gt;メソッド培養ラット腸間膜微小血管ネットワークのタイムラプスイメージングのための

Angiogenesis, defined as the growth of new blood vessels from pre-existing vessels, involves endothelial cells, pericytes, smooth muscle cells, immune ...

A Versatile Mounting Method for Long Term Imaging of Zebrafish Development

ゼブラフィッシュの開発の長期イメージングのための多彩な取り付け方法

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Multi-Photon Time Lapse Imaging to Visualize Development in Real-time: Visualization of Migrating Neural Crest Cells in Zebrafish Embryos

リアルタイムで開発を可視化する多光子タイムラプス イメージング: ゼブラフィッシュ胚の神経堤細胞の可視化

Congenital eye and craniofacial anomalies reflect disruptions in the neural crest, a transient population of migratory stem cells that give rise to ...

Quantitative Whole-mount Immunofluorescence Analysis of Cardiac Progenitor Populations in Mouse Embryos

マウス胚における心臓前駆細胞集団の定量的ホール マウント免疫染色解析

The use of ever-advancing imaging techniques has contributed broadly to our increased understanding of embryonic development. Pre-implantation development ...

Single-Cell Quantification of Protein Degradation Rates by Time-Lapse Fluorescence Microscopy in Adherent Cell Culture

単一細胞付着性細胞培養のタイムラプス蛍光顕微鏡による蛋白質分解率の定量化

Proteins are in a dynamic state of synthesis and degradation and their half-lives can be adjusted under various circumstances. However, most commonly used ...