Name: contusion spinal cord injury via a microsurgical laminectomy in the regenerative axolotl
Uploaded: 2019-10-20T14:45:00
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Michael Pedersen, de la Universidad de Aarhus por su experiencia y tiempo en el desarrollo de protocolos de RMN y la creación de todo el proyecto. Peter Agger, de la Universidad de Aarhus por su experiencia y tiempo en el desarrollo de los protocolos de RMN. Steffen Ringgard, de la Universidad de Aarhus por su experiencia y tiempo en el desarrollo de los protocolos de RMN. El desarrollo del modelo SCI en el axolotl fue apoyado amablemente por la Fundación A.P. M'ller Maersk, la Fundación Riisfort, la Fundación Linex y la Fundación ELRO.

Durante este estudio se siguieron todas las reglamentaciones institucionales y gubernamentales aplicables relativas al uso ético de los animales. El estudio fue realizado bajo el id de aprobación: 2015-15-0201-0061 por la Inspección Danesa de Experimentos Animales. Los animales eran axolotls mexicanos(Ambystoma mexicanum, masa corporal media : STD: 12.12 g a 1.25 g).
1. Preparación
<ol><li>
Prepare axolotl para la anestesia.
	<ol>
<li>Utilice agua del grifo no t...

<ol>
	<li>Shavelle, R. M., DeVivo, M. J., Brooks, J. C., Strauss, D. J., Paculdo, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improvements+in+Long-Term+Survival+After+Spinal+Cord+Injury.">Improvements in Long-Term Survival After Spinal Cord Injury.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 96 (4), 645-651 (2015).</li><li>Hicken, B. L., Putzke, J. D., Richards, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bladder+management+and+quality+of+life+after+spinal+cord+injury.">Bladder management and quality of life after spinal cord injury.</a> American Journal of Physical Medicine &amp; Rehabilitation. 80 (12), 916-922 (2001).</li><li>Levi, R., Hultling, C., Nash, M. S., Seiger, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Stockholm+spinal+cord+injury+study:+1.+Medical+problems+in+a+regional+SCI+population.">The Stockholm spinal cord injury study: 1. Medical problems in a regional SCI population.</a> Paraplegia. 33 (6), 308-315 (1995).</li><li>Bjornshave Noe, B., Mikkelsen, E. M., Hansen, R. M., Thygesen, M., Hagen, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Incidence+of+traumatic+spinal+cord+injury+in+Denmark,+1990-2012:+a+hospital-based+study.">Incidence of traumatic spinal cord injury in Denmark, 1990-2012: a hospital-based study.</a> Spinal Cord. 53 (6), 436-440 (2015).</li><li>Singh, A., Tetreault, L., Kalsi-Ryan, S., Nouri, A., Fehlings, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+prevalence+and+incidence+of+traumatic+spinal+cord+injury.">Global prevalence and incidence of traumatic spinal cord injury.</a> Clinical Epidemiology. 6, 309-331 (2014).</li><li>Aguayo, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Degenerative+and+regenerative+responses+of+injured+neurons+in+the+central+nervous+system+of+adult+mammals.">Degenerative and regenerative responses of injured neurons in the central nervous system of adult mammals.</a> Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 331 (1261), 337-343 (1991).</li><li>Aguayo, A. J., Bjorklund, A., Stenevi, U., Carlstedt, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fetal+mesencephalic+neurons+survive+and+extend+long+axons+across+peripheral+nervous+system+grafts+inserted+into+the+adult+rat+striatum.">Fetal mesencephalic neurons survive and extend long axons across peripheral nervous system grafts inserted into the adult rat striatum.</a> Neuroscience Letters. 45 (1), 53-58 (1984).</li><li>Richardson, P. M., Issa, V. M., Aguayo, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regeneration+of+long+spinal+axons+in+the+rat.">Regeneration of long spinal axons in the rat.</a> Journal of Neurocytology. 13 (1), 165-182 (1984).</li><li>Butler, E. G., Ward, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reconstitution+of+the+spinal+cord+following+ablation+in+urodele+larvae.">Reconstitution of the spinal cord following ablation in urodele larvae.</a> Journal of Experimental Zoology. 160 (1), 47-65 (1965).</li><li>Diaz Quiroz, J. F., Tsai, E., Coyle, M., Sehm, T., Echeverri, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Precise+control+of+miR-125b+levels+is+required+to+create+a+regeneration-permissive+environment+after+spinal+cord+injury:+a+cross-species+comparison+between+salamander+and+rat.">Precise control of miR-125b levels is required to create a regeneration-permissive environment after spinal cord injury: a cross-species comparison between salamander and rat.</a> Disease Model Mechanisms. 7 (6), 601-611 (2014).</li><li>Clarke, J. D., Alexander, R., Holder, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regeneration+of+descending+axons+in+the+spinal+cord+of+the+axolotl.">Regeneration of descending axons in the spinal cord of the axolotl.</a> Neuroscience Letters. 89 (1), 1-6 (1988).</li><li>McHedlishvili, L., Mazurov, V., Tanaka, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reconstitution+of+the+central+nervous+system+during+salamander+tail+regeneration+from+the+implanted+neurospheres.">Reconstitution of the central nervous system during salamander tail regeneration from the implanted neurospheres.</a> Methods of Molecular Biology. 916, 197-202 (2012).</li><li>Thygesen, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+clinically+relevant+blunt+spinal+cord+injury+model+in+the+regeneration+competent+axolotl+(Ambystoma+mexicanum)+tail.">A clinically relevant blunt spinal cord injury model in the regeneration competent axolotl (Ambystoma mexicanum) tail.</a> Experimental Therapeutic Medicine. 17 (3), 2322-2328 (2019).</li><li>Goss, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Principles of Regeneration. , (1969).</li><li>Hutchison, C., Pilote, M., Roy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+axolotl+limb:+a+model+for+bone+development,+regeneration+and+fracture+healing.">The axolotl limb: a model for bone development, regeneration and fracture healing.</a> Bone. 40 (1), 45-56 (2007).</li><li>Thygesen, M. M., Rasmussen, M. M., Madsen, J. G., Pedersen, M., Lauridsen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Propofol+(2,6-diisopropylphenol)+is+an+applicable+immersion+anesthetic+in+the+axolotl+with+potential+uses+in+hemodynamic+and+neurophysiological+experiments.">Propofol (2,6-diisopropylphenol) is an applicable immersion anesthetic in the axolotl with potential uses in hemodynamic and neurophysiological experiments.</a> Regeneration (Oxford). 4 (3), 124-131 (2017).</li><li>Krogh, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Progress+of+Physiology.">The Progress of Physiology.</a> The American Journal of Physiology. 90 (2), 243-251 (1929).</li></ol>

Debido a que el riesgo de lesión en la médula espinal es significativo, los pasos críticos del protocolo son la eliminación de los procesos espinosos y el ensanchamiento del acceso óseo al canal espinal si es necesario. Como se mencionó en el protocolo, se recomienda eliminar primero el proceso más craneal. Esto significará que cuantos más procesos caudales protejan la médula espinal de ser golpeada por las tijeras. Se recomienda asegurar suficiente acceso quirúrgico, lo que significa no hacer una incisión pr...

El objetivo general de este estudio fue establecer un método microquirúrgico controlado y reproducible para infligir SCI contundente y agudo al axolotl (Ambystoma mexicanum), produciendo un modelo de lesión regenerativa de la médula espinal.
El Lico de SCI es una afección grave que, dependiendo del nivel y la extensión, inflige discapacidad neurológica a las extremidades junto con deterioro de la vejiga y el control intestinal1,2,3. La mayoría de sCI son el resultado de traumas contundentes de alta energía como accidentes de tráfico y caídas4,5. Las lesiones bruscadas son muy raras. Por lo tanto, el tipo de lesión macroscópica más común son las contusiones.
El sistema nervioso central de los mamíferos (SNC) es un tejido no regenerativo, por lo tanto no se ve restauración del tejido neurológico después de SCI6,7,8. Por otro lado, algunos animales tienen una capacidad intrigante para regenerar tejidos, incluyendo el tejido del SNC. Uno de estos animales es el axolotl. Es ampliamente utilizado en estudios de biología regenerativa y es de interés en la regeneración de la médula espinal, ya que es un vertebrado9,10,11,12.
La mayoría de los estudios de SCI en el axolotl se realizan como amputación de toda la cola o ablación de una mayor parte de la médula espinal9,10,11,12. Recientemente, se publicó un nuevo estudio sobre lesiones contundentes13 que imita mejor las situaciones clínicas. Mientras que la amputación completa del apéndice en el axolotl da lugar a una regeneración completa, algunos fenómenos regenerativos no basados en la amputación dependen del defecto de tamaño crítico (CSD)14,15. Esto significa que las lesiones que superan un umbral crítico no se regeneran. Para desarrollar un modelo regenerativo con un mayor valor traslacional clínico, este estudio investigó si un traumatismo contundente de 2 mm superaría el límite de DSA.
Este método es relevante para los investigadores que trabajan en la regeneración de la médula espinal en modelos animales pequeños, especialmente en el axolotl. Además, puede ser de mayor interés general, ya que exhibe una forma de utilizar equipos de laboratorio estándar para desarrollar un mecanismo de trauma contundente que sea adecuado para su uso en animales pequeños en general.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>25 g custom falling rod</td>
			<td>custom home made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30 mm PVC pipe</td>
			<td>custom home made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>67-64-1</td>
			<td>Propanone</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Axolotl (Ambystoma mexicanum)</td>
			<td>Exoterra GmbH</td>
			<td>N/A</td>
			<td>12-22 cm and 10 g - 80 g, All strains (wildtype, melanoid, white, albino, transgenic white with GFP)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Benzocain</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>94-09-7</td>
			<td>ethyl 4-aminobenzoate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>electromaget</td>
			<td>custom home made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Excel 2010</td>
			<td>Microsoft</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Excel 2010 or newer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImageJ</td>
			<td>National Institutes of Health</td>
			<td></td>
			<td>ImageJ 1.5e or newer. Rasband, W.S., ImageJ, U. S. National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, USA, https://imagej.nih.gov/ij/, 1997-2016.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>kimwipes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microsurgical instruments</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Forceps and scissors</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MS550s</td>
			<td>Fujifilm, Visualsonics</td>
			<td>MS550s</td>
			<td>40 MHz center frequency, transducer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MS700</td>
			<td>Fujifilm, Visualsonics</td>
			<td>MS700</td>
			<td>50 MHz center frequency, transducer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish</td>
			<td>any maker</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Soft cloth</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Any piece of soft cloth measuring appromixately 70 x 55 cm^2 e.g. a dish towel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereo microscope</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vevo 2100</td>
			<td>Fujifilm, Visualsonics</td>
			<td>Vevo 2100</td>
			<td>High frequency ultrasound system</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

contusion spinal cord injury via a microsurgical laminectomy in the regenerative axolotl

El propósito de este estudio es establecer un modelo estandarizado y reproducible de lesión de la médula espinal contundente regenerativa en el axolotl (Ambystoma mexicanum). La mayoría de las lesiones clínicas de la médula espinal se producen como traumatismos contundentes de alta energía, lo que induce lesiones por contusión. Sin embargo, la mayoría de los estudios en la médula espinal axolotl se han realizado con traumas agudos. Por lo tanto, este estudio tiene como objetivo producir un modelo regenerativo más relevante clínicamente. Debido a su impresionante capacidad para regenerar casi cualquier tejido, los axolotls son ampliamente utilizados como modelos en estudios regenerativos y se han utilizado ampliamente en estudios de lesión de la médula espinal (SCI). En este protocolo, los axolotls son anestesiados por inmersión en una solución de benzocaína. Bajo el microscopio, se realiza una incisión angular bilateralmente a un nivel justo caudal a las extremidades posteriores. A partir de esta incisión, es posible diseccionar y exponer los procesos espinosos. Usando fórceps y tijeras, se realiza una laminectomía de dos niveles, exponiendo la médula espinal. Se construye un dispositivo de trauma personalizado que consiste en una varilla que cae en un cilindro, y este dispositivo se utiliza para inducir una lesión de contusión en la médula espinal. Las incisiones se suturan y el animal se recupera de la anestesia. El enfoque quirúrgico es exitoso en la exposición de la médula espinal. El mecanismo de traumatismo puede producir lesiones por contusión en la médula espinal, como lo confirma la histología, la resonancia magnética y el examen neurológico. Finalmente, la médula espinal se regenera a partir de la lesión. El paso crítico del protocolo es eliminar los procesos espinosos sin infligir daño a la médula espinal. Este paso requiere capacitación para garantizar un procedimiento seguro. Además, el cierre de la herida depende en gran medida de no infligir daños innecesarios a la piel durante la incisión. El protocolo se realizó en un estudio aleatorizado de 12 animales.

El propósito del protocolo es producir un SCI que paralizará las funciones motoras y sensoriales caudales a la lesión. Debido a que el axolotl es competente para la regeneración, restaura la función en cuestión de semanas, lo que permite a los investigadores estudiar la regeneración del SNC durante un corto período de tiempo.
Se proporcionó anestesia durante 45 minutos a todos los animales, y no se experimentaron episodios de recuperación prematura. Todos los animales se recuperaron ...

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Contusion Spinal Cord Injury via a Microsurgical Laminectomy in the Regenerative Axolotl

Este manuscrito presenta protocolos para infligir quirúrgicamente lesiones de médula espinal controladas y afiladas a un axolotl regenerativo (Ambystoma mexicanum).

Lesión de la médula espinal de la contusión a través de una laminectomía microquirúrgica en el Axolotl regenerativo

The purpose of this study is to establish a standardized and reproducible regenerative blunt spinal cord injury model in the axolotl (Ambystoma ...

Este protocolo es el primero en introducir una lesión estandarizada de tipo contusión en la investigación de regeneración de la médula espinal alotol. La principal ventaja de esta técnica es que imita el trauma visto en la clínica diaria, mejorando la probabilidad de que un hallazgo futuro sea capaz de ser traducido. El dispositivo de lesión por contusión se puede utilizar en cualquier otro modelo animal pequeño de lesión de la médula espinal.La técnica quirúrgica es difícil, especialmente la laminectomía. Por lo tanto, es aconsejable entrenar el procedimiento en un gran número de animales ex vivo antes de progresar a la cirugía in vivo. Para empezar, coloque una mesa quirúrgica colocando un plato Petri estándar bajo un microscopio estéreo, encima de un paño textil quirúrgico.Coloque el axolotl anestesiado en la posición propensa en el plato De Petri, y envuélvalo en toallas de papel para que la cola quede expuesta. Identifique las extremidades posteriores y use un par de micro tijeras para hacer que la primera incisión sea caudal para ellas. Haga la incisión vertical desde la quilla hasta que se sienta la prominencia ósea de los procesos espinosos.Extienda el corte lateralmente, de modo que la incisión recorra toda la anchura de la cola, y agarre los procesos espinosos con fórceps para asegurar una profundidad adecuada. A continuación, extienda la incisión vertical un milímetro por debajo del proceso espinoso en ambos lados. Colocar el animal en un lado, y a partir del punto ventral de la incisión vertical, hacer una incisión horizontal de aproximadamente 15 milímetros para los animales que son de 10 a 20 gramos de peso.Utilice las tijeras para diseccionar inmediatamente a través de la incisión horizontal hasta que la columna vertebral se sienta en la línea media. A continuación, encienda el animal hacia el otro lado y repita el proceso. Después de diseccionar en el plano medial profundo de ambos lados, disecciona a través de la línea media para conectar las dos incisiones horizontales.A continuación, mueva la pieza libre de cola y quilla a un lado para exponer los procesos espinosos. Coloque al animal en la posición propensa con la cabeza mirando hacia el lado no dominante del cirujano, y use un par de fórceps para agarrar los procesos espinosos, sólo caudal a las extremidades posteriores. Aplicar un suave levantamiento hacia arriba y hacia la cabeza del animal.Coloque las cuchillas de un par de micro tijeras horizontales alrededor del proceso y córtelo suavemente, exponiendo la médula espinal. Sujete el caudal del proceso espinoso al que acaba de quitar y repita el proceso. Es imperativo que mantenga una elevación constante en el proceso espinoso para asegurarse de que no inflija daño a la médula espinal cuando se retira.Si el área expuesta no es lo suficientemente ancha, utilice dos pares de fórceps para agarrar las láminas a ambos lados de la médula espinal y torcerlas lateralmente con un movimiento suave. Al quitar el proceso espinoso, puede ser necesario hacerlo en varios pasos. Por lo tanto, exponer la médula espinal puede tardar varios minutos.Para introducir una lesión de tipo contusión, utilice un plato de Petri para transferir al animal a la unidad de trauma y brille una linterna en la médula espinal. A continuación, coloque el cilindro de la unidad de trauma de contusión por encima de la médula espinal expuesta utilizando los microajustes, y baje el cilindro hasta que esté nivelado con las láminas. Fije la varilla que cae al electro imán y coloque el cilindro de ajuste de altura de caída deseado en la unidad de trauma.A continuación, coloque la varilla que cae en el cilindro, apague el electroimán para colocar la varilla en la médula espinal expuesta y utilice el tornillo de ajuste de altura para levantar la varilla hacia arriba. Si introduce una lesión aguda, corte la médula espinal en un corte vertical perfecto, luego repita los cortes de dos milímetros al lado caudal del cuerpo. Siente las cuchillas de las tijeras raspando a lo largo de la parte ventral del canal espinal para asegurar que los cortes estén completos, y levanta la pieza de la médula espinal del canal.Para cerrar la herida quirúrgica, coloque suturas de nylon de 10 puntos O de la parte más caudal de la incisión horizontal cerrando las heridas en una capa y trabajando hacia la parte vertical de la incisión. Cuando se alcance un ángulo, gire el plato de Petri y sutura la otra incisión horizontal, luego ajuste las suturas en las incisiones verticales. Antes de terminar la anestesia, utilice un ultrasonido de alta frecuencia para adquirir imágenes de la lesión.Alinee la punta del transductor con el eje de longitud del animal, y sumerja en la solución de benzocaína hasta que esté sólo unos pocos milímetros por encima de la quilla detrás de las extremidades posteriores del animal. Identifique el sitio de lesiones y adquiera imágenes de acuerdo con las instrucciones del manuscrito. Cuando haya terminado, devuelva el axolotl a la solución libre de anestesia sumergiendo el plato Petri en agua dulce de cinco centímetros de profundidad y dejando que el animal se deslice.Las lesiones de la médula espinal creadas con este protocolo fueron validadas usando hematoxilina y tinción de eosina en a los axilotls lesionados y falsos. Para confirmar la regeneración, se prepararon secciones histológicas nueve semanas después de la lesión. Las imágenes mostraron una conexión de la médula espinal restablecida en los animales heridos.Las lesiones y la regeneración también nos siguen examinando la función neurológica. La reacción del animal a la estimulación de la cola fue puntuada con puntuaciones más altas que indican funciones sensoriales táctiles y nociceptivas más altas. Entre los animales heridos, hubo una pérdida de la función neurológica tres semanas después de la lesión, y una restauración gradual dentro de nueve semanas.La lesión de la médula espinal también se visualizó utilizando imágenes gráficas ultrasónicas, lo que permitió la visualización de la arteria dorsal como un marcador de la integridad del vaso. Las resonancias magnéticas de campo se realizaron inmediatamente después de la lesión y a las tres, seis y nueve semanas. Estas exploraciones fueron capaces de visualizar el edema y la restauración de la integridad de la médula espinal.Los escaneos inmediatamente después de una lesión, eran propensos al ruido. La cirugía del paciente y la meticulosa allanarán el camino para un resultado exitoso después de la laminectomía sin daño prematuro a la médula espinal. Después de este procedimiento, se pueden aplicar varios métodos in vivo, como las técnicas de imagen y electrofisiológicas.

Research

JoVE Journal

Medicine

Acute and Chronic Tactile Sensory Testing after Spinal Cord Injury in Rats

Aguda y crónica Prueba sensorial táctil después de la lesión de la médula espinal en ratas

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Investigación

Medicina

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A Contusion Model of Severe Spinal Cord Injury in Rats

Un modelo Contusión de la lesión de la médula espinal severa en ratas

The translational potential of novel treatments should be investigated in severe spinal cord injury (SCI) contusion models. A detailed methodology is ...

Evaluation of Respiratory Muscle Activation Using Respiratory Motor Control Assessment (RMCA) in Individuals with Chronic Spinal Cord Injury

Evaluation of Respiratory Muscle Activation Using Respiratory Motor Control Assessment RMCA in Individuals with Chronic Spinal Cord Injury

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Controlado Modelo de Impacto cortical de la lesión cerebral traumática

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