Name: oligomerization dynamics of cell surface receptors in living cells by total internal reflection fluorescence microscopy combined with number and brightness analysis
Uploaded: 2019-11-06T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Oligomerization Dynamics of Cell Surface Receptors in Living Cells by Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy Combined with Number and Brightness An

CNICは、シエンシア省、イノバシオン・イ・ウニベルシダーデス、プロCNIC財団の支援を受けており、セベロ・オチョア・センター・オブ・エクセレンス(SEV-2015-0505)です。また、欧州地域開発基金(FEDER)「ウナ・マネラ・デ・ハーサー・エウロパ」の支援を受けています。UCは、アソシアツィオーネ・イタリアン・リケルカ・スル・カンクロ、国際がん研究協会(現在は世界がん研究)、イタリア保健省の支援を認めています。A.T.は、PVフェローシップ「プロゲット・プロイリタ・イヴァーノ・ベッキ」2011-2012で彼の作品を部分的にサポートした「フォンダツィオーネ・バンカ・デル・モンテ・ディ・ロンバルディア」を認めます。

1. サンプル調製
<ol><li>1日目。ガラス底皿の100,000-200,000細胞/mLの濃度で完全な培地中の種子HeLa細胞。シード6-8は料理を複製します。 注:この例では、培地は10%熱不活性化胎児ウシ血清(FBS)、1mMピルビン酸ナトリウム、100 U/100 μgペニシリン/ストレプトマイシンで補充される。いくつかの複製料理が用意されています。</li>
	<li>2-3日目。細胞が亜コンフルエンスの場合、タンパク?...

<ol>
	<li>Agwuegbo, U. C., Jonas, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+and+functional+insights+into+gonadotropin+hormone+receptor+dimerization+and+oligomerization.">Molecular and functional insights into gonadotropin hormone receptor dimerization and oligomerization.</a> Minerva Ginecologica. 70 (5), 539-548 (2018).</li><li>Ferre, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=G+protein-coupled+receptor+oligomerization+revisited:+functional+and+pharmacological+perspectives.">G protein-coupled receptor oligomerization revisited: functional and pharmacological perspectives.</a> Pharmacological Reviews. 66 (2), 413-434 (2014).</li><li>Marsango, S., Ward, R. 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P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+incidence+angle+for+through-the-objective+total+internal+reflection+fluorescence+microscopy.">Measuring incidence angle for through-the-objective total internal reflection fluorescence microscopy.</a> Journal of Biomedical Optics. 17 (12), 126007 (2012).</li><li>Trullo, A., Corti, V., Arza, E., Caiolfa, V. R., Zamai, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Application+limits+and+data+correction+in+number+of+molecules+and+brightness+analysis.">Application limits and data correction in number of molecules and brightness analysis.</a> Microscopy Research and Technique. 76 (11), 1135-1146 (2013).</li><li>Caiolfa, V. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monomer-dimer+dynamics+and+distribution+of+GPI-anchored+uPAR+are+determined+by+cell+surface+protein+assemblies.">Monomer-dimer dynamics and distribution of GPI-anchored uPAR are determined by cell surface protein assemblies.</a> Journal of Cell Biology. 179 (5), 1067-1082 (2007).</li><li>Campbell, R. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+monomeric+red+fluorescent+protein.">A monomeric red fluorescent protein.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (12), 7877-7882 (2002).</li><li>Cutrale, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+enhanced+number+and+brightness+to+measure+protein+oligomerization+dynamics+in+live+cells.">Using enhanced number and brightness to measure protein oligomerization dynamics in live cells.</a> Nature Protocols. 14 (2), 616-638 (2019).</li><li>Dunsing, V., Chiantia, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Fluorescence+Fluctuation+Spectroscopy+Assay+of+Protein-Protein+Interactions+at+Cell-Cell+Contacts.">A Fluorescence Fluctuation Spectroscopy Assay of Protein-Protein Interactions at Cell-Cell Contacts.</a> Journal of Visualized Experiments. (142), (2018).</li></ol>

N&B では、セル モデルとラベリング戦略を選択する際に、いくつかの予防措置が必要です。画像のキャプチャ時間中に安定して付着したままの生細胞にのみ適用できます。セル全体の剛性変位による余分な変動は、適切な画像復元アプローチ38で処理され得る。しかしながら、一般に細胞が移動すると、細胞膜も変形し、構造変形が起き、大きな余分な分散を生じ、膜タンパ...

我々は、受容体アセンブリの連結を目指し、生細胞の形質膜における受容体分子の平均オリゴマー状態を決定するための全内部反射蛍光数と輝度(TIRF-N&B)イメージングアプローチを記述する。タンパク質の生物学的機能に対するダイナミクス (図 1)
細胞外リガンド結合の際、受容体は、その立体構造、オリゴマー化、潜在的な共受容体および膜組成に応じて細胞内シグナル伝達を開始する。受容体オリゴマー化の重要性とユビキタス性にもかかわらず、細胞シグナル伝達1、2、3、4、5、6の重要な事象として認識される。 7、クラスタリングイベントを検出し、実験的にクラスタリングの程度を測定できる方法はほとんどありません。共焦点体積(x,y≥ 300 nm,z≥900 nm)は、分子相互作用および動物化測定を証明するために十分に解決されていないが、画像復元アルゴリズム10による最適化後も。タンパク質オリゴマーのサブユニット組成は、PALM11、STORM12、STED13などの20〜70nmのX、y分解能法であっても、純粋に空間的に分解することはできません。さらに、時間分解能 (画像あたりの分単位) は、秒単位のキネティクスに従うことはできません。単分子ステップ漂白は、それらが不動である場合にのみタンパク質オリゴマーのムチオメトリーを解決する。
単一画像内の蛍光タグ付きタンパク質の密度とオリゴマー化を測定する最も汎用性の高い方法の1つは、空間サンプリングに依存する空間強度分布解析(SpIDA)です。これは、化学的に固定された細胞と生細胞の両方に適用可能であり、標準蛍光顕微鏡15を用いて細胞の目的のいくつかの領域の分析を同時に可能にする。あるいは、蛍光相関分光法(FCS)16、フォトン計数ヒストグラム(PCH)17、数と明るさ(N&B)18、19などのモーメント法は、定量的オリゴマーに適している測定。これらの方法は、蛍光体が照明体積の間で拡散する時間内に観察できる蛍光強度変動を分析する。強度変動の振幅は、蛍光色素の分子輝度(ε)と照明音量17内の蛍光色素(n)の平均数によって一意に記述することができる(図2)。典型的には、蛍光体の拡散係数および照明容積内の分子の平均数(G(0)値に逆作用する)は、FCS20によって得ることができる。しかし、拡散時間は質量の立方根のみでスケールするので、FCSは分子量21の変化を検出するのに十分な感受性を持たない。実際には、単色FCSは膜受容体の二量体化を検出できない。PCHは異なるオリゴマーの混合物を正確に解決する。振幅分布の2回以上の瞬間を使用して、同じ照明ボリュームを占める異なる明るさの分子を検出します。分子輝度(pCOMB)アプローチ23の興味深い対相関などの走査FCS22および開発は、生物学的システムにおける蛍光相関法の適用範囲を広げるために導入された24、セルの広い領域での高速測定の能力を欠いている単一点法のままであり、各ピクセルで多くの連続した観測値を必要とし、秒単位でデータを取得する必要があります。
N&B は、蛍光分布の振幅の最初と 2 番目のモーメント、すなわち平均強度、、および分散 σ2 (図 2)18、19 のみを考慮する PCH の簡略化されたバージョンです。そして、そのために、混合物中の未知のオリゴマーのモル分率を決定することはできないが、混合物の平均オリゴマー化状態を推定するだけである。それにもかかわらず、N&Bは、蛍光強度の時間の変動を監視するだけで、PCHよりも比較的小さな時系列の生細胞画像をピクセル単位で操作できるという利点があります。N&B はピクセルあたりの時間を数マイクロ秒に短縮するため、大きなセル領域に対する高速オリゴマー化動態に従うことができ、ラスター スキャン顕微鏡 (共焦点、2 光子など) およびミリ秒で数秒のタイム スケールで画像を取得できます。カメラベースの顕微鏡検査(例えば、TIRFM)で。
いくつかの報告は、拡張細胞領域をイメージングすることによってタンパク質クラスター内のサブユニットの数を定量化するN&Bの能力を実証している。Paxillin-EGFPクラスターはCHO-K1細胞25の接着部位で検出され、かつ病原性Httex1pペプチドの細胞内凝集はCOS-7細胞26に記載した。N&Bは、ErbB受容体27のリガンド駆動オリゴマー化に続いて適用し、HeLa細胞28におけるクロトゴブ(KLB)およびFGFR1cに対するリガンドFGF21の効果を適用した。TIRFイメージングとN&B分析の組み合わせは、ダイナミン-2が主に細胞膜29全体にわたって四量体であることを示すために使用された。我々は、uPARおよびFGFR1細胞膜受容体30、31のリガンド駆動二量体化を証明するために、ラスタースキャンとTIRF画像の両方にN&Bを適用した。
N&B、FCS、PCHなどの蛍光相関法は、オープンボリュームでは粒子の職業数がポアソン分布に従るという概念に基づいています。蛍光体が放出するフォトンのみが検出できるので、画像のピクセルにおける測定された蛍光強度と時間の平均値は、<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq1.jpg">照明体積における蛍光体の平均数の積であり、n、分子輝度, ε17:
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq2.jpg">
ここで ε は、分子が照明ボリュームの中心にある場合に、分子あたりの時間単位あたりの光子の数 (従来は 1 秒あたり) として表されます。
明るさは、所定の取得設定における各蛍光色素の特性であり、強度はすべての蛍光色素からのすべての寄与の合計です。生物学的コンテストでは、一緒に変動するフルオロフォアの数の増加に伴って明るさが増加し、蛍光タグ付きタンパク質のオリゴマー化状態に関する情報が与られます。特定のピクセルの変動振幅は、蛍光シグナルσ2の分散から測定されます。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq3.jpg">
強度の二乗の平均、<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq4.jpg">および強度の平均の二乗は、<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq5.jpg">各フレームの各ピクセルの個々の強度値から計算されます。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq6.jpg">
ここで、Kは時系列の合計フレーム数です。実験的には、平均強度値の周囲の単一の画像の各ピクセルにおける個々の強度値の散乱を記述する分散を画像シリーズ全体に対して計算する必要があります。分散には、異なる原点のすべての変動が含まれます。第1近似では、照明体積中の拡散粒子による分散、σ20、検出器ショットノイズによる分散から分離することができる、σ2d。2 つの分散は独立しています。したがって、合計分散は合計で与えられます。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq7.jpg">
この分散は、検出体積の分子変動に起因して、分子の明るさと強度に直線的に依存します。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq8.jpg">
eq. 1 に従って eq. 6 を並べ替える:
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq9.jpg">
蛍光相関分光法における典型的な概念によれば、式7は、変動数による分散が粒子輝度の二乗に依存することを示す。
そして、検出器の変動による分散は、検出された強度の線形関数であり、検出器がその飽和限界19以下で動作することを前提とする。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq10.jpg">
フォトン計数検出器a=1 およびc=0 の場合、検出器の分散は平均強度と等しくなります。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq11.jpg">
これらの概念を生細胞の実際の測定値に適用するために、Gratton と同僚18は、各ピクセルの見かけの明るさ B を平均強度に対する分散の比率として定義します。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq12a.jpg">
Bは実験的に測定されるパラメータである。本研究では、HeLa細胞の形質膜におけるFGFR1受容体の時系列画像をTIRF顕微鏡で捉え、平均見かけ明るさBをN&B分析により決定する。次いで、FGF2を添加した後、公索リガンドによる受容体の刺激後の膜表面における受容体分子の自己集合の変化に従って連続した時系列が捕捉される。
しかし、TIRF顕微鏡の検出器はEMCCDカメラであるため、見かけの明るさの発現を19として変更する必要があります。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq13a.jpg">
ここで、オフセットは検出器設定の特性である検出エレクトロニクスの強度オフセットです。アナログ検出器の分散と平均強度は、それぞれ次のように求められています。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq14a.jpg">
ここで、Gはデジタルレベル(DL/フォトン)のアナログゲインであり、S、フォトン19あたりのデジタルレベルは、一定の強度(時間的変動なし)を持つ光源の強度対分散プロットの傾きによって与えられます。γ因子は、画素検出ボリュームの形状に関連する。Hassler et al.32によれば、γ因子は、検出カメラ19の最大ゲインで動作するTIRFイメージングに対して0.3に等しい。オフセット、SおよびGパラメータは、カメラおよび顕微鏡の特性である。見かけの明るさBは、eq. 12および13に従ってeq. 11を並べ替えることによって得られる。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq15.jpg">
実験的には、εはレーザー強度とシステムの検出効率の複雑な関数です。それにもかかわらず、B/Sはεに直線的に依存しているため、特定の検出モードのεの相対値を決定することが重要です。
<img src="/files/ftp_upload/60398/60398eq16.jpg">
ここでε'は ε に比例します。それでも、キャリブレーションは内部参照を使用して実行されます。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-Colour Fast TIRF Leica AM TIRF MC inverted microscope, with smi-automatic TIRF alignment. The microscope is equipped with a diode 488 nm laser, a 100x1.46 oil TIRF objective, Ex/Em Bandpass filters at 490/20 and 525/50, temperature/CO2 incubator and Andor DU 8285 VP EMCCD camera. The microscope is operated by Leica LIF software.</td>
			<td>Leica Microsystems, Wetzlar, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Albumin from Bovine Serum 98% minimun</td>
			<td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MI, USA</td>
			<td>A7906-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM without Phenol Red with 25 mM HEPES</td>
			<td>GIBCO Thermo Fisher Scientific,Waltham, MA, USA</td>
			<td>21063029</td>
			<td>Used serum free for microscopy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM high-glucose GlutaMAX I</td>
			<td>GIBCO Thermo Fisher Scientific,Waltham, MA, USA</td>
			<td>10566-016</td>
			<td>Used for complete medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#39;s Phosphate Buffered Saline 10x (PBS)</td>
			<td>Biowest, Nuaill&#233;, France</td>
			<td>X0515-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Emission splitting system Photometrics DV2</td>
			<td>TeledynePhotometrics, Tucson, AZ, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum, qualified, Brazil</td>
			<td>GIBCO Thermo Fisher Scientific,Waltham, MA, USA</td>
			<td>10270106</td>
			<td>10% inactivated supplement for complete medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottom 35-mm sterile 1.5 dishes</td>
			<td>MatTek, Ashland, MA, USA</td>
			<td>P35G-0.170-14-C</td>
			<td>uncoated, glass thickness 0.17 microns</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GraphPad Prism</td>
			<td>GraphPad Software Inc., San Diego, CA, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human cervical carcinoma (HeLa), serum-free animal component (AC) cells</td>
			<td>Millipore-Sigma ECACC, Darmstadt, Germany</td>
			<td>CB_08011102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iXonEM+ 897 EMCCD (back-illuminated) ANDOR camera controlled by ANDOR Solis software</td>
			<td>Oxford Instruments, Andor TM Technology, Abingdon-on-Thames, UK</td>
			<td></td>
			<td>This camera, installed in an additional port of the microscope, is used for acquiring the N&#38;B time series</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matlab Executable N&#38;B routine</td>
			<td>Unit of Microscopy and Dynamic Imaging, CNIC, Madrid, Spain</td>
			<td></td>
			<td>download at https://www.cnic.es/en/investigacion/2/1187/tecnologia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MatLab v.2018b</td>
			<td>The MathWorks, Inc. Natick, MA, USA</td>
			<td></td>
			<td><a href="https://www.mathworks.com/products/matlab.html">download at https://www.mathworks.com/products/matlab.html</a></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin:Streptomycin for tissue culture 100x</td>
			<td>Biowhittaker Inc. Walkersville, MD, USA</td>
			<td>LONZA 17-602E</td>
			<td>supplement for medium at Penicillin/Streptomycin 100U/100&#181;g.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pN1-mEGFP-FGFR1 expression vector</td>
			<td>Unit of Gynecological Oncology Research, European Institute of Oncology IRCCS, Milan, Italy</td>
			<td></td>
			<td>Zamai et al., 2019</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pN1-N-Gly-mEGFP-GPI expression vector</td>
			<td>Unit of Microscopy and Dynamic Imaging, CNIC, Madrid, Spain</td>
			<td></td>
			<td>Hellriegel et al., 2011</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pN1-N-Gly-mEGFP-mEGFP-GPI expression vector</td>
			<td>Unit of Microscopy and Dynamic Imaging, CNIC, Madrid, Spain</td>
			<td></td>
			<td>Hellriegel et al., 2011</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recombinant FGF2</td>
			<td>PeproTech EC, Ltd., London, UK</td>
			<td></td>
			<td>Ligand solution: 20ng/mL of FGF2 in PBS supplemented with 0.01%BSA.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium pyruvate GIBCO</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>11360070</td>
			<td>1mM supplement for medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TransIt-LT1 Transfection Reagent</td>
			<td>MirusBio LLC, Madison, WI, USA</td>
			<td>MIR 2300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red</td>
			<td>GIBCO Thermo Fisher Scientific,Waltham, MA, USA</td>
			<td>25200056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Type F Immersion liquid 10 mL</td>
			<td>Leica Microsystems, Wetzlar, Germany</td>
			<td>11513 859</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UltraPure BSA (50 mg/mL)</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>AM2618</td>
			<td>0.1% supplement for medium without phenol red used for transfections</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

oligomerization dynamics of cell surface receptors in living cells by total internal reflection fluorescence microscopy combined with number and brightness analysis

受容体オリゴマー化の重要性とユビキタスにもかかわらず、クラスタリングイベントを検出し、クラスタリングの程度を測定するための方法はほとんどありません。ここでは、生細胞の膜におけるMEGFPタグ付き受容体ホモ複合体の平均オリゴマー状態を決定するイメージングアプローチについて説明する。このプロトコルは、数と明るさ(N&B)分析と組み合わせた全内部反射蛍光(TIRF)顕微鏡に基づいています。N&Bは、蛍光相関分光法(FCS)および光子計数ヒストグラム(PCH)に似た方法で、照明の中で拡散する蛍光強度の変動の統計的分析に基づいています。観測時間中の体積。特に、N&BはPCHの簡素化であり、オリゴマー混合物中のタンパク質の平均数に関する情報を得る。強度変動振幅は、蛍光色素の分子輝度と照明体積内の蛍光色素の平均数によって記述される。したがって、N&Bは振幅分布の第1と第2のモーメント、すなわち平均強度と分散のみを考慮します。これは、同時に、方法の強さと弱さである。2つの瞬間しか考慮されないため、N&Bは混合物中の未知のオリゴマーのモル分率を決定することはできませんが、混合物の平均オリゴマー化状態を推定するだけです。それにもかかわらず、蛍光強度の時間変動を監視するだけで、生細胞の画像の比較的小さな時系列(他のモーメント法と比較して)にピクセル単位で適用することができます。ピクセルあたりの有効時間を数マイクロ秒に短縮し、高速オリゴマー化動態に必要な秒からミリ秒までの時間範囲での取得を可能にします。最後に、大きな細胞領域と細胞下コンパートメントを探索することができます。

同じ培養皿に播種された2つの代表的なHeLa-mEGFP-FGFR1細胞の結果を図5および補足表1に示す。2つの細胞は、FGF2リガンドを添加した後、時間0分(図5A、上)および7分(図5A、下)で捕捉した。
図5はまた、...

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Oligomerization Dynamics of Cell Surface Receptors in Living Cells by Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy Combined with Number and Brightness Analysis

生細胞の形質膜におけるリガンド結合によって誘導されるmEGFPタグ付き受容体オリゴマーの平均オリゴマー状態の測定のためのイメージングアプローチについて説明する。このプロトコルは、数と明るさ(N&B)分析と組み合わせた全内部反射蛍光(TIRF)顕微鏡に基づいています。

数と明るさの分析と組み合わせた全内部反射蛍光顕微鏡による生細胞における細胞表面受容体のオリゴマー化ダイナミクス

Despite the importance and ubiquity of receptor oligomerization, few methods are applicable for detecting clustering events and measuring the degree of ...

受容体クラスタリングは、遍在しており、カスケード活性化のシグナル伝達に必要な場合が多い。ただし、クラスタリングの程度を測定する方法はほとんどありません。我々は、全内部反射蛍光、TIRF顕微鏡を使用して、生細胞の原形質膜中のFGFR1-mEGFP分子の拡散に従う。次に、N&B分析という数値輝度を適用して、刺激された受容体クラスタリングのダイナミクスを記述します。TIRFは、細胞表面付近で発生する分子事象の迅速な時間的イメージングに最適であり、N&Bは顕微鏡の照射量の拡散に基づいて蛍光分子の平均オリゴマー状態を決定します。実際、これは、シグナル伝達している細胞表面における受容体の空間的時間的組織を接続するツールである。N&Bは、高速取得モジュールを備えた顕微鏡へのアクセスのみを必要とします。蛍光変動法の基礎知識を有する生細胞の広い領域を解析することができます。この方法は、ダイマーまたはクラスターを形成するタンパク質に適用することができ、蛍光色素でストイチオを測定的に標識することができます。タンパク質が細胞内区画内にある場合、他のタイプの顕微鏡が画像の取得に使用されます。純粋な単量体の明るさをコントロールとして実験条件下で測定するためのフルオロフォアの単量体形態を発現する構成体を作製することが重要である。初日には、完全培地の1.5ミリリットルのHeLa細胞を100,000〜200,000個の濃度でガラス底皿に種付けします。種子6〜8は皿を複製し、摂氏37度でインキュベーターでインキュベートします。2日目または3日目に、細胞は亜調合に達している。皿の半分にタンパク質プラスミドを含む無血清培地を加え、モノマーとダイマーを含む参照プラスミドを皿の後半に加え、細胞をトランスフェクトします。1日後、トランスフェクトされた細胞が皿の底に付着しており、細胞膜が蛍光であることを確認してください。生い茂った細胞や蛍光が非常に低い料理を捨てます。実験の4時間前に、37°Cで顕微鏡の温度インキュベーターを活性化する。顕微鏡、コンピュータ、カメラの電源を入れ、カメラがマイナス75°Cの適切な動作温度に達するのを待ちます。対物レンズに少量の油を入れます。サンプル皿を顕微鏡のインキュベーターに入れ、インキュベーターのドアを閉めて、皿の温度を10分間平衡させます。蛍光灯と488ナノメートルレーザーをオンにします。眼球のコントラストモードを選択してサンプルを探索し、眼レンズから焦点を合わせる細胞を探索します。バンドパスEx 490/20 500とバンドパスEm 525/ 50または同様の顕微鏡カメラを介して緑の放出を収集するための適切なフィルタを選択します。眼球からカムレポートに蛍光モードで切り替えます。フォーカスを絞り込み、TIRF モードに変更します。次に、TIRF顕微鏡の指示に従って自動位置合わせを有効にします。適切な照明深さを選択し、エバネッセントフィールドの方向を最適化します。2 つ目のカメラに切り替えます。256 x 256 ピクセル以上の対象領域を定義します。露出を 1 ミリ秒に設定し、EM ゲインを 1,000 に設定します。レーザーパワーを0.5ミリワットに調整します。露光時間は、発光体積の蛍光分子が費やした平均時間よりも短くなければならないので、タンパク質の拡散係数に関する情報を持っている必要があります。最初のトライアルシーケンスを初期条件で実行し、信号対雑音値を概算します。この条件は、最初の時系列で測定された2~3以上の信号対雑音で許容されます。次に、カメラナンバー2を顕微鏡に接続する発光分割システムのスライダーを使用して、画像の側面をマスキングします。カメラファイルの自動保存オプションを選択します。最小信号対雑音比 2 で、最小 700 フレームのイメージシリーズの取得を開始します。顕微鏡から皿を取り出さずに、リガンドを加えます。明るい蛍光膜を持つ細胞を選択し、迅速に運動走行の最初の時系列を開始します。第2の細胞を探索し、運動の第2の時点を取得する。キネティックランの各時点の新しいセルをキャプチャします。新しい皿ごとに、レーザーラインのアライメントとTIRF照明の最適化を繰り返します。今、変換し、tifファイルとしてカメラソフトウェアで取得した画像ファイルを保存します。N&Bグラフィカルユーザのフェーズ間MATLABを起動して、分析ソフトウェアルーチンにtifファイルをインポートします。平均強度プロファイルが10%以上の光漂白を示すシリーズと、取得中に明らかな細胞膜歪みや翻訳があったシリーズを破棄する。明らかに焦点が合っていないクロップフレーム。少なくとも500時間枠での分析シリーズのみを維持します。まず、カメラパラメータを決定します。ルーチンキャリブレーションカメラをアクティブにします。検出器のノイズ領域で、少なくとも20 x 50ピクセルの領域を選択します。対数周波数とデジタルレベルのプロットでは、曲線の直線部分でガウスを区切るために、線形赤いカーソルを動かします。B キーをアクティブにします。最小ビン分割を 2.2 にして、データの分散を減らし、B-I ヒストグラムを生成します。反復的な正方形カーソルを使用して、B-I ヒストグラムを検査します。解析に対して四角い ROI を選択し、選択した ROI の B マップを生成します。次に、選択に関連付けられた B 値の ASCII ファイルを保存します。ASCII をグラフィックス ソフトウェアにインポートしてデータの周波数分布を計算し、平均 B 値のプラスまたはマイナス S.E を取得します。正規化式に従ってデータを正規化し、ここでB'tはリガンド添加後の時間tで測定された平均B値、B'0は、リガンド・アディティーノの10~20秒後の時点で測定された平均B値である。正規化された平均輝度と取得時間をプロットして、運動走行を構築します。本研究では、0時および7時に捕捉されたmEGFP-FGR1を発現する同じ皿中の2つのHeLa細胞からの代表的な結果が、FGF2の1ミリリットル当たり20ナノグラムを添加した後、ここに示されている。参照構成体、GPI-mEGFPおよびGPI-mEGFP-mEGFPダイマーと比較して、全体の分析シーケンスは、時系列の平均強度を示す。すべての B 値のプロット。B-Iヒストグラム。選択した ROI の B マップ。そして、関連するB分布ヒストグラム。FGF2の1ミリリットル当たり20ナノグラムで刺激した後、時間の関数としての平均明るさを示す代表的な運動走行は、細胞表面で数分間持続する二量体化の遅いプロセスを記述する。NCAM-Fcのミリリットル当たり50マイクログラムで刺激されると、運動プロファイルはオリゴマー混合物中の受容体の速く、周期的な転移を明らかにし、これはまたダイマーのそれ以上の明るさの値に達する。正規化された平均値が3個繰り返し観察される。分子の変動や漂白が無いため、余分な変異体を最小限に抑えることが重要です。そして、細胞はガラス底の皿によく付着し、生い茂らず、積み重なってはならない。細胞内コンパートメント内でより速く拡散するタンパク質に興味がある場合は、より速いゼロ回を適用し、焦点顕微鏡または多光子顕微鏡でスキャンを使用して細胞内の画像を撮影することができます。我々のアプローチでは、二量化などの事象のダイナミクスを探求する際に、光漂白の有害な影響を最小限に抑えます。これらのイベントは、細胞の応答の様々な制御し、他の技術とライブ細胞で証明することは非常に困難です.

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