Name: a reversible silicon oil-induced ocular hypertension model in mice
Uploaded: 2019-11-15T10:00:00
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Questo lavoro è supportato dalle sovvenzioni NIH EY024932, EY023295 ed EY028106 a YH.

Tutte le procedure sono state approvate dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) della Stanford University.
1. Induzione dell'ipertensione oculare mediante iniezione intracamerale di SO
<ol><li>Preparare una micropipetta di vetro per l'iniezione intracamerale SO tirando un capillare di vetro con un tiratore pipetta per generare una micropipetta. Tagliare un'apertura sulla punta della micropipetta e affilare ulteriormente la punta con una macchina a sferzatura microgrinder per...

<ol>
	<li>Chang, E. E., Goldberg, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Glaucoma+2.0:+neuroprotection,+neuroregeneration,+neuroenhancement.">Glaucoma 2.0: neuroprotection, neuroregeneration, neuroenhancement.</a> Ophthalmology. 119 (5), 979-986 (2012).</li><li>Tham, Y. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+prevalence+of+glaucoma+and+projections+of+glaucoma+burden+through+2040:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Global prevalence of glaucoma and projections of glaucoma burden through 2040: a systematic review and meta-analysis.</a> Ophthalmology. 121 (11), 2081-2090 (2014).</li><li>Pang, I. H., Clark, A. 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W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+retinal+ganglion+cell+death+and+glaucoma.">Mouse models of retinal ganglion cell death and glaucoma.</a> Experimental Eye Research. 88 (4), 816-824 (2009).</li><li>Chen, S., Zhang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Rodent+Model+of+Glaucoma+and+Its+Implications.">The Rodent Model of Glaucoma and Its Implications.</a> Asia Pacific Journal of Ophthalmology (Philadelphia). 4 (4), 236-241 (2015).</li><li>Sappington, R. M., Carlson, B. J., Crish, S. D., Calkins, D. 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M., Caprioli, J., Piri, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA+binding+protein+with+multiple+splicing:+a+new+marker+for+retinal+ganglion+cells.">RNA binding protein with multiple splicing: a new marker for retinal ganglion cells.</a> Investigative Ophthalmology and Visual Science. 51 (2), 1052-1058 (2010).</li><li>Rodriguez, A. R., de Sevilla Muller, L. P., Brecha, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+RNA+binding+protein+RBPMS+is+a+selective+marker+of+ganglion+cells+in+the+mammalian+retina.">The RNA binding protein RBPMS is a selective marker of ganglion cells in the mammalian retina.</a> Journal of Comparative Neurology. 522 (6), 1411-1443 (2014).</li><li>Smith, R. 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Qui dimostriamo una procedura semplice ma efficace per indurre l'elevazione prolungata di IOP nell'occhio del mouse mediante iniezione intracamerale di SO. Questa procedura può essere appresa rapidamente da chiunque abbia esperienza nella microdissezione al microscopio. Il rischio potenziale primario di fallimento è la perdita di SO dall'incisione corneale. Tuttavia, uno dei vantaggi dell'utilizzo di SO è che, poiché la goccia d'olio è visibile e misurabile, possiamo facilmente identificare i topi che hanno ricevuto...

La progressiva perdita di cellule gangliari retiniche (RGC) e dei loro assoni è il segno distintivo del glaucoma, una malattia neurodegenerativa comune nella retina1. Colpisce più di 100 milioni di individui di età superiore ai 40-80 anni entro il 20402. L'IOP rimane l'unico fattore di rischio modificabile nello sviluppo e nella progressione del glaucoma. Per esplorare la patogenesi, la progressione e i potenziali trattamenti del glaucoma, è imperativo un modello sperimentale affidabile, riproducibile e inducibile di ipertensione/glaucoma sperimentale.
IOP dipende dall'afflusso di umorismo acquoso alla camera anteriore dal corpo ciliario nella camera posteriore e dal deflusso attraverso la mesh trabecolare (TM) all'angolo della camera anteriore. Al raggiungimento di uno stato stabile, IOP viene mantenuto. Quando il flusso in ingresso supera o è inferiore al deflusso, IOP aumenta o scende rispettivamente. Diminuendo il deflusso acquoso sia occludendo l'angolo della camera anteriore o danneggiando la TM, diversi modelli di glaucoma sono stati stabiliti3,4,5,6,7,8,9,10. Questi modelli sono normalmente associati a danni irreversibili ai tessuti oculari, e l'alto IOP nella camera anteriore causa anche complicazioni indesiderate come l'edema corneale e l'infiammazione intraoculare, che rendono difficile eseguire e interpretare l'imaging retinico e i saggi delle funzioni visive.
Per sviluppare un modello che superi queste carenze, ci siamo concentrati sul glaucoma secondario ben dichiarato causato dall'olio di silicone (SO) che si verifica come una complicanza postoperatoria della chirurgia vitreoretinica umana11,12. SO è usato come tamponadio in interventi chirurgici alla retina a causa della sua alta tensione superficiale. Tuttavia, SO può fisicamente occludere la pupilla perché è più leggera dei fluidi acquosi e vitrei, che impedisce il flusso acquoso nella camera anteriore. L'ostruzione causa l'elevazione di IOP nella camera posteriore a causa dell'accumulo di umorismo acquoso. Questo ci ha motivati a sviluppare e caratterizzare un nuovo modello di topo di ipertensione oculare basato su iniezione intracamerale SO e blocco pupillare13, con caratteristiche chiave del glaucoma secondario: blocco pupillare efficace, significativa elevazione IOP che può tornare alla normalità dopo la rimozione di SO, e neurodegenerazione glaucomatous.
Qui presentiamo un protocollo dettagliato per l'ipertensione oculare indotta da SO nell'occhio del topo, tra cui l'iniezione e la rimozione di SO e la misurazione IOP.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:915px;" width="915">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">0.5% proparacaine hydrochloride</td>
			<td style="width:232px;">Akorn, Somerset</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td style="width:279px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">10mL syinge</td>
			<td style="width:232px;">BD</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td>Luer-Lok Tip</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:26px;">18G needle</td>
			<td style="width:232px;">BD</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td>with Regular Bevel, Needle Length:25.4 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">2,2,2-Tribromoethanol (Avertin)</td>
			<td style="width:232px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:147px;">CAS# 75-80-9</td>
			<td>50g</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">32G nano</td>
			<td style="width:232px;">BD</td>
			<td style="width:147px;">320122</td>
			<td>BD Nano Ultra Fine Pen Needle-32G 4mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">33G ophalmology needle</td>
			<td style="width:232px;">TSK/ VWR</td>
			<td style="width:147px;">TSK3313/ 10147-200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">5mL syinge</td>
			<td style="width:232px;">BD</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td>Luer-Lok Tip</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">AnaSed Injection (xylazine)</td>
			<td style="width:232px;">Butler Schein</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td>100 mg/ml, 50 ml</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">artificial tears</td>
			<td style="width:232px;">Alcon Laboratories</td>
			<td style="width:147px;">300651431414</td>
			<td>Systane Ultra Lubricant Eye Drops</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;">BSS PLUS Irrigating solution</td>
			<td style="width:232px;">Alcon Laboratories</td>
			<td style="width:147px;">65080050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Dual-Stage Glass Micropipette Puller</td>
			<td style="width:232px;">NARISHIGE</td>
			<td style="width:147px;">PC-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:257px;">EZ-7000 Classic System</td>
			<td style="width:232px;">EZ system</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:232px;">VetOne</td>
			<td style="width:147px;">502017</td>
			<td>isoflurane, USP, 250ml/bottle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">IV Administration sets</td>
			<td style="width:232px;">EXELint/ Fisher</td>
			<td style="width:147px;">29081</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">KETAMINE HYDROCHLORIDE INJECTION</td>
			<td style="width:232px;">VEDCO</td>
			<td style="width:147px;">50989-996-06</td>
			<td>KETAVED 100mg/ml * 10ml</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">microgrind bevelling machine</td>
			<td style="width:232px;">NARISHIGE</td>
			<td style="width:147px;">EG-401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">Miniature EVA Tubing</td>
			<td style="width:232px;">McMaster-Carr</td>
			<td style="width:147px;">1883T4</td>
			<td>0.05&#34; ID, 0.09&#34; OD, 10 ft. Length</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">silicon oil (SILIKON)</td>
			<td style="width:232px;">Alcon Laboratories</td>
			<td style="width:147px;">8065601185</td>
			<td>1,000 mPa.s</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">Standard Glass Capillaries</td>
			<td style="width:232px;">WPI/ Fisher</td>
			<td style="width:147px;">1B150-4</td>
			<td>4 in. (100mm) OD 1.5mm ID 0.84mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">TonoLab tonometer</td>
			<td style="width:232px;">Colonial Medical Supply, Finland</td>
			<td style="width:147px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:257px;">veterinary antibiotic ointment</td>
			<td style="width:232px;">Dechra Veterinary</td>
			<td style="width:147px;">1223RX</td>
			<td>BNP ophthalmic ointment, Vetropolycin</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a reversible silicon oil-induced ocular hypertension model in mice

L'elevata pressione intraoculare (IOP) è un fattore di rischio ben documentato per il glaucoma. Qui descriviamo un nuovo metodo efficace per indurre costantemente l'elevazione stabile dell'IOP nei topi che imita la complicazione post-operatoria dell'uso dell'olio di silicone (SO) come agente tamponamento nella chirurgia vitreoretinica umana. In questo protocollo, SO viene iniettato nella camera anteriore dell'occhio del mouse per bloccare la pupilla e prevenire l'afflusso di umorismo acquoso. La camera posteriore accumula umorismo acquoso e questo a sua volta aumenta l'IOP del segmento posteriore. Una singola iniezione di SO produce un'altitudine IOP affidabile, sufficiente e stabile, che induce una significativa neurodegenerazione glaucomatosa. Questo modello è una vera replica del glaucoma secondario nella clinica oculistica. Per imitare ulteriormente l'ambiente clinico, SO può essere rimosso dalla camera anteriore per riaprire il percorso di drenaggio e consentire l'afflusso di umorismo acquoso, che viene drenato attraverso la rete trabecolare (TM) all'angolo della camera anteriore. Poiché IOP torna rapidamente alla normalità, il modello può essere utilizzato per testare l'effetto dell'abbassamento di IOP sulle cellule gangliari della retina glaucomatous. Questo metodo è semplice, non richiede attrezzature speciali o procedure di ripetizione, simula da vicino situazioni cliniche e può essere applicabile a diverse specie animali. Tuttavia, potrebbero essere necessarie modifiche minori.

Subito dopo l'iniezione possiamo facilmente identificare i topi che non producono ipertensione oculare stabile a causa delle goccioline SO troppo piccole (1,5 mm)13. Questi animali sono esclusi dai successivi esperimenti. Dopo le procedure di iniezione, più dell'80% dei topi so iniettati finisce con goccioline più grandi di 1,6 mm. Abbiamo misurato l'IOP di questi occhi del topo una volta alla settimana per 8 settimane dopo una singola iniezione SO. L'IOP dell'occhio che riceve SO è rimasto alt...

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A Reversible Silicon Oil-Induced Ocular Hypertension Model in Mice

Qui, presentiamo un protocollo per indurre ipertensione oculare e neurodegenerazione glaucomatosa negli occhi del topo mediante iniezione intracamerale di olio di silicone e la procedura per la rimozione dell'olio di silicone dalla camera anteriore per restituire una pressione intraoculare elevata a Normale.

Un modello di ipertensione oculare indotta da olio di silicone reversibile nei topi

Elevated intraocular pressure (IOP) is a well-documented risk factor for glaucoma. Here we describe a novel, effective method for consistently inducing ...

Il glaucoma è la principale causa di cecità irreversibile, caratterizzata dalla morte delle cellule gangliari retiniche e dall'opto-neurodegenerazione. L'elevazione della pressione intraoculare, chiamata anche ipertensione oculare, è il fattore di rischio più riconosciuto per il glaucoma. Un modello di ipertensione oculare semplice ma efficace negli animali da esperimento come i topi è importante per indagare i glaucometri nella neurodegenerazione e testare il trattamento per la neuroprotezione.Pertanto, con i risultati, sviluppiamo un modello di ipertensione oculare del topo che imita da vicino il glaucoma secondario osservato nei pazienti umani. Questo modello replica fedelmente il glaucoma secondario causato dall'olio di silicone indotto per il blocco pupillare. La procedura è semplice l'elevazione IOP è stabile, e se la neurodegenerazione associata all'ipertensione oculare è grave negli occhi del topo, ancora più importante, l'ipertensione oculare è reversibile perché l'olio di silicone può essere facilmente rimosso dagli occhi del topo.A dimostrare la procedura sarà il dottor Fang Fang, un tizio post-operatorio del mio laboratorio. Per iniziare, fare una micropipetta di vetro per l'iniezione intracamerale di olio di silicone tirando un capillare di vetro con un estrattore di pipetta. Tagliare un'apertura sulla punta della micropipetta e affilare la punta utilizzando una smussatura a micro-smerigliatrice per realizzare una smussatura da 35 a 40 gradi.Lucidare i bordi della smussatura e lavarla con acqua per rimuovere tutti i detriti. Autoclavare la micropipetta prima dell'uso. Per preparare l'ago di paracentesi per l'ingresso corneale, attaccare un ago calibro 32 a una siringa da cinque millilitri su una serratura di esca e fissarlo ulteriormente con del nastro adesivo.Piegare la punta smussata dell'ago, a faccia in su, a 30 gradi. Per preparare l'iniettore di olio di silicone, attaccare e fissare un ago contundente calibro 18 su una siringa da 10 millilitri. Quindi attaccare un tubo di plastica con l'ago calibro 18 su un'estremità e riempire con olio di silicone se necessario attraverso l'altra estremità.Dopo aver anestetizzante un topo 6J nero C57 di nove-10 settimane, controlla la mancanza di risposta al dito del piedino con la mancanza di movimento dei baffi o della coda. Posizionare il mouse in posizione laterale su una piattaforma chirurgica. Applicare una goccia di cloridrato di proparacaina al 5% sulla cornea prima dell'iniezione per ridurne la sensibilità durante la procedura.Utilizzare l'ago di paracentesi calibro 32 per fare un'incisione di ingresso al quadrante super temporale a circa 5 millimetri dal limbo. Tunnel attraverso gli strati della cornea per circa 3 millimetri prima di penetrare nella camera anteriore, facendo attenzione a non toccare l'obiettivo o l'iride. Ritirare lentamente l'ago per rilasciare circa uno o due microlitri di umorismo acquoso dalla camera anteriore attraverso il tunnel e attendere circa otto minuti per ridurre ulteriormente la pressione intraoculare.Misurare l'occhio di controllo contralaterale per determinare la pressione. Inserire la micropipetta di vetro precaricata con olio di silicone attraverso il tunnel corneale nella camera anteriore con la smussatura rivolta verso il basso nella superficie del diaframma. Spingere lentamente lo stantuffo della siringa per iniettare olio di silicone nella camera anteriore fino a quando la goccia d'olio copre la maggior parte della superficie dell'iride, di circa 2,3-2,4 millimetri di diametro.Lasciare la micropipetta nella camera anteriore per altri 10 secondi prima di ritirarla lentamente. Spingere delicatamente la palpebra superiore per chiudere l'incisione della cornea per ridurre al minimo la perdita di olio di silicone. E poi applicare un unguento antibiotico sulla superficie oculare.Tenere il mouse sulla pastiglia di riscaldamento fino a quando non viene completamente recuperato dall'anestesia. Per rimuovere l'olio di silicone dalla camera anteriore, anestetizzare il mouse e quindi verificare la mancanza di risposta al dito del piedino per determinare la forza anestetica e la mancanza di movimento dei baffi o della coda. Posizionare il mouse su una piattaforma chirurgica e fissarlo in posizione laterale con nastro adesivo.Applicare una goccia di cloridrato di proparacaina al 5% sulla cornea per ridurne la sensibilità. Utilizzando l'ago di paracentesi prefatti calibro 32, fare due incisioni nel quadrante temporale della cornea tra le due e le cinque circa sul bordo della goccia di olio di silicone. Inserire un ago di irrigazione calibro 33 collegato a una soluzione irrigua attraverso un'incisione corneale alla massima velocità.Inserire un altro ago di drenaggio calibro 33 attaccato alla siringa senza pistone attraverso l'altra incisione corneale per consentire alla goccia di olio di silicone di uscire dalla camera anteriore mentre si irriga con soluzione irrigata. Ritirare l'ago di drenaggio quindi l'ago di irrigazione. Utilizzare una micropipetta di vetro collegata a una siringa Hamilton per iniettare una bolla d'aria nella camera anteriore per mantenere la sua profondità normale e premere per chiudere l'incisione corneale.Applicare unguento antibiotico su entrambi gli occhi e tenere il mouse sul tampone di recupero del riscaldamento fino a quando non è completamente recuperato dall'anestesia. Posizionare il mouse in una camera di induzione. Anestetizzarlo come descritto nel manoscritto e mantenere la sua cornea umida applicando lacrime artificiali durante tutta la procedura.Attendere circa 15 minuti per consentire all'alunno di dilatarsi completamente. Misurare l'IOP di entrambi gli occhi utilizzando un tonometro in base alle istruzioni del prodotto. Portare il tonometro vicino all'occhio del mouse, mantenendo la distanza dalla punta della sonda alla cornea del topo a circa tre o quattro millimetri.Premere il pulsante di misurazione sei volte per generare una lettura e ottenere tre letture generate dalla macchina da ogni occhio per acquisire l'IOP medio. Eseguire l'immunoistochimica delle cellule gangli retiniche retiniche a montaggio intero contando sezioni semisottili del nervo ottico e quantificando gli assoni sopravvissuti sugli animali sacrificati otto settimane dopo l'iniezione di olio di silicone. La pressione intraoculare degli occhi del topo con goccioline di olio di silicone superiori a 1,6 millimetri è stata misurata una volta alla settimana per otto settimane, dopo una singola iniezione di olio di silicone.La pressione dell'occhio che riceve l'olio è rimasta alta, per lo più il doppio della pressione dell'occhio di controllo conlaterale che indica un efficace blocco della pupilla. In un altro gruppo di topi, l'olio di silicone è stato lavato dalla camera anteriore due settimane dopo l'iniezione. Dopo aver aspettato una settimana per consentire alla cornea di riprendersi, la pressione intraoculare è tornata alla normalità, la stessa dell'occhio di controllo.Per determinare gli effetti dell'ipotensione oculare indotta dall'olio di silicone sulle cellule gangliari retiniche, i somi sopravvissuti nelle regioni periferiche dei supporti integrali retinali sono stati quantificati dalla colorazione RBPMS che mostra una drammatica morte cellulare ganglionare retinica dopo l'iniezione di olio di silicone. Gli assoni sopravvissuti nelle sezioni trasversali semisottile del nervo ottico sono stati quantificati dalla colorazione PBD otto settimane dopo l'iniezione. C'è stata una grande degenerazione dell'assone nell'ipertensione oculare indotta da olio di silicone.Gli animali possono essere coniati con SLOOCT per determinare il cambiamento nella retina. Anche la funzione visiva degli animali può essere saggiata dal modello ERG e OKR. Questo modello di ipertensione oculare faciliterà lo studio della neurodegenerazione glaucometri indotta da IOP.Può anche essere usato per testare preclinicamente terapie neuroprotettive promettenti.

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When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study ...

A Simple Critical-sized Femoral Defect Model in Mice

Un semplice Critical dimensioni femorale Difetto Modello in Mice

While bone has a remarkable capacity for regeneration, serious bone trauma often results in damage that does not properly heal. In fact, one tenth of all ...

A Murine Model of Irreversible and Reversible Unilateral Ureteric Obstruction

Un modello murino di irreversibile e reversibile unilaterale Ureteric Ostruzione

Obstruction of the kidney may affect native or transplanted kidneys and results in kidney injury and scarring. Presented here is a model of obstructive ...

A Magnetic Microbead Occlusion Model to Induce Ocular Hypertension-Dependent Glaucoma in Mice

Un magnetica microperla occlusione modello per indurre ipertensione oculare-Dependent Glaucoma nei topi

The use of rodent models of glaucoma has been essential to understand the molecular mechanisms that underlie the pathophysiology of this multifactorial ...

A Repetitive Concussive Head Injury Model in Mice

Un ripetitivo Concussive trauma cranico Modello nei topi

Despite the concussion/ mild traumatic brain injury (mTBI) being the most frequent occurrence of traumatic brain injury, there is still a lack of ...

Shunt Surgery, Right Heart Catheterization, and Vascular Morphometry in a Rat Model for Flow-induced Pulmonary Arterial Hypertension

Chirurgia Shunt, Destra cuore cateterizzazione, e Vascolare Morfometria in un modello di ratto per Flow-indotta ipertensione arteriosa polmonare

In this protocol, PAH is induced by combining a 60 mg/kg monocrotalin (MCT) injection with increased pulmonary blood flow through an aorto-caval shunt ...

Corneal Epithelial Abrasion with Ocular Burr As a Model for Cornea Wound Healing

Guarigione delle ferite di abrasione epiteliale corneale con oculare Burr come un modello per Cornea

The murine cornea provides an excellent model to study wound healing. The cornea is the outermost layer of the eye, and thus is the first defense to ...