Name: tracking superparamagnetic iron oxide-labeled mesenchymal stem cells using mri after intranasal delivery in a traumatic brain injury murine model
Uploaded: 2019-11-21T15:00:00
Duration: 10 min 3 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Tracking Superparamagnetic Iron Oxide-labeled Mesenchymal Stem Cells using MRI after Intranasal Delivery in a Traumatic Brain Injury Murine Model at JoVE.com

Questo lavoro è stato sostenuto dal Ministero delle sovvenzioni per la scienza e la tecnologia di Taiwan (MOST 104-2923-B-038-004 -MY2, MOST 107-2314-B-038-063 e MOST 107-2314-B-038-042) e Taipei Medical University (TMU 105-AE1-B03, TMU 106-5400-004-400, TMU 106-5310-001-400, DP2-107-21121-01-N-05 e DP2-108-21121-01-N-05-01).

Tutte le procedure che coinvolgono animali in questo protocollo sono state approvate dal Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali, con l'approvazione del Comitato Etico per l'uso degli animali presso l'Università di Medicina di Taipei (approvazione n. LAC-2018-0574; 15.03.2019).
1. Etichettatura di MSC con SPIO Nanoparticles
<ol><li>Per etichettare gli MSC con SPIO, aggiungere 6 mL di supporti di etichettatura (25 g/mL di SPIO nel mezzo Eagle modificato di Dulbecco [DMEM] senza siero bovino fetale [FBS]) a un flacone T75 contenente MSC (80% di confluenza).</li>
	<li>
Incubare le cellule con i mezzi di etichettatura in un'incubatrice di CO2 (37 gradi centigradi, 5% CO2)senza agitare. Dopo 24 h, rimuovere delicatamente il supporto di etichettatura utilizzando una sterile pipetta Pasteur con una punta di plastica attaccata al vuoto. Lavare le cellule momotore 2x con 6 mL di fosfato tampone salina (PBS) per rimuovere eventuali tracce di SPIO non internonesso.
	<ol>
<li>Per determinare se le cellule sono state etichettate con successo, controllare le cellule etichettate al microscopio fluorescente o al microscopio confocale se lo SPIO è contrassegnato con un fluoroforo (cioè, come quelli utilizzati qui; Figura 1B,C). In alternativa, eseguire la colorazione blu prussiana per le celle (vedere i passaggi da 6.2 a 6,4 per il protocollo di colorazione).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Raccogliere cellule aderenti per trattamento con 3 mL di trypsin e incubare a 37 gradi centigradi. Dopo 5 minuti di incubazione, aggiungere 7 mL di supporti DMEM preriscaldati con 10% FBS (v/v) per inattivare la trypsin. Raccogliere la sospensione cellulare utilizzando una pipetta in un tubo conico da 15 mL.</li>
	<li>Centrifugate la sospensione cellulare a 300 x g per 5 min. Scartare il supernatante e risospendere il pellet cellulare in PBS. Contare le cellule vitali utilizzando tosatura blu trypan e un emocitometro. NOT:</</c7> Il pellet cellulare delle celle etichettate apparirà come un colore scuro a causa del caricamento del ferro (Figura 1D). Questo protocollo è rilevante per l'etichettatura MSC e la risonanza magnetica. La procedura per l'etichettatura MSC6 è stata precedentemente ottimizzata e solo i passaggi per preparare gli MSC etichettati per tenere traccia in vivo sono inclusi qui, poiché il tracciamento in vivo è al centro dell'attenzione. Il protocollo per la coltura e l'etichettatura di altri tipi di cellule dovrebbe essere ottimizzato dal ricercatore.</li>
	<li>Regolare la concentrazione cellulare utilizzando PBS a 150.000 celle (o un numero che si traduce in un segnale DI risonanza magnetica sufficiente) in 18 : L di PBS (o il volume totale che verrà utilizzato nella procedura di consegna intranasale). NOT:</</c10> È stato notato che una concentrazione cellulare superiore a 150.000 cellule/18 gradi di PBS porta all'aggregazione cellulare, che può influenzare l'efficienza della somministrazione intranasale. Se è necessario un numero maggiore di cellule per la somministrazione intranasale, aumentare il volume totale delle sospensioni cellulari e aumentare il numero di amministrazioni intranasali, poiché la somministrazione intranasale è una procedura non invasiva ed è possibile il dosaggio multiplo.</li>
</ol>2. Infortunio da impatto corticale controllato (CCI)
 NOT:</</c0> In questo protocollo, i topi maschi C57 BL/6 (7-8 settimane) sono stati tenuti in un ciclo di luce/scuro 12/12 h con accesso ad libitum al cibo e all'acqua.
<ol><li>Per preparare ogni topo per lesioni CCI, somministrare l'iniezione di zolazepam (50 mg/kg) e xylazina (20 mg/kg) tramite iniezione intraperitoneale (i.p.) (1 mL/kg). Assicurarsi che la profondità dell'anestesia sia sufficiente per mancanza di risposta del ditapo. In alternativa, posizionare il mouse in una camera dotata di 2%–4% isoflurane per 60 s.
</li>
	<li>Rasare la pelliccia della superficie dorsale del cranio tra le orecchie utilizzando un tagliacapelli elettronico. Pulire l'area rasata più volte utilizzando un tampone di cotone sterile imbevuto di iodio. Utilizzare un tampone di cotone imbevuto di 70% etanolo per pulire lo iodio.</li>
	<li>Posizionare il mouse anetizzato nella cornice stereotassica e fissare il mouse utilizzando barre dell'orecchio e barre del naso. Fare un'incisione mediasagica (circa 2,5 cm) nella pelle rasata utilizzando forbici sterili per accedere alla superficie del cranio.</li>
	<li>Rimuovere il tessuto sull'osso utilizzando un batuffolo di cotone per esporre il cranio. Pulire la superficie del cranio con un tampone di cotone imbevuto in un 3% H2O2 per 10 s, quindi pulirlo con un batuffolo di cotone secco. NOT:</</c3> Le suture del cranio e sia bregma che lambda possono ora essere facilmente identificate.</li>
	<li>Identificare le coordinate di scelta sulla superficie del cranio per la lesione CCI e disegnare un cerchio (4 mm di diametro) intorno alle coordinate utilizzando una matita o un pennarello adeguato. NOT:</</c4> In questo protocollo, sono state utilizzate le coordinate anteeroposteriori (AP) -2,0 mm e mediolateral (ML) 1,5 mm per l'induzione CCI.</li>
	<li>Utilizzare un microdrill e una bava rotonda (di ausilio di 0,5 mm) per assottigliare il cranio in corrispondenza del cerchio contrassegnato. Evitare di applicare la pressione durante la perforazione, come perforazione attraverso l'osso può causare danni al parenchyma cervello. Pulire la polvere ossea utilizzando un tampone di cotone pulito e secco.</li>
	<li>Rimuovere delicatamente il lembo osseo utilizzando pinze sottili sterili per esporre la dura mater mantenendola intatta. Rimuovere il mouse dal telaio stereotassico utilizzato per la preparazione pre-infortunio e posizionarlo nel telaio stereotassico del dispositivo CCI.</li>
	<li>Stabilizzare la testa del mouse utilizzando le barre dell'orecchio e le barre del naso. Assicurarsi che la testa del mouse è livellata nella direzione rostral-caudale e regolare le barre del naso, se necessario.</li>
	<li>Seguire le istruzioni riportate nella casella di controllo per azzerare la punta dell'impatto sulla superficie corticale esposta. Assicurarsi che la punta dell'impatto sia allineata direttamente sopra le coordinate della corteccia desiderate per essere influenzata utilizzando le ruote di controllo X e Y sulla base dell'impactor.</li>
	<li>Impostare i parametri dell'esperimento utilizzando la casella di controllo con una velocità di 5 m/s, un tempo di perbita di 250 ms e una profondità di lesione di 1 mm per indurre lievi lesioni al mouse.</li>
	<li>Indurre lesioni premendo il pulsante ''impatto'' sulla casella di controllo. Savare qualsiasi sanguinamento che si verifica utilizzando un tampone di cotone sterile.</li>
	<li>Rimuovere il mouse dal telaio stereotassico e chiudere l'incisione utilizzando suture chirurgiche di seta. Non utilizzare clip metalliche per chiudere il sito chirurgico, poiché il mouse sarà sottoposto a un campo magnetico per la risonanza magnetica.</li>
	<li>Applicare antibiotici topici (bacitracina neomycin) al sito chirurgico per prevenire le infezioni. Tenere il mouse sulla piastra di riscaldamento e monitorarlo attentamente durante la fase di recupero.</li>
	<li>Somministrare chetoprofene (2,5 mg/kg, IP) ogni giorno per 3 giorni dopo l'intervento chirurgico, a meno che la somministrazione chetoprofene non contraddica gli obiettivi di studio.</li>
</ol>3. Consegna intranasale
<ol><li>A 1 giorno dopo l'induzione del CCI, somministrare il cocktail anestetizzante zolazepam (50 mg/kg) e xylazina (20 mg/kg) tramite iniezione i.p. Assicurarsi che il mouse sia profondamente anetizzato dalla mancanza di risposta alla punta-pizzicamento.</li>
	<li>
Preparare il mouse per la somministrazione intranasale di MSC mediante trattamento con ialuronidasi.
	<ol>
<li>Afferra la mischia del mouse e girala saldamente mentre immobilizza il cranio. Posizionare la punta di una pipetta che contiene la ialuronidasi in PBS sterile (4 U/L) vicino alla narice del topo con un angolo di 45 gradi.</li>
		<li>Amministrare 3 -L di sospensione di ialuronidasi in ogni narice. Mantenere il mouse immobilizzato e rivolto verso l'alto su un pad pulito per 5 min. Ripetere il trattamento con ialuronidasi 4x (totale di 100 sospensioni U ialuronidasi).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dopo il trattamento con ialuronidasi, tenere il topo trattato su un pad pulito rivolto verso l'alto per 30 min.</li>
	<li>Per fornire MSC nel cervello, tenere saldamente il mouse, come descritto nel passaggio 3.2.1. Amministrare 3 / naci/ sospensione della sospensione MSC con un intervallo di 3 s. Tenere il mouse nella stessa posizione per 30 s fino a quando le gocce campione sono completamente scomparse. NOT:</</c2> Evitare di formare bolle d'aria durante la somministrazione.</li>
	<li>Ripetere la somministrazione con un intervallo di 2 min fino a 3x. NOT:</</c3> Il numero totale di cellule da consegnare è di 150.000, in modo tale che 18 ll della sospensione cellulare possa essere consegnato a un dosaggio di 3 gradi per ogni narice, 3 volte ciascuno.</li>
	<li>Riportare il mouse alla sua gabbia e monitorarlo da vicino fino a quando non si riprende completamente dall'anestesia.</li>
</ol>4. Risonanza Magnetica In Vivo
 NOT:</</c0> La colorazione istologica del tessuto cerebrale è stata precedentemente utilizzata per confermare la corretta consegna delle cellule staminali dopo la somministrazione intranasale. Tuttavia, questo metodo può essere utilizzato solo come endpoint di uno studio, non longitudinalmente. L'utilizzo di sonde MRI per etichettare le cellule staminali terapeutiche consentirà di tracciare longitudinali, non invasivi, in vivo delle cellule che utilizzano la risonanza magnetica. È importante sottolineare che questo protocollo riduce in modo efficiente il numero di animali necessari. In questo protocollo, la scansione RM è stata eseguita nei giorni 1, 7 e 14 post-consegna di MSC.
<ol><li>Per preparare il mouse per la risonanza magnetica, anestesizzare il mouse con isoflurane (5% isoflurane in 1 L/min di O2 per l'induzione, 1.5%–2% isoflurane per la manutenzione). Eseguire un pizzico di punta per assicurarsi che il mouse raggiunga il livello di anestesia richiesto.</li>
	<li>Posizionare il mouse sul supporto di imaging e fissarne la posizione con rubinetti o qualsiasi altro metodo adeguato. Spostare il supporto al centro della bobina di risonanza magnetica (7 T/40 cm magnete) e collegare la connessione di monitoraggio.</li>
	<li>Per acquisire scansioni ponderate T2 usando una sequenza spin-echo, impostate il tempo di ripetizione (TR) su 1500 ms e il tempo di eco (TE) su 2,8 ms.</li>
	<li>Utilizzare un campo visivo di 16 mm x 16 mm (FOV), una matrice di acquisizione 128 x 128 (MTX) e uno spessore della sezione di 0,75 x 0,8 mm2 con quattro medie di segnale e un angolo di capovolgimento di 90 gradi (FA).</li>
	<li>Ritirare il supporto del mouse dal centro della bobina MRI dopo aver completato le scansioni. Riportare il mouse alla sua gabbia e monitorarlo da vicino fino a quando non si riprende completamente dall'anestesia.</li>
	<li>
Per tenere traccia e quantificare gli MSC etichettati sulle immagini ponderate T2, utilizzare il software ITK-SNAP (versione 3.8.0)7.
	<ol>
<li>Trasferire i dati grezzi delle scansioni MRI dal computer della macchina MRI al computer utilizzato per l'analisi in formato DICOM (digital imaging e comunicazione in medicina).</li>
		<li>Eseguire il software ITK-SNAP e caricare le immagini MRI facendo clic sul pulsante File. Quindi, fare clic su Apri immagine principale nel menu. Premere il pulsante Apri immagine nella finestra di visualizzazione, quindi individuare e aprire le immagini MRI utilizzando il pulsante Sfoglia. NOT:</</c9> La visualizzazione delle celle etichettate nelle immagini della risonanza magnetica apparirà come aree ipointense. Se è necessario regolare il contrasto dell'immagine, selezionare Strumenti Contrasto immagine.</li>
		<li>Creare segmentazioni delle aree ipointense e della lesione o di altre parti del cervello selezionando Etichetta attiva nella sezione delle etichette di segmentazione. Utilizzare colori di etichetta diversi per segmenti diversi (se è necessaria la segmentazione di più parti).</li>
		<li>Utilizzare lo strumento Poligono nella barra degli strumenti principale per disegnare intorno alle aree ipointense che rappresentano gli MSCs con etichetta SPIO. Le aree segmentate appariranno dello stesso colore dell'etichetta attiva assegnata a quel particolare segmento. Ripetere questo passaggio di segmentazione per tutte le sezioni di risonanza magnetica.</li>
		<li>Sviluppare una mappa 3D delle aree segmentate per rappresentare la distribuzione MSC nell'intero cervello selezionando lo strumento Scalpel nella parte inferiore della barra degli strumenti 3D, che si trova nella sezione Etichette di segmentazione nella parte inferiore della casella degli strumenti TheITK-SNAP. Quindi, premere Accetta nella parte inferiore della mappa 3D creata.</li>
		<li>Per eseguire un'analisi quantitativa (media di volume e intensità) delle aree ipointense segmentate che rappresentano celle etichettate, premere il pulsante Segmentazione nel pannello superiore e selezionare Volume e statistiche.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. Fissazione del cervello del topo e criosezione
<ol><li>
Per fissare il cervello del topo, eseguire la perfusione trascardiaca con 4% paraformaldeide (PFA) dopo l'ultima risonanza magnetica, come descritto in precedenza8.
	<ol>
<li>Decapitare la testa ed estrarre il cervello8. Fissare il cervello con 4% PFA per almeno 48 h a 4 gradi centigradi.</li>
		<li>Disidratare il cervello immergendolo in una soluzione di saccarosio del 30% a 4 gradi centigradi fino a quando il cervello affonda sul fondo della soluzione.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Incorporare il cervello nella soluzione ottimale della temperatura di taglio (OCT) e congelare a -20 gradi centigradi. Sezionare il cervello con un microtoma criostato a fette di spessore di 14 m e montarli su vetrini. Conservare le sezioni scorrevoli a -20 gradi centigradi fino a un ulteriore utilizzo.</li>
</ol>6. Colorazione blu prussiana
 NOT:</</c0> La colorazione blu prussiana è comunemente usata per rilevare il contenuto di ferro nelle cellule con etichetta SPIO. Qui, la colorazione blu prussiana viene utilizzata per confermare che i segnali ipointensi nelle immagini della risonanza magnetica corrispondono agli MSC etichettati SPIO e non agli artefatti. La colorazione blu prussiana è uno dei metodi istochimici più sensibili utilizzati per rilevare il ferro nei tessuti e può essere utilizzato per identificare anche un singolo granulo di ferro nelle cellule.
<ol><li>Lavare i vetrini delle sezioni cerebrali con acqua distillata per 5 min.</li>
	<li>Eseguire la colorazione blu prussiana immergendo i vetrini per 30 min nella soluzione di colorazione, che contiene parti uguali acido cloridrico (10%) e ferrocianide di potassio (10%) preparati immediatamente prima dell'uso.</li>
	<li>Lavare 3x con acqua distillata, per 5 min ciascuno. Controstale le sezioni con nucleare veloce rosso per 5 min. Sciacquare gli scivoli 2x con acqua distillata.</li>
	<li>Disidratare gradualmente le sezioni immergendo i vetrini nel 95% e 100% di alcol per 2 min ciascuno. Aggiungere il coperchio con un supporto di montaggio resinoso.</li>
	<li>Utilizzare un microscopio luminoso per rilevare le cellule colorate nelle sezioni cerebrali. NOT:</</c0> Il ferro nelle celle etichettate apparirà come depositi di colore blu.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Pelled, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Smad8/BMP2-engineered+mesenchymal+stem+cells+induce+accelerated+recovery+of+the+biomechanical+properties+of+the+Achilles+tendon.">Smad8/BMP2-engineered mesenchymal stem cells induce accelerated recovery of the biomechanical properties of the Achilles tendon.</a> Journal of Orthopedic Research. 30 (12), 1932-1939 (2012).</li><li>Shahror, R. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transplantation+of+Mesenchymal+Stem+Cells+Overexpressing+Fibroblast+Growth+Factor+21+Facilitates+Cognitive+Recovery+and+Enhances+Neurogenesis+in+a+Mouse+Model+of+Traumatic+Brain+Injury.">Transplantation of Mesenchymal Stem Cells Overexpressing Fibroblast Growth Factor 21 Facilitates Cognitive Recovery and Enhances Neurogenesis in a Mouse Model of Traumatic Brain Injury.</a> Journal of Neurotrauma. , (2019).</li><li>Danielyan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intranasal+delivery+of+cells+to+the+brain.">Intranasal delivery of cells to the brain.</a> European Journal of Cell Biology. 88 (6), 315-324 (2009).</li><li>Karussis, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Safety+and+immunological+effects+of+mesenchymal+stem+cell+transplantation+in+patients+with+multiple+sclerosis+and+amyotrophic+lateral+sclerosis.">Safety and immunological effects of mesenchymal stem cell transplantation in patients with multiple sclerosis and amyotrophic lateral sclerosis.</a> Archives in Neurology. 67 (10), 1187-1194 (2010).</li><li>Danielyan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intranasal+delivery+of+bone+marrow-derived+mesenchymal+stem+cells,+macrophages,+and+microglia+to+the+brain+in+mouse+models+of+Alzheimer's+and+Parkinson's+disease.">Intranasal delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells, macrophages, and microglia to the brain in mouse models of Alzheimer's and Parkinson's disease.</a> Cell Transplant. 23, 123-139 (2014).</li><li>Shahror, R. A., Ali, A. A. A., Wu, C. C., Chiang, Y. H., Chen, K. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhanced+Homing+of+Mesenchymal+Stem+Cells+Overexpressing+Fibroblast+Growth+Factor+21+to+Injury+Site+in+a+Mouse+Model+of+Traumatic+Brain+Injury.">Enhanced Homing of Mesenchymal Stem Cells Overexpressing Fibroblast Growth Factor 21 to Injury Site in a Mouse Model of Traumatic Brain Injury.</a> International Journal of Molecular Science. 20 (11), (2019).</li><li>Yushkevich, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=User-guided+3D+active+contour+segmentation+of+anatomical+structures:+significantly+improved+efficiency+and+reliability.">User-guided 3D active contour segmentation of anatomical structures: significantly improved efficiency and reliability.</a> Neuroimage. 31 (3), 1116-1128 (2006).</li><li>Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole+animal+perfusion+fixation+for+rodents.">Whole animal perfusion fixation for rodents.</a> Journal of Visualized Experiments. (65), e3564 (2012).</li><li>Li, Y., Chopp, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Marrow+stromal+cell+transplantation+in+stroke+and+traumatic+brain+injury.">Marrow stromal cell transplantation in stroke and traumatic brain injury.</a> Neuroscience Letters. 456 (3), 120-123 (2009).</li><li>Aertker, B. M., Bedi, S., Cox, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+for+CNS+repair+following+TBI.">Strategies for CNS repair following TBI.</a> Experimental Neurology. 275, 411-426 (2016).</li><li>Ohtaki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem/progenitor+cells+from+bone+marrow+decrease+neuronal+death+in+global+ischemia+by+modulation+of+inflammatory/immune+responses.">Stem/progenitor cells from bone marrow decrease neuronal death in global ischemia by modulation of inflammatory/immune responses.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (38), 14638-14643 (2008).</li><li>Mahmood, A., Lu, D., Chopp, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intravenous+administration+of+marrow+stromal+cells+(MSCs)+increases+the+expression+of+growth+factors+in+rat+brain+after+traumatic+brain+injury.">Intravenous administration of marrow stromal cells (MSCs) increases the expression of growth factors in rat brain after traumatic brain injury.</a> Journal of Neurotrauma. 21 (1), 33-39 (2004).</li><li>Hoehn, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+of+implanted+stem+cell+migration+in+vivo:+a+highly+resolved+in+vivo+magnetic+resonance+imaging+investigation+of+experimental+stroke+in+rat.">Monitoring of implanted stem cell migration in vivo: a highly resolved in vivo magnetic resonance imaging investigation of experimental stroke in rat.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (25), 16267-16272 (2002).</li><li>Reddy, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+tracking+of+mesenchymal+stem+cells+labeled+with+a+novel+chitosan-coated+superparamagnetic+iron+oxide+nanoparticles+using+3.0T+MRI.">In vivo tracking of mesenchymal stem cells labeled with a novel chitosan-coated superparamagnetic iron oxide nanoparticles using 3.0T MRI.</a> Journal of Korean Medical Science. 25 (2), 211-219 (2010).</li><li>Roeder, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dose-response+of+superparamagnetic+iron+oxide+labeling+on+mesenchymal+stem+cells+chondrogenic+differentiation:+a+multi-scale+in+vitro+study.">Dose-response of superparamagnetic iron oxide labeling on mesenchymal stem cells chondrogenic differentiation: a multi-scale in vitro study.</a> PLoS ONE. 9 (5), e98451 (2014).</li><li>Schafer, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Labeling+of+human+mesenchymal+stromal+cells+with+superparamagnetic+iron+oxide+leads+to+a+decrease+in+migration+capacity+and+colony+formation+ability.">Labeling of human mesenchymal stromal cells with superparamagnetic iron oxide leads to a decrease in migration capacity and colony formation ability.</a> Cytotherapy. 11 (1), 68-78 (2009).</li><li>Kostura, L., Kraitchman, D. L., Mackay, A. M., Pittenger, M. F., Bulte, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feridex+labeling+of+mesenchymal+stem+cells+inhibits+chondrogenesis+but+not+adipogenesis+or+osteogenesis.">Feridex labeling of mesenchymal stem cells inhibits chondrogenesis but not adipogenesis or osteogenesis.</a> NMR in Biomedicine. 17 (7), 513-517 (2004).</li></ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Il protocollo qui descritto rappresenta procedure generali per l'etichettatura SPIO degli MSC e il monitoraggio della risonanza magnetica degli MSC con etichetta SPIO post-intranasali. Il protocollo consente di studiare la migrazione e la biodistribuzione delle MSC post-consegna in vivo nel cervello, utilizzando un metodo non invasivo.
Le MSC sono candidati interessanti per le terapie basate sulle cellule staminali per disturbi e lesioni del SNC a causa della loro capacità di secernere fattori trofici che 1) innescano processi neuroridativi e 2) forniscono neuroprotezione, a causa dei loro effetti antinfiammatori all'interno dell'area della lesione9,10,11,12. Anche se il monitoraggio e il rilevamento a lungo termine della risonanza magnetica e il rilevamento di MSC con etichettatura SPIO possono essere limitati a causa della diluizione di SPIO intercellulare con divisione cellulare, le cellule etichettate possono essere rilevate fino a diverse settimane dopo il trapianto nel cervello dei modelli animali13.
È inoltre descritto il protocollo di etichettatura delle MSC con nanoparticelle SPIO rivestite con dextran senza agenti di trasfezione. Altri protocolli sono stati utilizzati nella letteratura14,15,16. Tuttavia, in tutti i casi, questi protocolli devono essere regolati per il tipo di cellula, la dimensione SPIO, il tempo di incubazione e la concentrazione di SPIO. È stato dimostrato che le MSC hanno un potenziale di differenziazione condronogenico compromesso, ma non adipogeni che si differenziano per l'etichettatura SPIO17. Pertanto, è altamente raccomandato che i saggi di differenziazione siano eseguiti prima della consegna delle cellule staminali per valutare l'influenza dello SPIO sulla potenza di differenziazione delle cellule staminali. In uno studio precedente, è stato dimostrato che l'etichettatura MSC con lo stesso tipo spiO e la concentrazione utilizzata in qui non hanno influenzato la potenza di differenziazione osteogenica o adipogenica delle MSC6.
La via intranasale della somministrazione terapeutica delle cellule staminali per disturbi e lesioni cerebrali è un approccio promettente per l'applicazione clinica delle cellule staminali. Tuttavia, i meccanismi intrinseci e molecolari che dettano i comportamenti delle cellule staminali nella cavità nasale rimangono poco chiari. Anche se il percorso intranasale è ampiamente esplorato per la consegna di piccole molecole, la dimensione e il comportamento di biodistribuzione dello stelo terapeutico differiscono da piccole molecole. Il protocollo attuale dimostra che le MSC tendono a migrare verso il sito di lesioni dopo la consegna intranasale.
In questo caso, sono state utilizzate immagini ponderate T2 per tenere traccia degli MSC con etichetta SPIO. Altri rapporti hanno usato l'imaging eco gradiente. Tuttavia, gli artefatti di suscettibilità sono spesso osservati nell'imaging eco a gradiente a causa dello SPIO intercellulare. Nel protocollo attuale, la posizione delle aree ipointense che rappresentano gli MSC con etichetta SPIO sulle immagini ponderate T2 era la stessa della posizione dello SPIO nelle sezioni cerebrali rilevate dall'esame istologico (Figura 3). Ciò indica l'adeguata sensibilità dell'imaging eco dello spin ponderato T2 per il tracciamento MSC con etichetta SPIO nel cervello.
In sintesi, il protocollo descritto è utile per gli studi di tracciamento delle cellule staminali in vivo di lesioni cerebrali e disturbi. Il tracciamento longitudinale delle cellule staminali in vivo è stato tradizionalmente eseguito sacrificando gli animali in più punti temporali. L'attuale protocollo fornisce un approccio non invasivo ed efficiente per la consegna e il monitoraggio delle MSC, che rappresenta una potenziale procedura per la terapia basata sulle cellule staminali per lesioni cerebrali e disturbi in ambienti clinici.

Le cellule staminali mesenchymiche (MSC) sono candidati interessanti per le terapie basate sulle cellule staminali nei trattamenti di disturbi e lesioni del sistema nervoso centrale (SNC) nell'uomo. Inoltre, le MSC sono state utilizzate come veicolo per la consegna di proteine terapeutiche nei siti di lesione1,2. Negli ultimi anni, sono state sviluppate promettenti innovazioni per stabilire 1) nuove vie di consegna cellulare e 2) monitoraggio cellulare per le terapie basate sulle cellule staminali dei disturbi del SNC. La somministrazione intranasale delle cellule staminali nel cervello dipende dalla capacità delle cellule di bypassare la piastra cribriforme ed entrare parzialmente nel bulbo olfattivo tramite un percorso parenchyle3. La combinazione della somministrazione intranasale e l'etichettatura di MSC con nanoparticelle di ossido di ferro superparamagnetico (SPIO) rappresenta un approccio promettente per le applicazioni cliniche di MSC nel trattamento dei disturbi del CNC, poiché le nanoparticelle SPIO sono sonde sicure per la risonanza magnetica (RM) e consentono il monitoraggio longitudinale sensibile non invasivo delle MSCs dopo la consegna da parte della risonanza magnetica3,4,5. Inoltre, la consegna intranasale è un percorso sicuro e non invasivo che consente una somministrazione ripetuta entro un breve periodo di tempo.
Questo articolo descrive una tecnica altamente sensibile e non invasiva per il monitoraggio delle MSC in vivo della consegna post-intranasale in un modello murino di lesioni cerebrali traumatiche (TBI), che impiega cellule con etichettatura SPIO e risonanza magnetica. Un importante vantaggio dell'etichettatura SPIO è la rilevazione sensibile dello SPIO nei tessuti mediante la risonanza magnetica, che consente di tracciare le cellule in modo efficiente e non invasivo. Le nanoparticelle SPIO qui utilizzate sono disponibili in commercio e etichettate con un fluoroforo fluorescenza (FITC), che consente il rilevamento dello SPIO nei tessuti senza immunostaining o ulteriore elaborazione. Inoltre, è possibile eseguire il monitoraggio longitudinale in tempo reale e studiare la biodistribuzione delle MSC consegnate.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:728px;" width="728">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Cell culture supplies (Plastics)</td>
			<td style="width:197px;">ThermoFisher Scientific</td>
			<td style="width:179px;">Varies</td>
			<td style="width:171px;">Replaceable with any source</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Disposable Microtome Blade</td>
			<td style="width:197px;">VWR</td>
			<td style="width:179px;">95057-832</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">D-MEM/F-12 (1X) with GlutaMAX</td>
			<td style="width:197px;">GIBCO</td>
			<td style="width:179px;">10565-018</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:181px;">Embedding medium for frozen tissue specimens (O. C. T.)</td>
			<td style="width:197px;">Sakura Finetek</td>
			<td style="width:179px;">4583</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td style="width:197px;">GIBCO</td>
			<td style="width:179px;">12662-029</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Fluorescence Wild Field Microscope</td>
			<td style="width:197px;">Olympus</td>
			<td style="width:179px;">Olympus BX43</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Forcept</td>
			<td style="width:197px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:179px;">11293-00</td>
			<td style="width:171px;">Surgery</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Gentamicin (10 mg/mL)</td>
			<td style="width:197px;">GIBCO</td>
			<td style="width:179px;">15710-064</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Hair clipper</td>
			<td style="width:197px;">Pet Club</td>
			<td style="width:179px;">PC-400</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Head Trauma Contusion device</td>
			<td style="width:197px;">Precision Systems and Instrumentation</td>
			<td>Model TBI-0310</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Hyaluronidase from bovine testes</td>
			<td style="width:197px;">MilliporeSigma</td>
			<td style="width:179px;">H3506</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="147">
			<td height="147" style="height:147px;width:181px;">ITK-SNAP Software</td>
			<td style="width:197px;">Penn Image Computing and Science Laboratory (PICSL) at the University of Pennsylvania, and the Scientific Computing and Imaging Institute (SCI) at University of Utah</td>
			<td>ITK-SNAP 3.8.0</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Ketamine (Ketavet)</td>
			<td style="width:197px;">Pfizer</td>
			<td style="width:179px;">778-551</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Mice</td>
			<td style="width:197px;">National Laboratory Animal Center, Taiwan</td>
			<td style="width:179px;">C57BL6</td>
			<td style="width:171px;">Wild type mice strain used in the study</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:181px;">Microdrill</td>
			<td style="width:197px;">Nakanishi</td>
			<td style="width:179px;">NE50</td>
			<td style="width:171px;">Combine with Burrs for generating the bone window</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Microtome</td>
			<td style="width:197px;">Leica</td>
			<td style="width:179px;">RM2265</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Mouse (C57BL/6) Mesenchymal Stem Cells</td>
			<td style="width:197px;">GIBCO</td>
			<td style="width:179px;">S1502-100</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">MRI scanner</td>
			<td style="width:197px;">Bruker Biospec</td>
			<td></td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Phosphate Buffer Saline (PBS)</td>
			<td style="width:197px;">Corning Cellgro/ThermoFisher</td>
			<td>21-031-CV</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Povidone-iodine 7.5%</td>
			<td style="width:197px;">Purdue product L.P.</td>
			<td></td>
			<td style="width:171px;">Surgical scrub</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Prussian Blue Stain</td>
			<td style="width:197px;">Abcam</td>
			<td style="width:179px;">ab150674</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Scissor</td>
			<td style="width:197px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:179px;">14084-08</td>
			<td style="width:171px;">Surgery</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Stereotaxic frame</td>
			<td style="width:197px;">Kopf Instruments</td>
			<td style="width:179px;">Model 900</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:181px;">Superparamagnetic iron oxide (SPIO) nanoparticles</td>
			<td style="width:197px;">BioPAL</td>
			<td style="width:179px;">Molday ION EverGreen, CL-50Q02-6A-51</td>
			<td style="width:171px;">stem cells labeling for in vivo tracking using MRI</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Suture monofilament</td>
			<td style="width:197px;">Ethicon</td>
			<td style="width:179px;">G697</td>
			<td style="width:171px;">Suture</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:181px;">Timer</td>
			<td style="width:197px;">Wisewind</td>
			<td style="width:179px;"></td>
			<td style="width:171px;">Replaceable with any source</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">TrypLE</td>
			<td style="width:197px;">GIBCO</td>
			<td style="width:179px;">12604-013</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:181px;">Xylazine (Rompun)</td>
			<td style="width:197px;">Bayer</td>
			<td style="width:179px;">QN05 cm92</td>
			<td style="width:171px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

tracking superparamagnetic iron oxide-labeled mesenchymal stem cells using mri after intranasal delivery in a traumatic brain injury murine model

Le terapie basate su cellule staminali per lesioni cerebrali, come lesioni cerebrali traumatiche (TBI), sono un approccio promettente per gli studi clinici. Tuttavia, gli ostacoli tecnici come la somministrazione invasiva di cellule e il monitoraggio con bassa efficienza dei trapianti rimangono sfide nella terapia a base di staminali traslazionali. Questo articolo descrive una tecnica emergente per l'etichettatura e il tracciamento delle cellule staminali in base all'etichettatura delle cellule staminali mesentiche (MSC) con nanoparticelle di ossido di ferro superparamagnetico (SPIO), nonché la somministrazione intranasale delle MSC etichettate. Queste nanoparticelle sono incorporate in fluoresceina (FITC) e sicure per etichettare le MSC, che vengono successivamente consegnate al cervello dei topi indotti da TBI dalla rotta intranasale. Vengono quindi tracciati in modo non invasivo in vivo dalla risonanza magnetica in tempo reale (RM). Importanti vantaggi di questa tecnica che combina SPIO per l'etichettatura cellulare e la consegna intranasale includono (1) il monitoraggio MSC in vivo non invasivo dopo la consegna per lunghi periodi di tracciamento, (2) la possibilità di più regimi di dosazione a causa della non invasiva (3) possibili applicazioni per l'uomo, a causa della sicurezza dello SPIO, della natura non invasiva del metodo di tracciamento cellulare mediante la risonanza magnetica e del percorso di somministrazione.

Ventiquattro ore dopo la consegna intranasale, gli MSC etichettati SPIO sono stati rilevati come forti aree ipointense mediali alla lesione corticale sulle immagini ponderate T2(Figura 2B), che indicano la migrazione mirata dello SPIO al sito dell'infortunio. Questa migrazione è rimasta visibile fino a 14 giorni dopo la consegna, poiché i segnali ipointensi sono risultati visibili senza una significativa riduzione per questo periodo di tempo (Figura 2B). Gli animali feriti trattati con PBS non hanno mostrato aree ipointense, il che indica che le aree ipointense osservate corrispondono agli MSC etichettati SPIO e non segnalano i manufatti (Figura 2A) La biodistribuzione degli MSC etichettati in vivo con la risonanza magnetica è stata visualizzata utilizzando la ricostruzione 3D (Figura 2C,D). La migrazione degli MSC verso la corteccia ferita è stata confermata istologicamente dalla colorazione blu prussiana e dal rilevamento del canale FITC dello SPIO con etichetta FITC negli MSC etichettati (Figura 3A,B).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60450/60450fig1.jpg"> Figura 1: Diagramma di flusso schematico del protocollo e conferma in vitro dell'assorbimento SPIO da parte di MSC. (A) gli MSC sono stati incubati con SPIO per 24 h per l'etichettatura. Quindi, gli MSC etichettati sono stati consegnati in un modello di topo TBI tramite un percorso intranasale (IN). La risonanza magnetica in tempi diversi è stata eseguita per monitorare gli MSC etichettati. La conferma di un'etichettatura sufficiente degli MSC da parte dello SPIO è stata ottenuta mediante la microscopia a fluorescenza (B) e la microscopia confocale (C)utilizzando il canale FITC, poiché le nanoparticelle SPIO sono state contrassegnate con FITC. (D) Il pellet cellulare dei MSC etichettati appariva di colore scuro a causa del carico di ferro. FITC - isotica di fluoresceina; SPIO - particelle superparamagnetiche di ossido di ferro; MSC - cellule staminali mesenmale; RM - risonanza magnetica; IN - intranasale; TBI - lesione cerebrale traumatica. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60450/60450fig1large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60450/60450fig2.jpg"> Figura 2: La risonanza magnetica in tempo reale consente il rilevamento e il monitoraggio della migrazione MSC con etichetta TOSPI verso i siti di lesioni nel cervello dei topi indotti da TBI. (A) I topi sono stati sottoposti a TBI, seguiti da un trattamento con PBS o MSC con etichettatura SPIO, somministrati tramite una vie intranasale 24 h dopo un infortunio. Le sezioni coronali di immagini ponderate T2 mostravano i MSC etichettati come un'area ipointensa (freccia) sul bordo del sito di lesioni (area delineata) a 1, 7 e 14 giorni dopo la consegna. I topi trattati con PBS non mostrano alcuna area ipointensa. (B) Processo di segmentazione dell'area del sito di lesioni (verde) e msCs etichettati (rosso) in base alle immagini coronali di risonanza magnetica T2. (C) Ricostruzione 3D del trattamento del cervello del topo basato su immagini ponderate t2 che illustrano la biodistribuzione delle MSC con etichetta SPIO nel cervello 14 giorni dopo la consegna. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60450/60450fig2large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60450/60450fig3.jpg"> Figura 3: L'analisi istologica conferma la presenza di MSC con etichetta SPIO nel cervello degli animali trattati. La colorazione blu prussiana delle sezioni cerebrali di un topo (A) trattate con topo PBS (controllo) e (C) trattate con MSC con etichetta SPIO. L'analisi della microscopia a fluorescenza del topo di controllo della corteccia di un topo di controllo( B) trattato con PBS e (D) trattato con MSC con etichetta SPIO è stata condotta 14 giorni dopo la consegna. L'analisi ha rivelato la presenza di cellule SPIO-positive con tag FITC (cellule boxed, verdi) nella corteccia ferita nel topo trattato con MSC, ma non sono stati osservati segnali FITC nella corteccia del topo trattato con PBS. Barre di scala da 50 m, se non diversamente specificato. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/60450/60450fig3large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Tracking Superparamagnetic Iron Oxide-labeled Mesenchymal Stem Cells using MRI after Intranasal Delivery in a Traumatic Brain Injury Murine Model at JoVE.com

Tracking Superparamagnetic Iron Oxide-labeled Mesenchymal Stem Cells using MRI after Intranasal Delivery in a Traumatic Brain Injury Murine Model

Presentato qui è un protocollo per la consegna e il monitoraggio di cellule staminali mesenchymale non invasive (MSC) in un modello murino di lesioni cerebrali traumatiche. Le nanoparticelle di ossido di ferro superparamagnetiche sono impiegate come sonda di risonanza magnetica (MRI) per l'etichettatura MSC e il tracciamento in vivo non invasivo dopo la consegna intranasale mediante risonanza magnetica in tempo reale.

Monitoraggio delle cellule staminali mesenchymale con etichetta chimica dell'ossido di ferro superparamagnetico utilizzando la risonanza magnetica dopo la consegna intranasale in un modello murino traumatico da lesioni cerebrali

Stem cell-based therapies for brain injuries, such as traumatic brain injury (TBI), are a promising approach for clinical trials. However, technical ...

Questo metodo può aiutare a determinare la distribuzione di base della cellula staminale lobitica dopo la consegna intranasale al cervello. Il principale vantaggio di questa tecnica è che facilita la consegna e il tracciamento non invasivi delle cellule staminali mesenchimali al cervello. Inoltre, i dosaggi multipli sono possibili per massimizzare gli effetti terapeutici delle cellule trapiantate nella fase cronica dopo le lesioni.Questa tecnica massimizza il numero di cellule consegnate al sito di lesione e riduce al minimo la progressione della cellula lobitica in altri tessuti. Sebbene questa tecnica fornisca informazioni sull'uso di cellule staminali mesenchimali nelle terapie traumatiche per lesioni cerebrali, può anche essere utilizzata per l'indagine di lesioni cerebrali non traumatiche. Per l'etichettatura delle cellule staminali mesenchimali con ossido di ferro super paramagnetico, aggiungere sei millilitri di mezzo di etichettatura a una coltura di cellule staminali mesenchimali confluente dell'80% in un pallone T 75 per un'incubazione di 24 ore a 37 gradi celsius e 5% di anidride carbonica.Il giorno dopo, aspirare attentamente il super natale e lavare le cellule due volte con sei millilitri di PBS per lavaggio. Per determinare se le cellule sono state etichettate correttamente, controllare la coltura al microscopio florescente. Per indurre una lesione al CCI, dopo aver confermato una mancanza di risposta al riflesso del pedale, utilizzare le tosaerba elettroniche per radere la pelliccia dalla superficie dorsale del cranio e pulire più volte l'area rasata con un batuffolo di cotone sterile imbevuto di iodio.Utilizzare un batuffolo di cotone imbevuto di 70%etanolo per rimuovere lo iodio dopo l'ultimo tampone e posizionare l'animale in una cornice stereotassica. Fissare il mouse con le barre dell'orecchio e del naso e fare un'incisione midsagittale di 2,5 centimetri nella pelle rasata per accedere alla superficie del cranio. Utilizzare un batuffolo di cotone per rimuovere il tessuto che copre il cranio e pulire la superficie del cranio per 10 secondi con un batuffolo di cotone imbevuto di perossido di idrogeno al 3%.Asciugare il cranio con un batuffolo di cotone fresco e utilizzare una matita per disegnare un cerchio di quattro millimetri intorno alle coordinate di scelta sull'osso esposto. Utilizzando un micro trapano dotato di un bur rotondo di 0,5 millimetri di diametro, assottigliare accuratamente il cranio al cerchio marcato senza applicare pressione. Rimuovere la polvere ossea con un batuffolo di cotone pulito e asciutto e utilizzare le forcep sterili depositate per rimuovere con cura il lembo osseo risultante.Quando il dura mater è stato esposto, trasferire il mouse nel telaio stereotattico del dispositivo CCI e fissare l'animale con le barre dell'orecchio e del naso in modo che la testa sia livellata nella direzione rostrocaudale. Seguendo le istruzioni riportate sulla scatola di controllo, azzerare la punta del riflettore sulla superficie corticale esposta utilizzando le ruote di controllo X e Y sulla base del riflettore per allineare la punta del riflettore direttamente sopra le coordinate della corteccia desiderate da impartiare. Utilizzare la casella di controllo per impostare i parametri dell'esperimento su una velocità di cinque metri al secondo, un tempo di dimora di 250 millisecondi e una profondità di lesione di un millimetro per indurre una lesione lieve.Quindi, premere il pulsante di impatto sulla casella di controllo. Tamponare qualsiasi sanguinamento che si verifica con un batuffolo di cotone sterile e rimuovere il mouse dal telaio. Chiudere l'incisione con suture chirurgiche di seta e applicare antibiotici topici sul sito prima di posizionare il mouse su una pastiglia riscaldante con monitoraggio fino a piena reclinata.Un giorno dopo l'infortunio, trattare l'ossido di ferro super paramagnetico etichettato come coltura di cellule staminali mesenchimali con tre millilitri di tripparina. Dopo cinque minuti a 37 gradi Celsius, iniziare la reazione con sette millilitri di mezzo DMEM preri riscaldato, integrato con siero bovino fettale al 10% e raccogliere la sospensione cellulare in un tubo conico da 15 millilitri. Sedimentare le cellule mediante centrifugazione e sospendere di nuovo il pellet in PBS per il conteggio.Quindi, regolare la concentrazione cellulare a 1,5 per 10 alle cinque celle per 18 microlitri di PBS. Per il parto cellulare, dopo aver confermato la mancanza di risposta al dito del dito, scruffare il mouse immobilizzando il cranio. Posizionare la punta di una pipetta contenente quattro unità di ialuronidasi per microlitro di PBS vicino al laccio del topo con un angolo di 45 gradi e somministrare tre microlitri di sospensione di ialuronidasi in ciascuna narice.Posizionare l'animale a faccia in su su un tampone pulito per cinque minuti prima di ripetere il trattamento quattro volte per un totale di 100 unità di trattamento con ialuronidasi. Dopo l'ultimo trattamento, riposizionare il mouse sul pad per 30 minuti, prima di trattenere il mouse come appena dimostrato. Con la testa immobilizzata, somministrare tre microlitri della sospensione delle cellule staminali mesenchimali in ogni narice per un periodo di tre secondi per consegna della soluzione, tenendo il mouse in posizione per 30 secondi fino a quando le gocce del campione non sono completamente scomparse.Dopo due minuti, ripetere la consegna fino a tre volte fino a quando non è stato consegnato l'intero volume della cellula staminale mesenchimale. Quindi, riportare il mouse nella sua gabbia con il monitoraggio fino alla piena rimisurata. Per monitorare la migrazione delle cellule staminali mesenchimali mediante risonanza magnetica, posizionare il mouse anestetizzato sul supporto di imaging dell'imager MR.Quindi, fissare l'animale in posizione e spostare il supporto al centro della bobina di risonanza magnetica. Impostare il tempo di ripetizione su 1500 millisecondi e il tempo di eco su 2,8 millisecondi. Quindi, impostare il campo visivo su 16 per 16 millimetri, la matrice di acquisizione a 128 per 128 e lo spessore della fetta a 0,75 per 0,8 millimetri con quattro medie di segnale e un angolo di capovolgimento di 90 gradi per acquisire scansioni ponderate a stella T2 utilizzando una sequenza di eco di rotazione.Dopo aver completato le scansioni, ritrarre il supporto del mouse dal centro della bobina della risonanza magnetica e riportare il mouse nella gabbia con il monitoraggio fino alla completa rimidulità. Per tenere traccia e quantificare le cellule staminali mesenchimali etichettate sulle immagini ponderate a stelle T2, aprire i dati nel software di snap del caso IT e selezionare l'etichetta attiva. Per creare segmentazioni delle aree di ipointense e della lesione o di altre parti cerebrali di interesse, utilizzando colori di etichetta diversi per ogni segmento.Utilizzare lo strumento poligono nella barra degli strumenti principale per selezionare le aree di ipointense che rappresentano l'ossido di ferro super paramagnetico etichettato come cellule staminali mesenchimali e fare clic su accetta. Le aree segmentate appariranno nello stesso colore dell'etichetta attiva assegnata a quel particolare segmento. Quando tutte le fette sono state segmentate, utilizzare lo strumento bisturi per sviluppare una mappa 3D delle aree segmentate per rappresentare la distribuzione delle cellule staminali mesenchimali in tutto il cervello.Per eseguire un'analisi quantitativa del volume e della media di intensità delle aree di ipointense segmentate che rappresentano le celle etichettate, fare clic sulla segmentazione e selezionare volume e statistiche. 24 ore dopo la consegna intranasale, le cellule staminali mesenchimali con ossido di ferro super paramagnetico etichettate come forti aree ipointense mediali alla lesione corticale sulle immagini ponderate a stelle T2, indicando la migrazione mirata dell'ossido di ferro super paramagnetico al sito della lesione. Questa migrazione rimane visibile fino a 14 giorni dopo la consegna senza alcuna notevole riduzione del segnale.Gli animali feriti trattati con PBS non mostrano aree ipointense in nessun momento, indicando che le aree di ipointense osservate corrispondono all'ossido di ferro super paramagnetico etichettato come cellule staminali mesenchimali e non sono dovute a artefatti del segnale. La bio-distribuzione delle cellule staminali mesenchimali etichettate può essere vista usando la ricostruzione 3D, istologicamente mediante colorazione blu prussiana, o mediante rilevamento di florescence di ossido di ferro super paramagnetico taggato FITC all'interno delle cellule staminali mesenchimali etichettate. Assicurati di convalidare i risultati della risonanza prima di tutto con l'estologia o altri metodi.Poiché le particelle super magnetiche di ossido di ferro possono rimanere nei tessuti dopo la morte della cellula, portando a falsi segnali positivi. Seguendo questa procedura, è possibile applicare un possibile tracciamento temperato non invasivo nella quantificazione per rispondere a domande riguardanti l'affinamento delle capacità e la ritenzione di cellule staminali mesenchimali nel cervello. Dopo questo sviluppo, questa tecnica ha spianato la strada ai ricercatori nel campo della medicina rigenerativa per esplorare metodi per migliorare la leccatura cellulare in aree specifiche del cervello.

Research

JoVE Journal

Medicine

MRI-guided Disruption of the Blood-brain Barrier using Transcranial Focused Ultrasound in a Rat Model

MRI-guidato Interruzione della barriera emato-encefalica transcranica con ultrasuoni focalizzati in un modello murino

Focused ultrasound (FUS) disruption of the blood-brain barrier (BBB) is an increasingly investigated technique for circumventing the BBB1-5. The BBB is a ...

Ricerca

Medicina

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

In vivo 19 F MRI per il tracciamento cellulare

In vivo 19F MRI allows quantitative cell tracking without the use of ionizing radiation. It is a noninvasive technique that can be applied to humans. ...

Stretch in Brain Microvascular Endothelial Cells (cEND) as an In Vitro Traumatic Brain Injury Model of the Blood Brain Barrier

Stretch in Brain Microvascular Endothelial Cells cEND as an In Vitro Traumatic Brain Injury Model of the Blood Brain Barrier

Stretch in microvascolari cerebrali cellule endoteliali (CEND) come<em&gt; In Vitro</em&gt; Trauma cranico modello della barriera ematoencefalica

Due to the high mortality incident brought about by traumatic brain injury (TBI), methods that would enable one to better understand the underlying ...

Controlled Cortical Impact Model for Traumatic Brain Injury

Controllata corticale modello Impact per trauma cranico

Every year over a million Americans suffer a traumatic brain injury (TBI).  Combined with the incidence of TBIs worldwide, the physical, emotional, ...

A Novel Model of Mild Traumatic Brain Injury for Juvenile Rats

Un modello Novel di Mild Traumatic Brain Injury per ratti giovani

Despite growing evidence that childhood represents a major risk period for mild traumatic brain injury (mTBI) from sports-related concussions, motor ...

Murine Model of Femoral Artery Wire Injury with Implantation of a Perivascular Drug Delivery Patch

Modello murino di dall&#39;arteria femorale Wire Injury con impianto di una Perivascolare Drug Delivery Patch

Percutaneous interventions including balloon angioplasty and stenting have been used to restore blood flow in vessels with occlusive vascular disease. ...

In Vivo Imaging and Tracking of Technetium-99m Labeled Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells in Equine Tendinopathy

In Vivo Imaging and Tracking of Technetium-99m Labeled Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells in Equine Tendinopathy

In Vivo Imaging e tracciamento di tecnezio-99m etichetta cellule staminali mesenchimali del midollo osseo in Equine Tendinopatia

Recent advances in the application of bone marrow mesenchymal stem cells (BMMSC) for the treatment of tendon and ligament injuries in the horse suggest ...

Studying Pancreatic Cancer Stem Cell Characteristics for Developing New Treatment Strategies

Studiare cancro del pancreas staminali caratteristiche cellulari per lo sviluppo di nuove strategie di trattamento

Pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) contains a subset of exclusively tumorigenic cancer stem cells (CSCs) which have been shown to drive tumor ...

A Tissue Displacement-based Contusive Spinal Cord Injury Model in Mice

Un modello di lesioni del midollo spinale contusivo basato sullo spostamento tissutale nei topi

Producing a consistent and reproducible contusive spinal cord injury (SCI) is critical to minimizing behavioral and histological variabilities between ...

A Mouse Model of Single and Repetitive Mild Traumatic Brain Injury

Un modello di mouse del singolo e ripetitivo dolore cerebrale traumatico lieve

Mild Traumatic Brain Injury (mTBI) can result in the acute loss of brain function, including a period of confusion, a loss of consciousness (LOC), focal ...