Name: in vivo infection with leishmania amazonensis to evaluate parasite virulence in mice
Uploaded: 2020-02-20T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice at JoVE.com

Vi vil gerne takke prof. Dr. Niels Olsen Saraiva Câmara fra Animal Center of the Biomedical Sciences Institute ved Universitetet i São Paulo for støtte og prof. Dr. Silvia Reni Uliana for at give glasvæv slibemaskine. Dette arbejde blev støttet af Sao Paulo Research Foundation (FAPESP - MFLS' tilskud 2017/23933-3).

Alle forsøgsprocedurer blev godkendt af Animal Care and Use Committee ved Institute of Bioscience ved Universitetet i São Paulo (CEUA 342/2019), og blev gennemført i overensstemmelse med anbefalingerne og politikkerne for pleje og anvendelse af laboratoriedyr i São Paulo State (Lei Estadual 11.977, de 25/08/2005) og den brasilianske regering (Lei Federal 11.794, de 08/10/2008). Alle trin, der er beskrevet i afsnit 1-5, skal udføres aseptisk inde i laminarflowskabe. Personlige værnemidler bør udnyttes under håndte...

In vivo infektion assay beskrevet i denne protokol giver enhver forsker til at evaluere in vivo kutan leishmaniasis overvejer vært-parasit interaktion i et systemisk scenario. Disse analyser er blevet brugt af mange grupper22,24,27,29,31,32,34,49 og her ha...

Leishmaniases er verdensomspændende parasitære smitsomme sygdomme , der repræsenterer vigtige udfordringer i udviklingslandene og er anerkendt som en af de vigtigste forsømte tropiske sygdomme af Verdenssundhedsorganisationen1,2. Leishmaniases er kendetegnet ved kutane, slimhinde, og / eller visceral manifestationer. Kutan leishmaniasis er normalt forårsaget af L. amazonensis, L. mexicana, L. braziliensis, L. guyanensis, L. major, L. tropica og L. aethiopica3. Denne form for sygdommen er ofte selvhelbredende hos mennesker på grund af induktion af beskyttende cellulære immunrespons. Men, cellulære immunrespons kan mislykkes, og sygdommen kan udvikle sig til at formidlecutan leishmaniasis4,5. Der findes ingen vaccine på grund af mangfoldigheden blandt leishmaniaarter og er vært for genetiske baggrunde6,7. Behandlingsmuligheder er også begrænset, da de fleste af de aktuelt tilgængelige lægemidler er enten dyre, giftige og/eller kan kræve langtidsbehandling8,9. Desuden har der været rapporter om resistens over for lægemidler mod de tilgængelige behandlinger10,11.
Det forårsagende middel af leishmaniases er den protozoiske parasit Leishmania. Parasitten præsenterer to forskellige morfologiske former i sin livscyklus: promastigotes, den flagellated form findes i sandfluer; og amastigotes, den intracellulære form findes i parasitophorous vakuoler af pattedyr vært makrofager12,13. Amastigotes evne til at invadere, overleve, og kopiere på trods af forsvarsmekanismer hvirveldyr værtens makrofager er underlagt mange undersøgelser14,15,16,17. Derfor har flere forskergrupper beskrevet in vitro makrofag infektion assays at vurdere virkningen af specifikke miljømæssige faktorer, samt parasit og vært gener på parasitten infectivity. Denne analyse giver flere fordele, såsom evnen til at tilpasse undersøgelser til en høj gennemløb format, relativt kortere periode for at opnå resultater, og reduceret antal laboratoriedyr ofret18. Resultaterne af in vitro-analyser er dog begrænsede , fordi de ikke altid replikerer in vivo-undersøgelser14,19,20,21. In vivo-analyser giver et systemisk fysiologisk overblik over værtsparasittens interaktion, som ikke kan efterlignes fuldt ud af in vitro-analyser. For eksempel kan immunologiske undersøgelser udføres gennem immunhistokemiske analyser fra indsamlede fodpad væv sektioner eller endda fra popliteal lymfeknuder til analyse af de genvundne immunceller22.
Dyr bruges ofte som model for sygdomme hos mennesker i biologisk og biomedicinsk forskning for bedre at forstå de underliggende fysiologiske mekanismer i sygdommene23. I tilfælde af leishmaniasis påvirker ruten, stedet eller dosis af podning sygdomsresultatet24,25,26,27. Endvidere er modtagelighed og modstandsdygtighed over for infektion hos mennesker og mus stærkt reguleret af værtens genetiske baggrund og parasit4,5,22,28,29,30,31. BALB/c mus er meget modtagelige for L. amazonensis kutan infektion, der viser en hurtig sygdomsprogression med parasitternes formidling til lymfeknuder, milt, og lever32. Da sygdommen kan udvikle sig til kutane metastaser, infektionen kan være dødelig. I modsætning hertil udvikler C57BL/6 mus ofte kroniske læsioner med vedvarende parasitbelastninger i L. amazonensisinfektion analyser33. Derved, L. amazonensis infektion med denne særlige musearter er blevet betragtet som en fremragende model til at studere kroniske former for kutan leishmaniasis hos mennesker, fordi det efterligner sygdommen progression bedre end BALB / c mus infektion model5,34.
Derfor foreslår vi, at murine in vivo infektion er en nyttig metode til Leishmania virulens fysiologiske undersøgelser, der gælder for sygdomme hos mennesker, så et systemisk billede af host-parasit interaktion. Revisiting veletablerede analyser22, vi præsenterer her en samlet trin-for-trin protokol af in vivo infektion af C57BL/6 mus med L. amazonensis, der omfatter parasitten differentiering i aksoniske amastigotes, mus footpad kutan vaccination, læsion udvikling, og parasit belastning bestemmelse. Denne protokol kan tilpasses andre mus stammer og Leishmania arter, der forårsager kutane leishmaniases. Afslutningsvis, den metode, der præsenteres her er afgørende for at identificere nyeanti-Leishmania narkotika mål og vacciner, samt i fysiologiske undersøgelser af værten immun og metaboliske reaktioner på Leishmania infektion.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>96-well plate</td>
			<td>Greiner bio-ne</td>
			<td>655180</td>
			<td>A flat-bottom plate for limiting dilution assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>adenine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A8626</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>caliper</td>
			<td>Mitutoyo</td>
			<td>700-118-20</td>
			<td>A caliper to measure the thickness of footpad</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cell culture flask</td>
			<td>Corning</td>
			<td>353014</td>
			<td>A 25 cm2 volume cell culture flask to cultivate Leishmania parasite</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5804R</td>
			<td>An equipament used for separating samples based on its density</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CO2 incubator 34 &#176;C</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>3110</td>
			<td>An incubator for amastigotes differentiation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ethanol</td>
			<td>Merck</td>
			<td>K50237083820</td>
			<td>A disinfectant for general items</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fetal bovine serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12657-029</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glass tissue grinder tube</td>
			<td>Thomas Scientific</td>
			<td>3431 E04</td>
			<td>A tube to collect and disrupt infected footpad tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glucose</td>
			<td>Synth</td>
			<td>G1008.01.AH</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GraphPad Prism Software</td>
			<td>GraphPad</td>
			<td></td>
			<td>A software used to plot the data and calculate statistical significance</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hemin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H-2250</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES</td>
			<td>Promega</td>
			<td>H5303</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>incubator 25 &#176;C</td>
			<td>Fanem</td>
			<td>347CD</td>
			<td>An incubator for promastigotes cultivation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>TMS</td>
			<td>An equipament used to visual analyze the promastigote and amastigote cultures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isoflurane</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>An inhalant anesthetics for mice (3-5%)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>laminar flow cabinet</td>
			<td>Veco</td>
			<td>VLFS-09</td>
			<td>A biosafety cabinet used for aseptical work area</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>M199 cell culture media</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>31100-035</td>
			<td>A cell culture media for Leishmania cultivation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microcentrifuge tube</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>MCT150C</td>
			<td>A microtube used for sample collection, processing and storage</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>multichanel pipette</td>
			<td>Labsystems</td>
			<td>F61978</td>
			<td>A multichannel pipette used for limiting dilution assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3</td>
			<td>Merck</td>
			<td>6329</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaOH</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S8045</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neubauer chamber</td>
			<td>HBG</td>
			<td>2266</td>
			<td>A hemocytometer to count the parasite suspension</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>optical microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>E200</td>
			<td>An optical equipament used to count parasite</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>parafilm</td>
			<td>Bemis</td>
			<td>349</td>
			<td>A flexible and resistant plastic to seal the plate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>penicillin/streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140122</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes</td>
			<td>TPP</td>
			<td>93100</td>
			<td>A sterile dish to dissect the footpad tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pipetman kit</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>F167360</td>
			<td>A micropipette kit containing four pipettors (P2 P20 P200 P1000)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>scale</td>
			<td>Quimis</td>
			<td>BG2000</td>
			<td>An equipament used to weigh collected footpad lesions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>scalpel</td>
			<td>Solidor</td>
			<td>10237580026</td>
			<td>A scalpel to cut and collect footpad tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>serological pipette 10 mL</td>
			<td>Nest</td>
			<td>327001</td>
			<td>A sterile pipette used for transfering mililiter volumes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tips</td>
			<td>Axygen</td>
			<td></td>
			<td>A pipette tip used for transfering microliter volumes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan blue</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15250-061</td>
			<td>A dye used to count viable parasites</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>trypticase peptone</td>
			<td>Merck</td>
			<td></td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tuberculin syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>305945</td>
			<td>A syringe with 27G needle to inoculate the parasite suspension</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vivo infection with leishmania amazonensis to evaluate parasite virulence in mice

Leishmania spp. er protozoiske parasitter, der forårsager leishmaniases, sygdomme, der præsenterer et bredt spektrum af kliniske manifestationer fra kutane til viscerallæsioner. I øjeblikket, 12 millioner mennesker skønnes at være smittet med Leishmania på verdensplan og over 1 milliard mennesker lever med risiko for infektion. Leishmania amazonensis er endemisk i Central-og Sydamerika og fører normalt til kutanform af sygdommen, som kan være direkte visualiseret i et dyr model. Derfor l. amazonensis stammer er gode modeller for kutan leishmaniasis undersøgelser, fordi de også er let dyrkes in vitro. C57BL/6 mus efterligner L. amazonensis-drevetsygdomsprogression observeret hos mennesker og betragtes som en af de bedste mus stammer model for kutan leishmaniasis. I hvirveldyr vært, disse parasitter bebor makrofager på trods af forsvarsmekanismer af disse celler. Flere undersøgelser bruger in vitro makrofag infektion assays at evaluere parasitten infektiviet under forskellige betingelser. In vitro-metoden er imidlertid begrænset til et isoleret cellesystem, der ser bort fra skadegørerens respons. Her udarbejder vi en in vivo murine infektion metode, der giver en systemisk fysiologisk oversigt over host-parasit interaktion. Den detaljerede protokol for in vivo infektion af C57BL/6 mus med L. amazonensis omfatter parasit differentiering i infektiøse amastigotes, mus footpad kutan vaccination, læsion udvikling, og parasit belastning bestemmelse. Vi foreslår denne veletablerede metode som den mest hensigtsmæssige metode til fysiologiske undersøgelser af værtens immun- og metaboliske reaktioner på kutan leishmaniasis.

Leishmania protozoparasitter findes i to udviklingsmæssige former i løbet af deres livscyklus i hvirvelløse dyr og hvirveldyr værter: promastigotes, de promastigotes, de promastigotes, de promastigoter, de promastigoter, de promastigoter, de promastiske former findes i lumen af den kvindelige sandflue; og amastigotes, de proliferatformer, der findes i de parasitophorøse vakuoler i pattedyrs værtsceller. Promastigotes har en aflang krop på ca. 1,5 μm bred og 20 μm lang, m...

Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice at JoVE.com

In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice

Her præsenterer vi en samlet protokol til at evaluere den kutane infektion af mus med Leishmania amazonensis. Dette er en pålidelig metode til at studere parasit virulens, så en systemisk opfattelse af hvirveldyr vært reaktion på infektionen.

I Vivo Infektion med Leishmania amazonensis at evaluere parasit virulens i mus

Leishmania spp. are protozoan parasites that cause leishmaniases, diseases that present a wide spectrum of clinical manifestations from cutaneous to ...

Denne protokol er velegnet til at studere Leishmania virulens, fordi det giver et systemisk billede af hvirveldyr vært for kutan infektion. Den største fordel ved at vedtage denne protokol er, at det giver forskerne mulighed for at evaluere værten inflammatoriske respons og parasit replikation samtidig. Denne metode kan bruges til at karakterisere flere mål og behandlinger relateret til virulens, som kunne bringe ny indsigt i kutan leishmaniasis kontrol.Det kan også anvendes på andre mus stammer og Leishmania arter, der forårsager kutan leishmaniasis. Denne analyse har nogle kritiske trin, såsom at kræve uddannet personale, der er komfortable arbejder med mus og har erfaring med at udføre subplantar injektioner for at undgå utilsigtet eksponering for infektiøs materiale. Demonstration af proceduren vil være Dr. Ricardo Zampieri, en tekniker fra mit laboratorium.Start med voksende L.amazonensis promastigotes i en 25 centimeter kvadreret cellekultur kolbe, der indeholder 10 milliliter pro-medium, i tre dage ved 25 grader Celsius. Efter inkubationen pipettes fem milliliter logaritmisk vækstfasepromastigotekultur til en ny kolbe. Der tilsættes fem milliliter ama-medium til kolben, og den inkuberes ved 34 grader Celsius i tre til fire dage.Opdel kulturen ved at fortynde den i et forhold på en til tre med frisk ama-medium i en ny kolbe. Derefter inkubere det i yderligere tre til fem dage. Overfør en aliquot af axenic amastigotes suspension fortyndet i PBS til et Neubauer kammer og tælle de ikke-flagellated parasitter.Derefter fortyndes suspensionen i PBS i henhold til den ønskede inokulumdosis og det ønskede antal inokulum. Læg en tuberkulinsprøjte med en 27 gauge nål med den forberedte parasit suspension. Sørg for, at musen er fuldt bedøvet med en tå knivspids og inokulere 50 mikroliter af suspensionen i subplantar væv på venstre bagfodplade.Optag udviklingen af læsionen en gang om ugen ved at måle tykkelsen af de inficerede og ikke-inficerede fodpuder ved hjælp af en caliper, og beregne forskellen i tykkelse mellem de to footpads til at evaluere læsion progression. Tilsæt en milliliter pro-medium i et glasvævssliberrør pr. læsion og vejerøret. Spray 70% ethanol på footpad til desinfektion og punktafgifter dyrets fod på hælen for at udtrække den inficerede footpad.Sørg for, at saksen og snævlene steriliseres ved at holde dem gennemblødt i 70% ethanol. Placer footpad i en steril petriskål og dissekere det med de vicesser og skalpel. Indsamle alle blødt væv og kassere knoglerne.Overfør det indsamlede væv til glasvævssliberrøret, og afvej røret igen for at bestemme læsionsvægten. Homogeniser vævet 10 gange med kværnen for fuldstændig vævsafbrydelse, og lad blandingen afsrette. Saml 20 mikroliter af supernatanten og læg den i den første kolonne og første vognbane af 96 brøndpladen, tilberedt i henhold til manuskriptanvisningerne.Gentag dette trin for de næste tre baner at have firdoble resultater for hvert dyr. Homogeniser hver brønd 10 gange ved hjælp af en multikanalpipette, og overfør 20 mikroliter af den fortyndede prøve fra den første til den anden kolonne. Fortsætte den serielle fortynding, indtil den sidste kolonne er nået, og de sidste 20 mikroliter af den fortyndede prøve kasseres.Seal pladen med film, og inkubere den ved 25 grader Celsius i syv dage i et fugtigt kammer. Efter inkubationen analyseres pladen under et omvendt mikroskop for at bestemme den sidste parasitholdige brønd for hver vognbane. Leishmania protozoiske parasitter findes i to udviklingsmæssige former i løbet af deres livscyklus i hvirvelløse og hvirveldyr værter: promastigotes og amastigotes.Axenic betingelser kan simulere forskellige vært miljøer in vitro, opretholde parasitmorfologi og levedygtighed. Axenic betingelser for amastigotes efterligne det sure miljø og øget temperatur af hvirveldyr værter. Promastigotes vil differentiere i amastigotes under disse betingelser.Når de overføres til neutral pH og inkuberes ved 25 grader Celsius, axenic amastigotes omdanne tilbage til promastigotes. Virulensforskellen af vild type og Leishmania Iron Regulator 1 knockout stammer blev observeret på inficerede musefodklodser. LIR1 regulerer intracellulære jernniveauer i Leishmania, mægle jern eksport og forhindre dens intracellulære ophobning til giftige niveauer.Infektionen assay, der omfatter forskellen i hævelse og læsion progression viste, at LIR1 er afgørende for L.amazonensis in vivo virulence. Parasitbelastningen blev bestemt ved at udføre en begrænsende fortyndingsanalyse fra de inficerede læsioner. Læsionerne af LIR1 knockout-inficerede mus indeholder 10 til de seks gange færre parasitter end af den vilde type Leishmania inficerede mus, afslører, at fraværet af LIR1 forhindrer intracellulær replikation af amastigotter.En af de vigtigste ting at huske, når du udfører denne procedure er at bruge Leishmania kulturer, der blev passaget in vitro mindre end ti gange for at undgå tab af parasit virulence. Ud over denne procedure, du kan bruge in vitro infektion assays. Dette er dog en begrænset metode, fordi den ikke giver et systemisk fysiologisk overblik over værtsparasittens interaktion.Denne in vivo-metode er den bedste metode til vurdering af systemiske reaktioner for kutan leishmaniasis, såsom kvantificering af serumbiomarkører i genvundne værtsvæv til yderligere immunologiske undersøgelser.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice

In vivo Imaging of Transgenic Leishmania Parasites in a Live Host

In vivo Imaging of Transgenic Leishmania Parasites in a Live Host

Distinct species of Leishmania, a protozoan parasite of the family Trypanosomatidae, typically cause different human disease manifestations. The most ...

Measurement of &#947;HV68 Infection in Mice

Measurement of ÃƒÅ½Ã‚Â³HV68 Infection in Mice

Måling af γHV68 infektion i Mus

&gamma;-Herpesviruses (&gamma;-HVs) are notable for their ability to establish latent infections of lymphoid cells1. The narrow host range of human ...

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

Brug af kunstig Sputum Medium til Test antibiotikum Effekt mod<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; I forhold mere relevante for cystisk fibrose Lung

There  is growing concern about the relevance of in vitro antimicrobial  susceptibility tests when applied to isolates of P. aeruginosa from  cystic ...

A Parasite Rescue and Transformation Assay for Antileishmanial Screening Against Intracellular Leishmania donovani Amastigotes in THP1 Human Acute Monocytic Leukemia Cell Line

A Parasite Rescue and Transformation Assay for Antileishmanial Screening Against Intracellular Leishmania donovani Amastigotes in THP1 Human Acute Monocytic Leukemia Cell Line

En Parasite Rescue og transformationsassay for Antileishmanial Screening mod intracellulære<em&gt; Leishmania donovani</em&gt; Amastigoter i THP1 human akut monocytisk leukæmi cellelinje

Leishmaniasis is  one of the world's most neglected diseases, largely affecting the  poorest of the poor, mainly in developing countries. Over 350 million ...

The Utilization of Oropharyngeal Intratracheal PAMP Administration and Bronchoalveolar Lavage to Evaluate the Host Immune Response in Mice

Udnyttelsen af ​​Oropharyngeal Intratracheal PAMP Administration og Bronchoalveolære at evaluere Host immunrespons i mus

The host immune response to pathogens is a complex biological process. The majority of in vivo studies classically employed to characterize host-pathogen ...

Applying an Inducible Expression System to Study Interference of Bacterial Virulence Factors with Intracellular Signaling

Anvende en Inducerbar Expression System til Studieinformationen Interferens med bakteriel virulensfaktorer med intracellulær signalering

The technique presented here allows one to analyze at which step a target protein, or alternatively a small molecule, interacts with the components of a ...

Neutrophil Isolation and Analysis to Determine their Role in Lymphoma Cell Sensitivity to Therapeutic Agents

Neutrofil Isolering og analyse for at fastslå deres rolle i lymfom Cell Følsomhed til terapeutiske midler

Neutrophils are the most abundant (40% to 75%) type of white blood cells and among the first inflammatory cells to migrate towards the site of ...

Quantification of Intracellular Growth Inside Macrophages is a Fast and Reliable Method for Assessing the Virulence of Leishmania Parasites

Quantification of Intracellular Growth Inside Macrophages is a Fast and Reliable Method for Assessing the Virulence of Leishmania Parasites

Kvantificering af intracellulære vækst inde makrofager er en holdbar og pålidelig metode til vurdering af virulens i Leishmania parasitter

The lifecycle of Leishmania, the causative agent of leishmaniasis, alternates between promastigote and amastigote stages inside the insect and vertebrate ...

Evaluating Virulence and Pathogenesis of Aeromonas Infection in a Caenorhabditis elegans Model

Evaluating Virulence and Pathogenesis of Aeromonas Infection in a Caenorhabditis elegans Model

Evaluering af virulens og patogenese af Aeromonas infektion i en Caenorhabditis elegans Model

The human pathogen Aeromonas has been clinically shown to cause gastroenteritis, wound infections, septicemia, and urinary tract infections. Most human ...

Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice

Præcis brain mapping til at udføre gentagne In Vivo Imaging af Neuro-Immune Dynamics i mus

The central nervous system (CNS) is regulated by a complex interplay of neuronal, glial, stromal, and vascular cells that facilitate its proper function. ...