Name: in vivo infection with leishmania amazonensis to evaluate parasite virulence in mice
Uploaded: 2020-02-20T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice at JoVE.com

Vi vil gjerne takke prof. Dr. Niels Olsen Saraiva Câmara fra Animal Center of the Biomedical Sciences Institute ved Universitetet i São Paulo for støtte og prof. Dr. Silvia Reni Uliana for å gi glassvevsliperen. Dette arbeidet ble støttet av Sao Paulo Research Foundation (FAPESP - MFLS' stipend 2017/23933-3).

Alle eksperimentelle prosedyrer ble godkjent av Animal Care and Use Committee ved Institute of Bioscience ved Universitetet i São Paulo (CEUA 342/2019), og ble gjennomført i samsvar med anbefalingene og retningslinjene for omsorg og bruk av laboratoriedyr i São Paulo State (Lei Estadual 11.977, de 25/08/2005) og den brasilianske regjeringen (Lei Federal 11.794, de 08/10/2008). Alle trinn som er beskrevet i avsnitt 1-5 bør utføres aseptisk inne i lamimerstrømningsskap. Personlig verneutstyr bør benyttes mens du hå...

In vivo infeksjon analyse beskrevet i denne protokollen tillater enhver forsker å evaluere in vivo kutan leishmaniasis vurderer verten-parasitt interaksjon i et systemisk scenario. Disse analysene har blitt brukt av mange grupper22,24,27,29,31,32,34,49 og ...

Leishmaniases er verdensomspennende utbredtparasittiske smittsomme sykdommer som representerer viktige utfordringer i utviklingsland og er anerkjent som en av de viktigste forsømte tropiske sykdommene av Verdens helseorganisasjon1,2. Leishmaniases er preget av kutan, slimhinne, og / eller visceral manifestasjoner. Kutan leishmaniasis er vanligvis forårsaket av L. amazonensis, L. mexicana, L. braziliensis, L. guyanensis, L. major, L. tropica og L. aethiopica3. Denne sykdomsformen er ofte selvhelbredende hos mennesker på grunn av induksjon av beskyttende cellulær immunrespons. Imidlertid kan den cellulære immunresponsen mislykkes, og sykdommen kan utvikle seg til spredt kutan leishmaniasis4,5. Det er ingen tilgjengelig vaksine på grunn av mangfoldet blant Leishmania arter og vert genetisk bakgrunn6,7. Behandlingstilbud er også begrenset som de fleste av de tilgjengelige stoffene er enten dyre, giftige, og / eller kan kreve langsiktig behandling8,9. Dessuten har det vært rapporter om resistens mot tilgjengelige behandlinger10,11.
Den forårsakende agenten til leishmaniases er den protozoiske parasitten Leishmania. Parasitten presenterer to distinkte morfologiske former i livssyklusen: promastigotes, den flagellated form funnet i sandfluer; og amastigotes, den intracellulære formen som finnes i parasitophorous vacuoles av pattedyr vert makrofager12,13. Amastigotes evne til å invadere, overleve og replikere til tross for forsvarsmekanismene til virveldyrvertens makrofager er underlagt mange studier14,15,16,17. Derfor har flere forskningsgrupper beskrevet in vitro makrofag infeksjon analyser for å evaluere virkningen av spesifikke miljøfaktorer, samt parasitt og vert gener på parasitt ensmittivitet. Denne analysen presenterer flere fordeler, for eksempel evnen til å tilpasse studier til et høyt gjennomstrømningsformat, relativt kortere tidsperiode for å oppnå resultater, og redusert antall laboratoriedyr ofret18. Men funnene av in vitro analyser er begrenset fordi de ikke alltid replikere in vivo studier14,19,20,21. In vivo assays gir en systemisk fysiologisk oversikt over host-parasittinteraksjonen, som ikke kan etterlignes fullt ut av in vitro-analyser. For eksempel kan immunologiske studier utføres gjennom immunohistokjemiske analyser fra innsamlede fotputevevseksjoner eller til og med fra popliteale lymfeknuter for analyse av de gjenopprettede immuncellene22.
Dyr brukes ofte som modell for menneskelige sykdommer i biologisk og biomedisinsk forskning for å bedre forstå de underliggende fysiologiske mekanismene til sykdommene23. I tilfelle av leishmaniasis, påvirker ruten, stedet eller dosen av inokulasjon sykdomsutfallet24,25,26,27. Videre er mottakelighet og motstand mot infeksjonen hos mennesker og mus sterkt regulert av den genetiske bakgrunnen til verten og parasitten4,5,22,28,29,30,31. BALB/c-mus er svært utsatt for L. amazonensis kutan infeksjon, som viser en rask sykdomsprogresjon med parasittenes spredning til lymfeknuter, milt og lever32. Ettersom sykdommen kan utvikle seg til kutane metastaser, kan infeksjonen være dødelig. I motsetning utvikler C57BL/6 mus ofte kroniske lesjoner med vedvarende parasittbelastning i L. amazonensisinfeksjonsanalyser 33. Dermed har L. amazonensisinfeksjon med denne spesielle musearten blitt ansett som en utmerket modell for å studere kroniske former for kutan leishmaniasis hos mennesker, fordi den etterligner sykdomsprogresjonen bedre enn BALB / c mus infeksjonmodell5,34.
Derfor foreslår vi at murine in vivo infeksjon er en nyttig metode for Leishmania virulence fysiologiske studier som gjelder for menneskelig sykdom, slik at et systemisk syn på vertsparasittinteraksjonen. Revisiting veletablerte analyser22, presenterer vi her en kompilert trinnvis protokoll av in vivo infeksjon av C57BL/6 mus med L. amazonensis som består parasittdifferensiering i axenic amastigotes, mus fotpute kutan inokulasjon, lesjon utvikling, og parasitt last bestemmelse. Denne protokollen kan tilpasses andre mus stammer og Leishmania arter som forårsaker kutane leishmaniases. Til slutt er metoden som presenteres her avgjørende for å identifisere nyeanti-Leishmania narkotikamål og vaksiner, samt i fysiologiske studier av vertens immun- og metabolske respons på Leishmania-infeksjon.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>96-well plate</td>
			<td>Greiner bio-ne</td>
			<td>655180</td>
			<td>A flat-bottom plate for limiting dilution assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>adenine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A8626</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>caliper</td>
			<td>Mitutoyo</td>
			<td>700-118-20</td>
			<td>A caliper to measure the thickness of footpad</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cell culture flask</td>
			<td>Corning</td>
			<td>353014</td>
			<td>A 25 cm2 volume cell culture flask to cultivate Leishmania parasite</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5804R</td>
			<td>An equipament used for separating samples based on its density</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CO2 incubator 34 &#176;C</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>3110</td>
			<td>An incubator for amastigotes differentiation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ethanol</td>
			<td>Merck</td>
			<td>K50237083820</td>
			<td>A disinfectant for general items</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fetal bovine serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12657-029</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glass tissue grinder tube</td>
			<td>Thomas Scientific</td>
			<td>3431 E04</td>
			<td>A tube to collect and disrupt infected footpad tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glucose</td>
			<td>Synth</td>
			<td>G1008.01.AH</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GraphPad Prism Software</td>
			<td>GraphPad</td>
			<td></td>
			<td>A software used to plot the data and calculate statistical significance</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hemin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H-2250</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES</td>
			<td>Promega</td>
			<td>H5303</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>incubator 25 &#176;C</td>
			<td>Fanem</td>
			<td>347CD</td>
			<td>An incubator for promastigotes cultivation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>TMS</td>
			<td>An equipament used to visual analyze the promastigote and amastigote cultures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isoflurane</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>An inhalant anesthetics for mice (3-5%)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>laminar flow cabinet</td>
			<td>Veco</td>
			<td>VLFS-09</td>
			<td>A biosafety cabinet used for aseptical work area</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>M199 cell culture media</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>31100-035</td>
			<td>A cell culture media for Leishmania cultivation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microcentrifuge tube</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>MCT150C</td>
			<td>A microtube used for sample collection, processing and storage</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>multichanel pipette</td>
			<td>Labsystems</td>
			<td>F61978</td>
			<td>A multichannel pipette used for limiting dilution assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3</td>
			<td>Merck</td>
			<td>6329</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaOH</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S8045</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neubauer chamber</td>
			<td>HBG</td>
			<td>2266</td>
			<td>A hemocytometer to count the parasite suspension</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>optical microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>E200</td>
			<td>An optical equipament used to count parasite</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>parafilm</td>
			<td>Bemis</td>
			<td>349</td>
			<td>A flexible and resistant plastic to seal the plate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>penicillin/streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140122</td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes</td>
			<td>TPP</td>
			<td>93100</td>
			<td>A sterile dish to dissect the footpad tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pipetman kit</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>F167360</td>
			<td>A micropipette kit containing four pipettors (P2 P20 P200 P1000)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>scale</td>
			<td>Quimis</td>
			<td>BG2000</td>
			<td>An equipament used to weigh collected footpad lesions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>scalpel</td>
			<td>Solidor</td>
			<td>10237580026</td>
			<td>A scalpel to cut and collect footpad tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>serological pipette 10 mL</td>
			<td>Nest</td>
			<td>327001</td>
			<td>A sterile pipette used for transfering mililiter volumes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tips</td>
			<td>Axygen</td>
			<td></td>
			<td>A pipette tip used for transfering microliter volumes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan blue</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15250-061</td>
			<td>A dye used to count viable parasites</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>trypticase peptone</td>
			<td>Merck</td>
			<td></td>
			<td>Supplement added to M199 cell culture media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tuberculin syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>305945</td>
			<td>A syringe with 27G needle to inoculate the parasite suspension</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vivo infection with leishmania amazonensis to evaluate parasite virulence in mice

Leishmania spp. er protozoiske parasitter som forårsaker leishmaniases, sykdommer som presenterer et bredt spekter av kliniske manifestasjoner fra kutane til viscerale lesjoner. For tiden er 12 millioner mennesker anslått å være smittet med Leishmania over hele verden og over 1 milliard mennesker lever i fare for infeksjon. Leishmania amazonensis er endemisk i Sentral- og Sør-Amerika og fører vanligvis til den kutane formen av sykdommen, som kan visualiseres direkte i en dyremodell. Derfor er L. amazonensis stammer gode modeller for kutan leishmaniasis studier fordi de er også lett dyrket in vitro. C57BL/6 mus etterligner L. amazonensis-drevetsykdomsprogresjon observert hos mennesker og regnes som en av de beste musstammermodellen for kutan leishmaniasis. I virveldyrverten bor disse parasittene makrofager til tross for forsvarsmekanismene til disse cellene. Flere studier bruker in vitro makrofag infeksjon analyser for å evaluere parasitten infectivity under ulike forhold. In vitro-tilnærmingen er imidlertid begrenset til et isolert cellesystem som ser bort fra organismens respons. Her utarbeider vi en in vivo murine infeksjonsmetode som gir en systemisk fysiologisk oversikt over vertsparasittinteraksjonen. Den detaljerte protokollen for in vivo-infeksjonen av C57BL/6 mus med L. amazonensis består av parasittdifferensiering i infeksiøse amastigoter, mus fotpute kutan inokulasjon, lesjonsutvikling og parasittbelastningsbestemmelse. Vi foreslår denne veletablerte metoden som den mest tilstrekkelige metoden for fysiologiske studier av vertens immun- og metabolske respons er på kutan leishmaniasis.

Leishmania protozoan parasitter finnes i to utviklingsformer i løpet av livssyklusen i virvelløse og virvelløse verter: promastigotes, de proliferative formene som finnes i lumen av den kvinnelige sandfluen; og amastigotes, de proliferative former som finnes i parasitophorous vacuoles av pattedyr vertsceller. Promastigotes har en langstrakt kropp på ca. 1,5 μm bred og 20 μm lang, med et flagellum som vanligvis kommer fra fremre ekstremitet. Amastigotes har en avrundet eller...

Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice at JoVE.com

In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice

Her presenterer vi en kompilert protokoll for å evaluere kutan infeksjon av mus med Leishmania amazonensis. Dette er en pålitelig metode for å studere parasittvirulens, noe som gir et systemisk syn på virveldyrvertens respons på infeksjonen.

In Vivo Infeksjon med Leishmania amazonensis å evaluere parasitt virulens hos mus

Leishmania spp. are protozoan parasites that cause leishmaniases, diseases that present a wide spectrum of clinical manifestations from cutaneous to ...

Denne protokollen er egnet for å studere Leishmania virulens, fordi det gir et systemisk syn på virveldyrverten til kutan infeksjon. Den største fordelen med å vedta denne protokollen er at den tillater forskere å evaluere verten inflammatorisk respons og parasittreplikering samtidig. Denne metoden kan brukes til å karakterisere flere mål og behandlinger knyttet til virulens, noe som kan gi ny innsikt i kutan leishmaniasis kontroll.Det kan også brukes på andre mus stammer og Leishmania arter som forårsaker kutan leishmaniasis. Denne analysen har noen kritiske skritt, for eksempel å kreve opplært personell som er komfortable med å jobbe med mus og har erfaring med å utføre subplantarinjeksjoner for å unngå utilsiktet eksponering for smittsomt materiale. Å demonstrere prosedyren vil være Dr.Ricardo Zampieri, en tekniker fra laboratoriet mitt.Start med å dyrke L.amazonensis promastigotes i en 25 centimeter kvadrert cellekulturkolbe, som inneholder 10 milliliter pro-medium, i tre dager ved 25 grader Celsius. Etter inkubasjonen, pipette fem milliliter logaritmisk vekst fase promastigote kultur i en ny kolbe. Tilsett fem milliliter ama-medium til kolben, og inkuber den ved 34 grader Celsius i tre til fire dager.Del kulturen ved å fortynne den i forholdet mellom en til tre med frisk ama-medium i en ny kolbe. Deretter inkubere det i ytterligere tre til fem dager. Overfør et aliquot av akseniske amastigotes suspensjon fortynnet i PBS til et Neubauer kammer og telle de ikke-flagellated parasittene.Deretter fortynner suspensjonen i PBS i henhold til ønsket inokusdose og antall inokuler beregnet. Legg en tuberulinsprøyte med en 27 gauge nål med den tilberedte parasittsuspensjonen. Sørg for at musen er fullstendig bedøvet med en tåklem og inokuler 50 mikroliter av suspensjonen i subplantarvevet på venstre bakfotplate.Registrer utviklingen av lesjonen en gang i uken, ved å måle tykkelsen på de infiserte og ikke-infiserte fotputene ved hjelp av en kaliper, og beregn forskjellen i tykkelse mellom de to fotputene for å evaluere lesjonsprogresjon. Tilsett en milliliter pro-medium i et glassvevssliperrør per lesjon og veie røret. Spray 70% etanol på fotplaten for desinfeksjon og avgiftsdyrets fot på hælen for å trekke ut den infiserte fotplaten.Sørg for at saks og tang steriliseres ved å holde dem gjennomvåt i 70% etanol. Plasser fotplaten i en steril petriskål og dissekere den med tang og skalpell. Samle alt mykt vev og kast beinene.Overfør det oppsamlede vevet til glassvevssliperrøret og veie røret igjen for å bestemme lesjonsvekten. Homogenisere vevet 10 ganger med jeksel for fullstendig vevsforstyrrelse, og la blandingen utligning. Samle 20 mikroliter av supernatant og laste den i den første kolonnen og første kjørefelt av 96 brønnplate, utarbeidet i henhold til manuskriptet retninger.Gjenta dette trinnet for de neste tre banene for å ha quadruplicate resultater for hvert dyr. Homogeniser hver brønn 10 ganger ved hjelp av en flerkanals pipette, og overfør 20 mikroliter av den fortynnede prøven fra den første til den andre kolonnen. Fortsett seriefortynningen til den siste kolonnen er nådd, og kast de siste 20 mikroliter av den fortynnede prøven.Forsegle platen med film, og inkuber den ved 25 grader Celsius i syv dager i et fuktig kammer. Etter inkubasjonen analyserer du platen under et omvendt mikroskop for å bestemme den siste parasitten som inneholder godt for hvert kjørefelt. Leishmania protozoan parasitter finnes i to utviklingsformer i løpet av livssyklusen i virvelløse og virveldyr verter:promastigotes og amastigotes.Asikologiske forhold kan simulere ulike vertsmiljøer in vitro, opprettholde parasittmorfologi og levedyktighet. Asiske forhold for amastigotes etterligner det sure miljøet og økt temperatur på virveldyrvertene. Promastigotes vil differensiere til amastigotes under disse forholdene.Når den overføres til nøytral pH og inkuberes ved 25 grader Celsius, forvandler akseniske amastigotes tilbake til promastigotes. Virulensforskjellen av vill type og Leishmania Iron Regulator 1 knockout stammer ble observert på infiserte mus fotputer. LIR1 regulerer intracellulære jernnivåer i Leishmania, medierer jerneksport og forhindrer intracellulær akkumulering til giftige nivåer.Infeksjonsanalysen som inkluderer forskjellen i hevelse og lesjonsprogresjon viste at LIR1 er avgjørende for L.amazonensis in vivo virulens. Parasittbelastning ble bestemt ved å utføre en begrensende fortynningsanalyse fra de infiserte lesjonene. Lesjonene til LIR1 knockout-infiserte mus inneholder 10 til de seks ganger færre parasittene enn de av villtypen Leishmania-infiserte mus, og avslører at fraværet av LIR1 forhindrer intracellulær replikering av amastigotes.En av de viktigste tingene å huske når du utfører denne prosedyren er å bruke Leishmania kulturer som ble passasjer in vitro mindre enn ti ganger for å unngå tap av parasitt virulens. I tillegg til denne prosedyren kan du bruke in vitro infeksjonsanalyser. Dette er imidlertid en begrenset metode, fordi den ikke gir en systemisk fysiologisk oversikt over vertsparasittinteraksjonen.Denne in vivo-metoden er den beste tilnærmingen for å evaluere systemiske responser for kutan leishmaniasis, for eksempel kvantifisere serumbiomarkører i gjenvunnet vertsvev for videre immunologiske studier.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

In Vivo Infection with Leishmania amazonensis to Evaluate Parasite Virulence in Mice

In vivo Imaging of Transgenic Leishmania Parasites in a Live Host

In vivo Imaging of Transgenic Leishmania Parasites in a Live Host

Distinct species of Leishmania, a protozoan parasite of the family Trypanosomatidae, typically cause different human disease manifestations. The most ...

Measurement of &#947;HV68 Infection in Mice

Measurement of ÃƒÅ½Ã‚Â³HV68 Infection in Mice

Måling av γHV68 Infeksjon i Mus

&gamma;-Herpesviruses (&gamma;-HVs) are notable for their ability to establish latent infections of lymphoid cells1. The narrow host range of human ...

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

Bruk av kunstig Oppspytt Medium til Test antibiotika effekt mot<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; I Forhold mer relevant for Cystisk fibrose Lung

There  is growing concern about the relevance of in vitro antimicrobial  susceptibility tests when applied to isolates of P. aeruginosa from  cystic ...

A Parasite Rescue and Transformation Assay for Antileishmanial Screening Against Intracellular Leishmania donovani Amastigotes in THP1 Human Acute Monocytic Leukemia Cell Line

A Parasite Rescue and Transformation Assay for Antileishmanial Screening Against Intracellular Leishmania donovani Amastigotes in THP1 Human Acute Monocytic Leukemia Cell Line

En Parasite Rescue and Transformation Assay for Antileishmanial Screening mot intracellulære<em&gt; Leishmania donovani</em&gt; Amastigotes i THP1 Menneskelig Akutt monocyttisk leukemi cellelinje

Leishmaniasis is  one of the world's most neglected diseases, largely affecting the  poorest of the poor, mainly in developing countries. Over 350 million ...

The Utilization of Oropharyngeal Intratracheal PAMP Administration and Bronchoalveolar Lavage to Evaluate the Host Immune Response in Mice

Utnyttelsen av orofaryngeal røret PAMP Administrasjon og Bronchoalveolar Lavage å evaluere vertens immunrespons i Mus

The host immune response to pathogens is a complex biological process. The majority of in vivo studies classically employed to characterize host-pathogen ...

Applying an Inducible Expression System to Study Interference of Bacterial Virulence Factors with Intracellular Signaling

Påføre en induserbar Expression System for å studere forstyrrelser av bakteriell virulensfaktorer med intracellulære signal

The technique presented here allows one to analyze at which step a target protein, or alternatively a small molecule, interacts with the components of a ...

Neutrophil Isolation and Analysis to Determine their Role in Lymphoma Cell Sensitivity to Therapeutic Agents

Nøytrofile Isolering og analyse for å fastslå deres rolle i lymfom Cell Følsomhet for Terapeutiske midler

Neutrophils are the most abundant (40% to 75%) type of white blood cells and among the first inflammatory cells to migrate towards the site of ...

Quantification of Intracellular Growth Inside Macrophages is a Fast and Reliable Method for Assessing the Virulence of Leishmania Parasites

Quantification of Intracellular Growth Inside Macrophages is a Fast and Reliable Method for Assessing the Virulence of Leishmania Parasites

Kvantifisering av intracellulær vekst i makrofager er en rask og pålitelig metode for å vurdere virulens av Leishmania parasitter

The lifecycle of Leishmania, the causative agent of leishmaniasis, alternates between promastigote and amastigote stages inside the insect and vertebrate ...

Evaluating Virulence and Pathogenesis of Aeromonas Infection in a Caenorhabditis elegans Model

Evaluating Virulence and Pathogenesis of Aeromonas Infection in a Caenorhabditis elegans Model

Evaluere virulens og patogenesen av Aeromonas i en Caenorhabditis elegans modell

The human pathogen Aeromonas has been clinically shown to cause gastroenteritis, wound infections, septicemia, and urinary tract infections. Most human ...

Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice

Presis hjernekartlegging for å utføre repeterende in vivo-avbildning av nevro-immun-dynamikk hos mus

The central nervous system (CNS) is regulated by a complex interplay of neuronal, glial, stromal, and vascular cells that facilitate its proper function. ...