Name: muscle velocity recovery cycles to examine muscle membrane properties
Uploaded: 2020-02-19T14:00:00
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Cette étude a été financée principalement par les deux subventions de la Fondation Lundbeck (numéro de subvention R191-2015-931 et numéro de subvention R290-2018-751). De plus, l’étude a été soutenue financièrement par le Programme de défi de la Fondation Novo Nordisk (numéro de subvention NNF14OC0011633) dans le cadre du Consortium international de neuropathie diabétique.

Tous les sujets doivent fournir un consentement écrit avant l’examen, et le protocole doit être approuvé par le comité local d’examen éthique approprié. Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvées par le Comité régional d’éthique scientifique et l’Agence danoise de protection des données.
1. Préparation du sujet
<ol><li>Évaluer les antécédents médicaux des sujets pour s’assurer qu’ils n’ont pas de troubles antérieurs du système nerveux autres que l...

<ol>
	<li>Tankisi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathophysiology+inferred+from+electrodiagnostic+nerve+tests+and+classification+of+polyneuropathies.+Suggested+guidelines.">Pathophysiology inferred from electrodiagnostic nerve tests and classification of polyneuropathies. Suggested guidelines.</a> Clinical Neurophysiology. 116 (7), 1571-1580 (2005).</li><li>Gregorio, C. C., Hudecki, M. S., Pollina, C. M., Repasky, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+denervation+on+spectrin+concentration+in+avian+skeletal+muscle.">Effects of denervation on spectrin concentration in avian skeletal muscle.</a> Muscle and Nerve. 11 (4), 372-379 (1988).</li><li>Kotsias, B. A., Venosa, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+sodium+and+potassium+permeabilities+in+the+depolarization+of+denervated+rat+muscle+fibers.">Role of sodium and potassium permeabilities in the depolarization of denervated rat muscle fibers.</a> Journal of Physiology. 392, 301-313 (1987).</li><li>Kirsch, G. E., Anderson, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sodium+channel+kinetics+in+normal+and+denervated+rabbit+muscle+membrane.">Sodium channel kinetics in normal and denervated rabbit muscle membrane.</a> Muscle and Nerve. 9 (8), 738-747 (1986).</li><li>Stalberg, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Propagation+velocity+in+human+muscle+fibers+in+situ.">Propagation velocity in human muscle fibers in situ.</a> Acta Physiologica Scandinava Supplementum. 287, 1 (1966).</li><li>Mihelin, M., Trontelj, J. V., Stalberg, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+fiber+recovery+functions+studied+with+double+pulse+stimulation.">Muscle fiber recovery functions studied with double pulse stimulation.</a> Muscle and Nerve. 14 (8), 739-747 (1991).</li><li>Z'Graggen, W. J., Bostock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Velocity+recovery+cycles+of+human+muscle+action+potentials+and+their+sensitivity+to+ischemia.">Velocity recovery cycles of human muscle action potentials and their sensitivity to ischemia.</a> Muscle and Nerve. 39 (5), 616-626 (2009).</li><li>Bostock, H., Tan, S. V., Boerio, D., Z'Graggen, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validity+of+multi-fiber+muscle+velocity+recovery+cycles+recorded+at+a+single+site+using+submaximal+stimuli.">Validity of multi-fiber muscle velocity recovery cycles recorded at a single site using submaximal stimuli.</a> Clinical Neurophysiology. 123 (11), 2296-2305 (2012).</li><li>Z'Graggen, W. J., Troller, R., Ackermann, K. A., Humm, A. M., Bostock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Velocity+recovery+cycles+of+human+muscle+action+potentials:+repeatability+and+variability.">Velocity recovery cycles of human muscle action potentials: repeatability and variability.</a> Clinical Neurophysiology. 122 (11), 2294-2299 (2011).</li><li>Lee, J. H. F., Boland-Freitas, R., Ng, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sarcolemmal+excitability+changes+in+normal+human+aging.">Sarcolemmal excitability changes in normal human aging.</a> Muscle and Nerve. 57 (6), 981-988 (2018).</li><li>Lee, J. H. F., Boland-Freitas, R., Ng, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+differences+in+sarcolemmal+excitability+between+human+muscles.">Physiological differences in sarcolemmal excitability between human muscles.</a> Muscle and Nerve. 60 (4), 433-436 (2019).</li><li>Humm, A. M., Bostock, H., Troller, R., Z'Graggen, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+ischaemia+in+patients+with+orthostatic+hypotension+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Muscle ischaemia in patients with orthostatic hypotension assessed by velocity recovery cycles.</a> Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 82 (12), 1394-1398 (2011).</li><li>Z'Graggen, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Velocity+recovery+cycles+of+human+muscle+action+potentials+in+chronic+renal+failure.">Velocity recovery cycles of human muscle action potentials in chronic renal failure.</a> Clinical Neurophysiology. 121 (6), 874-881 (2010).</li><li>Z'Graggen, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+membrane+dysfunction+in+critical+illness+myopathy+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Muscle membrane dysfunction in critical illness myopathy assessed by velocity recovery cycles.</a> Clinical Neurophysiology. 122 (4), 834-841 (2011).</li><li>Lee, J. H., Boland-Freitas, R., Liang, C., Ng, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sarcolemmal+depolarization+in+sporadic+inclusion+body+myositis+assessed+with+muscle+velocity+recovery+cycles.">Sarcolemmal depolarization in sporadic inclusion body myositis assessed with muscle velocity recovery cycles.</a> Clinical Neurophysiology. 19 (31205-2), 1388 (2019).</li><li>Tan, S. V., Z'Graggen, W. J., Hanna, M. G., Bostock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+assessment+of+muscle+membrane+properties+in+the+sodium+channel+myotonias.">In vivo assessment of muscle membrane properties in the sodium channel myotonias.</a> Muscle and Nerve. 57 (4), 586-594 (2018).</li><li>Tan, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+assessment+of+muscle+membrane+properties+in+myotonic+dystrophy.">In vivo assessment of muscle membrane properties in myotonic dystrophy.</a> Muscle and Nerve. 54 (2), 249-257 (2016).</li><li>Tan, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Membrane+dysfunction+in+Andersen-Tawil+syndrome+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Membrane dysfunction in Andersen-Tawil syndrome assessed by velocity recovery cycles.</a> Muscle and Nerve. 46 (2), 193-203 (2012).</li><li>Tan, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chloride+channels+in+myotonia+congenita+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Chloride channels in myotonia congenita assessed by velocity recovery cycles.</a> Muscle and Nerve. 49 (6), 845-857 (2014).</li><li>Boland-Freitas, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sarcolemmal+excitability+in+the+myotonic+dystrophies.">Sarcolemmal excitability in the myotonic dystrophies.</a> Muscle and Nerve. 57 (4), 595-602 (2018).</li><li>Stalberg, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standards+for+quantification+of+EMG+and+neurography.">Standards for quantification of EMG and neurography.</a> Clinical Neurophysiology. 130 (9), 1688-1729 (2019).</li><li>Witt, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+velocity+recovery+cycles+in+neurogenic+muscles.">Muscle velocity recovery cycles in neurogenic muscles.</a> Clinical Neurophysiology. 130 (9), 1520-1527 (2019).</li><li>Kristensen, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MScanFit+motor+unit+number+estimation+(MScan)+and+muscle+velocity+recovery+cycle+recordings+in+amyotrophic+lateral+sclerosis+patients.">MScanFit motor unit number estimation (MScan) and muscle velocity recovery cycle recordings in amyotrophic lateral sclerosis patients.</a> Clinical Neurophysiology. 130 (8), 1280-1288 (2019).</li><li>Marrero, H. G., Stalberg, E. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimizing+testing+methods+and+collection+of+reference+data+for+differentiating+critical+illness+polyneuropathy+from+critical+illness+MYOPATHIES.">Optimizing testing methods and collection of reference data for differentiating critical illness polyneuropathy from critical illness MYOPATHIES.</a> Muscle and Nerve. 53 (4), 555-563 (2016).</li><li>Allen, D. C., Arunachalam, R., Mills, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Critical+illness+myopathy:+further+evidence+from+muscle-fiber+excitability+studies+of+an+acquired+channelopathy.">Critical illness myopathy: further evidence from muscle-fiber excitability studies of an acquired channelopathy.</a> Muscle and Nerve. 37 (1), 14-22 (2008).</li></ol>

Les CRVR, tels que programmés dans le logiciel d’enregistrement, sont une procédure hautement automatisée, mais il faut faire attention pour obtenir des résultats fiables. Au stade de l’enregistrement, tout en ajustant les aiguilles, il est important d’éviter de stimuler la zone de la plaque d’extrémité ou le nerf. Cela conduit généralement à de grandes secousses de l’ensemble du muscle, ce qui augmente le risque de déplacement de la stimulation et / ou l’aiguille d’enregistrement lors de l’enr...

Les études de conduction nerveuse (NCS) et l’électromyographie (EMG) sont les méthodes électrophysiologiques conventionnelles utilisées pour le diagnostic des désordres neuromusculaires. NCS permet la détection de la perte axonale et la démyélinisation dans les nerfs1, tandis que EMG peut différencier si la myopathie ou des changements neurogènes sont présents dans le muscle en raison de lésions nerveuses. Cependant, NCS ou EMG fournissent des informations limitées sur les propriétés de la membrane des fibres musculaires et les mécanismes sous-jacents de la maladie. Cette information peut être réalisée à l’aide d’électrodes intracellulaires dans les muscles isolés des biopsies musculaires2,3,4. Cependant, il est d’importance clinique d’utiliser des méthodologies utilisant des enregistrements de muscles intacts chez les patients.
La vitesse d’une deuxième action de fibre musculaire change potentiel en fonction du retard après les5premiers , et cette fonction de récupération de vitesse (ou cycle de récupération) a été montré pour changer dans les muscles dystrophiques ou denervated. Le rendement de ces enregistrements à partir de fibres musculaires simples était, cependant, trop faible pour être utile comme un outil clinique6. Cependant, Z’Graggen et Bostock ont découvert plus tard que les enregistrements multifibres, obtenus par stimulation directe et l’enregistrement à partir du même faisceau de fibres musculaires, fournissent une méthode rapide et simple d’obtenir de tels enregistrements in vivo7. Une séquence de stimuli électriques d’impulsion appariés avec des intervalles interstimulus variables (ISIs) est utilisée dans cette méthode7,8,9,10,11.
Les paramètres évalués de MVRC incluent les suivants : 1) période réfractaire relative de muscle (MRRP), qui est la durée après un potentiel d’action de muscle jusqu’à ce que le potentiel d’action suivant puisse être obtenu ; 2) la supernormalité précoce (ESN); et 3) la supernormalité tardive (LSN). ESN et LSN sont les périodes après la période réfractaire au cours de laquelle les potentiels d’action sont effectués le long de la membrane musculaire plus rapidement que la normale. L’après-potentiel dépolarisant, et l’accumulation de potassium dans les t-tubules du muscle respectivement, sont supposés que les causes principales pour les deux périodes de supernormalité.
La large applicabilité des MVRC aux troubles musculaires a été montrée dans la détection de la dépolarisation de membrane dans l’ischémie7,10,12 et l’échec rénal13, ainsi que de fournir des informations sur les anomalies de la membrane musculaire dans la myopathie maladie critique14 et la myosite du corps d’inclusion15. La rampe de fréquence et les protocoles intermittents de simulation 15 Hz et 20 Hz ont depuis été introduits. MVRCs, ainsi que ces protocoles additionnels, ont démontré les différents effets sur l’excitabilité de la membrane musculaire liées à la perte de fonction ou des mutations du gain de fonction dans divers canaux d’ions musculaires dans les canalisations d’ions musculaires hérités (c.-à-d., myotonia du canal de sodium, paramyotonia congenita16, dystrophie myotonique17, syndrome d’Andersen-Tawil18, et myotonia congenita19,20).
Dans une étude récente, l’applicabilité des MVRC aux muscles neurogènes a été montrée pour la première fois. Le terme « muscle neurogène » désigne les changements secondaires dans les muscles squelettiques qui se développent sous forme de dénervation et de réinnervation après toute blessure aux cellules de corne antérieure ou aux axones moteurs. La dénervation est caractérisée dans eMG comme activité spontanée (c.-à-d., fibrillations [fibs] et ondes pointues positives [psws]), tandis que les grands potentiels d’unité moteur avec la durée prolongée et l’amplitude accrue présentent la réinnervation21. Les changements d’EMG sont évidents dans les muscles envahis, mais les changements cellulaires sous-jacents dans les potentiels de membrane de fibre de muscle ont été seulement démontrés dans des études expérimentales sur le tissu de muscle isolé2,3,4. Les CRVR fournissent un aperçu plus approfondi des propriétés de la membrane musculaire humaine in vivo en ce qui concerne le processus de dénervation.
Cet article décrit en détail la méthodologie des CRVR. Il résume également les changements dans les muscles neurogènes dans un sous-groupe de patients d’une étude précédemmentrapportée 22 et les sujets témoins sains qui permet de déterminer si la méthode est appropriée pour une étude planifiée.
Les enregistrements sont performants à l’aide d’un protocole d’enregistrement qui fait partie d’un logiciel. D’autres équipements utilisés sont un stimulateur de courant constant bipolaire linéaire isolé, un éliminateur de bruit de 50 Hz, un amplificateur d’électromyographie isolé et un convertisseur analogique au numérique.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>50 Hz Noise Eliminator</td>
			<td>Digitimer Ltd</td>
			<td></td>
			<td>Humbug</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analogue-to-Digital Converter</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td></td>
			<td>NI-6221</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analysing software program</td>
			<td>Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London)</td>
			<td></td>
			<td>QtracP, MANAL9</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable concentric needle electrode, 25 mm x 30G</td>
			<td>Natus</td>
			<td></td>
			<td>Dantec DCN</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable monopolar needle electrode, 25 mm x 26G</td>
			<td>Natus</td>
			<td></td>
			<td>TECA elite</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isolated EMG amplifier</td>
			<td>Digitimer Ltd</td>
			<td></td>
			<td>D440</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isolated linear bipolar constant-current stimulator</td>
			<td>Digitimer Ltd</td>
			<td></td>
			<td>DS5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Software and recording protocol</td>
			<td>Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London)</td>
			<td></td>
			<td>QtracW software, M3REC3 recording protocol written by Hugh Bostock, Istitute of Neurology, London, UK)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

muscle velocity recovery cycles to examine muscle membrane properties

Bien que les études conventionnelles de conduction de nerf (NCS) et l’électromyographie (EMG) soient appropriées pour le diagnostic des désordres neuromusculaires, elles fournissent l’information limitée au sujet des propriétés de membrane de fibre de muscle et des mécanismes sous-jacents de maladie. Les cycles de récupération de la vitesse musculaire (MVRC) illustrent comment la vitesse d’un potentiel d’action musculaire dépend du temps après un potentiel d’action précédent. Les MVRC sont étroitement liés aux changements dans le potentiel membranaire qui suivent un potentiel d’action, fournissant ainsi des informations sur les propriétés de la membrane des fibres musculaires. Les MVRC peuvent être enregistrés rapidement et facilement par stimulation directe et enregistrement à partir de faisceaux multifibres in vivo. Les CARDIOM ont été utiles pour comprendre les mécanismes de la maladie dans plusieurs troubles neuromusculaires. Des études chez des patients atteints de canalopathies ont démontré les différents effets de mutations spécifiques du canal ionique sur l’excitabilité musculaire. Les CARDIOM ont déjà été testés chez des patients ayant des muscles neurogènes. Dans cette étude antérieure, la période relative de réfraction de muscle (MRRP) a été prolongée, et la supernormalité tôt (ESN) et la supernormalité en retard (LSN) ont été réduites dans les patients comparés aux contrôles sains. Par conséquent, les MVRC peuvent fournir des preuves in vivo de dépolarisation de membrane dans les fibres intactes de muscle humain qui sous-tendent leur excitabilité réduite. Le protocole présenté ici décrit comment enregistrer les CRVR et analyser les enregistrements. Les CARDIOM peuvent servir de méthode rapide, simple et utile pour révéler les mécanismes de la maladie dans un large éventail de troubles neuromusculaires.

Les résultats suivants ont été obtenus dans un sous-groupe de patients d’une étude récente22, dans laquelle il y avait des fibs/psws dans tous les emplacements montrant l’activité de dénervation abondante. Les résultats ont prouvé que les changements dans les fibres de muscle après denervation ont été évalués in vivo utilisant la technique de MVRC décrite dans ce protocole. Les CARDIOM ont montré des changements compatibles avec la dépolarisation du potentiel de membrane de re...

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Muscle Velocity Recovery Cycles to Examine Muscle Membrane Properties

Présenté ici est un protocole pour l’enregistrement des cycles de récupération de vitesse musculaire (MVRCs), une nouvelle méthode d’examen des propriétés de la membrane musculaire. Les CARDIOM permettent une évaluation in vivo du potentiel de la membrane musculaire et des altérations de la fonction du canal ionique musculaire par rapport à la pathologie, et il permet la démonstration de la dépolarisation musculaire dans les muscles neurogènes.

Cycles de récupération de la vitesse musculaire pour examiner les propriétés de la membrane musculaire

Although conventional nerve conduction studies (NCS) and electromyography (EMG) are suitable for the diagnosis of neuromuscular disorders, they provide ...

Ce protocole décrit comment nous examinons les changements de membrane musculaire dans les muscles dénervated utilisant MVRC, cycles de récupération de vitesse de muscle. Le principal avantage des MVRCs est qu’il s’agit d’une méthode rapide et simple pour examiner les propriétés de la membrane musculaire in vivo sans gêne pour le sujet. Les CRMC peuvent avoir un potentiel d’être un outil diagnostique dans les désordres neuromusculaires à l’avenir.Cependant, d’autres études sont nécessaires pour explorer cette possibilité. Nous nous attendons à ce que les MRC un outil de ressources précieux pour comprendre la pathophysiologie derrière plusieurs troubles neuromusculaires et un biomarqueur pour surveiller les progrès de la maladie et les effets des médicaments. Puisqu’il n’y a aucun risque et seulement léger malaise de cet examen, nous vous recommandons de pratiquer sur des sujets sains avant d’examiner des patients.Cette technique est totalement inoffensive tant que vous suivez les instructions de base. Alors, n’oubliez pas de nettoyer avec de l’alcool avant l’insertion de l’aiguille et assurez-vous qu’il n’y a pas de contre-indications telles que l’hémophilie ou le traitement anticoagissant. Pour commencer, évaluez les antécédents médicaux du sujet pour s’assurer qu’ils n’ont pas de troubles antérieurs du système nerveux autres que le groupe de la maladie qui seront étudiés.Informez le sujet en détail des examens et demandez l’obtention d’un consentement écrit. Informez le sujet de l’insertion de deux aiguilles dans un muscle de la jambe et que les fibres musculaires seront stimulées par un courant faible. Expliquez que la sensation peut sembler légèrement désagréable.Informez le sujet que la stimulation peut être désactivée immédiatement à tout moment pendant l’enregistrement en cas d’inconfort. Ensuite, nettoyez la jambe inférieure du sujet avec de l’alcool. Insérez l’électrode d’aiguille monopolisaire stimulante sur le muscle tibial antérieur.Insérez l’électrode d’aiguille concentrique d’enregistrement environ deux centimètres proximal à l’électrode monopolisaire stimulante d’aiguille le long des fibres musculaires et mettez l’électrode de surface adhésive comme anode un centimètre distal à l’aiguille monopolisaire. Placer un distal d’électrode au sol à l’anode. Connectez l’aiguille concentrique d’enregistrement et les électrodes moulues au préamplificateur.Demandez au sujet de garder le silence et d’éviter tout mouvement pendant l’examen. Zéro la sortie du stimulateur et connecter les électrodes stimulantes au stimulateur. Maintenir la température de la peau entre 32 et 36 degrés Celsius à l’aide d’une lampe chauffante.Démarrez le stimulateur et allumez le logiciel d’enregistrement semi-automatisé en utilisant le protocole d’enregistrement de l’excitabilité musculaire. Les stimulations commencent à 2,5 milliamps avec un hertz. Augmentez l’intensité du stimulus manuellement en frappant la clé d’insertion jusqu’à ce qu’une réponse soit enregistrée.Si le potentiel apparaît à l’envers, frappez la touche moins pour inverser le potentiel d’action musculaire. Ajustez les aiguilles stimulantes et d’enregistrement si nécessaire jusqu’à enregistrer une réponse acceptable avec une intensité de stimulus inférieure à 10 milliamps. La forme du potentiel d’action musculaire doit être triphasique et stable.Évitez les grosses secousses de tout le muscle. Les contractions musculaires de tout le muscle implique que vous stimulez la plaque d’extrémité. Dans ce cas, ajustez l’aiguille monopolisaire ou réinsérez les deux électrodes d’aiguille dans un nouveau site.Une ligne horizontale magenta apparaît sur l’écran indiquant la largeur du potentiel d’action. Ajustez la position et la longueur de la ligne magenta en faisant glisser la ligne avec la souris. La ligne horizontale verte représente la ligne de base.Sélectionnez la relation de réponse de stimulus parmi les options principales. Augmentez l’intensité du stimulus en frappant la clé d’insertion à un maximum de 10 milliamps ou tolérable. Cliquez sur OK pour commencer à descendre la courbe de réponse de stimulus.Cliquez sur OK lorsque le stimulus de test atteint zéro. Réglez l’intensité de stimulus au niveau de la latence stable. Cliquez sur OK pour revenir au menu principal.Sélectionnez l’option 1-2-5 stims de conditionnement pour les cycles de récupération. Sélectionnez un protocole parmi les options du cycle de récupération. Par exemple, démarrez le cycle de récupération rapide, sautez d’autres retards.Assurez-vous que le potentiel d’action musculaire est stable pendant l’enregistrement et que l’aiguille n’a pas bougé. L’écran passe automatiquement aux options principales lorsque les 34 étapes sont terminées. Cliquez sur l’enregistrement de finition et cliquez sur le bouton enregistrer les données.Démarrez le logiciel d’analyse pour effectuer l’analyse hors ligne. Sélectionnez l’enregistrement qui sera analysé et cliquez sur le bouton OK. Cliquez sur les paramètres de charge du menu fichiers.Sélectionnez l’option MANAL9 pour l’analyse. Cliquez sur OK pour continuer. Lorsqu’une description de l’analyse de l’excitabilité musculaire MANAL9 apparaît, cliquez sur OK pour continuer.Si le potentiel apparaît à l’envers, inverser le potentiel d’action musculaire en tapant MM-1. Cliquez à droite sur la souris pour rendre la ligne magenta visible. Réglez la fenêtre à la base de la réponse de pointe et avec une largeur correspondant approximativement à la largeur du potentiel d’action à cette hauteur.Suivre avec la souris pour ajuster la fenêtre. La fenêtre détermine les latences à l’intérieur de laquelle la hauteur et la latence sont mesurées comme indiqué par les lignes bleu pâle, et la ligne verte indique la ligne de base. Cliquez sur OK pour continuer.Cliquez sur OK pour remessurer les latences et les pics. Cliquez sur OK pour créer un fichier RMC. Ignorer la plupart des options apparaissant dans le formulaire créer RCC ou RMC.Cliquez sur enregistrer et sortir pour continuer. Après avoir sauvé le fichier RMC, la boîte d’invite offre différentes options. Si des données de rampe de fréquence et/ou de stimulation répétitive ont été enregistrées, suivez les instructions pour les analyser.Sinon, sélectionnez aller directement pour créer l’option de fichier MEM pour créer un fichier MEM. Cliquez sur OK pour continuer. Cliquez sur enregistrer et sortir pour continuer.Cliquez sur OK pour ajouter les données RMC au fichier MEM. Cliquez sur ajouter à partir du fichier RMC d’entrée pour ajouter ces données au fichier MEM, puis modifiez l’annuaire pour enregistrer le fichier MEM composite. Ensuite, cliquez sur enregistrer et sortir pour l’enregistrer.Cliquez sur OK pour enregistrer le fichier QZD remeasured pour permettre la différenciation du fichier QZD d’origine à l’aide d’un signe de livre. Dans cette étude, 14 patients ont été comparés à 29 sujets sains. Les données démographiques des sujets sont présentées ici.Les enregistrements d’un sujet sain et d’un patient montrent la différence distincte dans le changement de pourcentage dans la latence. La comparaison des patients’MRVCs avec les sujets sains’montre que MRRP a été prolongé et la supernormalité tôt et la supernormalité tardive ont été réduites dans les patients comparés aux contrôles sains. L’étape la plus importante dans l’enregistrement MVRC est le positionnement correct de l’aiguille, où vous obtenez une amplitude stable avec une intensité de stimulus inférieure à 10 milliamps.

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Paired Patch Clamp Recordings from Motor-neuron and Target Skeletal Muscle in Zebrafish

Jumelés Recordings Patch Clamp du motoneurone et de muscle ciblé squelettiques chez le poisson zèbre

Larval zebrafish represent the first vertebrate model system to allow simultaneous patch clamp recording from a spinal motor-neuron and target muscle.  ...

Reproducible Mouse Sciatic Nerve Crush and Subsequent Assessment of Regeneration by Whole Mount Muscle Analysis

Reproductible écrasement du nerf sciatique de souris et l&#39;évaluation subséquente de la régénération par l&#39;analyse du Mont muscle entier

Regeneration in the peripheral nervous system (PNS) is widely studied both for its relevance to human disease and to understand the robust regenerative ...

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

Identifier les motoneurones extracellulaire d&#39;un Motor Pool musculaire dans<em&gt; Aplysia californica</em

In animals with large  identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using  intracellular techniques1,2,3,4. Recently,  we developed ...

Simultaneous Pre- and Post-synaptic Electrophysiological Recording from Xenopus Nerve-muscle Co-cultures

Simultaneous Pre- and Post-synaptic Electrophysiological Recording from Xenopus Nerve-muscle Co-cultures

Simultanée pré-et post-synaptique enregistrement électrophysiologique de<em&gt; Xenopus</em&gt; Nerf-muscle co-cultures

Much information about the coupling of  presynaptic ionic currents with the release of neurotransmitter has been obtained  from invertebrate preparations, ...

Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

Proprioception et tension récepteurs en crabe Membres: Exercices de laboratoire étudiant

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons ...

Dissection of the Transversus Abdominis Muscle for Whole-mount Neuromuscular Junction Analysis

Dissection of the Transversus Abdominis Muscle for Whole-mount Neuromuscular Junction Analysis

Dissection du muscle Transversus Abdominis pour l’analyse de jonction neuromusculaire à montage entier

Analysis of neuromuscular junction morphology can give important insight into the physiological status of a given motor neuron. Analysis of thin flat ...

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

Un<em&gt; In Vitro</emMuscle-nerf&gt; Adult Souris Préparation pour étudier les propriétés de cuisson des afférences musculaires

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional ...

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

High Throughput Assay pour examiner les préférences de ponte de l&#39;individu<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...