Name: muscle velocity recovery cycles to examine muscle membrane properties
Uploaded: 2020-02-19T14:00:00
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Diese Studie wurde vor allem durch die beiden Stipendien der Lundbeck Foundation (Grant-Nummer R191-2015-931 und Grant-Nummer R290-2018-751) finanziell unterstützt. Darüber hinaus wurde die Studie vom Novo Nordisk Foundation Challenge Programme (Grant-Nummer NNF14OC0011633) als Teil des International Diabetic Neuropathy Consortium finanziell unterstützt.

Alle Probanden müssen vor der Prüfung eine schriftliche Zustimmung erteilen, und das Protokoll muss von der zuständigen lokalen Ethik-Prüfungskommission genehmigt werden. Alle hier beschriebenen Methoden wurden vom Regionalen Wissenschaftlichen Ethikausschuss und der dänischen Datenschutzbehörde genehmigt.
1. Vorbereitung des Themas
<ol><li>Bewerten Sie die Krankengeschichte der Probanden, um sicherzustellen, dass sie keine früheren Erkrankungen des Nervensystems haben, außer der Kra...

<ol>
	<li>Tankisi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathophysiology+inferred+from+electrodiagnostic+nerve+tests+and+classification+of+polyneuropathies.+Suggested+guidelines.">Pathophysiology inferred from electrodiagnostic nerve tests and classification of polyneuropathies. Suggested guidelines.</a> Clinical Neurophysiology. 116 (7), 1571-1580 (2005).</li><li>Gregorio, C. C., Hudecki, M. S., Pollina, C. M., Repasky, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+denervation+on+spectrin+concentration+in+avian+skeletal+muscle.">Effects of denervation on spectrin concentration in avian skeletal muscle.</a> Muscle and Nerve. 11 (4), 372-379 (1988).</li><li>Kotsias, B. A., Venosa, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+sodium+and+potassium+permeabilities+in+the+depolarization+of+denervated+rat+muscle+fibers.">Role of sodium and potassium permeabilities in the depolarization of denervated rat muscle fibers.</a> Journal of Physiology. 392, 301-313 (1987).</li><li>Kirsch, G. E., Anderson, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sodium+channel+kinetics+in+normal+and+denervated+rabbit+muscle+membrane.">Sodium channel kinetics in normal and denervated rabbit muscle membrane.</a> Muscle and Nerve. 9 (8), 738-747 (1986).</li><li>Stalberg, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Propagation+velocity+in+human+muscle+fibers+in+situ.">Propagation velocity in human muscle fibers in situ.</a> Acta Physiologica Scandinava Supplementum. 287, 1 (1966).</li><li>Mihelin, M., Trontelj, J. V., Stalberg, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+fiber+recovery+functions+studied+with+double+pulse+stimulation.">Muscle fiber recovery functions studied with double pulse stimulation.</a> Muscle and Nerve. 14 (8), 739-747 (1991).</li><li>Z'Graggen, W. J., Bostock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Velocity+recovery+cycles+of+human+muscle+action+potentials+and+their+sensitivity+to+ischemia.">Velocity recovery cycles of human muscle action potentials and their sensitivity to ischemia.</a> Muscle and Nerve. 39 (5), 616-626 (2009).</li><li>Bostock, H., Tan, S. V., Boerio, D., Z'Graggen, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validity+of+multi-fiber+muscle+velocity+recovery+cycles+recorded+at+a+single+site+using+submaximal+stimuli.">Validity of multi-fiber muscle velocity recovery cycles recorded at a single site using submaximal stimuli.</a> Clinical Neurophysiology. 123 (11), 2296-2305 (2012).</li><li>Z'Graggen, W. J., Troller, R., Ackermann, K. A., Humm, A. M., Bostock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Velocity+recovery+cycles+of+human+muscle+action+potentials:+repeatability+and+variability.">Velocity recovery cycles of human muscle action potentials: repeatability and variability.</a> Clinical Neurophysiology. 122 (11), 2294-2299 (2011).</li><li>Lee, J. H. F., Boland-Freitas, R., Ng, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sarcolemmal+excitability+changes+in+normal+human+aging.">Sarcolemmal excitability changes in normal human aging.</a> Muscle and Nerve. 57 (6), 981-988 (2018).</li><li>Lee, J. H. F., Boland-Freitas, R., Ng, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+differences+in+sarcolemmal+excitability+between+human+muscles.">Physiological differences in sarcolemmal excitability between human muscles.</a> Muscle and Nerve. 60 (4), 433-436 (2019).</li><li>Humm, A. M., Bostock, H., Troller, R., Z'Graggen, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+ischaemia+in+patients+with+orthostatic+hypotension+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Muscle ischaemia in patients with orthostatic hypotension assessed by velocity recovery cycles.</a> Journal of Neurology, Neurosurgery and Psychiatry. 82 (12), 1394-1398 (2011).</li><li>Z'Graggen, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Velocity+recovery+cycles+of+human+muscle+action+potentials+in+chronic+renal+failure.">Velocity recovery cycles of human muscle action potentials in chronic renal failure.</a> Clinical Neurophysiology. 121 (6), 874-881 (2010).</li><li>Z'Graggen, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+membrane+dysfunction+in+critical+illness+myopathy+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Muscle membrane dysfunction in critical illness myopathy assessed by velocity recovery cycles.</a> Clinical Neurophysiology. 122 (4), 834-841 (2011).</li><li>Lee, J. H., Boland-Freitas, R., Liang, C., Ng, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sarcolemmal+depolarization+in+sporadic+inclusion+body+myositis+assessed+with+muscle+velocity+recovery+cycles.">Sarcolemmal depolarization in sporadic inclusion body myositis assessed with muscle velocity recovery cycles.</a> Clinical Neurophysiology. 19 (31205-2), 1388 (2019).</li><li>Tan, S. V., Z'Graggen, W. J., Hanna, M. G., Bostock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+assessment+of+muscle+membrane+properties+in+the+sodium+channel+myotonias.">In vivo assessment of muscle membrane properties in the sodium channel myotonias.</a> Muscle and Nerve. 57 (4), 586-594 (2018).</li><li>Tan, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+assessment+of+muscle+membrane+properties+in+myotonic+dystrophy.">In vivo assessment of muscle membrane properties in myotonic dystrophy.</a> Muscle and Nerve. 54 (2), 249-257 (2016).</li><li>Tan, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Membrane+dysfunction+in+Andersen-Tawil+syndrome+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Membrane dysfunction in Andersen-Tawil syndrome assessed by velocity recovery cycles.</a> Muscle and Nerve. 46 (2), 193-203 (2012).</li><li>Tan, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chloride+channels+in+myotonia+congenita+assessed+by+velocity+recovery+cycles.">Chloride channels in myotonia congenita assessed by velocity recovery cycles.</a> Muscle and Nerve. 49 (6), 845-857 (2014).</li><li>Boland-Freitas, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sarcolemmal+excitability+in+the+myotonic+dystrophies.">Sarcolemmal excitability in the myotonic dystrophies.</a> Muscle and Nerve. 57 (4), 595-602 (2018).</li><li>Stalberg, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standards+for+quantification+of+EMG+and+neurography.">Standards for quantification of EMG and neurography.</a> Clinical Neurophysiology. 130 (9), 1688-1729 (2019).</li><li>Witt, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+velocity+recovery+cycles+in+neurogenic+muscles.">Muscle velocity recovery cycles in neurogenic muscles.</a> Clinical Neurophysiology. 130 (9), 1520-1527 (2019).</li><li>Kristensen, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MScanFit+motor+unit+number+estimation+(MScan)+and+muscle+velocity+recovery+cycle+recordings+in+amyotrophic+lateral+sclerosis+patients.">MScanFit motor unit number estimation (MScan) and muscle velocity recovery cycle recordings in amyotrophic lateral sclerosis patients.</a> Clinical Neurophysiology. 130 (8), 1280-1288 (2019).</li><li>Marrero, H. G., Stalberg, E. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimizing+testing+methods+and+collection+of+reference+data+for+differentiating+critical+illness+polyneuropathy+from+critical+illness+MYOPATHIES.">Optimizing testing methods and collection of reference data for differentiating critical illness polyneuropathy from critical illness MYOPATHIES.</a> Muscle and Nerve. 53 (4), 555-563 (2016).</li><li>Allen, D. C., Arunachalam, R., Mills, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Critical+illness+myopathy:+further+evidence+from+muscle-fiber+excitability+studies+of+an+acquired+channelopathy.">Critical illness myopathy: further evidence from muscle-fiber excitability studies of an acquired channelopathy.</a> Muscle and Nerve. 37 (1), 14-22 (2008).</li></ol>

MVRCs, wie in der Aufzeichnungssoftware programmiert, ist ein hochautomatisiertes Verfahren, aber vorsichtsbedürftig, um zuverlässige Ergebnisse zu erzielen. In der Aufnahmephase ist es bei der Einstellung der Nadeln wichtig, die Endplattenzone oder den Nerv nicht zu stimulieren. Dies führt in der Regel zu großen Zuckungen des gesamten Muskels, was das Risiko einer Verschiebung der Stimulations- und/oder Aufnahmenadel während der Aufnahme von MVRCs erhöht. Bis heute wurde die Methode auf mehrere Muskeln angewendet,...

Nervenleituntersuchungen (NCS) und Elektromyographie (EMG) sind die herkömmlichen elektrophysiologischen Methoden zur Diagnose neuromuskulärer Störungen. NCS ermöglicht den Nachweis von Axonverlust und Demyelination in den Nerven1, während EMG unterscheiden kann, ob Myopathie oder neurogene Veränderungen im Muskel aufgrund von Nervenschäden vorhanden sind. NCS oder EMG liefern jedoch begrenzte Informationen über Muskelfasermembraneigenschaften und zugrunde liegende Krankheitsmechanismen. Diese Information kann mit intrazellulären Elektroden in isolierten Muskeln aus Muskelbiopsien2,3,4erreicht werden. Es ist jedoch von klinischer Bedeutung, Methoden mit Aufzeichnungen aus intakten Muskeln bei Patienten zu verwenden.
Die Geschwindigkeit einer zweiten Muskelfaser-Aktion kann sich als Funktion der Verzögerung nach den ersten5ändern, und diese Geschwindigkeits-Recovery-Funktion (oder Erholungszyklus) hat sich in dystrophischen oder denervierten Muskeln verändert. Die Ausbeute solcher Aufnahmen aus einzelnen Muskelfasern war jedoch zu gering, um als klinisches Werkzeug von Nutzen zu sein6. Z'Graggen und Bostock fanden jedoch später heraus, dass Multifaseraufnahmen, die durch direkte Stimulation und Aufnahme aus demselben Bündel von Muskelfasern erhalten wurden, eine schnelle und einfache Methode bieten, solche Aufnahmen in vivo7zu erhalten. Bei dieser Methode wird eine Sequenz von gepaarten impulselektrischen Reizen mit unterschiedlichen Interstimulusintervallen (ISIs) verwendet7,8,9,10,11.
Die ausgewerteten MVRC-Parameter umfassen folgendes: 1) Muskelrelative Feuerfestperiode (MRRP), die die Dauer nach einem Muskelaktionspotential ist, bis das nächste Aktionspotential ausgelöst werden kann; 2) frühe Übernormalität (ESN); und 3) späte Supernormalität (LSN). ESN und LSN sind die Perioden nach der Feuerfestphase, in denen die Aktionspotentiale entlang der Muskelmembran schneller als normal durchgeführt werden. Die depolarisierende Nachpotential, und Kaliumakkumulation in den t-Tubuli des Muskels jeweils, werden als die Hauptursachen für die beiden Perioden der Supernormalität vermutet.
Die breite Anwendbarkeit von MVRCs auf Muskelerkrankungen wurde bei der Depolarisation der Membran bei Ischämie7,10,12 und Nierenversagen13sowie bei der Bereitstellung von Informationen über Muskelmembrananomalien bei kritischer Krankheit Myopathie14 und Inklusions-Körpermyositis15gezeigt. Seitdem wurden Frequenzrampen und intermittierende 15 Hz- und 20 Hz-Simulationsprotokolle eingeführt. MVRCs, zusammen mit diesen zusätzlichen Protokollen, haben die verschiedenen Auswirkungen auf die Muskelmembran Erregung im Zusammenhang mit Verlust der Funktion oder Gain-of-Funktion Mutationen in verschiedenen Muskelionenkanälen in den vererbten Muskelionen-Kanalopathien (d.h. Natriumkanalmyotonia, Paramyotonia congenita16, myotonische Dystrophie17, Andersen-Tawil-Syndrom18, und Myotonia conitgen19,20).
In einer aktuellen Studie wurde zum ersten Mal die Anwendbarkeit von MVRCs auf neurogene Muskeln gezeigt. Der Begriff "neurogener Muskel" bezieht sich auf die sekundären Veränderungen in den Skelettmuskeln, die sich als Denervation und Reinnervation nach verletzungen der vorderen Hornzellen oder motorischen Axone entwickeln. Denervation wird in EMG als spontane Aktivität charakterisiert (d.h. Fibrillation [Fibs] und positive scharfe Wellen [psws]), während große Motoreinheitenpotentiale mit längerer Dauer und erhöhter Amplitude eine Reinnervation darstellen21. EMG-Veränderungen sind in denervierten Muskeln offensichtlich, aber die zugrunde liegenden zellulären Veränderungen in Muskelfasermembran-Potenziale wurden nur in experimentellen Studien über isoliertes Muskelgewebe2,3,4gezeigt. MVRCs bieten weitere Einblicke in die Eigenschaften der menschlichen Muskelmembran in vivo in Bezug auf den Denervationsprozess.
In diesem Artikel wird die Methodik der MVRCs ausführlich beschrieben. Es fasst auch die Veränderungen der neurogenen Muskeln in einer Untergruppe von Patienten aus einer zuvor berichteten Studie22 und gesunde Kontrollpersonen, die die Bestimmung ermöglicht, ob die Methode für eine geplante Studie geeignet ist.
Die Aufnahmen werden mit einem Aufzeichnungsprotokoll ausgeführt, das Teil eines Softwareprogramms ist. Andere Geräte werden verwendet, ein isolierter linearer bipolarer Konstantstromstimulator, 50 Hz Noise Eliminator, isolierter Elektromyographie-Verstärker und analog-digitaler Wandler.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>50 Hz Noise Eliminator</td>
			<td>Digitimer Ltd</td>
			<td></td>
			<td>Humbug</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analogue-to-Digital Converter</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td></td>
			<td>NI-6221</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analysing software program</td>
			<td>Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London)</td>
			<td></td>
			<td>QtracP, MANAL9</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable concentric needle electrode, 25 mm x 30G</td>
			<td>Natus</td>
			<td></td>
			<td>Dantec DCN</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable monopolar needle electrode, 25 mm x 26G</td>
			<td>Natus</td>
			<td></td>
			<td>TECA elite</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isolated EMG amplifier</td>
			<td>Digitimer Ltd</td>
			<td></td>
			<td>D440</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isolated linear bipolar constant-current stimulator</td>
			<td>Digitimer Ltd</td>
			<td></td>
			<td>DS5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Software and recording protocol</td>
			<td>Digitimer Ltd (copyright Institute of Neurology, University College, London)</td>
			<td></td>
			<td>QtracW software, M3REC3 recording protocol written by Hugh Bostock, Istitute of Neurology, London, UK)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

muscle velocity recovery cycles to examine muscle membrane properties

Obwohl konventionelle Nervenleituntersuchungen (NCS) und Elektromyographie (EMG) für die Diagnose neuromuskulärer Störungen geeignet sind, liefern sie nur begrenzte Informationen über Muskelfasermembraneigenschaften und zugrunde liegende Krankheitsmechanismen. Muskelgeschwindigkeits-Recovery-Zyklen (MVRCs) veranschaulichen, wie die Geschwindigkeit eines Muskelaktionspotentials von der Zeit nach einem vorhergehenden Aktionspotential abhängt. MVRCs stehen in engem Zusammenhang mit Veränderungen des Membranpotenzials, die einem Aktionspotenzial folgen und somit Informationen über Die Eigenschaften der Muskelfasermembran liefern. MVRCs können schnell und einfach durch direkte Stimulation und Aufnahme von Multifaserbündeln in vivo aufgezeichnet werden. MVRCs waren hilfreich beim Verständnis von Krankheitsmechanismen bei mehreren neuromuskulären Erkrankungen. Studien bei Patienten mit Channelopathien haben die unterschiedlichen Auswirkungen spezifischer Ionenkanalmutationen auf die Muskelerregbarkeit gezeigt. MVRCs wurden zuvor bei Patienten mit neurogenen Muskeln getestet. In dieser vorherigen Studie wurde die Muskel-relative Refraktionsperiode (MRRP) verlängert, und die frühe Übernormalität (ESN) und die späte Übernormalität (LSN) wurden bei Patienten im Vergleich zu gesunden Kontrollen reduziert. Dabei können MVRCs in vivo Hinweise auf eine Membrandepolarisation in intakten menschlichen Muskelfasern liefern, die ihrer verminderten Erregbarkeit zugrunde liegen. Das hier vorgestellte Protokoll beschreibt, wie Man MVRCs aufzeichnet und die Aufzeichnungen analysiert. MVRCs können als schnelle, einfache und nützliche Methode zur Aufdeckung von Krankheitsmechanismen über eine breite Palette von neuromuskulären Erkrankungen dienen.

Die folgenden Ergebnisse wurden in einer Untergruppe von Patienten aus einer aktuellen Studie22erhalten, in der es Fibs/psws an allen Standorten gab, die eine üppige Denervationsaktivität zeigten. Die Ergebnisse zeigten, dass Veränderungen der Muskelfasern nach Derervation in vivo mit der in diesem Protokoll beschriebenen MVRC-Technik bewertet wurden. MVRCs zeigten Veränderungen, die mit der Depolarisation des ruhenden Membranpotentials in den neurogenen Muskelfasern im Einklang stehen.
<p...

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Muscle Velocity Recovery Cycles to Examine Muscle Membrane Properties

Hier wird ein Protokoll zur Aufzeichnung von Muskelgeschwindigkeits-Regenerationszyklen (MVRCs) vorgestellt, eine neue Methode zur Untersuchung der Eigenschaften der Muskelmembran. MVRCs ermöglichen in vivo Bewertung der Muskelmembran Potenzial und Veränderungen in Muskel-Ionen-Kanal-Funktion in Bezug auf Pathologie, und es ermöglicht die Demonstration der Muskeldepolarisation in neurogenen Muskeln.

Muskelgeschwindigkeit Erholung Zyklen, um Muskelmembran Eigenschaften zu untersuchen

Although conventional nerve conduction studies (NCS) and electromyography (EMG) are suitable for the diagnosis of neuromuscular disorders, they provide ...

Dieses Protokoll beschreibt, wie wir Muskelmembranveränderungen in den ervierten Muskeln mit MVRC, Muskelgeschwindigkeits-Recovery-Zyklen untersuchen. Der Hauptvorteil von MVRCs ist, dass es eine schnelle und einfache Methode ist, um Muskelmembraneigenschaften in vivo ohne Beschwerden für das Subjekt zu untersuchen. MVRCs können in Zukunft ein diagnostisches Werkzeug bei neuromuskulären Erkrankungen sein.Es sind jedoch weitere Studien erforderlich, um diese Möglichkeit zu untersuchen. Wir erwarten MRVCs als wertvolles Ressourceninstrument zum Verständnis der Pathophysiologie hinter mehreren neuromuskulären Störungen und einem Biomarker zur Überwachung des Krankheitsfortschritts und der arzneimittelen Wirkungen. Da es bei dieser Untersuchung keine Risiken und nur leichte Beschwerden gibt, empfehlen wir Ihnen, vor der Untersuchung von Patienten an gesunden Probanden zu üben.Diese Technik ist völlig harmlos, solange Sie grundlegende Anweisungen befolgen. Also, denken Sie daran, mit Alkohol vor dem Einsetzen der Nadel zu reinigen und sicherzustellen, dass es keine Kontraindikationen wie Hämophilie oder Blutverdünnung Behandlung. Um zu beginnen, bewerten Sie die medizinischen Geschichten des Themas, um sicherzustellen, dass sie keine früheren Erkrankungen des Nervensystems außer der Krankheitsgruppe haben, die untersucht wird.Informieren Sie das Thema ausführlich über die Prüfungen und beantragen Sie die schriftliche Zustimmung. Informieren Sie das Thema über das Einsetzen von zwei Nadeln in einen Beinmuskel und dass die Muskelfasern mit einem schwachen Strom stimuliert werden. Erklären Sie, dass sich das Gefühl etwas unangenehm anfühlen kann.Informieren Sie das Motiv, dass die Stimulation bei Beschwerden jederzeit während der Aufnahme sofort ausgeschaltet werden kann. Reinigen Sie dann den Unterschenkel des Motivs mit Alkohol. Setzen Sie die stimulierende monopolare Nadelelektrode über den vorderen Tibiamuskel ein.Legen Sie die Aufnahme konzentrische Nadelelektrode etwa zwei Zentimeter proximal in die stimulierende Monopolnadelelektrode entlang der Muskelfasern ein und legen Sie die Klebeoberflächenelektrode als Anode einen Zentimeter distal zur Monopolarnadel. Legen Sie eine Bodenelektrode distal auf die Anode. Schließen Sie die aufnahmekonzentrische Nadel und die Masseelektroden an den Vorverstärker an.Bitten Sie das Subjekt, zu schweigen und Bewegung während der Untersuchung zu vermeiden. Null den Ausgang des Stimulaators und verbinden Sie die stimulierenden Elektroden mit dem Stimulator. Halten Sie die Hauttemperatur zwischen 32 und 36 Grad Celsius mit einer Wärmelampe.Starten Sie den Stimulator und schalten Sie die halbautomatische Aufnahmesoftware mit dem Muskelerregbarkeitsaufzeichnungsprotokoll ein. Stimulationen beginnen bei 2,5 Milliampere mit einem Hertz. Erhöhen Sie die Stimulusintensität manuell, indem Sie die Einfügetaste drücken, bis eine Antwort aufgezeichnet wird.Wenn das Potenzial auf dem Kopf erscheint, drücken Sie die Minus-Taste, um das Muskel-Aktionspotenzial umzukehren. Passen Sie die Stimulierungs- und Aufnahmenadeln bei Bedarf an, bis sie eine akzeptable Reaktion mit einer Stimulusintensität von weniger als 10 Milliampere aufzeichnen. Die Form des Muskelwirkungspotentials sollte triphasisch und stabil sein.Vermeiden Sie große Zuckungen des gesamten Muskels. Muskelzuckungen des gesamten Muskels impliziert, dass Sie die Endplatte stimulieren. Passen Sie in diesem Fall die Monopolnadel an oder setzen Sie beide Nadelelektroden an einem neuen Standort wieder ein.Auf dem Bildschirm wird eine horizontale Magentalinie angezeigt, die die Breite des Aktionspotentials angibt. Passen Sie die Position und Länge der Magentalinie an, indem Sie die Linie mit der Maus ziehen. Die grüne horizontale Linie stellt die Basislinie dar.Wählen Sie die Stimulus-Antwort-Beziehung aus den Hauptoptionen aus. Erhöhen Sie die Stimulusintensität, indem Sie die Einfügetaste auf maximal 10 Milliampere oder tolerierbar drücken. Klicken Sie auf OK, um mit dem Absteigen der Stimulus-Antwortkurve zu beginnen.Klicken Sie auf OK, wenn der Testreiz Null erreicht. Stellen Sie die Stimulusintensität auf ein Niveau für eine stabile Latenz ein. Klicken Sie auf OK, um zum Hauptmenü zurückzukehren.Wählen Sie die Option 1-2-5 Konditionierungs-Stims für Erholungszyklen. Wählen Sie ein Protokoll aus den Wiederherstellungszyklusoptionen aus. Starten Sie z. B. den Schnellwiederherstellungszyklus, überspringen Sie alternative Verzögerungen.Stellen Sie sicher, dass das Muskelaktionspotential während der Aufnahme stabil ist und dass sich die Nadel nicht bewegt hat. Der Bildschirm wechselt automatisch zu den Hauptoptionen, wenn die 34 Schritte abgeschlossen sind. Klicken Sie auf Aufnahme beenden und klicken Sie auf die Schaltfläche Daten speichern.Starten Sie das Analysesoftwareprogramm, um die Analyse offline durchzuführen. Wählen Sie die Aufzeichnung aus, die analysiert wird, und klicken Sie auf die Schaltfläche OK. Klicken Sie auf Ladeparameter aus dem Dateimenü.Wählen Sie die Option MANAL9 für die Analyse aus. Klicken Sie auf OK, um fortzufahren. Wenn eine Beschreibung der MANAL9-Muskelerregbarkeitsanalyse angezeigt wird, klicken Sie auf OK, um fortzufahren.Wenn das Potential auf den Kopf gestellt wird, invertieren Sie das Muskelaktionspotenzial, indem Sie MM-1 eingeben. Klicken Sie mit der rechten Maustaste, um die Magentalinie sichtbar zu machen. Legen Sie das Fenster auf die Basis der Spitzenantwort fest und mit einer Breite, die in etwa der Breite des Aktionspotentials in dieser Höhe entspricht.Verfolgen Sie mit der Maus, um das Fenster anzupassen. Das Fenster bestimmt die Latenzen, innerhalb derer die Höhe und Latenz gemessen werden, wie durch die hellblauen Linien angegeben, und die grüne Linie zeigt die Basislinie an. Klicken Sie auf OK, um fortzufahren.Klicken Sie auf OK, um die Latenzen und Spitzen zu neu zu messen. Klicken Sie auf OK, um eine RMC-Datei zu erstellen. Ignorieren Sie die meisten Optionen, die im Formular RCC oder RMC erstellen angezeigt werden.Klicken Sie auf Speichern und Beenden, um fortzufahren. Nach dem Speichern der RMC-Datei bietet das Eingabeaufforderungsfeld verschiedene Optionen. Wenn Frequenzrampen- und/oder repetitive Stimulationsdaten aufgezeichnet wurden, befolgen Sie die Anweisungen, um diese zu analysieren.Wählen Sie andernfalls direkt aus, um die MEM-Dateioption zu erstellen, um eine MEM-Datei zu erstellen. Klicken Sie auf OK, um fortzufahren. Klicken Sie auf Speichern und Beenden, um fortzufahren.Klicken Sie auf OK, um die RMC-Daten zur MEM-Datei hinzuzufügen. Klicken Sie auf Aus der Eingabe-RMC-Datei hinzufügen, um diese Daten zur MEM-Datei hinzuzufügen, und ändern Sie dann das Verzeichnis, um die zusammengesetzte MEM-Datei zu speichern. Klicken Sie dann auf Speichern und Beenden, um es zu speichern.Klicken Sie auf OK, um die neu gemessene QZD-Datei zu speichern, um eine Differenzierung von der ursprünglichen QZD-Datei mithilfe eines Pfundzeichens zu ermöglichen. In dieser Studie wurden 14 Patienten mit 29 gesunden Probanden verglichen. Die Themendemografie wird hier dargestellt.Aufnahmen von einem gesunden Fach und einem Patienten zeigen einen deutlichen Unterschied in der prozentualen Veränderung der Latenz. Der Vergleich der MRVCs der Patienten mit gesunden Probanden zeigt, dass MRRP verlängert wurde und die frühe Übernormalität und späte Übernormalität bei Patienten im Vergleich zu gesunden Kontrollen reduziert wurden. Der wichtigste Schritt in der MVRC-Aufnahme ist die korrekte Nadelpositionierung, bei der Sie eine stabile Amplitude mit einer Stimulusintensität von weniger als 10 Milliampere erhalten.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

Membranpotentiale, Synaptic Responses, neuronalen, Neuromodulation und Muscle Histologie Mit dem Crayfish: Schülerlabor Übungen

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Forschung

Neurowissenschaften

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception

Muscle-Rezeptor-Organe in der Crayfish Abdomen: Ein Schülerlabor Übung in Propriozeption

The primary purpose of this experiment is to demonstrate primary sensory neurons conveying information of joint movements and positions as proprioceptive ...

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Gepaart Patch Clamp Messungen von Motor-Neuron-und Target Skelettmuskulatur bei Zebrafisch

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Reproducible Mouse Sciatic Nerve Crush and Subsequent Assessment of Regeneration by Whole Mount Muscle Analysis

Reproduzierbare Maus Ischiasnerv Crush und anschließende Bewertung der Regeneration von Whole mount Muskelanalyse

Regeneration in the peripheral nervous system (PNS) is widely studied both for its relevance to human disease and to understand the robust regenerative ...

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

Extracellularly Identifying Motor Neurons for a Muscle Motor Pool in Aplysia californica

Extrazellulär identifizieren Motor Neurons für einen Muscle Motor Pool in<em&gt; Aplysia californica</em

In animals with large  identified neurons (e.g. mollusks), analysis of motor pools is done using  intracellular techniques1,2,3,4. Recently,  we developed ...

Simultaneous Pre- and Post-synaptic Electrophysiological Recording from Xenopus Nerve-muscle Co-cultures

Simultaneous Pre- and Post-synaptic Electrophysiological Recording from Xenopus Nerve-muscle Co-cultures

Gleichzeitige Pre-und Post-synaptischen Elektrophysiologische Aufnahme von<em&gt; Xenopus</em&gt; Nerv-Muskel-Co-Kulturen

Much information about the coupling of  presynaptic ionic currents with the release of neurotransmitter has been obtained  from invertebrate preparations, ...

Proprioception and Tension Receptors in Crab Limbs: Student Laboratory Exercises

Propriozeption und Spannungsrezeptoren in Crab Gliedmassen: Schülerlabor Übungen

The primary purpose of these procedures is to demonstrate for teaching and research purposes how to record the activity of living primary sensory neurons ...

Dissection of the Transversus Abdominis Muscle for Whole-mount Neuromuscular Junction Analysis

Dissection of the Transversus Abdominis Muscle for Whole-mount Neuromuscular Junction Analysis

Zerlegung des Transversus Abdominis Muskels für die neuromuskuläre Junction-Analyse

Analysis of neuromuscular junction morphology can give important insight into the physiological status of a given motor neuron. Analysis of thin flat ...

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

Ein<em&gt; In-vitro-</em&gt; Adult Maus Muskel-Nerven Vorbereitung für das Studium der Brenneigenschaften des Muskel-Afferenzen

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional ...

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Assay mit hohem Durchsatz Eiablage Präferenzen der einzelnen zu untersuchen<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...