Name: a mouse model of incompletely resected soft tissue sarcoma for testing (neo)adjuvant therapies
Uploaded: 2020-07-28T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Mouse Model of Incompletely Resected Soft Tissue Sarcoma for Testing Neoadjuvant Therapies at JoVE.com

Questo lavoro è sostenuto dalle sovvenzioni dal Calzino a Sarcoma! dell'Associazione Sarcoma australiana e neozelandese, della Children's Leukemia & Cancer Research Foundation e della Perpetual Philanthropy. W.J.L è supportato da una Simon Lee Fellowship e da una borsa di ricerca del National Health and Medical Research Council e del Cancer Council WA.

Gli animali utilizzati in questi esperimenti sono stati ottenuti dall'Animal Resource Centre (Perth, Australia Occidentale). Gli animali sono stati mantenuti in condizioni standard prive di agenti patogeni presso l'Harry Perkins Institute of Medical Research Bioresources North Facility (Perth, Australia Occidentale). Tutti gli esperimenti sono stati effettuati seguendo il protocollo approvato dal Comitato etico animale Harry Perkins Institute of Medical Research. In questi esperimenti sono stati utilizzati topi BALB/c di...

<ol>
	<li>Orosco, R. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Positive+Surgical+Margins+in+the+10+Most+Common+Solid+Cancers.">Positive Surgical Margins in the 10 Most Common Solid Cancers.</a> Scientific Reports. 8 (1), 5686 (2018).</li><li>Haas, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perioperative+Management+of+Extremity+Soft+Tissue+Sarcomas.">Perioperative Management of Extremity Soft Tissue Sarcomas.</a> Journal of Clinical Oncology. 36 (2), 118-124 (2018).</li><li>Brennan, M. F., Antonescu, C. 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D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+surgical+models+of+postoperative+tumor+recurrence+for+preclinical+adjuvant+therapy+assessment.">Characterization of surgical models of postoperative tumor recurrence for preclinical adjuvant therapy assessment.</a> American Journal of Translational Research. 4 (2), 206-218 (2012).</li><li>Talmadge, J. E., Singh, R. K., Fidler, I. 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D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+positive-margin+resection+model+recreates+the+postsurgical+tumor+microenvironment+and+is+a+reliable+model+for+adjuvant+therapy+evaluation.">A positive-margin resection model recreates the postsurgical tumor microenvironment and is a reliable model for adjuvant therapy evaluation.</a> Cancer Biology &amp; Therapy. 13 (9), 745-755 (2012).</li><li>Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vital+signs+monitoring+during+injectable+and+inhalant+anesthesia+in+mice.">Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice.</a> Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).</li><li>Overwijk, W. W., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=B16+as+a+mouse+model+for+human+melanoma.">B16 as a mouse model for human melanoma.</a> Current Protocols in Immunology. , (2001).</li><li>Predina, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+the+local+tumor+microenvironment+in+recurrent+cancers+may+explain+the+failure+of+vaccines+after+surgery.">Changes in the local tumor microenvironment in recurrent cancers may explain the failure of vaccines after surgery.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (5), E415-E424 (2013).</li><li>Endo, M., Lin, P. 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G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extended+release+of+perioperative+immunotherapy+prevents+tumor+recurrence+and+eliminates+metastases.">Extended release of perioperative immunotherapy prevents tumor recurrence and eliminates metastases.</a> Science Translational Medicine. 10 (433), (2018).</li><li>Tai, L. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mouse+tumor+model+of+surgical+stress+to+explore+the+mechanisms+of+postoperative+immunosuppression+and+evaluate+novel+perioperative+immunotherapies.">A mouse tumor model of surgical stress to explore the mechanisms of postoperative immunosuppression and evaluate novel perioperative immunotherapies.</a> Journal of Visualized Experiments. (85), e51253 (2014).</li><li>Gast, C. E., Shaw, A. K., Wong, M. H., Coussens, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+Procedures+and+Methodology+for+a+Preclinical+Murine+Model+of+De+Novo+Mammary+Cancer+Metastasis.">Surgical Procedures and Methodology for a Preclinical Murine Model of De Novo Mammary Cancer Metastasis.</a> Journal of Visualized Experiments. (125), (2017).</li><li>Qiu, W., Su, G. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+orthotopic+pancreatic+tumor+mouse+models.">Development of orthotopic pancreatic tumor mouse models.</a> Methods in Molecular Biology. 980, 215-223 (2013).</li><li>Erstad, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+and+heterotopic+murine+models+of+pancreatic+cancer+and+their+different+responses+to+FOLFIRINOX+chemotherapy.">Orthotopic and heterotopic murine models of pancreatic cancer and their different responses to FOLFIRINOX chemotherapy.</a> Disease Models &amp; Mechanisms. 11 (7), (2018).</li></ol>

Forniamo un protocollo per un modello murino di resezione chirurgica incompleta del sarcoma dei tessuti molli per testare le terapie peri-operatorie. Abbiamo anche standardizzato l'incisione chirurgica per consentire la valutazione della guarigione della ferita tra topi dopo il trattamento.
Il posizionamento del tumore è una parte importante di questo protocollo. Abbiamo optato per un modello tumorale sottocutaneo per consentire un facile accesso chirurgico al sito del tumore e la somministra...

La chirurgia rimane l'opzione di trattamento principale per molti tumori solidi1, tra cui sarcoma dei tessuti molli2,3. Nonostante i miglioramenti nelle tecniche di chirurgia del cancro, e le combinazioni con (neo)terapie associate, c'è ancora un alto rischio di ricaduta del cancro e metastasi a seguito della resezione tumorale primaria4,5. Nel sarcoma dei tessuti molli, le ricadute si verificano particolarmente locoregionale, nel sito di intervento chirurgico, con conseguente aumento della morbilità e della mortalità. In ambito clinico, può essere difficile ottenere margini abbastanza ampi (ad esempio, a causa di vincoli anatomici), con conseguente resezione incompleta e successiva ricorrenza tumorale6. Lo stress chirurgico e il successivo processo di guarigione delle ferite sono noti per creare un microambiente tumorale immunosoppressivo favorevole per la ricorrenza del tumore7,8. Pertanto, la scoperta e lo sviluppo di nuove terapie per il sarcoma dei tessuti molli, in particolare le immunoterapie, dovrebbe idealmente prendere in considerazione la risposta chirurgica di guarigione della ferita.
La maggior parte degli studi preclinici per le terapie adiuvanti vengono inizialmente effettuati utilizzando modelli di topo singenici o xenotrapianto sottocutanei, senza incorporare lo stress chirurgico e la risposta di guarigione delle ferite9,10. Pertanto, abbiamo sviluppato un modello di sarcoma dei tessuti molli topo subgenico singenico che incorpora una resezione chirurgica incompleta. WEHI 164 cellule fibrosarcoma sono inoculated sottocutaneamente, e una volta che i tumori sono stabiliti, rimuoviamo 50-75% della massa tumorale (Figura 1A-E). I tumori ricrescono costantemente dal tumore rimanente. Questo modello consente di testare le terapie adiuvanti considerando l'effetto dello stress chirurgico e della guarigione delle ferite. Modelli chirurgici simili di resezione incompleta sono stati utilizzati in una serie di studi da diversi gruppi e trovati per essere riproducibili ed efficaci11,12,13. Qui, forniamo una descrizione dettagliata di questo protocollo.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>26 gauge 0.5 mL insulin syringe</td>
			<td>Becton Dickinson, Australia</td>
			<td>326769</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-Mercaptoethanol</td>
			<td>Life Technologies Australia Pty Ltd</td>
			<td>21985023</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anaestetic gas machine</td>
			<td>Darvall Vet, Australia</td>
			<td>SKU: 2848</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-CTLA-4</td>
			<td>BioXcell, USA</td>
			<td>BE0164</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-PD-1</td>
			<td>BioXcell, USA</td>
			<td>BP0273</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine Hydrochloride Injection, 0.3mg/mL</td>
			<td>RB healthcare UK Limited, UK</td>
			<td>55175</td>
			<td>Prescription order</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidine Surgical Scrub 4%</td>
			<td>Perigo Australia, Australia</td>
			<td>CHL01449F(scrub</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine serum</td>
			<td>CellSera, Australia</td>
			<td>AU-FBS-PG</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps Fine 10.5 cm</td>
			<td>Surgical house, Western Australia</td>
			<td>CC74110</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps Fine 12 cm Serrated</td>
			<td>Surgical house, Western Australia</td>
			<td>CC74212</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps Halsted 14 cm</td>
			<td>Surgical house, Western Australia</td>
			<td>CD01114</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating chamber</td>
			<td>Datesand Ltd, UK</td>
			<td>Mini-Thermacage</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES (1M)</td>
			<td>Life Technologies Australia Pty Ltd</td>
			<td>15630080</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Henry Schein Animal Health, Australia</td>
			<td>SKU: 29405</td>
			<td>Prescription order</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lubricating Eye Ointment</td>
			<td>Alcon</td>
			<td>n/a</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin/streptomycin 1000X</td>
			<td>Life Technologies Australia Pty Ltd</td>
			<td>15140122</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Solution 10x</td>
			<td>Life Technologies Australia Pty Ltd</td>
			<td>70013-032</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reflex 7mm Clips</td>
			<td>Able scientific, Australia</td>
			<td>AS59038</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reflex 7mm Wound Clip Applicator</td>
			<td>Able scientific, Australia</td>
			<td>AS59036</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reflex Wound Clip Remover</td>
			<td>Able scientific, Australia</td>
			<td>AS59037</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rodent Qube Anesthesia Breathing Circuit</td>
			<td>Darvall Vet, Australia</td>
			<td>#7885</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 Medium + L-glutamine</td>
			<td>Life Technologies Australia Pty Ltd</td>
			<td>21870092</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors Iris STR 11 cm</td>
			<td>Surgical house, Western Australia</td>
			<td>KF3211</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors Iris STR 9 cm</td>
			<td>Surgical house, Western Australia</td>
			<td>JH4209</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Induction Chamber</td>
			<td>Darvall Vet, Australia</td>
			<td>SKU: 9630</td>
			<td>None</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TrypLE express 1x</td>
			<td>Life Technologies Australia Pty Ltd</td>
			<td>12604-021</td>
			<td>None</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a mouse model of incompletely resected soft tissue sarcoma for testing (neo)adjuvant therapies

La chirurgia è spesso il primo trattamento per molti tumori solidi. Tuttavia, le ricadute locali si verificano frequentemente a seguito della resezione tumorale primaria, nonostante le terapie adiuvanti o neo-adiuvanti. Ciò si verifica quando i margini chirurgici non sono sufficientemente privi di tumore, con conseguente cellule tumorali residue. Da un punto di vista biologico e immunologico, la chirurgia non è un evento nullo; l'ambiente di guarigione delle ferite è noto per indurre vie sia pro- e anti-tumorale. Di conseguenza, i modelli preclinici per lo sviluppo di farmaci volti a prevenire le ricadute locali dovrebbero incorporare la resezione chirurgica durante il test di nuove terapie (neo)adhavant, per modellare le impostazioni cliniche in pazienti trattati con chirurgia.
Qui, descriviamo un modello murino di resezione chirurgica incompleta del sarcoma dei tessuti molli WEHI 164 che consente di testare (terapie neo)adiuvanti nell'impostazione di una risposta di guarigione della ferita. In questo modello, 50% o 75% del tumore viene rimosso, lasciando dietro di sé alcuni tessuti tumorali in situ per modellare la malattia residua lorda dopo l'intervento chirurgico in ambiente clinico. Questo modello consente di testare le terapie nel contesto della chirurgia, considerando anche la risposta di guarigione della ferita, che può influenzare l'efficacia dei (neo)trattamenti associati. La resezione chirurgica incompleta si traduce in ricrescita riproducibile del tumore in tutti i topi in assenza di terapia adiuvante. Il trattamento adiuvante con blocco dei checkpoint si traduce in una ridotta ricrescita del tumore. Questo modello è quindi appropriato per testare le terapie nel contesto della chirurgia di debulking e della relativa risposta di guarigione della ferita e può essere esteso ad altri tipi di cancro solido.

La crescita del tumore a una dimensione di 50 mm2 è una dimensione ideale per il debulk parziale. La resezione chirurgica incompleta di 50 mm2 tumori risulta in 100% (n.5) ricrescita riproducibile dei tumori in assenza di immunoterapia adiuvante (Figura 4A). Successivamente abbiamo usato il modello per testare le immunoterapie adiuvanti usando anticorpi contro molecole di checkpoint Cytotoxic T Lymphocyte Associated Pro...

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A Mouse Model of Incompletely Resected Soft Tissue Sarcoma for Testing Neoadjuvant Therapies

In questo protocollo, descriviamo un modello murino di resezione chirurgica incompleta del sarcoma dei tessuti molli per testare (neo)le terapie adiuvanti.

Un modello di topo di Sarcoma di tessuto molle incompleto resected per test (Neo)adiuvante Terapie

Surgery is often the first treatment for many solid tumors. However, local relapses frequently occur following primary tumor resection, despite adjuvant ...

Questo protocollo mira a imitare l'impostazione clinica della malattia residua dopo la chirurgia di debulking del tumore, e quindi ci consente di testare nuove terapie oncologiche nel contesto della guarigione postoperatoria delle ferite. Il vantaggio di questa tecnica è che consente la standardizzazione della quantità di ferita inflitta e della quantità di tumore per rimanere. Questa tecnica è particolarmente importante per gli studi preclinici in quanto identificando nuovi trattamenti per i tumori, che ricadute localmente un esempio del quale è il sarcoma dei tessuti molli.Questa dimostrazione visiva è fondamentale per dimostrare la tecnica di inversione, che ci consente di esporre il tumore attaccato al lato della pelle. Inizia questa procedura con l'inoculazione sottocutanea delle cellule tumorali preparate nei topi, come descritto nel protocollo di testo. Il giorno 12, dopo l'inoculazione, quando i tumori hanno raggiunto una dimensione di circa 50 millimetri quadrati, dosare topi con 100 microlitri di buprenorfina per via sottocutanea nello scruff del collo, 30 minuti prima dell'intervento chirurgico.Impostare l'area chirurgica con il dissipatore di calore coperto da panca e impostare un cono del naso per l'anestesia. Disporre apparecchiature chirurgiche pulite in modo che siano facilmente raggiungibili, tra cui clorexadina, tampone, garza, gel per gli occhi, due forcep curve, forbici, applicatore a clip, smascheratore e ricariche di clip. Riscaldare la camera di riscaldamento a 37 gradi Celsius e impostare un altro riscaldatore per il recupero.Si noti che questa procedura richiede due persone. Un assistente deve monitorare attentamente la respirazione del mouse durante la procedura. Dopo aver anestetizzato il mouse come descritto nel protocollo di testo, eseguire un test di avvicinamento delle dita e un test riflesso corneale per assicurarsi che il mouse sia completamente anestetizzato prima di iniziare l'intervento chirurgico.Coprire gli occhi del topo con una piccola quantità di gel oftalmico per evitare secchezza degli occhi. Inizia questo intervento tamponando l'area chirurgica con clorexadina. L'uso di forcette e un paio di forbici fanno un'incisione dritta di un centimetro lungo il lato dorsale, a tre millimetri di distanza dal tumore.Non tagliare la pelle coprendo direttamente il tumore in quanto non guarirà bene. Evitare di usare un bisturi per tagliare il tumore e utilizzare una pinzetta per raccogliere i pezzi. Usando le pinzette, allontanare la fascia e il tessuto adiposo sottocutaneo tra il tumore e il peritoneo.Il tumore sottocutaneo è normalmente attaccato al lato della pelle. Aprire la ferita tenendo delicatamente la pelle sul lato del cuscinetto tumorale usando una pinzetta e invertire il tumore in modo che sia visibile all'esterno. Usando un paio di forbici, tagliare la capsula tumorale dalla metà per rimuovere, a partire dalla base del tumore più vicina all'apertura.Per un intervento chirurgico al 50% di debulk, attraversare il centro del tumore. Usando le forcep curve raccogliere la sezione del tumore da rimuovere. Raccogli tutti i resti dall'area di debulk.Per il 75% di debulk, iniziare eseguendo un debulk tumorale del 50%, quindi tagliare a metà il restante 50% del tumore. Raccogliere il 25% del tumore usando forcep curve. Per chiudere il sito chirurgico, posizionare il tumore rimanente sotto la pelle e usando le alette, tirare insieme i lembi della pelle e allineare la pelle lungo la ferita.Tenere la pelle insieme a cinque millimetri dal bordo della ferita e utilizzare clip chirurgiche per chiudere la ferita a partire dal lato, più vicino alle forcep. Applicare tutte le clip necessarie per assicurarsi che non sia esposto alcun tessuto sottostante. Generalmente, vengono applicate da tre a quattro clip con spazi vuoti di due millimetri tra le clip.Lasciare che i topi si riprendano mettendoli nella camera di riscaldamento calda. Posizionare la gabbia del mouse sul tappetino termico. Monitorare i topi nella camera di riscaldamento fino a quando non si sono ripresi dall'anestetico.Quindi, rimettere i topi nella gabbia, lasciare la gabbia sul dissipatore di calore per altri 10 minuti fino a quando i topi non sono diventati più attivi. Dai ai topi cibo umido e morbido. Monitorare i topi un'ora dopo l'intervento chirurgico per il recupero.Monitorare nuovamente i topi alla fine della giornata e la mattina seguente e assicurarsi che le clip rimangano in posizione. Trattare i topi perioperatoriamente con avvento o terapia neoadiuvante in qualsiasi momento, a seconda del trattamento di interesse. Ad esempio, trattare i topi con una dose di 100 microgrammi di anti-CTLA-4 per via intraperitoneale il giorno 15 dopo l'inoculazione.In alternativa, trattare i topi con tre dosi di 200 microgrammi di anti-PD-1 intraperitonealmente nei giorni, 15, 17 e 19 dopo l'inoculazione. La resezione chirurgica incompleta di tumori di 50 millimetri quadrati, qui indicata dalla linea tratteggiata, provoca una ricrescita riproducibile al 100% dei tumori in assenza di immunoterapia adiuvante. Pertanto, la crescita del tumore a una dimensione di 50 millimetri quadrati è una dimensione ideale per il debulk parziale.Il modello è stato quindi utilizzato per testare le immunoterapie adiuvanti utilizzando anticorpi contro moduli checkpoint, proteine associate ai linfociti T citotossici quattro e recettore della morte programmato uno. Il trattamento dei topi con anti-CTLA-4, ha comportato un tasso di cura dell'80%Mentre il trattamento dei topi con anti-PD-1 ha portato a un tasso di cura del 25%La risposta con anti-PD-1 offre l'opportunità di testarlo nuove combinazioni, per migliorare ulteriormente il tasso di risposta. È importante che il tumore rimanente rimanga attaccato alla pelle, altrimenti l'apporto di sangue verrà interrotto e il tumore diventerà necrotico.Seguendo questa procedura, i tumori possono essere analizzati con una varietà di metodi, come la citometria del flusso al fine di valutare come la chirurgia influisce sulle cellule infiltrazioni tumorali. Questo modello di topo ci ha permesso di esplorare come la guarigione delle ferite influisce sulle immunoterapie tumorali.

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Subretinal Transplantation of MACS Purified Photoreceptor Precursor Cells into the Adult Mouse Retina

Trapianto subretinale di cellule precursori del fotorecettore purificato MACS nella retina del topo adulto

Vision impairment and blindness due to the loss of the light-sensing cells of the retina, i.e. photoreceptors, represents the main reason for disability ...

Implantation of Inferior Vena Cava Interposition Graft in Mouse Model

L&#39;impianto di Vena cava inferiore Interposizione Graft in modello murino

Biodegradable scaffolds seeded with bone marrow mononuclear cells (BMCs) are often used for reconstructive surgery to treat congenital cardiac anomalies. ...

Transplantation of Pulmonary Valve Using a Mouse Model of Heterotopic Heart Transplantation

Il trapianto di valvola polmonare Utilizzando un modello murino di trapianto cardiaco eterotopico

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed ...

Evaluation of the Efficacy of the H. pylori Protein HP-NAP as a Therapeutic Tool for Treatment of Bladder Cancer in an Orthotopic Murine Model

Evaluation of the Efficacy of the H. pylori Protein HP-NAP as a Therapeutic Tool for Treatment of Bladder Cancer in an Orthotopic Murine Model

Valutazione dell&#39;efficacia della<em&gt; H. pylori</em&gt; Proteine ​​HP-NAP come strumento terapeutico per il trattamento del cancro della vescica in un ortotopico Modello murino

Bladder cancer is one of the most common malignancies of the urogenital tract. Intravesical injection of Bacillus Calmette-Gu&#233;rin (BCG) is the gold ...

A Mouse Model for Laser-induced Choroidal Neovascularization

Un modello di topo per Laser-indotta della coroide neovascolarizzazione

The mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) model has been a crucial mainstay model for neovascular age-related macular degeneration (AMD) ...

A Mouse Model of Orthopedic Surgery to Study Postoperative Cognitive Dysfunction and Tissue Regeneration

Un modello murino di chirurgia ortopedica per studiare la disfunzione cognitiva postoperatoria e rigenerazione tissutale

Surgery is commonly used to improve and maintain quality of life. Unfortunately, in vulnerable patients such as the elderly, complications may occur and ...