Name: flow cytometric analysis of lymphocyte infiltration in central nervous system during experimental autoimmune encephalomyelitis
Uploaded: 2020-11-17T13:00:00
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Esta investigación fue apoyada por la beca de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (31570921 a ZJ, 81571533 a LS), la Comisión Municipal de Salud de Shanghái y la Planificación Familiar (201540206 a ZJ), la beca de investigación Ruijin Hospital North (2017ZX01 a ZJ).

Todos los métodos descritos aquí han sido aprobados por el comité animal de la Escuela de Ciencias Médicas Básicas, Shanghai Jiao Tong University.
1. Preparación de los materiales
<ol><li>Utilice la secuencia MEVGWYRSPFSRVVHLYRNGK de MOG35–55 para obtener el péptido liofilizado de fuentes comerciales. Asegúrese de que la pureza del péptido es >95%. Preparar 10 mg/ml de solución en stock de MOG en solución salina tamponada con fosfato (PBS) y almacenar a -20 oC.</li>
	<li>Prepara...

<ol>
	<li>Milo, R., Kahana, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+sclerosis:+geoepidemiology,+genetics+and+the+environment.">Multiple sclerosis: geoepidemiology, genetics and the environment.</a> Autoimmunity Reviews. 9, 387-394 (2010).</li><li>Gold, R., Linington, C., Lassmann, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Understanding+pathogenesis+and+therapy+of+multiple+sclerosis+via+animal+models:+70+years+of+merits+and+culprits+in+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+research.">Understanding pathogenesis and therapy of multiple sclerosis via animal models: 70 years of merits and culprits in experimental autoimmune encephalomyelitis research.</a> Brain : A Journal of Neurology. 129, 1953-1971 (2006).</li><li>Simmons, S. B., Pierson, E. R., Lee, S. Y., Goverman, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+the+heterogeneity+of+multiple+sclerosis+in+animals.">Modeling the heterogeneity of multiple sclerosis in animals.</a> Trends in Immunology. 34 (8), 410-422 (2013).</li><li>Lassmann, H., Wisniewski, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+relapsing+experimental+allergic+encephalomyelitis:+clinicopathological+comparison+with+multiple+sclerosis.">Chronic relapsing experimental allergic encephalomyelitis: clinicopathological comparison with multiple sclerosis.</a> Archives of Neurology. 36, 490-497 (1979).</li><li>Bernard, C. C., Leydon, J., Mackay, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=T+cell+necessity+in+the+pathogenesis+of+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+in+mice.">T cell necessity in the pathogenesis of experimental autoimmune encephalomyelitis in mice.</a> European Journal of Immunology. 6, 655-660 (1976).</li><li>Yasuda, T., Tsumita, T., Nagai, Y., Mitsuzawa, E., Ohtani, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+allergic+encephalomyelitis+(EAE)+in+mice.+I.+Induction+of+EAE+with+mouse+spinal+cord+homogenate+and+myelin+basic+protein.">Experimental allergic encephalomyelitis (EAE) in mice. I. Induction of EAE with mouse spinal cord homogenate and myelin basic protein.</a> Japanese Journal of Experimental Medicine. 45, 423-427 (1975).</li><li>Mendel, I., Kerlero de Rosbo, N., Ben-Nun, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+myelin+oligodendrocyte+glycoprotein+peptide+induces+typical+chronic+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+in+H-2b+mice:+fine+specificity+and+T+cell+receptor+V+beta+expression+of+encephalitogenic+T+cells.">A myelin oligodendrocyte glycoprotein peptide induces typical chronic experimental autoimmune encephalomyelitis in H-2b mice: fine specificity and T cell receptor V beta expression of encephalitogenic T cells.</a> European Journal of Immunology. 25, 1951-1959 (1995).</li><li>Bramow, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Demyelination+versus+remyelination+in+progressive+multiple+sclerosis.">Demyelination versus remyelination in progressive multiple sclerosis.</a> Brain. 133, 2983-2998 (2010).</li><li>Sospedra, M., Martin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunology+of+multiple+sclerosis.">Immunology of multiple sclerosis.</a> Annual Reviews in Immunology. 23, 683-747 (2005).</li><li>McGinley, A. M., Edwards, S. C., Raverdeau, M., Mills, K. H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Th17+cells,+gammadelta+T+cells+and+their+interplay+in+EAE+and+multiple+sclerosis.">Th17 cells, gammadelta T cells and their interplay in EAE and multiple sclerosis.</a> Journal of Autoimmunity. 20 (14), 3394 (2018).</li><li>Ji, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thiamine+deficiency+promotes+T+cell+infiltration+in+experimental+autoimmune+encephalomyelitis:+the+involvement+of+CCL2.">Thiamine deficiency promotes T cell infiltration in experimental autoimmune encephalomyelitis: the involvement of CCL2.</a> Journal of Immunology. 193, 2157-2167 (2014).</li><li>Manglani, M., Gossa, S., McGavern, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Leukocyte+Isolation+from+Brain,+Spinal+Cord,+and+Meninges+for+Flow+Cytometric+Analysis.">Leukocyte Isolation from Brain, Spinal Cord, and Meninges for Flow Cytometric Analysis.</a> Current Protocols in Immunology. 121, 44 (2018).</li><li>Ji, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Obesity+promotes+EAE+through+IL-6+and+MCP-1-mediated+T+cells+infiltration.">Obesity promotes EAE through IL-6 and MCP-1-mediated T cells infiltration.</a> Frontiers in Immunology. 10, 1881 (2019).</li><li>Reiseter, B. S., Miller, G. T., Happ, M. P., Kasaian, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Treatment+of+murine+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+with+a+myelin+basic+protein+peptide+analog+alters+the+cellular+composition+of+leukocytes+infiltrating+the+cerebrospinal+fluid.">Treatment of murine experimental autoimmune encephalomyelitis with a myelin basic protein peptide analog alters the cellular composition of leukocytes infiltrating the cerebrospinal fluid.</a> Journal of Neuroimmunology. 91, 156-170 (1998).</li><li>Bittner, S., Afzali, A. M., Wiendl, H., Meuth, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelin+oligodendrocyte+glycoprotein+(MOG35-55)+induced+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+(EAE)+in+C57BL/6+mice.">Myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) induced experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) in C57BL/6 mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (86), e51275 (2014).</li><li>Miller, S. D., Karpus, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+autoimmune+encephalomyelitis+in+the+mouse.">Experimental autoimmune encephalomyelitis in the mouse.</a> Current Protocols in Immunology. , 11 (2007).</li><li>Tietz, S. M., Engelhardt, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualizing+Impairment+of+the+Endothelial+and+Glial+Barriers+of+the+Neurovascular+Unit+during+Experimental+Autoimmune+Encephalomyelitis+In+Vivo.">Visualizing Impairment of the Endothelial and Glial Barriers of the Neurovascular Unit during Experimental Autoimmune Encephalomyelitis In Vivo.</a> Journal of Visualized Experiments. (145), e59249 (2019).</li></ol>

Este estudio presenta un protocolo para inducir y monitorear EAE utilizando MOG35-55 en ratones C57BL/6, que se consideran un modelo animal experimental neuroinmunológico típico de MS. EAE se puede inducir variando las cepas de ratones o el tipo de proteína utilizada para la inducción de acuerdo con el propósito del estudio. Por ejemplo, el uso de péptido PLP139–151 en ratones SJL puede inducir un curso de enfermedad eaE recurrente-remitante que es especialmente adecuado para evaluar los efectos terapéuticos en ...

Como enfermedad desmielinizante crónica del SNC, la SME afecta a unos 2,5 millones de personas en todo el mundo y carece de tratamientos curativos1. También se considera una enfermedad autoinmune, en la que los linfocitos T específicos del antígeno de mielina inician una reacción inflamatoria y conducen a la desmielinización y lesión axonal en el SNC2. La encefalomielitis autoinmune experimental (EAE) se ha utilizado ampliamente para investigar mecanismos patógenos de la EME como un modelo clásico de la enfermedad de desmielinización autoinmune en el SNC3. Hay dos maneras de inducir EAE: una es inducir EAE activamente inmunizando animales con componentes de mielina, otra es la transferencia adoptiva mediante la transferencia de células T encefalitgénicas al receptor2,4,5. Las susceptibilidades a EAE son diferentes en diferentes cepas animales6. En ratones C57BL/6, el desafío de la glicoproteína de oligodendrocitos de mielina (MOG) 35–55 induce una enfermedad monofásica con desmielinización e inflamación extensas en el SNC, que se utiliza con frecuencia en experimentos con ratones dirigidos a genes7.
La generación de células T reactivas específicas de mielina es necesaria para la aparición y el desarrollo de la enfermedad en EAE y es un signo inmunológico de EAE y MS. Los linfocitos T autoreactivos activados cruzan la barrera hematoencefálica (BBB) hacia el SNC sano e inician la enfermedad de EAE. Cuando se encuentra MOG 35–55 Ag, estos linfocitos T inducen inflamación y el reclutamiento de células efectores en el SNC, lo que resulta en desmielinización y destrucción de axones8,,9. En el modelo EAE, hay una amplia evidencia de que las células CD4+ T específicas de neuroantigen pueden iniciar y sostener la neuroinflamación y la patología3,,10. Dependiendo de las principales citoquinas producidas, los linfocitos CD4+ T se han clasificado en diferentes subconjuntos: Th1 (caracterizado por la producción de interferón-γ), Th2 (caracterizado por la producción de interleucina 4), y Th17 (caracterizado por la producción de interleucina 17). Se cree que la activación de las células Th1 y Th17 contribuyen a la inducción, mantenimiento y regulación de la desmielinización inflamatoria en EAE y EM mediante el secretamiento de las citoquinas efectoras IFN-γ e IL-17, que son capaces de activar macrófagos y reclutar neutrófilos a los sitios inflamatorios para acelerar las lesiones11.
Debido a que las células T autorreactivas cruzan el BBB hacia el SNC e inducen el desarrollo de la enfermedad en la EMA y eas, es muy importante analizar las células T en el SNC. Sin embargo, hay muy pocos protocolos establecidos para el aislamiento de linfocitos del SNC12. Por lo tanto, se desarrolló un método optimizado para aislar células mononucleares del cerebro y analizar linfocitos T con marcadores CD45, CD11b, CD3, CD4, INF-g e IL-17 para la citometría de flujo. El método utiliza la solución de trabajo Mycobacterium tuberculosis de toxinas de perersis (PTX) adyuvante MOG35–55 para inducir un modelo de inmunización activa de EAE en ratones. Luego, los métodos de separación mecánica y centrifugación de gradiente de densidad se utilizan para el aislamiento de células mononucleares del SNC. Por último, se utiliza una estrategia de medición de citometría de flujo optimizada para identificar linfocitos T y subconjuntos del cerebro mediante la tinción de múltiples marcadores.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor700 anti-mouse CD45.2</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>56-0454-82</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-Mouse CD16/CD32 Fc block</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>101302</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>APC anti-mouse IFN-g</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>17-7311-82</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD LSRFortessa X-20</td>
			<td>BD</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dounce homogenizer</td>
			<td>Wheaton</td>
			<td>353107542</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eBioscience Cell Stimulation Cocktail (plus protein transport inhibitors) (500X)</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>00-4975-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eBioscience Intracellular Fixation &#38; Permeabilization Buffer Set</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>88-8824-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC anti-mouse CD3</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>100203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC Rat IgG2b, &#954; Isotype Ctrl Antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>400605</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freund&#39;s Adjuvant Complete (CFA)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F5881</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse IgG2a kappa Isotype Control (eBM2a), Alexa Fluor 700, eBioscience</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>56-4724-80</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mycobacterium tuberculosis H37 Ra</td>
			<td>Difco Laboratories</td>
			<td>231141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE anti-mouse IL-17A</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>12-7177-81</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE/Cy7 anti-mouse CD4</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>100422</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE/Cy7 Rat IgG2b, &#954; Isotype Ctrl Antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>400617</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Percoll</td>
			<td>GE</td>
			<td>17-0891-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PerCP/Cy5.5 anti-mouse CD11b</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>101228</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PerCP/Cy5.5 Rat IgG2b, &#954; Isotype Ctrl Antibody</td>
			<td>BioLegend</td>
			<td>400631</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pertussis toxin (PTX)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P-2980</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat IgG1 kappa Isotype Control (eBRG1), APC, eBioscience</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>17-4301-82</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat IgG2a kappa Isotype Control (eBR2a), PE, eBioscience</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>12-4321-80</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat MOG35&#8211;55 peptides</td>
			<td>Biosynth International</td>
			<td></td>
			<td>MEVGWYRSPFSRVVHLYRNGK</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

flow cytometric analysis of lymphocyte infiltration in central nervous system during experimental autoimmune encephalomyelitis

La esclerosis múltiple (EM) es una enfermedad autoinmune del sistema nervioso central (SNC) causada por la combinación de factores ambientales y antecedentes genéticos susceptibles. La encefalomielitis autoinmune experimental (EAE) es un modelo de enfermedad típico de la EME ampliamente utilizado para investigar la patogénesis en la que los linfocitos T específicos para los antígenos de mielina inician una reacción inflamatoria en el SNC. Es muy importante evaluar cómo los linfocitos en el SNC regulan el desarrollo de la enfermedad. Sin embargo, el enfoque para medir la cantidad y calidad de los linfocitos infiltrados en el SNC es muy limitado debido a las dificultades para aislar y detectar linfocitos infiltrados del cerebro. Este manuscrito presenta un protocolo para el cual es útil para el aislamiento, identificación y caracterización de linfocitos infiltrados del SNC y será útil para nuestra comprensión de cómo los linfocitos están involucrados en el desarrollo de la enfermedad autoinmune del SNC.

Después de la inmunización de ratones C57BL/6, todos los ratones fueron pesados, examinados y clasificados diariamente en busca de signos neurológicos. El curso clínico representativo de EAE debe dar lugar a una curva de la enfermedad como se presenta en la Figura 2A y un cambio de peso corporal en el ratón como se presenta en la Figura 2B. Los ratones C57BL/6 inmunizados con MOG35-55 generalmente comenzaron a desarrollar síntomas de la enfermedad alrededo...

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Flow Cytometric Analysis of Lymphocyte Infiltration in Central Nervous System during Experimental Autoimmune Encephalomyelitis

Este manuscrito presenta un protocolo para inducir la encefalomielitis autoinmune experimental activa (EAE) en ratones. También se presenta un método para el aislamiento y caracterización de los linfocitos infiltrados en el sistema nervioso central (SNC) para mostrar cómo los linfocitos participan en el desarrollo de la enfermedad autoinmune del SNC.

Análisis citométrico de flujo de infiltración de linfocitos en el sistema nervioso central durante la encefalomielitis autoinmune experimental

Multiple sclerosis (MS) is an autoimmune disease of the central nervous system (CNS) caused by the combination of environmental factors and susceptible ...

El protocolo que presentamos aquí nos será útil para entender cómo los linfocitos están involucrados en el desarrollo de la enfermedad autoinmune del sistema nervioso central. Con este método, los linfocitos en el cerebro se pueden estudiar en una célula por base celular. Este protocolo también se puede aplicar a otros modelos y enfermedades del sistema nervioso central que necesitaban analizar las características y funciones de las células inmunitarias.En este video, el protocolo puede demostrar fácilmente cómo inducir el modelo y aislar células individuales en el cerebro. Después de confirmar la falta de respuesta al reflejo del pedal, utilice una jeringa de un mililitro para inyectar por vía subcutánea a ratones C57BL/6 anestesiados con 100 microgramos de MOG emulsionado 35-55 en 100 microlitros del adyuvante completo de Freund en dos sitios diferentes de la espalda cerca del cuello. El mismo día y el día dos después de la inmunización, inyectar por vía intraperitoneal a los ratones 200 microlitros de un nanogramos por solución de trabajo de toxina microlitrolitro por microlitro.Después de la segunda inyección, transfiera los ratones de vuelta a su jaula de origen con una almohadilla de calentamiento y monitoreo hasta la recumbencia completa. Al día siguiente y a lo largo del curso de la enfermedad, examinar y calificar a todos los ratones de una manera cegada para los signos neurológicos descritos en la tabla y para cualquier cambio en el peso. En el punto final experimental apropiado, corte el cráneo cuidadosamente de la nariz al cuello y transfiera el cerebro de cada animal de la caja craneal a tubos individuales de 50 mililitros que contengan 10 mililitros de medio RPMI.Mezclar bien los tubos para eliminar los glóbulos rojos adherentes y eliminar el medio por aspiración. Añadir 10 mililitros de medio fresco a cada tubo y transferir los cerebros en platos individuales de 100 milímetros. Finalmente corta cada cerebro con una maquinilla de afeitar y usa una pipeta de plástico para transferir tanto tejido de un plato a la vez y seis mililitros de medio en un homogeneizador de vidrio centrado en siete mililitros.Moler el cerebro usando el émbolo suelto del pestillo antes de usar el émbolo apretado para llevar el tejido hasta que la suspensión sea homogénea. Luego, vierta la suspensión de tejido resultante en un tubo cónico pre-enfriado de 15 mililitros sobre hielo. Cuando todas las muestras hayan sido homogeneizadas, ajuste el volumen en cada tubo a siete mililitros con medio fresco, antes de agregar cada suspensión de tejido a un nuevo tubo refrigerado de 15 mililitros que contiene tres mililitros de matriz de membrana 100% sótano por tubo.Mezclar por inversión unas cuantas veces y utilizar una pipeta de tres mililitros para agregar cuidadosamente y lentamente un mililitro de solución de gradiente de densidad del 70 por ciento debajo de cada muestra de solución de tejido. Separe las células por centrifugación de gradiente de densidad y elimine casi toda la capa superior, teniendo cuidado de eliminar por completo toda la mielina. Transfiera la interfaz a un nuevo tubo de 15 mililitros y ajuste el volumen a 10 mililitros con medio fresco.A continuación, centrifugar las muestras de nuevo y retirar el sobrenadante antes de resuspendir los pellets en aproximadamente 100 microlitros de medio por tubo. Para el análisis citométrico de flujo de las células cerebrales cosechadas, asigne aproximadamente dos veces 10 a las seis células en 100 microlitros de medio en pozos individuales de una placa de 96 pozos. Cuando todas las células hayan sido chapadas, agregue 100 microlitros de cóctel de estimulación celular 500X más inhibidores de transporte de proteínas a los pozos y coloque la placa en la incubadora de cultivo celular durante cuatro horas.Al final de la incubación se agrupan las células en la parte inferior de los pozos por centrifugación y resuspend los pellets en 100 microlitros de amortiguación de citometría de flujo por pozo. Pre-incubar las células con tres microlitros de Anti-Mouse CD16/CD32 Fc Block durante 10 minutos a cuatro grados Celsius antes de la tinción. Para bloquear cualquier interacción mediada por Fc no específica.Al final de la incubación, añadir el cóctel de anticuerpos de interés a cada pozo y colocar la placa a cuatro grados Celsius protegido de la luz. Después de 30 minutos, lavar los pozos con 100 microlitros de citometría de flujo tampón por pozo y sedimentar las células por centrifugación. Después de desechar los sobrenadantes, agregue 200 microlitros de tampón de fijación intracelular a cada pozo.Después de una incubación de 30 a 60 minutos a temperatura ambiente, recoja las muestras por centrifugación y resusppend los pellets en 200 microlitros de 1X tampón de permeabilidad por pozo. Centrifugar las muestras de nuevo, y después de desechar el sobrenadante, resuspender los pellets en 100 microlitros con tamplia de permeabilización fresca. A continuación, añadir los anticuerpos adecuados para la detección de cualquier antígeno intracelular de interés durante una incubación de 30 minutos a cuatro grados centígrados, protegidos de la luz.Al final de la incubación, añadir 100 microlitros de 1X tamplización tampinación a cada pocótela y girar las muestras por centrifugación. Luego, resuspender las células de la mancha en 200 microlitros de tampón de tinción de citometría de flujo y analizar las células por citometría de flujo de acuerdo con los protocolos estándar. Un curso clínico típico de EAE debe resultar en una curva de la enfermedad y cambio en el peso corporal como se ilustra.Los ratones C57BL/6 inmunizados con MOG 35-55 generalmente comienzan a desarrollar síntomas de la enfermedad alrededor del día 10 a 12 y alcanzan el pico de la enfermedad alrededor del día 15 a 21. Antes de la aparición de la enfermedad, el peso corporal de los ratones inmunizados aumenta gradualmente antes de disminuir en correlación con el aumento de los síntomas de la enfermedad Los ratones demuestran el peso corporal más bajo en el pico de EAE, con pesos corporales recuperándose ligeramente a medida que disminuyen los síntomas clínicos. Sin embargo, los ratones generalmente no se recuperan completamente y, por lo general, desarrollan una patología monofásica de la enfermedad crónica.Como ilustra este análisis de flujo representativo, las células Th1 y TH17 productoras de interferón gamma se incrementan significativamente en ratones EAE. El paso más importante es 3.10. El operador debe transferir la capa media y la luz, siendo cuidadosamente, tomar el menor número de otras capas como sea posible.Siguiendo este protocolo, podemos seguir los linfocitos T para un análisis de transcripción adicional para estudiar

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Overcoming Unresponsiveness in Experimental Autoimmune Encephalomyelitis (EAE) Resistant Mouse Strains by Adoptive Transfer and Antigenic Challenge

Overcoming Unresponsiveness in Experimental Autoimmune Encephalomyelitis EAE Resistant Mouse Strains by Adoptive Transfer and Antigenic Challenge

Superar la falta de respuesta en encefalomielitis autoinmune experimental (EAE) cepas de ratones resistentes a través de transferencia adoptiva y la estimulación antigénica

Experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) is an inflammatory disease of the central nervous system (CNS) and has been used as an animal model for ...

Investigación

Inmunología e Infección

Culturing Microglia from the Neonatal and Adult Central Nervous System

Microglia cultivo del Sistema Nervioso Central Neonatal y Adultos

Microglia are the resident macrophage-like cells of the central nervous system (CNS) and, as such, have critically important roles in physiological and ...

Myelin Oligodendrocyte Glycoprotein (MOG35-55) Induced Experimental Autoimmune Encephalomyelitis (EAE) in C57BL/6 Mice

Myelin Oligodendrocyte Glycoprotein MOG35-55 Induced Experimental Autoimmune Encephalomyelitis EAE in C57BL/6 Mice

La mielina glicoproteína del oligodendrocito (MOG<sub&gt; 35-55</sub&gt;) Inducida por la encefalomielitis autoinmune experimental (EAE) en ratones C57BL / 6 ratones

Multiple sclerosis is a chronic neuroinflammatory demyelinating disorder of the central nervous system with a strong neurodegenerative component. While ...

Induction of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis in Mice and Evaluation of the Disease-dependent Distribution of Immune Cells in Various Tissues

La inducción de la encefalomielitis autoinmune experimental en ratones y evaluación de la distribución de la enfermedad dependiente de las células inmunes en diversos tejidos

Multiple sclerosis is presumed to be an inflammatory autoimmune disease, which is characterized by lesion formation in the central nervous system (CNS) ...

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