Name: induction of complete transection-type spinal cord injury in mice
Uploaded: 2020-05-06T14:00:00
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이 작품은 그리피스 대학 국제 학생 (박사) RR에 급여, JE와 JSJ에 페리 크로스 재단 보조금, JSJ와 JE에 클렘 존스 재단 보조금, JSJ와 JE에 퀸즐랜드 보조금의 자동차 사고 보험위원회에 의해 지원되었다.

모든 절차는 그리피스 대학 동물 윤리위원회 (ESK/04/16 AEC 및 MSC/04/18 AEC)의 승인으로 수행되었습니다.
1. 수술에 대한 동물 설정 절차
<ol><li>동물을 마취하고 안정화시하십시오.<ol>
<li>8-10 주 된 여성 C57BL/6 마우스를 사용 하십시오. 마취유도를 위해 L/min 산소 1에 5%의 이소플루란을 사용하십시오. 마취의 유지 보수를 위해 1 L /min 산소에 1.5-2 %의 이소플루란을 사용하십시오. 꼬리...

<ol>
	<li>Sharif-Alhoseini, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+spinal+cord+injury:+a+systematic+review.">Animal models of spinal cord injury: a systematic review.</a> Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).</li><li>Lee, D. H., Lee, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+axon+regeneration+after+spinal+cord+injury.">Animal models of axon regeneration after spinal cord injury.</a> Neuroscience Bulletin. 29 (4), 436-444 (2013).</li><li>Sharif-Alhoseini, M., Rahimi-Movaghar, V., Dionyssiotis, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Topics in Paraplegia. , (2014).</li><li>Talac, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+spinal+cord+injury+for+evaluation+of+tissue+engineering+treatment+strategies.">Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies.</a> Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).</li><li>Nakae, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+animal+model+of+spinal+cord+injury+as+an+experimental+pain+model.">The animal model of spinal cord injury as an experimental pain model.</a> Journal of Biomedicine &amp; Biotechnology. 2011, 939023 (2011).</li><li>Kwon, B., Oxland, T., Tetzlaff, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+used+in+spinal+cord+regeneration+research.">Animal models used in spinal cord regeneration research.</a> Spine. 27, 1504-1510 (2002).</li><li>Kundi, S., Bicknell, R., Ahmed, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+cord+injury:+current+mammalian+models.">Spinal cord injury: current mammalian models.</a> American Journal of Neuroscience. (4), 1-12 (2013).</li><li>Harrison, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertebral+landmarks+for+the+identification+of+spinal+cord+segments+in+the+mouse.">Vertebral landmarks for the identification of spinal cord segments in the mouse.</a> Neuroimage. 68, 22-29 (2013).</li><li>Basso, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Basso+Mouse+Scale+for+locomotion+detects+differences+in+recovery+after+spinal+cord+injury+in+five+common+mouse+strains.">Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains.</a> Journal of Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).</li><li>Seitz, A., Aglow, E., Heber-Katz, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recovery+from+spinal+cord+injury:+a+new+transection+model+in+the+C57Bl/6+mouse.">Recovery from spinal cord injury: a new transection model in the C57Bl/6 mouse.</a> Journal of Neuroscience Research. 67 (3), 337-345 (2002).</li></ol>

이 방법은 마우스의 T10 척추 수준에서 완전한 트란섹션 유형 부상을 유도하여 동물의 완전한 하반신 마비를 발생시며 부상 수준 보다 낮습니다. 전반적으로,이 방법은 최소한의 출혈, 무시할 수있는 부수적 인 손상 및 안정적이고 재현 가능한 부상을 초래합니다. 라미네절제술(10)이없는 이전에 발표된 트랜섹션 방법과 비교하여, 이 방법은 척추의 곡률을 조작하지 않고 직접 시?...

척수 손상 (SCI)은 건강과 라이프 스타일에 급격한 변화를 초래하는 복잡한 의료 문제입니다. SCI에 대한 치료법은 없으며 SCI의 병리학은 철저히 이해되지 않습니다. 동물 SCI 모델, 특히 설치류 모델은 새로운 치료법을 시험하기 위한 귀중한 도구를 제공하며 수십 년 동안 SCI를 탐구하는 데 사용되어 왔습니다. 현재까지, 전임상 SCI 연구의 72% 이상은쥐1을 사용한 단지 16%에 비해 쥐 모형을 채택했습니다. 비록 쥐, 그들의 더 큰 크기와 인간 SC와 유사한 충 치 형성 하는 경향, 전통적으로 새로운 치료 접근 을 공부 하기 위한 선호 하는 모델 동물 되었습니다., 쥐 (많은 형질 전환 마우스 모델을 포함 하 여) 지금 SCI2의세포 및 분자 메커니즘을 공부 하기 위해 더 자주 사용 되 고 있다. 마우스 모델은 쥐보다 취급이 용이하고 생식 속도가 빨라지고 비용이 절감되는 측면에서 추가적인 이점을 제공합니다. 마우스는 또한 인간1,2,3과게놈 유사성의 높은 정도를 나타낸다. 마우스 모델의 주요 단점은 척수 손상을 생성하고 치료하기위한 외과 적 개입에 대한 도전을 만드는 상당히 작은 크기로 확인되었습니다4,5.
마우스 모델에서 안정적인 SCI를 유도하기 위한 견고하고 재현 가능한 수술 프로토콜의 필요성을 강조하는 기존 문헌에는 격차가 있습니다. 따라서 이러한 한계를 극복하기 위해 이 프로토콜에서 참신하고 정확한 수술 방법을 제공합니다. 이 프로토콜은 마우스에서 황부 형 상해를 유도하기 위한 심층 지침을 제공하며, 이 부상 유형은 부상6,신경 가소성, 신경 회로 및 조직 공학 접근법7에따른 재생 및 퇴행성 변화를 연구하는 데 가장 적합한 것으로 인식되고 있다. 우리는 흉부 수준 SCI가 문헌1에서가장 일반적으로 사용되기 때문에, 낮은 흉부 영역에서 부상을 유도하기로 결정했다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1037px;" width="1036">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Baytril injectable 50 mg/mL, 50 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">BAYT I</td>
			<td style="width:184px;">Post-operative care drug</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Betadine 500 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">BETA AS</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Castroviejo needle holder, locking</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T149C</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:449px;">Ceramic zirconia blade, round with sharp sides, single edge, angled</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">TXD101A-X</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Cotton swabs (5pcs)</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">21-893</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dremel Micro</td>
			<td style="width:243px;">DREMEL</td>
			<td style="width:161px;">8050-N/18</td>
			<td>Cordless rotary tool</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:449px;">Dressing forceps fine</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">06-306</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Drill bits</td>
			<td style="width:243px;">Kemmer Pr&#228;zision</td>
			<td style="width:161px;">SM 32 M 0550 070</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dumont #7b forceps</td>
			<td style="width:243px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:161px;">11270-20</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dumont tweezers, style 5</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T05-822</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Fur trimmer</td>
			<td style="width:243px;">WAHL</td>
			<td style="width:161px;">WA9884-312</td>
			<td>Zero Overlap Hair Trimmer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Iris scissors, Ti, sharp tips, straight, 90mm</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">TY-3032</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Isoflurane isothesia NXT 250</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">ISOF 00 HS</td>
			<td>Anaesthetic agent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Colibri Retractor - 4cm</td>
			<td style="width:243px;">Fine Science Tools</td>
			<td>17000-04</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Scalpel handle</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T133</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Signature latex surgical gloves size 7.5</td>
			<td style="width:243px;">Medline</td>
			<td style="width:161px;">MSG5475</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sodium Chloride 0.9%</td>
			<td style="width:243px;">STS</td>
			<td>PHA19042005</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sterile Dressing Pack</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">08-709</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sterile Fluid Impervious Drape 60x60 cm</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">29-220</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Surgical spirit 100 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;"># SURG SP</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Suture Material - SILK BLK 45CM 5/0 FS-2</td>
			<td style="width:243px;">Johnson &#38; Johnson Medical</td>
			<td style="width:161px;">682G</td>
			<td>Silk Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Suture Material - Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2</td>
			<td style="width:243px;">Johnson &#38; Johnson Medical</td>
			<td style="width:161px;">VCP421H</td>
			<td>Vicryl Suture</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:449px;">Temgesic 0.3 mg in 1 mL, x 5 ampoules (class S8 drug)</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">TEMG I</td>
			<td>Post-operative care drug</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

induction of complete transection-type spinal cord injury in mice

척수 손상 (SCI)은 주로 외상의 결과로 돌이킬 수없는 영구적 인 기능 상실로 이어집니다. 세포 이식 방법과 같은 몇몇 처리 선택권은 SCI에서 생기는 쇠약하게 하는 무력을 극복하기 위하여 연구되고 있습니다. 대부분의 임상 전 동물 실험은 SCI의 설치류 모델에서 수행됩니다. SCI의 쥐 모델은 널리 사용되는 동안, 마우스 모델은 쥐 모델보다 상당한 장점을 가질 수 있지만, 덜 관심을 받고있다. 마우스의 작은 크기는 쥐에 대 한 보다 낮은 동물 유지 보수 비용에 동일시, 수많은 형질 전환 마우스 모델의 가용성연구의 많은 유형에 대 한 유리. 동물에서 반복 가능하고 정확한 부상을 유도하는 것은 SCI 연구의 주요 과제이며, 작은 설치류에서는 고정밀 수술이 필요합니다. transection 형 상해 모형은 이식 기지를 둔 치료 연구를 위한 마지막 10년간 일반적으로 이용된 상해 모형이었습니다, 그러나 마우스에 있는 완전한 transection 모형 상해를 유도하기 위한 표준화된 방법은 존재하지 않습니다. 우리는 흉부 척추 수준 10 (T10)에서 C57BL/6 마우스에서 완전한 흉부 유형 상해를 유도하기위한 수술 프로토콜을 개발했습니다. 절차는 정확하게 라미나를 제거하기 위해 rongeurs 대신 작은 팁 드릴을 사용, 그 후 둥근 절삭날이 있는 얇은 블레이드척수 편절을 유도하는 데 사용됩니다. 이 방법은 최소한의 부수적인 근육과 뼈 손상을 가진 작은 설치류에 있는 재현가능한 편부 모형 상해로 이끌어 내고 그러므로 행동 기능 결과가 분석되는 경우에 특히 혼란 요인을 극소화합니다.

도 1에묘사된 결과 방법은 마우스(도1A)의적절한 안정화와 척추 및 기생충 조직의 양호한 시각화(도1B)를포함한다. 척추 과정과 라미나는 최소한의 근육 해부 및 혈액 손실(도 1C,강조 영역)으로 명확하게 시각화 될 수 있습니다. 미세 팁 드릴링은 도 1D에도시된 대로 수행되어 사각형에 ?...

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Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice

이 프로토콜은 척수 손상 연구에 대한 최소한의 부수적 손상과 함께 마우스 모델에서 안정적인 횡부 형 척수 손상을 유도하기위한 정확한 라미네절절제술을 만드는 방법을 설명합니다.

마우스에서 완전한 Transection 형 척수 손상의 유도

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, ...

이 프로토콜은 높은 재현성과 매우 높은 생존율을 가진 마우스에 있는 가득 차있는 척수 transection를 유도하기 위하여 정밀하고 외과적으로 통제된 상해를 전달합니다. 뼈 부상에 대한 미세 한 드릴의 사용은 주변 조직에 손상을 최소화, 부상과 치료 응답이 더 정확하게 모델링 할 수 있도록. 라미케절제술을 수행하기 위해, 8-10주 된 암컷 C57 블랙 6 마우스에서 페달 반사에 대한 반응의 부족을 확인한 후, 등쪽 척추 위에 수술 부위를 노출시키고 포비도오네 요오드 살균 제비액에 담근 멸균 면봉으로 면도 부위를 살균한다.메스를 사용하여 T10 척추 수준에서 수직 중간선 절개를 하고 직선 집게를 사용하여 기본 근막에서 피부를 들어 올려 리트랙터 배치를 용이하게 합니다. T11 척추를 통해 T9의 척추를 노출하려면 메스의 무딘 가장자리를 사용하여 피하 조직및 기본 근막에 작은 중간 선 절개를 하고 미세 팁 비 날카로운 집게를 사용하여 해부하고 근막을 반영합니다. 라미네를 노출하려면 메스의 무딘 끝을 사용하여 T11 척추를 통해 T9의 척추를 따라 등쪽 트렁크와 패러가 나는 근육을 분할하고 무딘 미세 팁 집게를 사용하여 근육을 무딘 으로 사용하여 척추의 라미나를 노출시하십시오.동일한 집게를 사용하여 T10 척추의 횡방향 공정 주위에 작은 포켓을 만들고 생성된 포켓 내의 횡방향 프로세스 아래에 곡면 집게의 프롱을 연결하여 T10 척추 본체를 안정화시합니다. T10 라미네를 따뜻한 식염수로 철저히 헹구고 면 봉면을 사용하여 뼈 표면을 깨끗하게 닦아 근육이나 인대 부착이 양측 표면을 따라 남아 있지 않습니다. 양측 간 라미네를 분해하려면 직경 0.55밀리미터, 7mm 길이 드릴 비트 팁을 사용하여 T9/T10 연골 공간에서 T10/T11 연골 공간으로 수직 경로를 추적하여 드릴 오프를 사용하는 T10 라미네를 따라 두 T10 라미네를 따라 비장 공간을 추적합니다.경로가 추적되면, 드릴을 켜고 천천히 조심스럽게 T10 척추의 오른쪽 라미나에 수직 트렌치를 만들, 척추를 안정적으로 유지하기 위해 곡선 된 집게를 사용하여. 라미나 왼쪽에 있는 과정을 반복한 후, 따뜻한 식염수로 조직을 관개하여 남은 뼈 조각을 씻어낸다. 한 손으로 척추에 좋은 그립을 유지하는 것은이 단계에 필수적입니다.또한 드릴을 사용하는 것이 편안하고 자신감을 가지는 것도 중요합니다. 다음으로, 각진 미세 팁 집게를 사용하여 가시 공정을 잡고 양자 드릴링에 의해 분리된 라미네의 전체 등등 세그먼트를 제거합니다. 그런 다음, 절제 창 내에서 척수의 명확한 시각화를 허용하기 위해 필요에 따라 관개 및 면봉.노출된 코드 내척수손상을 유도하려면, 라미네절제술 창의 중앙에 코드를 슬라이스하기 위해 좁고 둥근 절단 날날을 사용하여 척추의 측면 오목을 쓸어내어 완전한 결부 손상을 유도한다. 편부 부상의 완전성을 확인하려면 무딘 미세 팁 집게를 사용하여 트랜섹션 부위의 나머지 연결을 제거합니다. 혈관 부 부위에서 hemostasis가 달성되면 T10 척추에 곡선 포스프의 그립을 해제하고 좋은 정점을 달성하기 위해 중간선을 따라 해부 된 근육의 가장자리를 함께 가져옵니다.5/0 폴리글락틴 910 흡수성 봉합사를 사용하여 근육을 레이어에 봉합하여 척추의 자연적인 곡률이 봉합사 라인에서 긴장을 일으키지 않거나 봉합사를 열지 않도록 합니다. 그런 다음 5/0 비 흡수성 실크 봉합사를 사용하여 피하 조직과 피부를 닫고 폐쇄 하기 전에 피부 아래에 출혈, 혈전 또는 파편이 없는 지주니다. 마우스에서 횡부형 척수 손상을 유도하는 이 방법이 재현가능하고 일관된지 여부를 평가하기 위해, 부상당한 척수는 마우스에서 면역조직화학 및 행동 검사에 의해 분석될 수 있다.성상세포 마커, 글리아 세동 산성 단백질에 대한 면역 라벨링은 손상되지 않은 척수의 경계의 경계를 용이하게합니다. 이 세로 섹션에서, 위치 부상 사이트는 예상대로 코드 그루터기 사이에 시각화 할 수 있습니다. 일관된 크기 결함은 평균 최소 거리 550.4, 플러스 또는 마이너스 17.3 마이크로미터로 트랜섹션 부위에서 유도될 수 있다.오픈 필드 테스트의 바소 마우스 스케일을 배포하는 행동 데이터는 부상당한 마우스가 부상 후 뒷다리 움직임을 나타내지 않는다는 것을 보여줍니다. 따라서, 프로토콜은 완전하고 신뢰할 수 있는 횡분 형 상해를 생성하여 마비의 자발적인 반전으로 이어지지 않는 부상 수준 이하의 기능 손실을 초래한다. 그것은 잘못 드릴되면 라미네절창을 복구하는 것이 매우 까다로울 수 있기 때문에, 안정적인 손으로 직선으로 드릴조심하십시오.척수 손상 유도 후, 약물 전달 및 세포 이식을 포함한 다양한 치료 옵션을 적용하여 척수 손상 회복을 개선하는 잠재적 치료법을 식별할 수 있습니다.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Dissection and Culture of Commissural Neurons from Embryonic Spinal Cord

배아 척수에서 뉴런의 Commissural 해부와 문화

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies ...

연구

신경과학

Lateral Fluid Percussion: Model of Traumatic Brain Injury in Mice

측면 유체 타악기 : 마우스의 외상성 뇌 손상 모델

Traumatic brain injury (TBI) research has attained renewed momentum due to the increasing awareness of head injuries, which result in morbidity and ...

Complete Spinal Cord Injury and Brain Dissection Protocol for Subsequent Wholemount In Situ Hybridization in Larval Sea Lamprey

Complete Spinal Cord Injury and Brain Dissection Protocol for Subsequent Wholemount In Situ Hybridization in Larval Sea Lamprey

이후 Wholemount을위한 완벽한 척수 손상 및 뇌 해부 프로토콜<em&gt; 제자리에서</em&gt; 애벌레 바다 장어의 하이브리드

After a complete spinal cord injury, sea lampreys at first are paralyzed below the level of transection. However, they recover locomotion after several ...

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

<em&gt; 전의 VIVO</em&gt; 레이저에 의한 척수 손상 모델은 실시간으로 축삭 변성의 메커니즘을 평가하기 위해

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal ...

Spinal Cord Neurons Isolation and Culture from Neonatal Mice

신생아 생쥐의 척수 신경 세포 분리 및 배양

We present a protocol for the isolation and culture of spinal cord neurons. The neurons are obtained from neonatal C57BL/6 mice and are isolated on ...

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

Thy1를 사용 하 여 기본 Somatosensory 피 질에서 신경 활동을 이미징-GCaMP6s 유전자 변형 쥐

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in ...

An In Vivo Duo-color Method for Imaging Vascular Dynamics Following Contusive Spinal Cord Injury

An In Vivo Duo-color Method for Imaging Vascular Dynamics Following Contusive Spinal Cord Injury

에 비보 듀오 컬러 이미징 혈관 역학 Contusive 척수 상해를 따르는 방법

Spinal cord injury (SCI) causes significant vascular disruption at the site of injury. Vascular pathology occurs immediately after SCI and continues ...

Activity-based Training on a Treadmill with Spinal Cord Injured Wistar Rats

척수와 디딜 방 아에 활동 기반 교육 부상 Wistar 쥐

Spinal cord injury (SCI) results in lasting deficits that include both mobility and a multitude of autonomic-related dysfunctions. Locomotor training (LT) ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

쥐와 마우스 두뇌에 신경 줄기 세포의 동맥 내 납품: 대뇌 허혈에 응용 프로그램

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

Establishing a Mouse Contusion Spinal Cord Injury Model Based on a Minimally Invasive Technique

최소 침습 기술을 기반으로 한 마우스 타박상 척수 손상 모델 설정

Using minimally invasive methods to model spinal cord injury (SCI) can minimize behavioral and histological differences between experimental animals, ...