Name: induction of complete transection-type spinal cord injury in mice
Uploaded: 2020-05-06T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice at JoVE.com

Detta arbete stöddes av en Griffith University International Student (PhD) stipendium till RR, en Perry Cross Foundation Grant till JE och JSJ, en Clem Jones Foundation Grant till JSJ och JE, och en Trafikolycka Insurance Commission of Queensland bidrag till JSJ och JE.

Alla förfaranden genomfördes med godkännande av Griffith University Animal Ethics Committee (ESK/04/16 AEC och MSC/04/18 AEC) enligt riktlinjerna från National Health and Medical Research Council of Australia.
1. Djurets uppställda förfarande för operationen
<ol><li>Bedöva och stabilisera djuret.<ol>
<li>Använd 8–10 veckor gamla C57BL/6-möss. Använd 5% isofluran i 1 L/min syre för induktion av anestesi. För underhåll av anestesi, använd 1,5–2% isofluran i 1 L/min syre. Bek...

<ol>
	<li>Sharif-Alhoseini, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+spinal+cord+injury:+a+systematic+review.">Animal models of spinal cord injury: a systematic review.</a> Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).</li><li>Lee, D. H., Lee, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+axon+regeneration+after+spinal+cord+injury.">Animal models of axon regeneration after spinal cord injury.</a> Neuroscience Bulletin. 29 (4), 436-444 (2013).</li><li>Sharif-Alhoseini, M., Rahimi-Movaghar, V., Dionyssiotis, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Topics in Paraplegia. , (2014).</li><li>Talac, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+spinal+cord+injury+for+evaluation+of+tissue+engineering+treatment+strategies.">Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies.</a> Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).</li><li>Nakae, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+animal+model+of+spinal+cord+injury+as+an+experimental+pain+model.">The animal model of spinal cord injury as an experimental pain model.</a> Journal of Biomedicine &amp; Biotechnology. 2011, 939023 (2011).</li><li>Kwon, B., Oxland, T., Tetzlaff, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+used+in+spinal+cord+regeneration+research.">Animal models used in spinal cord regeneration research.</a> Spine. 27, 1504-1510 (2002).</li><li>Kundi, S., Bicknell, R., Ahmed, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+cord+injury:+current+mammalian+models.">Spinal cord injury: current mammalian models.</a> American Journal of Neuroscience. (4), 1-12 (2013).</li><li>Harrison, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertebral+landmarks+for+the+identification+of+spinal+cord+segments+in+the+mouse.">Vertebral landmarks for the identification of spinal cord segments in the mouse.</a> Neuroimage. 68, 22-29 (2013).</li><li>Basso, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Basso+Mouse+Scale+for+locomotion+detects+differences+in+recovery+after+spinal+cord+injury+in+five+common+mouse+strains.">Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains.</a> Journal of Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).</li><li>Seitz, A., Aglow, E., Heber-Katz, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recovery+from+spinal+cord+injury:+a+new+transection+model+in+the+C57Bl/6+mouse.">Recovery from spinal cord injury: a new transection model in the C57Bl/6 mouse.</a> Journal of Neuroscience Research. 67 (3), 337-345 (2002).</li></ol>

Denna metod inducerar en fullständig skada av transectiontyp vid T10-kotnivån hos möss, vilket resulterar i fullständig paraplegi hos djuret, under skadenivån. Sammantaget resulterar denna metod i minimal blödning, försumbar oavsiktlig skada och en stabil, reproducerbar skada. Som jämfört med tidigare publicerade metoder för transection utan laminectomy10, erbjuder denna metod fördelarna i form av direkt visualisering utan att manipulera krökning av ryggraden, bättre kontroll över fu...

Ryggmärgsskada (SCI) är ett komplext medicinskt problem som resulterar i drastiska förändringar i hälsa och livsstil. Det finns inget botemedel mot SCI, och patofysiologin hos SCI är inte grundligt förstådd. Animal SCI-modeller, i synnerhet gnagaremodeller, erbjuder ett ovärderligt verktyg för att prova nya behandlingar, och har använts för att utforska SCI i årtionden. Hittills har över 72% av prekliniska SCI-studier anställda råtta modeller, jämfört med endast 16% som har använt möss1. Även om råttor, på grund av deras större storlek och tendens att bilda håligheter besläktad med mänskliga SCI, har traditionellt varit den föredragna modellen djur för att studera nya terapeutiska metoder, möss (inklusive många transgena musmodeller) nu används oftare för att studera cellulära och molekylära mekanismer i SCI2. Musmodellen erbjuder ytterligare fördelar i form av enklare hantering, snabbare reproduktionshastighet och lägre kostnader än råttor; möss uppvisar också en hög grad av genomisk likhet med människor1,2,3. Den stora nackdelen med musmodellen har identifierats som den betydligt mindre storlek som skapar utmaningar för kirurgiska ingrepp för att skapa och behandla ryggmärgsskador4,5.
Det finns en lucka i den befintliga litteraturen som belyser behovet av en robust och reproducerbara kirurgiska protokoll för att inducera stabil SCI i musmodellen. Därför ger vi en ny och exakt kirurgisk strategi i detta protokoll för att övervinna dessa begränsningar. Detta protokoll ger djupgående riktlinjer för att inducera en transection-typ skada hos möss, eftersom denna skada typ har erkänts vara den mest lämpliga att studera regenerativa och degenerativa förändringar efter en skada6, samt neuroplasticitet, neurala kretsar och vävnad engineering metoder7. Vi har valt att framkalla skadan i den nedre bröstregionen, eftersom bröstnivå SCI används vanligast i litteraturen1.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1037px;" width="1036">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Baytril injectable 50 mg/mL, 50 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">BAYT I</td>
			<td style="width:184px;">Post-operative care drug</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Betadine 500 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">BETA AS</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Castroviejo needle holder, locking</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T149C</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:449px;">Ceramic zirconia blade, round with sharp sides, single edge, angled</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">TXD101A-X</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Cotton swabs (5pcs)</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">21-893</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dremel Micro</td>
			<td style="width:243px;">DREMEL</td>
			<td style="width:161px;">8050-N/18</td>
			<td>Cordless rotary tool</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:21px;width:449px;">Dressing forceps fine</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">06-306</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Drill bits</td>
			<td style="width:243px;">Kemmer Pr&#228;zision</td>
			<td style="width:161px;">SM 32 M 0550 070</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dumont #7b forceps</td>
			<td style="width:243px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:161px;">11270-20</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Dumont tweezers, style 5</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T05-822</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Fur trimmer</td>
			<td style="width:243px;">WAHL</td>
			<td style="width:161px;">WA9884-312</td>
			<td>Zero Overlap Hair Trimmer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Iris scissors, Ti, sharp tips, straight, 90mm</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">TY-3032</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Isoflurane isothesia NXT 250</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">ISOF 00 HS</td>
			<td>Anaesthetic agent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Colibri Retractor - 4cm</td>
			<td style="width:243px;">Fine Science Tools</td>
			<td>17000-04</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Scalpel handle</td>
			<td style="width:243px;">ProSciTech</td>
			<td style="width:161px;">T133</td>
			<td>Reusable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Signature latex surgical gloves size 7.5</td>
			<td style="width:243px;">Medline</td>
			<td style="width:161px;">MSG5475</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sodium Chloride 0.9%</td>
			<td style="width:243px;">STS</td>
			<td>PHA19042005</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sterile Dressing Pack</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">08-709</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Sterile Fluid Impervious Drape 60x60 cm</td>
			<td style="width:243px;">Multigate</td>
			<td style="width:161px;">29-220</td>
			<td>Single use disposable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Surgical spirit 100 mL</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;"># SURG SP</td>
			<td>Consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Suture Material - SILK BLK 45CM 5/0 FS-2</td>
			<td style="width:243px;">Johnson &#38; Johnson Medical</td>
			<td style="width:161px;">682G</td>
			<td>Silk Suture</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:449px;">Suture Material - Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2</td>
			<td style="width:243px;">Johnson &#38; Johnson Medical</td>
			<td style="width:161px;">VCP421H</td>
			<td>Vicryl Suture</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:449px;">Temgesic 0.3 mg in 1 mL, x 5 ampoules (class S8 drug)</td>
			<td style="width:243px;">Provet</td>
			<td style="width:161px;">TEMG I</td>
			<td>Post-operative care drug</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

induction of complete transection-type spinal cord injury in mice

Ryggmärgsskada (SCI) leder till stor del till oåterkalleliga och permanent förlust av funktion, oftast till följd av trauma. Flera behandlingsalternativ, såsom celltransplantationsmetoder, forskas för att övervinna de försvagande funktionshinder som härrör från SCI. De flesta prekliniska djurförsök utförs i gnagaremodeller av SCI. Medan råtta modeller av SCI har använts i stor utsträckning, musmodeller har fått mindre uppmärksamhet, även om musmodeller kan ha betydande fördelar jämfört med råtta modeller. Den lilla storleken på möss motsvarar lägre djurunderhållskostnader än för råttor, och tillgången på många transgena musmodeller är fördelaktig för många typer av studier. Att framkalla repeterbar och exakt skada hos djuren är den primära utmaningen för SCI-forskning, som hos små gnagare kräver högprecisionskirurgi. Transection-typ skada modellen har varit en ofta använd skada modell under det senaste decenniet för transplantation-baserad terapeutisk forskning, men en standardiserad metod för att inducera en komplett transection-typ skada hos möss existerar inte. Vi har utvecklat ett kirurgiskt protokoll för att inducera en komplett transection typ skada i C57BL/6 möss på bröstkota nivå 10 (T10). Förfarandet använder en liten spets borr i stället för rongeurs att exakt ta bort lamina, varefter en tunn blad med rundade skäregg används för att inducera ryggmärgen transection. Denna metod leder till reproducerbara transection-typ skada hos små gnagare med minimal säkerhet muskel och ben skador och därför minimerar förvirrande faktorer, särskilt där beteendemässiga funktionella resultat analyseras.

Den resulterande metoden som avbildas i figur 1, innebär adekvat stabilisering av musen (Figur 1A) och bra visualisering av ryggraden och paraspinous vävnad (Figur 1B). Spinous process och laminae kan vara tydligt visualiseras med minimal muskel dissekering och blodförlust (Figur 1C, markerad zon). Finspetsborrningen utförs som visas i figur 1D, för att skapa ett lamin...

Watch this Scientific Journal Video about Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice at JoVE.com

Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice

Detta protokoll beskriver hur man skapar en exakt laminectomy för induktion av stabil transection-typ ryggmärgsskada i musmodellen, med minimala indirekta skador för ryggmärgsskada forskning.

Induktion av Komplett Transection-Typ ryggmärgsskada hos möss

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, ...

Detta protokoll levererar en exakt, kirurgiskt kontrollerad skada för att inducera en fullständig ryggmärgstransection hos möss med en hög reproducerbarhet och mycket hög överlevnad. Användningen av en fin borr för benskadan minimerar skadan på den omgivande vävnaden, vilket gör att skadan och behandlingssvaren kan modelleras med mer noggrannhet. Att utföra en laminectomy, efter att ha bekräftat en brist på svar på pedal reflex i en sövd åtta till 10 veckor gamla kvinnliga C57 svart 6 mus, raka tillbaka päls att exponera det kirurgiska området över ryggparti och sterilisera rakade området med steril bomullspinnar indränkt i povidone jod antiseptisk vätska och kirurgisk anda.Med hjälp av en skalpell, gör en vertikal mittlinjen snitt på T10 vertebral nivå och använda raka tång för att lyfta huden från den underliggande fascia för att underlätta upprullningsdon placering. För att exponera ryggarna av T9 genom T11 kotor, använd den trubbiga kanten av skalpell att göra en liten mittlinjen snitt i subkutan vävnad och underliggande fascia och använda fina spets icke-skarpa tövarna till trubbig dissekera och reflektera fascia. För att exponera laminae, använd den trubbiga spetsen av skalpell att dela dorsala bålen och paraspinous muskler längs ryggar av T9 genom T11 kotor och använda den trubbiga fina spets tång för att trubbig dissekera musklerna i lager för att exponera laminae av kotorna.Använd samma tång för att göra små fickor runt de tvärgående processerna i T10-kotan och haka fast stiften i de böjda tången under de tvärgående processerna inom de skapade fickorna för att stabilisera T10-kotkroppen. Skölj noggrant T10-laminae med varm saltlösning och använd bomullspinner för att försiktigt torka av den beniga ytan ren, var noga med att inga muskel- eller ligamenttillbehör finns kvar längs den bilaterala ytan. För att bryta laminae bilateralt, använd en 0,55 millimeter diameter, sju millimeter längd borrkronan spets för att spåra en vertikal väg från T9/T10 intervertebral utrymmet till T10/T11 intervertebral utrymme längs båda T10 laminae med borren avstängd.När banan har spårats, slå på borret och långsamt och försiktigt göra ett vertikalt dike på höger lamina av T10 kotan, med hjälp av böjda tymmor för att hålla kotan stabil. Efter att ha upprepat processen på vänster sida av lamina, bevattna vävnaden med varm saltlösning för att tvätta bort eventuella kvarvarande benfragment. Att upprätthålla ett bra grepp om ryggraden med en hand är viktigt för detta steg.Det är också viktigt att bli bekväm och säker med att använda borren. Därefter använder vinklade finspets-forceps för att greppa den spinösa processen och ta bort hela dorsala segmentet av laminae åtskilda av den bilaterala borrningen. Sedan, irrigering och svabb som behövs för att möjliggöra en tydlig visualisering av ryggmärgen inom laminectomy fönstret.För att inducera ryggmärgsskada inom den exponerade sladden, använd en smal, rund skärkant blad att skära sladden i mitten av laminectomy fönstret, var noga med att sopa de laterala skrymslen av ryggraden för att framkalla en fullständig transection skada. För att bekräfta fullständigheten av transection skada, använd den trubbiga fina spets tövröpningar för att ta bort eventuella kvarvarande anslutningar på transection platsen. När hemostas har uppnåtts vid transsektionsstället, släpp den böjda forcep grepp på T10 kotan och föra kanterna på de dissekerade musklerna tillsammans längs mittlinjen för att uppnå god apposition.Använda 5/0 polyglactin 910 resorberbara suturer, suturera musklerna i lager, se till att den naturliga krökningen av ryggraden inte orsakar någon spänning vid suturlinjen eller öppna upp suturerna. Använd sedan 5/0 icke-resorberbara silkessuturer för att stänga den subkutana vävnaden och huden, var försiktig så att det inte finns någon blödning, blodproppar eller skräp kvar under huden före stängning. För att bedöma om denna metod för att inducera transection-typ ryggmärgsskada hos möss är reproducerbara och konsekvent, kan den skadade ryggmärgen analyseras genom immunohistokemi och beteendemässiga tester kan utföras på mössen.Immuno-märkning mot astrocyte markören, glialy fibrillary sura protein, underlättar avgränsning av gränsen för den intakta ryggmärgen. I denna längsgående sektion kan skadestället som ligger visualiseras mellan sladdstumparna som förväntat. En konsekvent storleksdefekt kan induceras på transekrektionsstället med ett genomsnittligt minimalt avstånd på 550,4, plus eller minus 17,3 mikrometer.Beteendedata som distribuerar Basso Mouse Scale av ett öppet fält test visar att de skadade möss uppvisar ingen bakben rörelse efter skadan. Protokollet ger således en fullständig och tillförlitlig transection typ skada som resulterar i en fullständig förlust av funktion under skadenivån som inte leder till spontana återföring av förlamningen. Var noga med att borra i en rak linje med en stabil hand, eftersom det kan vara mycket svårt att reparera laminectomy fönstret när den har borrats felaktigt.Efter ryggmärgsskada induktion, olika behandlingsalternativ kan tillämpas, inklusive drug delivery och cell transplantation för att identifiera potentiella terapier som förbättrar ryggmärgsskada återhämtning.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Dissection and Culture of Commissural Neurons from Embryonic Spinal Cord

Dissektion och kultur commissural neuroner från embryonala ryggmärg

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies ...

Lateral Fluid Percussion: Model of Traumatic Brain Injury in Mice

Lateral Fluid slagverk: Modell av traumatisk hjärnskada hos möss

Traumatic brain injury (TBI) research has attained renewed momentum due to the increasing awareness of head injuries, which result in morbidity and ...

Complete Spinal Cord Injury and Brain Dissection Protocol for Subsequent Wholemount In Situ Hybridization in Larval Sea Lamprey

Complete Spinal Cord Injury and Brain Dissection Protocol for Subsequent Wholemount In Situ Hybridization in Larval Sea Lamprey

Komplett ryggmärgsskada och Brain Dissection protokoll för Efterföljande Wholemount<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridisering i Larvernas havsnejonöga

After a complete spinal cord injury, sea lampreys at first are paralyzed below the level of transection. However, they recover locomotion after several ...

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

En<em&gt; Ex vivo</em&gt; Laser-inducerad ryggmärgsskada modell för bedömning Mekanismer axonal degeneration i realtid

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal ...

Spinal Cord Neurons Isolation and Culture from Neonatal Mice

Ryggmärgsneurons isolering och kultur från neonatala möss

We present a protocol for the isolation and culture of spinal cord neurons. The neurons are obtained from neonatal C57BL/6 mice and are isolated on ...

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

Imaging Neural aktivitet i den primära somatosensoriska Cortex med Thy1-GCaMP6s transgena möss

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in ...

An In Vivo Duo-color Method for Imaging Vascular Dynamics Following Contusive Spinal Cord Injury

An In Vivo Duo-color Method for Imaging Vascular Dynamics Following Contusive Spinal Cord Injury

En In Vivo Duo-färg metod för Imaging vaskulär Dynamics efter Contusive ryggmärgsskada

Spinal cord injury (SCI) causes significant vascular disruption at the site of injury. Vascular pathology occurs immediately after SCI and continues ...

Activity-based Training on a Treadmill with Spinal Cord Injured Wistar Rats

Activity based träning på ett löpband med ryggmärgen skadas Wistar råttor

Spinal cord injury (SCI) results in lasting deficits that include both mobility and a multitude of autonomic-related dysfunctions. Locomotor training (LT) ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

Intra-arteriell leverans av neurala stamceller till råtta och mus hjärnan: Ansökan till cerebral ischemi

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

Establishing a Mouse Contusion Spinal Cord Injury Model Based on a Minimally Invasive Technique

Etablera en muskontusion ryggmärgsskada modell baserad på en minimalt invasiv teknik

Using minimally invasive methods to model spinal cord injury (SCI) can minimize behavioral and histological differences between experimental animals, ...