Name: imaging and analysis of oil red o-stained whole aorta lesions in an aneurysm hyperlipidemia mouse model
Uploaded: 2022-05-02T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Imaging and Analysis of Oil Red O-Stained Whole Aorta Lesions in an Aneurysm Hyperlipidemia Mouse Model at JoVE.com

تم دعم هذا العمل ، جزئيا ، من خلال منحة صغيرة مشتركة لاتحاد البيولوجيا مقدمة بموجب منحة المعاهد الوطنية للصحة P30AR070253 (P.-Y.C.) ، و HL135582 (M.S). نحن ممتنون ل R. Webber و L. Coon للحفاظ على الفئران المستخدمة في هذه الدراسة.

تم شراء الفئران mT / mG (رقم المخزون 007676) ، و Apoe-/- (رقم المخزون 002052) من مختبر جاكسون. كانت الفئران Myh11-CreERT2 هدية من ستيفان أوفرمان (متوفرة من مختبر جاكسون كمخزون رقم 019079). تم الحصول على الفئران Tgfbr2fl / fl من هارولد ل. موسى (جامعة فاندربيلت). تم تنفيذ جميع الإجراءات الحيوانية باست...

<ol>
	<li>Lusis, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Atherosclerosis.">Atherosclerosis.</a> Nature. 407, 233-241 (2000).</li><li>Emini Veseli, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+atherosclerosis.">Animal models of atherosclerosis.</a> European Journal of Pharmacology. 816, 3-13 (2017).</li><li>Plump, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Severe+hypercholesterolemia+and+atherosclerosis+in+apolipoprotein+E-deficient+mice+created+by+homologous+recombination+in+ES+cells.">Severe hypercholesterolemia and atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice created by homologous recombination in ES cells.</a> Cell. 71, 343-353 (1992).</li><li>Zhang, S. H., Reddick, R. L., Piedrahita, J. A., Maeda, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spontaneous+hypercholesterolemia+and+arterial+lesions+in+mice+lacking+apolipoprotein+E.">Spontaneous hypercholesterolemia and arterial lesions in mice lacking apolipoprotein E.</a> Science. 258, 468-471 (1992).</li><li>Ishibashi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypercholesterolemia+in+low+density+lipoprotein+receptor+knockout+mice+and+its+reversal+by+adenovirus-mediated+gene+delivery.">Hypercholesterolemia in low density lipoprotein receptor knockout mice and its reversal by adenovirus-mediated gene delivery.</a> Journal of Clinical Investigation. 92, 883-893 (1993).</li><li>Nakashima, Y., Plump, A. S., Raines, E. W., Breslow, J. L., Ross, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ApoE-deficient+mice+develop+lesions+of+all+phases+of+atherosclerosis+throughout+the+arterial+tree.">ApoE-deficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree.</a> Arteriosclerosis Thrombosis. 14, 133-140 (1994).</li><li>Chen, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Smooth+muscle+cell+reprogramming+in+aortic+aneurysms.">Smooth muscle cell reprogramming in aortic aneurysms.</a> Cell Stem Cell. 26, 542-557 (2020).</li><li>Andres-Manzano, M. J., Andres, V., Dorado, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oil+Red+O+and+Hematoxylin+and+Eosin+Staining+for+Quantification+of+Atherosclerosis+Burden+in+Mouse+Aorta+and+Aortic+Root.">Oil Red O and Hematoxylin and Eosin Staining for Quantification of Atherosclerosis Burden in Mouse Aorta and Aortic Root.</a> Methods in Molecular Biology. 1339, 85-99 (2015).</li><li>Chen, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+TGF-beta+signalling+drives+vascular+inflammation+and+atherosclerosis.">Endothelial TGF-beta signalling drives vascular inflammation and atherosclerosis.</a> Nature Metabolism. 1, 912-926 (2019).</li><li>Mehlem, A., Hagberg, C. E., Muhl, L., Eriksson, U., Falkevall, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imaging+of+neutral+lipids+by+oil+red+O+for+analyzing+the+metabolic+status+in+health+and+disease.">Imaging of neutral lipids by oil red O for analyzing the metabolic status in health and disease.</a> Nature Protocols. 8, 1149-1154 (2013).</li><li>Ferruzzi, J., Madziva, D., Caulk, A. W., Tellides, G., Humphrey, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Compromised+mechanical+homeostasis+in+arterial+aging+and+associated+cardiovascular+consequences.">Compromised mechanical homeostasis in arterial aging and associated cardiovascular consequences.</a> Biomechanics and Modeling Mechanobiology. 17, 1281-1295 (2018).</li></ol>

البروتين الشحمي E (Apoe) ومستقبلات البروتين الدهني منخفضة الكثافة (Ldlr) الفئران الناقصة مفيدة لدراسة تطور وعلاج تصلب الشرايين. يمكن للمحققين تقييم تأثير الوراثة والتلاعب العلاجي على بدء الأمراض المرتبطة بتصلب الشرايين وتطورها وتراجعها باستخدام تلطيخ الزيت الأحمر O للشريان الأورطي...

عادة ما يحدث مرض الشريان التاجي، وهو سبب رئيسي للوفيات في الولايات المتحدة، بسبب تصلب الشرايين، وهي عملية تؤدي إلى تراكم اللويحات داخل جدران الشرايين1. تعد الفئران المعرضة لفرط شحميات الدم المعرضة لنقص Apoe و Ldlr أساسية لتحقيقات تصلب الشرايين ومضاعفاته وتطوير العلاجات2،3،4،5. يعد التحديد الكمي لآفات تصلب الشرايين من الشريان الأورطي في الوجه تحليلا مهما لنقطة النهاية لتقييم تأثير التلاعب الجيني في أنواع الخلايا المختلفة. كما أنه يساعد على دراسة العلاجات الجديدة المصممة للتأثير على بدء مرض تصلب الشرايين وتطوره وانحداره. يمكن أن تتشكل آفات تصلب الشرايين في أي مكان في الشريان الأورطي وفروعه (أي الشرايين العضدية والسباتية وتحت الترقوة في الصدر، وكذلك الشرايين الكلوية والحرقفية والفخذية الشائعة أسفل الحجاب الحاجز)6. يتطلب التقييم الشامل لعبء تصلب الشرايين والعلاج المناسب تقييم عبء المرض في مواقع مختلفة ، وهو تحد غالبا ما يتم تجاهله.
يصف هذا البروتوكول كيفية إجراء تحليل شامل لآفات تصلب الشرايين ، بدءا من الشريان الأورطي الكامل غير المفتوح والمضي قدما في إعداد الوجه ، في فأر واحد. يسمح تلطيخ الشريان الأورطي الكامل غير المفتوح بالزيت الأحمر O بإجراء تقييم سريع ونوعي للويحات المحملة بالدهون في الشريان الأورطي بأكمله وفروعه ، بينما يوفر إعداد الوجه تقييما كميا لتوزيع آفة تصلب الشرايين في الشريان الأورطي للفأر.
تستخدم هذه التقنية فئران عمرها 8 أسابيع مع حذف TGFβR2 خاص بخلايا العضلات الملساء على خلفية Apoe-/- hyperlipidemic (MYH11-CreERT2; Tgfbr2f/f;mT/mGf/f; أبو-/-; يشار إليها فيما يلي باسم الفئران TGFβR2iSMC-Apoe) وعناصر التحكم في القمامة Apoe-/- (MYH11-CreERT2;mT/mGf/f; أبو-/-; يشار إليها فيما يلي باسم Apoe-/- الفئران). يتم الاحتفاظ بالحيوانات لمدة 16 أسبوعا على نظام غذائي عالي الكوليسترول عالي الدهون (HCHFD) كمواد دراسة7. عند إنهاء الدراسة ، يتم تلطيخ الأبهر الكامل غير المفتوح وتصويره (بما في ذلك جميع الفروع الرئيسية) باستخدام Oil Red O للتقييم النوعي للويحات المحملة بالدهون. يتم قطع الشريان الأورطي عن طريق إعداد الوجه ، ويتم تصوير جميع آفات تصلب الشرايين وتحديدها كميا. يمكن استخدام هذا البروتوكول لدراسة تطور آفة تصلب الشرايين في نماذج الفئران Apoe-/- أو Ldlr-/- فرط شحميات الدم وتوسيعه ليشمل تطبيقات بيولوجيا الأوعية الدموية العامة المتعلقة بالشريان الأورطي.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>1.5 mL Eppendorf tube</td>
			<td>DENVILLE</td>
			<td>C2170</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 mL syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>302995</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>16% Formaldehyde</td>
			<td>Polysciences</td>
			<td>18814-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>70% ethanol</td>
			<td>VWR</td>
			<td>RC2546.70-5</td>
			<td>To clean the dissection tools</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Black dissection wax</td>
			<td>CR Scientific</td>
			<td>C3541</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corn oil</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C8267</td>
			<td>Solvent for Tamoxifen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNeasy Blood &#38; Tissue kit</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>69506</td>
			<td>To isolate DNA from mouse ear</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8217;s Phosphate-buffered saline (1X DPBS), pH 7.4</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14190-144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14059-11</td>
			<td>To cut the mouse skin and open the ribcage</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand Economy Plain Glass Microscope Slides</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-550-A3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High cholesterol high fat diet</td>
			<td>Research Diets</td>
			<td>D12108</td>
			<td>To induce atherosclerosis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging software</td>
			<td>National Institutes of Health</td>
			<td>Image J</td>
			<td>Aortic lesion quantification</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>VWR</td>
			<td>JT9079-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimwipes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>06-666A</td>
			<td>To clean the glass microscope slides</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>McPherson-Vannas Micro Dissecting Spring Scissors</td>
			<td>ROBOZ</td>
			<td>RS-5602</td>
			<td>To separate the heart and the aorta and to cut open the aorta and aorta branches</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope control software</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>DP Controller</td>
			<td>For aorta imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Minutien pins</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>26002-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle-25G</td>
			<td>BD</td>
			<td>305124</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NonWoven Sponge</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>94442000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oil Red O</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>O-0625</td>
			<td>To stain the atherosclerosis lesions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pall Acrodisc Sterile Syringe Filters with Super Membrane</td>
			<td>VWR</td>
			<td>28143-312</td>
			<td>To filter working Oil Red O solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spring Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>15021-15</td>
			<td>To dissect and clean the aorta</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Statistical software</td>
			<td>GraphPad</td>
			<td>Prism 8</td>
			<td>Statical analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ1000</td>
			<td>For aorta dissection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>SZX16</td>
			<td>For aorta imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tamoxifen</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T5648</td>
			<td>To induce Cre-loxP recombination</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue-Tek O.C.T Compound, Sakura Finetek</td>
			<td>VWR</td>
			<td>25608-930</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tweezer Style 4</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>0302-4-PO</td>
			<td>To cut the mouse skin and open the ribcage</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tweezer Style 5</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>0302-5-PO</td>
			<td>To dissect and clean the aorta</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

imaging and analysis of oil red o-stained whole aorta lesions in an aneurysm hyperlipidemia mouse model

الفئران المفرطة للدهون الناقصة Apolipoprotein E (Apoe) - أو مستقبلات البروتين الدهني منخفض الكثافة (Ldlr) هي النموذجان الأكثر استخداما لأبحاث تصلب الشرايين. يتم استخدامها لدراسة تأثير العوامل الوراثية المختلفة وأنواع الخلايا المختلفة على تكوين آفة تصلب الشرايين وكذلك اختبار تطوير علاجات جديدة. العزل ، واستئصال الشريان الأورطي بأكمله ، والقياس الكمي لآفات تصلب الشرايين الملطخة بالزيت الأحمر O هي طرق مورفومترية أساسية تستخدم لتقييم عبء تصلب الشرايين. الهدف من هذا البروتوكول هو وصف طريقة جراحية محسنة خطوة بخطوة لتشريح وإصلاح الثقب والعزل والبقع والصورة وتحليل آفات تصلب الشرايين في الشريان الأورطي للفئران باستخدام Oil Red O. نظرا لأن الآفات التصلب الأذيني يمكن أن تتشكل في أي مكان في شجرة الأبهر بأكملها ، فإن طريقة تلطيخ الأبهر بالزيت الأحمر O بأكملها تتمتع بميزة تقييم اللويحات المحملة بالدهون في الشريان الأورطي بأكمله وجميع الفروع في فأر واحد. بالإضافة إلى تلطيخ الزيت الأحمر O ، يمكن استخدام الأبهر الكامل المعزول الطازج لمجموعة متنوعة من التجارب في المختبر وفي الجسم الحي وعزل الخلايا.

في هذا البروتوكول ، تم تحليل آفات تصلب الشرايين في الفئران TGFβR2iSMC-Apoe بعد 4 أشهر على نظام غذائي HCHF 7. بالإضافة إلى تصلب الشرايين واسع النطاق ، طورت هذه الفئران تمدد الأوعية الدموية الأبهري الصدري والبطني ، كما ذكر سابقا. بالمقارنة مع الفئران Apoe-/- ، أظهرت جدران الأبهر ?...

Watch this Scientific Journal Video about Imaging and Analysis of Oil Red O-Stained Whole Aorta Lesions in an Aneurysm Hyperlipidemia Mouse Model at JoVE.com

Imaging and Analysis of Oil Red O-Stained Whole Aorta Lesions in an Aneurysm Hyperlipidemia Mouse Model

يوفر هذا البروتوكول إجراء خطوة بخطوة لتحليل عبء تصلب الشرايين في الفئران. يمكن للمحققين استخدام هذا البروتوكول لمقارنة وفرة وموقع وحجم آفات تصلب الشرايين في الحيوانات المختلفة.

تصوير وتحليل آفات الشريان الأورطي الكامل الملطخة بالزيت الأحمر في نموذج فأر فرط شحميات الدم تمدد الأوعية الدموية

Apolipoprotein E (Apoe)- or low density lipoprotein receptor (Ldlr)-deficient hyperlipidemic mice are the two most commonly used models for ...

يعد التحديد الكمي لآفات تصلب الشرايين في apoE وأنواع أخرى من الفئران شديدة الدهون أمرا أساسيا لتقييم العوامل الوراثية المختلفة والعلاجات الجديدة. يوفر بروتوكولنا تعليمات خطوة بخطوة لتحليل عبء تصلب الشرايين بطريقة نوعية وكمية في ماوس واحد. بعد 16 أسبوعا من تحفيز تصلب الشرايين ، قبل اختراق القلب ، قم بتحميل حقنة 10 ملليلتر مع 10 ملليلتر من DPBS وإرفاق إبرة قياس 25.ارفع جلد البطن للفأر التجريبي باستخدام ملاقط واستخدم مقص ناعم لقطع الجلد من قاعدة البطن إلى أعلى الرقبة. افتح جدار البطن أسفل القفص الصدري واستخدم الملقط لرفع القص للوصول إلى الحجاب الحاجز. قطع الحجاب الحاجز وقطع القفص الصدري لفضح التجويف الصدري.بعد ذلك ، قم بعمل شق صغير في الأذين الأيمن للقلب وحقن ببطء كامل حجم DPBS في ثقب البطين الأيسر القمي. سوف يتحول لون الكبد والكلى إلى اللون البني الفاتح. عندما يتم اختراق كل المياه المالحة ، استخدم إسفنجة غير منسوجة لتنظيف تجويف الصدر من أي دم أو سائل غريب.بعد مسح تجويف الصدر ، قم بإزالة الأعضاء غير التجريبية وقطع الترقوة باستخدام ملاقط ومقص دقيق. ضع الفأر تحت مجهر ستيريو واستخدم الملقط والمقص الربيعي لتشريح الشريان الأورطي. عندما يتم عزل الشريان الأورطي، قم بتغطية الأنسجة بإسفنجة غير منسوجة مبللة ومالحة وقم بتشريح فروع الأبهر بما في ذلك الشرايين العضدية والسباتية وتحت الكلافية والكلوية والحرقفية الشائعة والفخذية.عندما يتم عزل جميع الشرايين المتفرعة من الشريان الأورطي ، استخدم الملقط والمقص الربيعي لتشريح وإزالة الأنسجة الدهنية والضام حول فروع الشريان الأورطي والشريان الأورطي بعناية. يتطلب العزل الناجح لفروع الشريان الأورطي والأبهر الممارسة والصبر. لإصلاح شجرة الأوعية الدموية ، قم أولا بتحميل حقنة 10 ملليلتر مع 4٪ من الفورمالديهايد في 1X DPBS وإرفاق إبرة قياس 25.تذكر دائما إعداد 4٪ الفورمالديهايد داخل غطاء الدخان. أدخل الإبرة في ثقب البطين الأيسر القمي وحقن ببطء كامل حجم التثبيت. نظف تجويف الصدر من أي سوائل غريبة باستخدام إسفنجة غير منسوجة كما هو موضح واستخدم ملاقط ومقص زنبركي تشريحي دقيق لفصل القلب عن الشريان الأورطي.عندما يتم فصل الأنسجة ، قم بعزل واستئصال الشريان الأورطي ووعاءه الرئيسي من ملليمتر واحد فوق الشريان السباتي إلى نهاية الشريان الفخذي ووضع الوعاء في حاوية من DPBS. لتلطيخ الزيت الأحمر O للشريان الأورطي الكامل غير المفتوح ، استخدم دبابيس Minutien لتثبيت الوعاء على طبق بتري الشمع وشطف الوعاء ب DPBS الطازج. صب 25 ملليلتر من محلول الزيت الأحمر الطازج المصفى بالمسام 0.45 ميكرومتر في الطبق للحصول على وصمة عار لمدة 60 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.اغمر الأنسجة بنسبة 60٪ من الأيزوبروبانول لغسلها لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. في نهاية الحضانة ، اشطف الوعاء ثلاث مرات بالماء المقطر العذب لمدة خمس دقائق لكل غسل وضع الطبق تحت المجهر التشريحي. استخدم الملقط والمقص الربيعي لتنظيف جميع الأنسجة الدهنية المحيطة بالأوعية الدموية حول الشريان الأورطي بلطف لتجنب أي خلفية زائفة تلطيخ الزيت الأحمر O ونقل الوعاء إلى شريحة مجهر زجاجية نظيفة.سيقوم Oil Red O بتسمية البلاك الغني بالدهون باللون الأحمر ، تاركا المناطق التي لا تحتوي على البلاك شاحبة اللون. ثم الحصول على صور مجهرية رقمية عالية الدقة مع مجهر ضوئي مجهز بكاميرا وحفظ الصور ويفضل أن يكون ذلك بتنسيق ملف صورة مميز. لتركيب عينة الأنسجة الأبهرية على الوجه ، انقل الوعاء إلى طبق بتري الشمع وقم بتغطية الأنسجة ب DPBS الطازجة.قطع الشرايين السباتية وتحت الترقوة في قوس الأبهر والشرايين الحرقفية في الشريان الأورطي البطني بعد واحد إلى مليمترين من التشعبات. قطع الشرايين الكلوية. بعد ذلك ، استخدم مقص زنبركي تشريحي دقيق لفتح إعداد الشريان الأورطي طوليا على طول الانحناء الداخلي والشرايين الحرقفية وقطع الفروع الثلاثة لقوس الأبهر على طول الانحناء الأكبر حتى المستوى الأساسي للانحناء الداخلي.ثم استخدم دبابيس Minutien لتثبيت الشريان الأورطي مسطحا على الطبق دون التمدد مع توجيه جانب التجويف لأعلى وتغطية الأنسجة ب DPBS الطازج. بالمقارنة مع الفئران الضربة القاضية للبروتين الشحمي E ، تظهر جدران الأبهر لخلية العضلات الملساء TGF-beta-R2 الضربة القاضية الفئران الشحمية E تصلب الشرايين الشديد ، مما يجعل من الصعب تشريح الآفات. بالإضافة إلى ذلك ، فإن تمدد الأوعية الدموية واسع النطاق بشكل خاص أسفل الشريان الأورطي فوق الكلوي ، مما يذكرنا إلى حد كبير بتمدد الأوعية الدموية الأبهري البشري المتقدم.هنا ، يتم عرض صورة تمثيلية للشريان الأورطي غير المفتوح من فأر عالي الكوليسترول عالي الدهون يتغذى على نظام غذائي TGF-beta-R2 بالضربة القاضية Apolipoprotein E الملطخ بالزيت الأحمر O. طور الفأر تمدد الأوعية الدموية الأبهري الصاعد والبطني مع تسارع تكوين آفة تصلب الشرايين التي لوحظت في الشرايين العضدية والسباتية وتحت الكلافية والحرقفية والفخذية والكلوية. هذا في الوجه النفط الأحمر O تلطيخ TGF-بيتا-R2 بالضربة القاضية البروتين الشحمي E أنسجة الفأر يكشف عن تضخم تمدد الأوعية الدموية الشديد واستطالة ملحوظ من الشريان الأورطي بأكمله مقارنة مع البروتين الشحمي E الضربة القاضية مجموعة الفأر.من المهم أن تكون قادرا على التمييز بين اللويحات الملطخة بالزيت الأحمر O من الخلفية الزائفة Oil Red O الأنسجة الدهنية الملطخة حول الأوعية الدموية. لويحات تصلب الشرايين هي ظواهر ثلاثية الأبعاد. بعد تحديد حجم آفة الأبهر 2D في الوجه ، نوصي بتحليل مجموعة البلاك مثل جذور الأبهر والشريان العضدي.يمكن أيضا استخدام هذا البروتوكول لتحديد ما إذا كان عامل وراثي معين أو تدخل أو علاج معين يؤثر على تطور تصلب الشرايين أو تراجعه في هذه النماذج.

Research

JoVE Journal

Medicine

Monitoring Tumor Metastases and Osteolytic Lesions with Bioluminescence and Micro CT Imaging

رصد الانبثاث ورم والآفات الحالة للعظم مع ضوء بارد ، والتصوير المقطعي مايكرو

Following intracardiac delivery of MDA-MB-231-luc-D3H2LN cells to Nu/Nu mice, systemic metastases developed in the injected animals. Bioluminescence ...

Multi-photon Imaging of Tumor Cell Invasion in an Orthotopic Mouse Model of Oral Squamous Cell Carcinoma

متعدد الفوتون التصوير من غزو خلايا الورم في الفأر نموذج مثلي الفم سرطان الخلايا الحرشفية

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient ...

Quantitative Analysis and Characterization of Atherosclerotic Lesions in the Murine Aortic Sinus

Atherosclerosis is a disease of the large arteries and a major underlying cause of myocardial infarction and stroke. Several different mouse models have ...

The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model

هلسنكي الجرذ المجهرية جانب الجدار تمدد الأوعية الدموية نموذج

Experimental saccular aneurysm models are necessary for testing novel surgical and endovascular treatment options and devices before they are introduced ...

An Orthotopic Glioblastoma Mouse Model Maintaining Brain Parenchymal Physical Constraints and Suitable for Intravital Two-photon Microscopy

ومثلي الأشكال ورم أرومي نموذج الفأر القيود الحفاظ على الدماغ متني البدنية ومناسبة لحيوي داخلي ثنائي الفوتون المجهري

Glioblastoma multiforme (GBM) is the most aggressive form of brain tumors with no curative treatments available to date.
Murine models of this pathology ...

Glaucoma-inducing Procedure in an In Vivo Rat Model and Whole-mount Retina Preparation

Glaucoma-inducing Procedure in an In Vivo Rat Model and Whole-mount Retina Preparation

الإجراءات في يحفز الزرق<em&gt; في فيفو</em&gt; نموذج الفأر وجبل لالجامع إعداد الشبكية

Glaucoma is a disease of the central nervous system affecting retinal ganglion cells (RGCs). RGC axons making up the optic nerve carry visual input to the ...

Whole-brain Segmentation and Change-point Analysis of Anatomical Brain MRI&#8212;Application in Premanifest Huntington's Disease

Whole-brain Segmentation and Change-point Analysis of Anatomical Brain MRIÃƒÆ’Ã‚Â¢ÃƒÂ¢Ã¢â‚¬Å¡Ã‚Â¬ÃƒÂ¢Ã¢â€šÂ¬Ã‚ÂApplication in Premanifest Huntington's Disease

الدماغ كل تجزئة وتحليل التغيير-نقطة من الدماغ التشريحية التصوير بالرنين المغناطيسي – التطبيق في مرض هنتنغتون بريمانيفيست

Recent advances in MRI offer a variety of useful markers to identify neurodegenerative diseases. In Huntington&#39;s disease (HD), regional brain atrophy ...

Quantitative Micro-CT Analysis of Aortopathy in a Mouse Model of &#946;-aminopropionitrile-induced Aortic Aneurysm and Dissection

Quantitative Micro-CT Analysis of Aortopathy in a Mouse Model of ÃƒÆ’Ã…Â½Ãƒâ€šÃ‚Â²-aminopropionitrile-induced Aortic Aneurysm and Dissection

التحليل الكمي للأشعة المقطعية الصغرى من أورتوباثي في نموذج ماوس β-أمينوبروبيونيتريلي-المستحث الابهر والتشريح

Aortic aneurysm and dissection is associated with significant morbidity and mortality in the population and can be highly lethal. While animal models of ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

متساوي القياس كونتراكتيليتي القياس الشريان المساريقي العلوي الماوس باستخدام أسلاك ميوجرافي

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...

Ultrasound Imaging of the Thoracic and Abdominal Aorta in Mice to Determine Aneurysm Dimensions

التصوير بالموجات فوق الصوتية للشريان الاورطي الصدري والبطن في الفئران لتحديد أبعاد تمدد الأوعية الدموية

Contemporary high-resolution ultrasound instruments have sufficient resolution to facilitate the measurement of mouse aortas. These instruments have been ...